TopLab – Kompetenz im Labor · TopLab – Kompetenz im Labor 3 Unser Expertennetzwerk erfährt eine fortlaufende Ausweitung. Falls Sie sich vorstellen können, uns als Expertin/Experte

TopLab – Kompetenz im Labor

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InhaltsverzeichnisTopLab ‐ Expertennetzwerk .................................................................................................................... 2

Was ist TopLab ‐ Wie funktioniert TopLab .............................................................................................. 5

TopLab vernetzt! ............................................................................................................................. 5

TopLab bildet weiter! ...................................................................................................................... 5

TopLab berät individuell! ................................................................................................................ 5

TopLab Gebrauchtes und Gerätemarkt ........................................................................................... 5

Kurse in Modulform ................................................................................................................................ 6

Unsere Module in der Übersicht ............................................................................................................. 6

Kursangebote‐Terminübersicht ......................................................................................................... 7

10.01 Modul 1 – Homogenisation / Liquid‐Handling / Proteinbestimmung ..................................... 9

10.02 Modul 1 – Isolierung von Zellorganellen und Subfraktionen ................................................ 10

10.03 Modul 1 – SDS‐Gele, Westernblots, Antikörperinkubationen ‐ Vortrag ............................... 11

10.04 Modul 1 – SDS‐Gele, Westernblots, Antikörperinkubationen ‐ Praxis .................................. 12

10.05 Modul 2 – Einführung in die Zellkultur: Theorie ................................................................... 13

10.06 Modul 2 – Einführung in die Zellkultur: Praxis ...................................................................... 14

10.07 Modul 3 – RNA‐Isolierung / ‐Quantifizierung / ‐Qualifizierung ............................................. 15

10.08 Modul 3 – Relative Quantifizierung der Genexpression auf der Basis von RealTime‐PCR

(QRT‐PCR) ............................................................................................................................... 16

10.09 Modul 3 – PCR‐Methoden zur SNP‐Genotypisierung Seminar mit praktischem Teil .......... 17

10.10 Modul 4 – Deskriptive Statistik (Kurs 1) ................................................................................ 18

10.11 Modul 4 – Einfache statistische Tests (Kurs 2) ...................................................................... 19

10.12 Modul 4 – Lineare Regression (Kurs 3) .................................................................................. 20

10.13 Modul 4 – Logistische Regression (Kurs 4) ............................................................................ 21

10.14 Modul 4 – Varianzanalysen (Kurs 5) ...................................................................................... 22

10.15 Modul 4 – Fachrechnen im Labor .......................................................................................... 23

10.16 Modul 5 – Hellfeld‐ und Phasenkontrast‐Mikroskopie ......................................................... 24

10.17 Theoriekurs Durchflusszytometrie und FACS Kurs in Heidelberg ........................................ 25

10.18 Einführung in die Durchflusszytometrie Kurs in Mannheim ............................................... 26

10.19 Klonierung – Grundprinzipien der DNA Vervielfältigung und Weiterverarbeitung ............ 27

Referentenportraits ............................................................................................................................... 28

Teilnahmeinformationen ...................................................................................................................... 30

Anmeldeformular .................................................................................................................................. 31


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TopLab‐Expertennetzwerk

TopLab versteht sich als Servicestelle. Wir bieten kompetente und gezielte individuelle

Unterstützung undBeratung an,wenn im Labor besonders spezielles Know‐how gefragt ist –

beispielsweisezukomplexenVersuchsreihen,seltenenSubstanzen,ZelllinienoderGeräten.Ihre

individuellen Anfragen werden direkt beantwortet oder umgehend an unser TopLab‐

Expertennetzwerk–bestehendausgegenwärtig68fachkundigenKolleginnenundKollegendes

Universitätsklinikums Heidelberg und der Universitätsmedizin Mannheim – weitergeleitet.

UnsereExpertengebenihrWissenanihremArbeitsplatzundwährendihrerArbeitszeitweiter.

DieVorteilediesesServiceliegenaufderHand:

- keineKostenfürdieWeiterbildungeinesMitarbeitersundkeineAusfallzeitenfürIhre

Arbeitsgruppe

- dauerhafteEtablierungneuerMethodenkompetenzenmitminimalemZeitaufwand

- leichtereundschnellereBearbeitungIhrerFragestellungenwährendderProjektlaufzeit

- BriefingdurchExpertenauchnachderWeiterbildungmöglich

- AufbauvonKontaktenzuanderenArbeitsgruppen(z.B.WofindeicheinebestimmteZelllinie?)

AufdieseWeise findet sich schnell undunkompliziert einWeg zumAustauschunddamit zur

KlärungIhrerFragebzw.zurLösungIhresProblems.DasspartnichtnurwertvolleZeit,sondern

trägtauchinhohemMaßezurSicherungIhrerForschungsergebnissebei.


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UnserExpertennetzwerkerfährteinefortlaufendeAusweitung.FallsSiesichvorstellenkönnen,

uns als Expertin/Experte bzw. AnsprechpartnerIn zur Verfügung zu stehen, laden wir Sie

herzlichst dazu ein.Gernenehmenwir auch Ihre Ideen zuneuenBildungsangebotenoder ein

Feedback zu unseren bestehenden Fortbildungskursen entgegen. Natürlich erhalten Sie auch

Unterstützung, z.B. durch Mitteilung von Resonanz, Erfolgen und Problemen der eigenen

Expertenarbeit.

Sollten Sie Interesse an einer Unterstützung unseres Expertennetzwerkes haben, melden Sie

sichbitteuntertoplab@uni‐hd.de.

