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F1 Praktikum: Struktur, Funktion und Evolution von Proteinen
WS 05/06
Fachbereich Biologie,
Johannes Gutenberg Universität Mainz
Protokoll zum Teil:
„Molekulare Phylogenie“
XXXXXXXX & XXXXXXXX
Diplom Biologie
Molekulare Phylogenie : Erstellung eines molekularen Stammbaums mit Hämoglobinsequenzen
Einleitung Molekulare Phylogenie dient dazu, ein besseres Verständnis von der Evolution von Organismen oder Proteinfamilien zu bekommen. Hier wird versucht, die Verwandtschaftsverhältnisse von Lebewesen aufgrund molekularer Merkmale (DNA, RNA, Proteine) zu rekonstruieren. Im Gegensatz zu rein morphologisch bestimmten Stammbäumen können bei der Erstellung von molekularen Stammbäumen große Datenmengen verarbeitet werden, welche auch relativ leicht zugänglich sind (Datenbanken z.B. ncbi). Ein weiterer Vorteil der molekularen Phylogenie ist, dass sie meist frei von Gewichtungen ist. Dies bedeutet aber nicht, dass es nicht zu falschen Ergebnissen kommen kann! Deshalb werden nach der molekulargenetischen Analyse die ermittelten Daten statistisch überprüft. In diesem Kursteil, geht es zunächst darum, eine unbekannte cDNA-Sequenz zu identifizieren und herauszufinden, für welches Protein die Sequenz codiert. In einem weiteren Schritt soll diese Sequenz mit weiteren vorgegebenen, ähnlichen Sequenzen verglichen werden, und ein Alignment erstellt werden, womit dann molekulare Stammbäume konstruiert werden sollen. Die molekulare Stammbaumerstellung (Phylogenie) erfolgt sowohl nach Matrix-orientierten als auch nach Charakter-orientierten Methoden. Im zweiten Teil wird das bereits vorhandene Alignment durch weitere selbst ausgewählte Hämoglobin-Sequenzen erweitert. Mit diesem neuen Alignment werden ebenfalls molekulare Stammbäume erstellt und statistisch überprüft.
Material und Methoden Proteinsuche Die vorgegebene, unbekannte Sequenz (sequenz.txt) wurde mit Hilfe des translate tools auf expasy.org in die 6 Leseraster übersetzt und der richtige ORF ausgewählt. Hierbei wählt man den ORF mit der längsten AS-Sequenz der von keinem Stoppcodon unterbrochen wird. Mit der nun bekannten AS-Sequenz sucht man nun das zugehörige Protein mittels BLASTp (Suche nach Proteinen). Diese Prozedur kann man auch durch Verwendung von BLASTx umgehen. BLASTx übersetzt eine unbekannte Nuleinsäuresequenz in die 6 ORF und führt mit diesen automatisch eine Suche in den Proteindatenbanken durch. Das Ergebnis der beiden Vorgehensweisen sollte also weitgehend identisch sein. Um zu phylogenetischen Aussagen zu kommen müssen geeignete Vergleichssequezen ausgewählt werden. Diese waren bereits in der Datei „Protein.txt“ vorgegeben.
