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KIT – Universität des Landes Baden-Württemberg und nationales Großforschungszentrum in der Helmholtz-Gemeinschaft Institut für Organische Chemie – Seminar zum Fortgeschrittenenpraktikum www.kit.edu Enzyme in der organischen Synthese – ausgewählte Beispiele Jürgen Weippert

Enzyme in der organischen Synthese – ausgewählte Beispieleklammler.eu/data/chemistry/kit/ocf/JuergenWeippert_praesentation.pdf · KIT – Universität des Landes Baden-Württemberg

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Page 1: Enzyme in der organischen Synthese – ausgewählte Beispieleklammler.eu/data/chemistry/kit/ocf/JuergenWeippert_praesentation.pdf · KIT – Universität des Landes Baden-Württemberg

KIT – Universität des Landes Baden-Württemberg undnationales Großforschungszentrum in der Helmholtz-Gemeinschaft

Institut für Organische Chemie – Seminar zum Fortgeschrittenenpraktikum

www.kit.edu

Enzyme in der organischen Synthese – ausgewählte Beispiele

Jürgen Weippert

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Inhalt des Vortrags

1.Klärung der Grundbegriffe

2.Nutzung von Enzymen bei selektiven Synthesen

-Enantiomerentrennung

-Regioselektive enzymatische Reaktionen

-Enantioselektive enzymatische Reaktionen (insb. C-C)

3.Enzyme vs. Herkömmliche Katalysemethoden

4.Interessante Zusatzinformationen

5.Zusammenfassung

6.Literatur

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1.Klärung der Grundbegriffe

-Enzym: katalytisch aktives Biomolekül, meist Protein, seltener nukleotidartige Sequenzen

-Wirkungsweise: Stabilisierung des Übergangszustandes

-Cofaktor: kleineres Molekül, entscheidend für katalytische Aktivität

-Apoenzym: Enzym ohne Cofaktor

-Holoenzym: Enzym mit Cofaktor

-prostethische Gruppe: fest ans Enzym gebundenes Coenzym

Stryer: Biochemie, 6.Aufl, Spektrum/Elsevier, München, 2007 3

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1.Klärung der Grundbegriffe

Wichtiger Cofaktor:

NADH/NAD+

v.a. bei Redoxreaktionen

NADPH: zus. Phosphat

Regeneration:

z.B. mit Isopropanol/Aceton

Stryer: Biochemie, 6.Aufl, Spektrum/Elsevier, München, 2007Wolberg et al., Angew.Chem.,2000, 112, 4476-4478 4

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1.Klärung der Grundbegriffe

-aktives Zentrum: Ort der Substratbindung und Reaktion

-katalytische Gruppen: funktionelle Gruppen der Aminosäuren im aktiven Zentrum

-“Schlüssel-Schloss-Prinzip“

-Enzymaktivität durch Michaelis-Konstante KM charakterisiert

(siehe PCI)

-Inhibitor: hemmt Enzymwirkung oder bringt sie komplett zum Erliegen

Stryer: Biochemie, 6.Aufl, Spektrum/Elsevier, München, 2007 5

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2.Enantiomerentrennung

Klass. Synthesen: oft Ausbeuteverluste durch nicht quantitative Abreaktion der Enantiomere bei Trennverfahren

Lösung: Enzyme setzen Enantiomere selektiv und vor allem quantitativ um, so dass eine größere Ausbeute ermöglicht wird.

K.Koeller, C.H. Wong, Nature 2001, 409, S.232-2406

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2.Enantiomerentrennung-KR

KR: Kinetic resolution (Racematspaltung)

Problem: Ausbeutehalbierung + Produktgemisch

B.Persson, A.Larsson, M. Le Ray, J. Bäckvall, J.Am.Chem.Soc. 1999, 121, 1645-1650 7

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2.Enantiomerentrennung-DKR

Lösung: DKR (Dynamic kinetic resolution / dynamische Racematspaltung)

B.Persson, A.Larsson, M. Le Ray, J. Bäckvall, J.Am.Chem.Soc. 1999, 121, 1645-1650 8

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2.Regioselektivität: Reduktionen

Hier oft Cofaktoren wie NADPH

Jeromin, Bertau: Bioorganikum,1.Aufl, Wiley-VCH, Weinheim, 2005Wolberg et al., Angew.Chem.,2000, 112, 4476-4478 9

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2.Regioselektivität: Decarboxylierung

Hier: Decarboxylierung von Asparaginsäure zu Alanin

Sonst: Decarboxylierung nur unter sehr harschen Bedingungen, die auch andere Carboxylfunktion entfernen können

J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403 10

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2.Enantioselektivität: Reduktionen

Nicht nur Regio- sondern auch Enantioselektivität bei Reduktionen von Ketonen

J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403 11

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2.Enantioselektivität: C-C-Knüpfungen

-Asymmetrische Synthese mit C-C-Knüpfungsschritten essentiell in moderner Synthese

-1,3-difunktionelle Verbindungen: enzymatische Aldol-Reaktions-bzw. -Kondensations-Analoga