Im Folgenden finden Sie einen Überblick über die Themen, die gegenwärtig von unseren

Expertenabgedecktwerden:

Antikörper- HerstellungimKaninchen- Handling- Aufreinigung- Aufbewahrung

Biochemie- BNP‐2D‐Elektrophorese- SDS‐Gelelektrophorese- Proteinisolierung- WesternBlot

Durchflusszytometrie- MehrfarbenanalyseundKompensation- MACS- FACS- GenotypisierungdendritischerZellen

mittelsFACS‐Analyse- AuswertungenmitFlowJoundDiva‐

Software

Elektronenmikroskopie- Gewebeaufbereitung(Entnahme,Einbettung)- Dünn‐undUltradünnschnitte- Ultracryoschnitte- Färbungen- Immun‐EM

EnzymatischeBestimmungen- Endpunktbestimmungen- Kinetik

Hämatologie- Erythrozytenzählung- Leukozytenzählung- Differentialblutbild

Histologie- Gewebeaufbereitung(Entnahme,

Einbettung)- Cryoschnitte- Paraffinschnitte- Immunhistologie- Färbemethoden

Chromatographie- WavedHPLC

Immunfluoreszenz

- aufGranulozyten‐Ausstrichen

Immunoblotting

MedizinischeStatistik- VersuchsplanungundAuswertung- UmgangmitStatistiksoftware- Epidemiologie

Mikroarray‐Analysen- Genexpressionsarray- SNPArray


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Mikrobiologie- AnzuchtvonBakterien- ArbeitenmitBakterien

Mikroskopieren- Köhlern- Lichtmikroskopie- Fluoreszenzmikroskopie- DigitaleBildbearbeitung

Molekularbiologie- Genotypisierung- Mutagenese- RealtimePCR:

o RNA/DNA‐Extraktiono RNAQuantifizierung(Bioanalyzer)o cDNA‐Syntheseo EvaluierungvonReferenzgenenüberGeNorm

o NestedPCRo SouthernBloto NorthernBlot

- InSituHybridisierung:o SynthesevonRNA–Sondeno Gewebepräparationo Gewebeschnitteo mFISH

- Klonierungstechniken:o HerstellungkompetenterZelleno Restriktionsverdauo Gelextraktiono Ligationo Transformationo Plasmidisolierungo Transkriptiono Subklonierung

Tierversuche- TranskardialePerfusionsfixierungvonMäusen

- InjektionstechnikenanMäusen- Schlundsonden- Adipozytenisolierung- OperativeOozytenentnahmebeiXenopuslaevisundderenAufbereitung

Zellkultur

- UmgangmitSuspensionskulturen- UmgangmitadhärentenZellen- Zellenpassagieren- Zellzahl‐undVitalitätsbestimmung- Kryokonservierung- Mykoplasmennachweis- Isolierungbzw.Präparationvon:

o NeuronalenRegionenfürPrimärkulturen

o HSCo HEPso MurinendentritischenZellenausKnochenmark

o BlutzellenüberFicoll‐Gradiento ZellisolierungmitBeadso HUVECso MesenchymalenStammzelleno EndothelialenVorläuferzellen

Zytogenetik- Aufarbeitung- AuswertungamFluoreszenzmikroskop- ErstellungdesKaryotypsaus:- Blut,KnochenmarkbeiLeukämie,

Lymphomen- Erstellungdeskonsistutionellen

KaryotypsausPHA‐stimuliertemperipheremBlut


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WasistTopLab‐WiefunktioniertTopLab

TopLabvernetzt!Sie wollen wissen, welchen HEC‐Zelltyp Sie für die Virenproduktion am besten benutzenkönnen? Ob eine Aufreinigung der Viren mittels Ultrazentrifuge oder Heparinsepharosevorzuziehen ist? Oder Sie müssen ein neues Gerät bedienen, mit dem Sie sich nicht gutauskennen?TopLab unterstützt Sie, bei Ihren Fragestellungen und Problemen, indem wir Sie an eine/nExpertin/ExpertenausunseremExpertennetzwerkvermitteln.

TopLabbildetweiter!Sie müssen Ihre Kompetenzen auf neue Arbeitsgebiete ausdehnen oder IhreGrundlagenkenntnisse zu bestimmten Techniken auffrischen? Nutzen Sie dasWeiterbildungsangebotindenKursenundSeminarenvonTopLab!Es ist auf den Schulungsbedarf von LabormitarbeiterInnen aus dem lebenswissenschaftlichenundmedizinischenBereichausgerichtetundgreiftzugleichneueEntwicklungeninLabortechnikund‐methodenauf.

TopLabberätindividuell!DieTopLab‐ServicestellestehtIhnentelefonischoderperE‐MailfürAuskünfteundindividuelleBeratungzurVerfügung.WirsuchengemeinsammitIhnennachLösungenfürFragenrundumIhre Arbeit im Labor und nehmen Ihre Vorschläge für neue Weiterbildungsthemen gerneentgegen.

TopLabGebrauchtesundGerätemarktBieten Sie anderen an, was Sie selbst nichtmehr benötigen. In der Rubrik „Gebrauchtes undGerätemarkt“aufderTopLab–HomepagefindensichAnbieterundSuchende.AlleInformationenrundumTopLabstehenIhnenonlinezurVerfügung.WiekönnenwirSieunterstützen?TopLab‐ServicestelleUlrikeTraut,HeribertMohrImNeuenheimerFeld(INF)3272.OG.,Raum205Telefon:06221–548699Fax:06221–548695E‐Mail:toplab@uni‐hd.deHomepage:www.toplab.uni‐hd.deDieaktuellenÖffnungszeitenunsererServicestelleentnehmenSiebitteunsererHomepage.