Alingment Mit ClustalX wurden die Sequenzen nun im „multiple Alignment mode“ alinged. Als Alignment-Parameter wurden eine „gap-opening-penalty“ von 10,0 und eine „gap-extention-penalty“ von 0,2 ausgewählt. Dies entspricht der Standardeinstellung. Als „Protein weight matrix“ wurde die der „Gonnet Serie“ benutzt. Bei den sonstigen Parametern wurde ebenfalls die Standardeinstellungen beibehalten. Editierung des Alingements Das MSA (multiple sequence alignment) konnte nun mit dem Programm GeneDoc nach weiter editiert und eingefärbt werden. Das MSA wird im nächsten Schritt in das PHYLIP Format konvertiert um die anschließende Analyse mit diesem Programmpaket zu ermöglichen. Molekularphylogenetische Analyse (PHYLIP package) Zunächst wurde das MSA mit Hilfe des Programms PROTDIST in eine Distanzmatrix umgewandelt. Hierbei wurde die PAM-Matrix als Evolutionsmodell gewählt. Mit dieser Datei wurde im nächsten Schritt mit dem Programm neighbour ein Stammbaum erstellt. Zuerst wurde aus didaktischen Gründen ein Stambaum mit der „UPGMA-Methode“ und dann zum Vergleich einer mit der „neighbour-joining-Methode“ erstellt. Bei der „UPGMA-Methode“ (unweighted Pair-Group Method with Arithmetic Means) wird eine konstante Evolutionsrate angenommen und die Außenguppe automatisch bestimmt: in der Regel wird die Sequenz als Außengruppe bestimmt, die im Durchschnitt den größten Abstand zu allen anderen Sequenzen hat. Dies ist jedoch nicht immer richtig. Bei der „neighbor-joining-Methode“ wird ein ähnlicher Algorithmus wie bei UPGMA verwendet, jedoch werden auch unterschiedliche Evolutionsraten mit einbezogen, sodass auch die Astlängen berechnet werden. Hier wird die Außengruppe nicht selbstständig ausgewählt Die auf diese Weise erstellten Stammbäume sowie alle weiteren Stammbäume wurden mit dem Program tree-view betrachtet. In einem zweiten Schritt wird mit dem Programm PROTPARS ein Stammbaum nach der „maximum-Parsimony-Methode“, einer charakterorientierter Methode erstellt. Hierbei wird sofort mit dem Alignment gearbeitet, eine Abstandsmatrix muss nicht erstellt werden. Diese Methode nimmt an, dass die Evolution stets den kürzesten Weg geht, sodass der Stammbaum berechnet wird, der die wenigsten evolutiven Schritte benötigt. Statistische Überprüfung der Ergebnisse Als erstes werden mit dem Programm seqboot 100 Pseudosamples des Alingments erstellt. Für die Erstellung von Vergleichsstammbäumen muss man diese nun, bei Verwendung der „neighbour-joining-Methode“, erst in Distanzmatricen übersetzten. Dazu verwendet man ebenfalls das Programm PROTDIST. Die Matricen wurden dann mit dem Programm neighbour in eine Datei mit 100 Stammbäumen übersetzt. Bei der „maximum-parsimony-Methode“ kann man direkt aus den Pseudosamples mit dem Programm PROTPARS die Stammbäume erstellen Zum Schluss wird mit dem Programm consense aus den 100 Stammbäumen ein Konsensusstammbaum erstellt der wieder mit treeview dargestellt werden kann.
Ergebnisse BLASTx-suche Hits von BLASTx = 100 Hit mit dem höchsten score und niedrigem e-value: LOCUS P01986 142 aa linear VRT 07-FEB-2006 DEFINITION Hemoglobin alpha-A subunit (Hemoglobin alpha-A chain) (Alpha-A-globin). ACCESSION P01986 VERSION P 01986 GI:122347 DBSOURCE swissprot: locus HBA_ANAPL, accession P01986; lass: standard. created: Jul 21, 1986. sequence updated: Jul 21, 1986. annotation updated: Feb 7, 2006. xrefs: X02008.1, CAA26039.1, HADK xrefs (non-sequence databases): HSSP:P01989, SMR:P01986, InterPro:IPR002338, InterPro:IPR000971, InterPro:IPR012292, InterPro:IPR002339, Pfam:PF00042, PRINTS:PR00612, PRINTS:PR00815, PROSITE:PS01033 KEYWORDS Heme; Iron; Metal-binding; Oxygen transport; Transport. SOURCE Anas platyrhynchos ORGANISM Anas platyrhynchos Eukaryota; Metazoa; Chordata; Craniata; Vertebrata; Euteleostomi; Archosauria; Aves; Neognathae; Anseriformes; Anatidae; Anas. REFERENCE 1 (residues 1 to 142) AUTHORS Paddock,G.V. and Gaubatz,J. TITLE Nucleotide sequence for a novel duck alpha-globin gene JOURNAL Eur. J. Biochem. 117 (2), 269-273 (1981) PUBMED 6895064 REMARK NUCLEOTIDE SEQUENCE [MRNA]. COMMENT n Apr 26, 2005 this sequence version replaced gi:70264.