-1,2-difunktionelle Verbindungen: Analoga zu Benzoin- Reaktion und Acyloin-Kondensation (hier gezeigt)

J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403 12

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2.Enantioselektivität: 1,3-difunktionell

Herkömmliche Synthese ergäbe Gemisch von 3 Konstitutionsisomeren zzgl. Stereoisomeren, hier fast nur:

J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403 13

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2.Enantioselektivität: 1,2-difunktionell

Synthese von 1,2-difunktionellen Verbindungen auf herkömmlichem Wege schwierig

Erleichterung durch Enzyme

Hier: Acyloin-Kondensationen

J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403 14

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2.Enantioselektivität: 1,2-difunktionell

Synthese von 1,2-difunktionellen Verbindungen auf herkömmlichem Wege schwierig

Erleichterung durch Enzyme

Hier: Acyloin-Kondensationen

Dieses Beispiel: trotz Enzym kleine Ausbeute

J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403 15

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2.Enantioselektivität: Aldol-Reaktion + Ringschluss

DERA: Deoxyribose-5-phosphataldolase

Sehr vielseitiges Enzym, viele ähnliche Reaktionen

Bem.: eine racemische OH-Gruppe im Produkt

C.H.Wong, W.A. Greenberg in M.Christmann/S.Bräse: Asymmetric Synthesis, 2.Aufl., Wiley-VCH, Weinheim, 2007 16

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2.Selektivität: Kombination

Bei beiden Enantiomeren Sättigung, nur bei einem Oxidation an einer Hydroxylgruppe

HLADH: Alkoholdehydrogenase aus der Pferdeleber (Horse liver)

J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403 17

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3.Enzyme vs. Herkömmliche Katalysemethoden

Durch enzymatische Katalyse Vermeidung harscher Reaktionsbedingungen oder unerwünschter Nebenreaktionen

Bsp.1: Esterspaltung ohne Säure oder Lauge, d.h. keine Bildung reaktiver Enole oder Enolate

J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403 19

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3.Enzyme vs. Herkömmliche Katalysemethoden

Bsp.2: Hier Reinheitsdifferenz, aber v.a. Enzym langsamer!

S.Rissom et al., Tetr. Asymm.,1999, 10, 923-928 20

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3.Enzyme vs. Herkömmliche Katalysemethoden

Bsp.3:Statin, ein Cholesterininhibitor

A.Job, A.Stolle in M.Christmann, S.Bräse: Asymmetric Synthesis, 2.Aufl., Wiley-VCH, Weinheim, 2007

Yasohara et al., Tetr.Asymm.,2001,12, 1713-1718 21

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3.Enzyme vs. Herkömmliche Katalysemethoden

Außerdem:

-Denaturierungsrisiko

-Vielfalt von Reaktionen

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4.Interessante Zusatzinformationen

-bei enzymatischen Protonen- und Hydridtransferreaktionen signifikante Bedeutung des Tunneleffekts

-in Wasser sehr häufig wesentlich höhere Reaktivität als in organischen Lösemitteln, Gründe: – Org. LM können akt. Zentrum blockieren– Enzyme wechseln Konformation in anderem LM– Substrat zu stark solvatisiert– u.a.

Q.Cui, M.Elstner, M.Karplus, J.Phys.Chem.B, 2002,106, 2721-2740A.Klibanov, Trends in Biotechnology, 1997, 15,97-101 23

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5.Zusammenfassung

-Enzyme vielseitig verwendbare Biokatalysatoren

-erlauben Vermeidung harscher Bedingungen

-erlauben energiesparende Methoden (z.T. langsam)

-selbst empfindliche Moleküle

-Viele Variationsmöglichkeiten

-ermöglichen große Produktreinheiten durch– Enantioselektivität– Regioselektivität– Diastereoselektivität

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6.Literatur

A)Stryer: Biochemie, 6.Aufl, Spektrum/Elsevier, München, 2007*

B )J.B. Jones, Tetrahedron Report, 1986, 13, 3351-3403*

C)K.Koeller, C.H. Wong, Nature 2001, 409, S.232-240 *

D)M.Christmann, S.Bräse: Asymmetric Synthesis, 2. Aufl., Wiley-VCH, Weinheim, 2007

E)B.Persson, A.Larsson, M. Le Ray, J. Bäckvall, J.Am.Chem.Soc. 1999, 121, 1645-1650

F)Jeromin, Bertau: Bioorganikum,1.Aufl, Wiley-VCH, Weinheim, 2005

G)Wolberg et al., Angew.Chem.,2000, 112, 4476-4478

H)S.Rissom et al., Tetr. Asymm.,1999, 10, 923-928

I)Q.Cui, M.Elstner, M.Karplus, J.Phys.Chem.B, 2002, 106, 2721-2740

J)A.Klibanov, Trends in Biotechnology, 1997, 15, 97-101

K)Yasohara et al., Tetr.Asymm.,2001,12, 1713-1718

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