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KurseinModulformModuleallgemein:

InnerhalbderModulebauendieKurseinderRegelaufeinanderauf, inhaltlichsindsieabersokonzipiert, dass sie einzeln und unabhängig von anderen Modulteilen zu verwertbarenLernergebnissenführen.

UnsereModuleinderÜbersichtModul1:ZellbiologischeTechniken:

FürdiesesModulwirdesindiesemKursjahrkeinefestenTerminegeben.TerminewerdennachAbsprachemitdenTeilnehmernfestgelegt.MitzellbiologischenTechnikenkönnenSieIhreArbeitsergebnisseimWesternBlot–Bereichdeutlichverbessern.DiesesModulschlägteinenpraxisorientiertenBogenvonderHomogenisationdesnativenMaterialsüberLiquidHandling,ZentrifugationstechnikenzurVorreinigungundAnreicherung,anschließenderSDS‐Gel‐TrenntechnikenbishinzuverschiedenenWestern‐Blot‐Techniken.Modul2:Zellkultur:

In2ModulteilenlernenSiedieGrundlagenderZellkulturinTheorieundPraxis.Modul3:Nucleinsäureanalytik:

IndiesemModulwerdenStandardmethodenzurIsolierungundAnalysevonGesamt‐RNA,diePrinzipienderrelativenQuantifizierungderGenexpressionmittelsReal‐Time‐PCRundeinfacheMethodenzurPCR‐basiertenGenotypisierungvonSingleNucleotidePolymorphismsvermittelt.Modul4:StatistikundFachrechnen:

Die5Modulteile„Statistik“vermittelndenTeilnehmerneinenÜberblicküberverschiedenestatistischeMethoden.DasModulteil„Fachrechnen“frischtIhreKenntnissefürpraxisorientierteBerechnungenimLaboralltagauf.Modul5:Mikroskopie,(geplant:FluoreszenzmikroskopieundhistologischeTechniken):

MikroskopesindausdertäglichenForschungsarbeitnichtwegzudenken.UmMikroskopeoptimaleinzusetzen,solltenverschiedeneFunktionenwieKondensor,Köhlern,Hell‐undDunkelfeld,PhasenkontrastundÖlimmersionverstandenwerden.Geplantist,dasModulmitdenModulteilen„Fluoreszenzmikroskopie“und„histologischeTechniken“zuergänzen.


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Kursangebote‐Terminübersicht Termine für das Modul 1 – Zellbiologische Techniken werden nach Absprache mit den Teilnehmern festgelegt. Titel und Details der angebotenen Kurse entnehmen Sie bitte dem Inhaltsverzeichnis und den Kursausschreibungen.

Mrz.2016

01.03.2016

10.17TheoriekursDurchflusszytometrieundFACS–KursinHeidelberg

Apr.2016

14.04.2016

21.04.2016

28.04.2016

29.4.2016

10.09Modul3‐PCR‐MethodenzurSNP‐GenotypisierungSeminarmitpraktischemTeil

10.07Modul3–RNA‐Isolierung/‐Quantifizierung/‐QualifizierungSeminarmitpraktischemTeil

10.08Modul3‐RelativeQuantifizierungderGenexpressionaufderBasisvonRealTime‐PCR(QRT‐PCR)

10.16Modul5‐Hellfeld‐undPhasenkontrast‐Mikroskopie

Juni2016

07.06.2016

07.06.2016

10.05Modul2‐EinführungindieZellkultur:Theorie

10.06Modul2‐EinführungindieZellkultur:Praxis

Sept.2016

13.09.2016

10.18EinführungindieDurchflusszytometrie–KursinMannheim


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Okt.2016

04.10.2016

06.10.2016

10.10.2016

13.10.2016

17.10.2016

10.10Modul4‐DeskriptiveStatistik(Kurs1)

10.11Modul4‐EinfachestatistischeTests(Kurs2)

10.12Modul4‐LineareRegression(Kurs3)

10.13Modul4‐LogistischeRegression(Kurs4)

10.14Modul4‐Varianzanalysen(Kurs5)

Nov.2016

02./03.11.2016 10.19Klonierung–GrundprinzipienderDNA‐VervielfältigungundWeiterverarbeitung

Feb.2017

03.02.2017 10.15Modul4‐FachrechnenimLabor


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10.01 Modul1–Homogenisation/Liquid‐Handling/ ProteinbestimmungZielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenund

DoktorandInnen,NachwuchsgruppenleiterInnenundPost‐Docs.

Zielsetzung: QualitätundErgebniseinesZellkultur‐ oderGewebeaufschlusseshängtwesentlichvomangewendetenHomogenisationsverfahrenab.VorstellungverschiedenerZellaufschlussverfahren.KorrektangewendetePipettiertechnik,vorausschauendeAliquotierungundgeeigneteProteinbestimmungenerleichterndieweiterenexperimentellenSchritte.

Inhalte: VerschiedeneAufschlussverfahrenundAnwendungenbeiunterschiedlichenexperimentellenZielen

HomogenisierungvonLebergewebemitdem„Potter“ Aliquotierung,Lagerung,Verdünnungsberechnung ProteinbestimmungdesHomogenats PraktischeundtheoretischeInhaltewechselnsichab

Referent: HeribertMohr,AusbildungsleitungBiologielaboranten,Heidelberg

Anmerkung: BeiInteresseandemKurs,bittenwirumIhreAnmeldung.DerTerminwirddannvariabelmitdemDozentenfestgelegt.