[FUNCTION] Involved in oxygen transport from the lung to thevvarious peripheral tissues.
[SUBUNIT] Heterotetramer of two alpha chains and two beta chains. [TISSUE SPECIFICITY] Red blood cells. [SIMILARITY] Belongs to the globin family. FEATURES Location/Qualifiers source 1..142/organism="Anas platyrhynchos"/db_xref="taxon:8839" gene 1..142/gene="HBAA" Protein 1..142/gene="HBAA"/product="Hemoglobin alpha-A subunit" Region 4..137/gene="HBAA"/region_name="Globins are heme proteins, which bind and transport oxygen/note="globin/db_xref="CDD:27699" Site 59/gene="HBAA"/site_type="metal-binding"/experiment="experimental evidence, no additional details recorded"/note="Iron (heme distal ligand)." Site 88/gene="HBAA"/site_type="metal-binding"/experiment="experimental evidence, no additional details recorded"/note="Iron (heme proximal ligand)." ORIGIN 1 mvlsaadktn vkgvfskigg haeeygaetl ermfiayp qt ktyfphfdls hgsaqikahg 61 kkvaaalvea vnhvddiaga lsklsdlhaq klrvdpvn fk flghcflvvv aihhpaaltp 121 evhasldkfm cavgavltak yr
Translate-tool auf expasy.org Aminosäuresequenzen der sechs möglichen ORFs:
5'3' Frame 1 Met V L S A A D K T N V K G V F S K I G G H A E E Y G A E T L E R Met F I A Y P Q T K T Y F P H F D L S H G S A Q I K A H G K K V A A A L V E A V N H V D D I A G A L S K L S D L H A Q K L R V D P V N F K F L G H C F L V V V A I H H P A A L T P E V H A S L D K F Met C A V G A V L T A K Y R Stop T A P W L E L D P P C C Q P S N C E Q P N D L K Stop N L L H L C S
5'3' Frame 2 W C C P R L T R P T S R V S S P K S V A Met L K S Met A P R P W R G C S S P T P R P R P T S P T L T C P T A L L K S R P Met A R R W R L P Stop L R L S T T S Met T S R V L S P S S V T S T P K S S V W T L S T S N S W A T A S W W W L P S T T L L P Stop P Q R S T L P W T S S C A P W V L C Stop L P S T V R R H R G Stop S W T H P V A S L P T A S S Q Met I Stop N K I C C I C A 5'3' Frame 3 G A V R G Stop Q D Q R Q G C L L Q N R W P C Stop R V W R R D P G E D V H R L P P D Q D L L P P L Stop P V P R L C S N Q G P W Q E G G G C P S Stop G C Q P R R Stop H R G C S L Q A Q Stop P P R P K A P C G P C Q L Q I P G P L L P G G G C H P P P C C P D P R G P R F P G Q V H V R R G C C A D C Q V P L D G T V A R A G P T L L P A F Q L R A A K Stop S E I K S V A F V L 3'5' Frame 1 G A Q Met Q Q I L F Q I I W L L A V G R L A T G W V Q L Stop P R C R L T V L G S Q H S T H G A H E L V Q G S V D L W G Q G S R V V D G N H H Q E A V A Q E F E V D R V H T E L L G V E V T E L G E S T R D V I D V V D S L N Stop G S R H L L A Met G L D L S R A V G Q V K V G E V G L G L G V G