Termin

Uhrzeit Ort Raum Teilnehmerzahl

Variabel09:00– 17:00

UhrImNeuenheimerFeld307,3.OG,Heidelberg

Ausbildungs‐labor

2‐6


10

10.02 Modul1–IsolierungvonZellorganellenundSubfraktionenZielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenund


Zielsetzung:

Mit geringemEinsatzvonMaterialundKostenlassensichüberraschend„saubere“Zellorganellen‐SubfraktionenundderenMembranenherstellen.(Zellkerne,schwereMitochondrien,Lysosomen/Peroxisomen/leichteMitochondrien,Mikrosomen,Cytosol).

Inhalte:

- Homogenisation- Zentrifugationstechnik,Differential‐undUltrazentrifugation- GießeneinesDichtegradients- PraktischeundtheoretischeInhaltewechselnsichab

Referent:

HeribertMohr,AusbildungsleitungBiologielaboranten,Heidelberg

Anmerkung:

BeiInteresseandemKurs,bittenwirumIhreAnmeldung.DerTerminwirddannvariabelmitdemDozentenfestgelegt.

Termin Uhrzeit Ort Raum Teilnehmerzahl

variabel09:00– 17:00


Ausbildungs‐labor

2‐6


11

10.03 Modul1–SDS‐Gele,Westernblots,Antikörperinkubationen VortragZielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenund


Zielsetzung:

AnfängerundFortgeschrittenevertiefenihrWissenüberdieverschiedenenOptimierungsmöglichkeitenimZusammenspielvonKamm,Laufstrecke,BeladungsmengeundGelzusammensetzung.

Inhalte:

- AuswahlundOptimierungderpassendenTrenngele- VerschiedeneWesternBlot–Techniken- ErgebnisoptimierungderAntikörperinkubation- Fehlerquellen,Troubleshooting

Referent:


Anmerkung:


Termine Uhrzeit Ort Teilnehmerzahl

variabel9:00–13:00

Uhr

ZentralbereichNeuenheimerFeldGenauerVeranstaltungsortwirdrechtzeitigbekanntgegeben

4‐20


12

10.04 Modul1–SDS‐Gele,Westernblots,Antikörperinkubationen PraxisZielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenund


Zielsetzung:

ArbeitstechnikvondernativenProbezumfertigenWesternBlot.

Inhalte:

- DenaturierungundHerstellungeinerGelprobe- BeladenundfahrendesSDS‐Gels- AusführeneinesSemi‐Dry‐WesternBlots- Antikörper‐Inkubation,NachweisderAK‐markiertenBande- SilberfärbungundCoomassie‐BlauFärbungdesSDS‐Gels

SensitivitätsvergleichderFärbemethoden

Referent:


Anmerkung:


Termine Uhrzeit Ort Raum Teilnehmerzahl

variabel9:00–17:00


Ausbildungslabor

2‐6


13

10.05 Modul2–EinführungindieZellkultur:TheorieTeilnahme‐voraussetzungen:

Laborerfahrung

Zielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenundDoktorandInnen,NachwuchsgruppenleiterInnenundPost‐Docs.

Zielsetzung:

KennenlernenundAuffrischungdertheoretischenGrundlagenderZellkultur

Inhalte:

- SterileArbeitstechnik- FunktionsprinzipderSterilwerkbank- Zellkulturreagenzien- KontaminationeninderZellkultur- Umgangmitadhärenten‐undSuspensionszellen

Referentinnen:

Prof.Dr.KarenBiebackSusanneElvers‐HornungInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,UniversitätsmedizinMannheim


07.06.20169:00–ca.12:00

Uhr

UniversitätsmedizinMannheimTridomus,HausC,Ebene5Ludolf‐Krehl‐Str.13‐17

C‐517 3‐15


14

10.06 Modul2–EinführungindieZellkultur:PraxisTeilnahme‐voraussetzung:

VoraussetzungzurTeilnahmeistdervorangehendeKurs„10.05EinführungindieZellkultur:Theorie“.AufgrundderbegrenztenPersonenzahlrichtetsichderKursausschließlichanPersonen,diekonkretZellkulturtechnikenerlernenmöchtenundsehrwenigErfahrunghaben.


Zielsetzung:

AuffrischungundKennenlernenderpraktischen GrundlagenderZellkulturEswerdenlediglichgrundlegendeArbeitenvermitteltanhandvon2adhärentenZelllinienundeinerSuspensionskultur.SagenSieunsgerneimVorfeldBescheid,wennSiebesondereFragenhaben.

Inhalte:

DerPraxisteilumfasst:- SterilesArbeitenmitZellen- EinfrierenundAuftauenvonZellen- MediumwechselundSubkultivierenvonadhärentenund

Suspensionszellen- Zellzahl‐undVitalitätsbestimmung

Referentinnen:

SusanneElvers‐Hornung,StefanieUhlig,Prof.apl.Dr.KarenBiebackInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,UMM


07.06.2016ca.13:00–ca.16:30Uhr

UniversitätsmedizinMannheimTridomus,HausC,Ebene5Ludolf‐Krehl‐Str.13‐17

C‐517 3‐6


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10.07 Modul3–RNA‐Isolierung/‐Quantifizierung/ ‐Qualifizierung–Seminarmitprakt.TeilTeilnahme‐voraussetzung:

GrundkenntnisseinderIsolierungvonNukleinsäurenausZellen.


Zielsetzung:

IndiesemSeminarwerdenStandardmethodenzurIsolierungundAnalysevonGesamt‐RNAauseukaryotischenZellenvermittelt.DieTeilnehmerInnensollendanachinderLagesein,RNAausbeliebigenbiologischenProbenzuisolierenunddieQuantitätbzw.QualitätderRNAzubeurteilen

Inhalte:

- MethodenderRNA‐ExtraktionausZellen/Geweben- IsolierungvonGesamt‐RNAausZellkulturmittelsTrizolund

Minisäulen- QuantifizierungvonRNAmittelsUV‐Photometrie- FunktionundAnwendungeinesBioanalyzers- RNAIntegryNumber(RIN)- RNA‐QualifizierungamBioanalyzer-

Referenten:

Prof.(apl.)Dr.rer.nat.PeterBugertundGabiRink(MTA),InstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologieUniversitätsmedizinMannheim

Anmerkung:

DerKursbesteht auseinemtheoretischenTeil(Dozentenreferat)undeinempraktischenTeilimLabor.EskönnenaucheigenebiologischeProbenfürdieRNA‐Isolierungmitgebrachtwerden.


21.04.201609:00–15:00

Uhr

DRK‐BlutspendedienstFriedrich‐Ebert‐Str.10768167Mannheim

109 2‐8


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10.08 Modul3–RelativeQuantifizierungderGenexpressionauf derBasisvonRealTime‐PCR(QRT‐PCR)Teilnahme‐voraussetzung:

GrundkenntnissceinderPCRundRealTime‐PCRsowieinTabellenkalkulationinExcel


Zielsetzung:

IndiesemSeminarwerdendiePrinzipienderrelativenQuantifizierung vonGenexpressionmittelsReal‐Time‐PCRvermittelt.MiteinfacherTabellenkalkulation(Excel)wirddierelativeExpressionsstärkevonZielgenenbestimmt.DieTeilnehmersollendanachinderLagesein,beliebigeZielgenezuanalysierenundhinsichtlichihrerExpressionsstärkestatistischzubeurteilen.

Inhalte:

- GrundlagenderRT‐ undQRT‐PCR- GrundlagenundPrinzipienverschiedenerAssays- BedeutungundAuswahlderReferenzgene- GrundlagenderrelativenQuantifizierung- BestimmungderEffizienzvonPCR‐Systemen

Referent:

Prof.(apl.)Dr.rer.nat.PeterBugertInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologieUniversitätsmedizinMannheim

Anmerkung: EshandeltsichumeinSeminarmitpraktischenÜbungeninExcel‐basierterTabellenkalkulation.EigeneRohdatenausderQRT‐PCRkönnenmitgebrachtwerden.


1 28.04.2016 9:00–12:00UhrDRK‐BlutspendedienstFriedrich‐Ebert‐Str.10768167Mannheim

109 4‐20

2 10.11.2016 9:00–12:00UhrDRK‐BlutspendedienstFriedrich‐Ebert‐Str.10768167Mannheim

109 4‐20


17

10.09 Modul3–PCR‐MethodenzurSNP‐Genotypisierung SeminarmitpraktischemTeilTeilnahme‐voraussetzung:

GrundkenntnisseinDNA‐IsolierungundinPCR


Zielsetzung:

IndiesemSeminarwerdeneinfacheMethodenzurPCR‐basiertenGenotypisierungvonSNPs(SingleNucleotidePolymorphisms)bzw.DNA‐Punktmutationenvermittelt.DieTeilnehmerInnensollendanachinderLagesein,selbstständigTestsystemefürbeliebigeSNPsaufzubauenunddieGenotypisierungdurchzuführen.

Inhalte:

- TheoretischeGrundlagenderGenomvariation- BedeutungvonSNPsinderDiagnostik- GrundlagenderallelspezifischenPCRundderallelischen

DiskriminierungmittelsallelspezifischerTaqMan‐Sonden- PrimderdesignundAssaydesign- DurchführungeinerallelspezifischenPCRundTaqManPCR- Ergebnisauswertung

Referenten:

Prof.(apl.)Dr.rer.nat.PeterBugertundGabiRink(MTA),InstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologieUniversitätsmedizinMannheim

Anmerkung: DerKursbestehtauseinemtheoretischenTeil(Dozentenreferat)undeinempraktischenTeilimLabor.EswerdenverschiedenegenetischeMarkerausdereigenenDNAbestimmt.


14.04.20169:00–15:00

Uhr

DRK‐BlutspendedienstFriedrich‐Ebert‐Str.10768167Mannheim

109 2‐8


18

10.10 Modul4–DeskriptiveStatistik(Kurs1)Teilnahme‐voraussetzung:

EtwasmathematischesVerständnis;InteresseanstatistischenDarstellungen


Zielsetzung:

Sieerfahren,nachwelchenKriteriensichMerkmaleunterscheidenlassenundwiemandiecharakteristischenEigenschafteneineseinzelnenMerkmalsbeschreibt.AußerdemlernenSiediewichtigstenLage‐undStreuungsmaßekennenundsollenverstehen,wiemandieseinterpretiert.

SchwerpunkteundInhalte:

- MerkmaleundihreEigenschaften- Häufigkeiten(absoluteundrelative)- GraphischeDarstellungvonHäufigkeiten- OddsRatio- Lage‐undStreuungsmaße- Box‐andWhisker‐Plots

Referentin:

Prof.Dr.ChristelWeiß,Dipl.‐Math.LeiterinderAbteilungfürMed.StatistikundBiomathematikderMedizinischeFakultätMannheimderUniversitätHeidelberg


04.10.20169:00–13:00

Uhr

UniversitätsmedizinMannheimGenauerVeranstaltungsortwirdrechtzeitigbekanntgegeben

5‐20


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10.11 Modul4–EinfachestatistischeTests(Kurs2)Teilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeamKurs1(DeskriptiveStatistik)odervergleichbareKenntnisse.


Zielsetzung:

SielernendasPrinzipeinesstatistischenTests,diebekanntestenTestszumVergleichvon2GruppenundderenAnwendungsmöglichkeitensowiedieBedeutungundInterpretationdesp‐Werteskennen.

Inhalte:

- SchrittebeiderDurchführungeinesstatistischenTests- DieBedeutungundInterpretationdesp‐Wertes- Chi2‐TestzumVergleichvonHäufigkeiten- t‐TestzumVergleichvonMittelwerten- U‐TestvonMannundWhitney

Referentin:



06.10.20169:00–13:00

Uhr


5‐20


20

10.12 Modul4–LineareRegression(Kurs3)Teilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeandenKursen1und2(DeskriptiveStatistikundEinfachestatistischeTests)odervergleichbareKenntnisse.


Zielsetzung:

ZunächstlernenSie,wiemandenZusammenhang(dessenStärkeundArt)zwischenzweiquantitativenMerkmalenbeschreibt.DanachwirdanhandeinesBeispieldatensatzesdasPrinzipeinermultiplenlinearenRegressionerläutert,beiderdieWirkungmehrererEinflussgrößenaufeinequantitativeZielgrößesimultananalysiertwird.

Inhalte:

- Korrelationskoeffizienten- EinfachelineareRegression- MultiplelineareRegression- DasBestimmtheitsmaß

Referentin:



10.10.20169:00–13:00

Uhr


5‐20


21

10.13 Modul4–LogistischeRegression(Kurs4)Teilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeandenKursen1bis3(DeskriptiveStatistik,EinfachestatistischeTestsundLineareRegression)odervergleichbareKenntnisse.


Zielsetzung:

BeivielenFragestellungenistdieZielgrößebinär(etwamitdenAusprägungenja/nein).DazueignetsicheineLogistischeRegression.DasPrinzipunddieAnwendungsmöglichkeitenlernenSieindiesemKursanhandvonBeispieldatensätzenkennen.

Inhalte:

- DasPrinzipdereinfachenlogistischenRegression- MultiplelogistischeRegression

Referentin:



13.10.20169:00–13:00

Uhr


5‐20


22

10.14 Modul4–Varianzanalysen(Kurs5)Teilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeandenKursen1bis4(DeskriptiveStatistik,EinfachestatistischeTests,Regressionsmodelle)odervergleichbareKenntnisse.


Zielsetzung:

BeiVarianzanalysenwirdderEinflussvonqualitativenFaktorenaufeinequantitativeZielgrößeuntersucht.DieseMethodeistsehrvielseitiganwendbar.AufbauendaufdereinfachstenForm(1‐faktorielleVarianzanalyse)werden2‐fundmehr‐faktorielleAnalysensowieVarianzanalysenmitMesswiederholungenvorgestellt.

Inhalte:

- DasPrinzipeiner1‐faktoriellenVarianzanalyse- 2‐faktorielleVarianzanalysen- Interaktionen- VarianzanalysenmitMesswiederholungen

Referentin:



17.10.20159:00–13:00

Uhr


5‐20


23

10.15 Modul4–FachrechnenimLaborZielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenund

DoktorandInnen,NachwuchsgruppenleiterInnenundPost‐DocsderUniversitätunddesUniversitätsklinikumsHeidelbergsowiederUniversitätsmedizinMannheim(UMM)

Zielsetzung:

LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenundDoktorandInnen,NachwuchsgruppenleiterInnenundPost‐Docs.

Inhalte:

- RechnenmitMol.Prozent,VerdünnungenundKonzentrationen- EinbeziehenderDichte- Dosisberechnen- BerechnenderZellzahlinZellkulturen(NeubauerZählkammer)- BerechnenundUmrechneneinerKonzentration- Absoluteµg‐MengenundKonzentrationen

Referent:


Anmerkung: BittebringenSieeinenherkömmlichenTaschenrechnerundSchreibmaterialmit.


03.02.20179:00–13:00

Uhr


5‐20


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10.16 Modul5–Hellfeld‐undPhasenkontrast‐MikroskopieZielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenund


Zielsetzung:

InTheorieundPraxiserwirbtderTeilnehmerspezielleKenntnisseüberAufbauundFunktioneinesHellfeld‐sowiePhasenkontrast‐Mikroskops.SieerlernendasKöhlernsowiedierichtigeMikroskop‐Wartung.SievertiefenIhreKenntnisseimUmgangmitunterschiedlichenmikroskopischenPräparaten(Nativ‐,Ölimmersions‐,Zählkammer)undvielesmehr…

Inhalte:

- AufbauundFunktion desMikroskops- Mikroskopiertechniken:HellfeldundPhasenkontrast- Immersionsöl,Nativpräparate- ZellzählunginderZählkammermitBerechnungsbeispielen- PraktischeÜbungen:„MikroskopischeEbene“,Artefakterkennung- VorstellungdermikroskopischenDigitalfotografie

Referentin:

JosefineNeuendorf,MTLA,DozentinfürLabordiagnostik,LehrerinanderAkademiefürGesundheitsberufedesUniversitätsklinikumsHeidelberg

Anmerkung: DieTeilnehmererhalteneinumfangreichesSkript.


29.04.20169:00–15:00

Uhr


5‐9


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10.17 TheoriekursDurchflusszytometrieundFACS KursinHeidelbergZielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenund


Zielsetzung:

DerKursvermitteltdietheoretischenGrundlagenderDurchflusszytometrieundFluoreszenzaktiviertenZellsortierung(FACS).DieTeilnehmerInnenerhalteneinenÜberblicküberdietechnischenKomponenteneinesDurchflusszytometerssowiepraktischeAnleitungenzurMessungundDatenanalyse.

Inhalte:

- GrundlagenderDurchflusszytometrie undFluoreszenzaktiviertenZellsortierung(FACS)

- Gerätetechnik,EinstellungundQualitätskontrolle- Messung- Datenanalyse

Referentin:

Dr.MonikaLanglotzFlowCytometry&FACSCoreFacility,ZentrumfürMolekulareBiologie(ZMBH)

Termin Uhrzeit Ort Raum Teilnehmerzahl

01.03.201609:00–11:00

Uhr

ZentrumfürMolekulareBiologieImNeuenheimerFeld28269120Heidelberg

020bEG

5‐20


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10.18 EinführungindieDurchflusszytometrie KursinMannheimTeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung


Zielsetzung:

SieerhalteneinenÜberblicküberGrundlagenundAnwendungsgebietederDurchflusszytometrie,d.h.ausschließlichTHEORIE!

Inhalte:

- GrundlagenderDurchflusszytometrie- PrinzipderFluoreszenz- ÜberblicküberMehrfarb‐Analysen- KontrolleninderDurchflusszytometrie- Kompensation- Zellsortierung

Referentinnen:

Prof.Dr.KarenBieback,StephanieUhligInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,UniversitätsmedizinMannheim

Anmerkung: AufWunschkannnachindividuellerAbspracheanschließendeineEinführungamFACSCantoII,FACSDivaSoftwarefürmax.4Teilnehmererfolgen.DieseEinführungmachtnurundausschließlichSinnfürMitarbeiter,dieandiesemGerätundmitdieserSoftwarearbeiten.


13.09.1609:00–ca.12:00Uhr

UniversitätsmedizinMannheim,Tridomus,HausC,Ebene5Ludolf‐Krehl‐Str.13‐17

C‐517 3‐15


27

10.19 Klonierung–GrundprinzipienderDNAVervielfältigung undWeiterverarbeitungTeilnahme‐voraussetzung:

GrundkenntnisseLaborarbeit,GrundkenntnisseMolekularbiologie,KenntnisseimUmgangmitdemPC


Zielsetzung:

AnwendungdervermitteltenKenntnisse:Subclonierung:SchneideenzymeundVectorenauswählen,Ligationsprinzip.VermehrenderDNAmittelsTransformationinE.coliundnachfolgenderIsolierungderDNAmittelsPlasmidKits.PunktmutationendurchführenmittelsMutagenesePCR.SequenzierungeninAuftraggebenundErgebnissebeurteilen.

Inhalte:

- Transformation- PrinzipderMini/Midi/Maxi‐Präparation- TroubleshootingMini/Midi/Maxi‐Präparation- Subklonierung- MutagenesePCR- TroubleshootingMutageneseundSubklonierung

Referentin:

ChristineJeckel,InnereMedizinIII– Kardiologie (AGZitron)UniversitätsklinikumHeidelberg


02.11.–03.11.2016

09:00–12:00Uhr


4‐10


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ReferentenportraitsPDDr.rer.nat.KarenBieback

LeitungderzellbiologischenArbeitsgruppeamInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,MedizinischeFakultätMannheim,DRK‐BlutspendedienstBaden‐Württemberg‐Hessen.Themengebiete:AdulteStamm‐undVorläuferzellen.Leitung:Core‐FacilityfürDurchflusszytometrieundZellsortierungderMedizinischenFakultätMannheim.

Prof.(apl.)Dr.rer.nat.PeterBugert

Diplom‐Biologe,PromotionanderBiologischenFakultätderUniversitätHeidelberg,HabilitationanderMedizinischenFakultätMannheimderUniversitätHeidelberg.Seit2000LaborleiteramInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologieMannheim.Arbeitsschwerpunkte:MolekulargenetikundBiochemiederThrombozytenfunktion,Blutgruppengenetik,Nukleinsäureanalytik,Proteinanalytik,Zellbiologie.

SusanneElvers‐Hornung

Biologisch‐technischeAssistentin,seit2005inderzellbiologischenArbeitsgruppeamInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,MedizinischeFakultätMannheim.Themengebiete:AdulteStamm‐undVorläuferzellen.

ChristineJeckel

AusgebildeteBiologielaborantin,derzeitalsTechnischeAngestellteinderKardiologiedesUniversitätsklinikumsHeidelbergimLaborDr.E.Zitrontätig.ForschungsschwerpunktistdieUrsachevonHerzrhythmusstörungenmittelselektrophysiologischen,molekularbiologischenundbiochemischenAnalysen.

Dr.MonikaLanglotz

LeitungderCoreFacilityFlowCytometry&FluorescenceActivatedCellSorting(FACS)amZentrumfürMolekulareBiologiederUniversitätHeidelberg(ZMBH).

HeribertMohr

BiotechnikermitlangjährigerpraktischerErfahrungimzellbiologischenForschungsbereich.AusbildungsleiterfürBiologielaborantenanderUniversitätHeidelbergundMitgliedderTopLab‐Projektleitung.


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JosefineNeuendorf

MTLA,Autorin,DozentinfürLabormedizin,LehrerinfürKlinischeChemieanderMTLA‐SchulederAkademiefürGesundheitsberufedesUniversitätsklinikumsHeidelberg.Themenschwerpunkte:Mikroskopie,Urindiagnostik

GabrieleRink

Medizinsch‐TechnischeAssistentin,AusbildunganderMedizinischenFachschuleDresdenFriedrichstadt.Seit1999MTAimInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologieMannheiminderBlutbankundInfektionsserologie.Seit2002inderMolekularbiologie,dortseit2010Gruppenleiterin.Arbeitsschwerpunkte:Molekulargenetik,Thrombozytenfunktion,Blutgruppengenetik,Nukleinsäureanalytik,Proteinanalytik.

StefanieUhlig

MedizinischTechnischeAssistentin,seit2011OperatorinderCoreFacilityfürDurchflusszytometrieundZellsortierung,MedizinischeFakultätMannheim,UniversitätHeidelberg

Dr.ChristelWeiß

Biomathematikerin,LeiterinderAbteilungfürMedizinischeStatistikamUniversitätsklinikumMannheim,DozentinfürdieVorlesungenBiomathematikundEpidemiologie,BeraterinfürÄrzteundDoktorandenbeiderPlanungundAnalysemedizinischerStudien,AutorinzweierLehrbücherundCo‐AutorinzahlreicherwissenschaftlicherPapers.


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TeilnahmeinformationenAnmeldungBitteverwendenSiezurAnmeldungdasFormular,dasinderKursprogrammbroschürealsKopiervorlage,bzw.aufunsererWeb‐Seiteunterhttp://www.toplab.uni‐hd.dezumAusdruckvorliegt.

SendenSieunsIhreAnmeldungbitteperFax(54‐8695),mitderHauspostoderelektronischalsPDF‐Datei(toplab@uni‐hd.de)zu.NachderenEingangerhaltenSieeineAnmeldebestätigungundca.zweiWochenvorKursbeginndetaillierteInformationenzurVeranstaltung.

IhreAnmeldungbetrachtenwiralsverbindlich.BittemeldenSiesichdahernurinAusnahmefällenab–undwenn,sofrühwiemöglich.

MindestteilnehmerzahlUnterschreitetdieZahlderAnmeldungendieangegebeneMindestteilnehmerzahl,kanndieVeranstaltungnichtstattfinden.SiewerdenindiesemFallschriftlichdarüberbenachrichtigt.

WartelisteundZusatztermineÜbersteigtdieZahlderAnmeldungendiemaximaleTeilnehmerzahl,werdendiesenachEingangsdatumaufeinerWartelistenotiertundimFallvonAbmeldungenberücksichtigt.BeieinerentsprechendgroßenAnzahlvonAnmeldungenaufderWarteliste,bemühenwirunsumdieOrganisationvonZusatzterminen.

TeilnahmebescheinigungTeilnehmerInnen,diemindestens80%einesKursesbesuchthaben,erhaltennachdemKurseineTeilnahmebestätigungperPost.

WirbittenumRückmeldungundAnregungen!DamitwirunsereAngebotekünftignochstärkeraufIhreBedürfnisseunddieAnforderungenIhresArbeitsplatzeszuschneidenkönnen,benötigenwirIhreUnterstützung.WirfreuenunsdaheraufIhreRückmeldungundAnregungen.

Stornierungsregelung- EsfällteineStornogebührinHöhevon20,00EuroproPersonundStornierungan,wenn

dieAbsagederTeilnahmewenigerals15ArbeitstagevorKursbeginnerfolgtundkeineKrankmeldungvorgelegtwird.

- BeimehrtägigenKursenmüssenmindestens80%desKursumfangsbesuchtwordensein,ansonstenfällthierebenfallsdieStornogebühran.

- SolltenfürdieTeilnahmeanderVeranstaltungÜbernachtungskostenentstehen,wirdbeiAbsagederTeilnahmewenigerals15ArbeitstagevorKursbeginneineStornogebührinHöhevoninsgesamt40,00EuroproPersonundNachterhoben.BeiVorlageeinerKrankmeldungentfälltauchhierdieGebühr.

- Beieinergemäß§2PflegezeitgesetzaufgetretenenPflegesituationwirdkeineStornogebührerhoben.

- WennSieErsatzteilnehmerInnenbenennen,diesichsofortanmelden,fallenkeineStornogebührenfürSiean.

DieRechnungwirdandieMitarbeiterInnengerichtet.SinddienstlicheGründeUrsachederAbsage,istdieStornogebührdurchdieEinrichtung,welchedieFortbildunggenehmigthat,zutragen,andernfallsdurchdieMitarbeiterInnen.

BittehabenSieVerständnisfürdieseRegelung.


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Anmeldeformular TopLab Fax: 06221/54 8695 Bitte deutlich und vollständig ausfüllen und per Fax oder eingescannt per E-Mail ([email protected]) an die TopLab-Servicestelle schicken Kursnr. Kurstitel Datum

Bei Seminaren/Kursen/Vorträgen mit Teilnahmevoraussetzungen: ☐ Die in der Seminarbeschreibung genannten Teilnahmevoraussetzungen kann ich nachweisen.

Titel:

Name:

Vorname:

Beschäftigt als: ☐ Wissenschaftliche Mitarbeiter/In ☐ Post Doc ☐ Doktorand/In ☐ Wissenschaftliche Hilfskraft ☐ Labormitarbeiter/In (MTA, CTA, BTA, etc.) ☐ Auszubildende ☐ Sonstige: Bitte erläutern Sie, weshalb Sie an dem Seminar teilnehmen möchten:

Mit welchen Aufgaben sind Sie schwerpunktmäßig betraut:

Klinik/Institut/Arbeitsgruppe: Dienstanschrift: (Arbeitsplatz) Telefon-Nr.:

Dienstliche E-Mail-Adresse:

Die Teilnahmeinformationen habe ich in der Broschüre oder unter http://www.toplab.uni-hd.de gelesen und melde mich verbindlich zu den oben genannten Seminare/Kurse/Vorträge an. Datum und Unterschrift der/des Mitarbeiterin/Mitarbeiters ___________________________________________ Datum und Unterschrift der/des Vorgesetzten ___________________________________________

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