D E H P L Q G L G A I L F S Met A T D F G E D T L D V G L V S R G Q H H 3'5' Frame 2 E H K C N R F Y F R S F G C S Q L E G W Q Q G G S S S S H G A V Stop R Y L A V S T A P T A H Met N L S R E A W T S G V R A A G W W Met A T T T R K Q W P R N L K L T G S T R S F W A W R S L S L E R A P A Met S S T W L T A S T R A A A T F L P W A L I Stop A E P W D R S K W G K Stop V L V W G Stop A Met N I L S R V S A P Y S S A W P P I L E K T P L T L V L S A A D S T 3'5' Frame 3 S T N A T D F I S D H L A A R S W K A G N R V G P A L A T V P S N G T W Q S A Q H P R R T Stop T C P G K R G P L G S G Q Q G G G W Q P P P G S S G P G I Stop S Stop Q G P H G A F G R G G H Stop A W R E H P R C H R R G Stop Q P Q L G Q P P P S C H G P Stop F E Q S R G T G Q S G G S R S W S G G R R Stop T S S P G S R R H T L Q H G H R F W R R H P Stop R W S C Q P R T A P
� Auswahl von Leserahmen 1 führt zum virtuellen Protein:
Virtual: VIRT22469 ID VIRT_22469 PRELIMINARY; PRT; 142 AA. AC VIRT22469; DE Translation of nucleotide sequence generated on ExPASyon 13-Mar-2006 by zoopool01.biologie.uni-mainz.de. CC -!- This virtual protein sequence will automatically be deleted from the server after a few days. CC 8.54 PI. DR SWISS-2DPAGE; VIRT22469; VIRTUAL. SQ SEQUENCE 142 AA; 15365 MW; EA21F1750AE26503 CRC64. MVLSAADKTN VKGVFSKIGG HAEEYGAETL ERMFIAYPQT KT YFPHFDLS HGSAQIKAHG KKVAAALVEA VNHVDDIAGA LSKLSDLHAQ KLRVDPVNFK FL GHCFLVVV AIHHPAALTP EVHASLDKFM CAVGAVLTAK YR
VIRT22469 in FASTA format
BLASTp-Suche Die Suche ergab 507 hits. Jedoch wurden Sequenzen aus der vorgegebenen Datei „proteine.txt“ verwendet. Die Sequenzen der Datei waren bereits im FASTA-Format.
Alignment mit ClustalX (1.83) dargestellt in Genedoc
* 20 * 40 * 60 * Ente : V LSAADKTNVKGVFSKI GGHAEEYGAETLERMFIA YPQTKTYFPHF- DLSHGSAQIK AHGKKVAAALVEAV : 70 Gans : V LSAADKTNVKGVFSKI GGHADEYGAETLERMFVAYPQTKTYFPHF- DLQHGSAQIK AHGKKVAAALVEAV : 70 Huhn : V LSAADKNNVKGI FTKI AGHAEEYGAETLERMFTTYPPTKTYFPHF- DLSHGSAQIK GHGKKVVAALIE AA : 70 Taube : V LSANDKSNVKAVFAKI GGQAGDLGGEALERLFIT YPQTKTYFPHF- DLSHGSAQIK GHGKKVAEALVEAA : 70 Krokodil : V LSSDDKCNVKAVWSKVAGHLEEYGAEALERMFCAYPQTKI YFPHF- DLSHGSAQIR AHGKKVFAALHEAV : 70 Alligator : V LSMEDKSNVKAI WGKASGHLEEYGAEALERMFCAYPQTKI YFPHF- DMSHNSAQIR AHGKKVFSALHEAV : 70 Schildkröt : V LSSGDKANVKSVWSKVQGHLEDYGAETLDRMFTVFPQTKTYFSHF- DVHHGSTQIR SHGKKVMLALGDAV : 70 Wal : V LSPADKTNVKAAWAKVGNHAADFGAEALERMFMSFPSTKTYFSHF- DLGHNSTQVKGHGKKVADALTKAV : 70 Mensch : V LSPADKTNVKAAWGKVGAHAGEYGAEALERMFLSFPTTKTYFPHF- DLSHGSAQVKGHGKKVADALTNAV : 70 Zebrafisch : S LSDTDKAVVKAI WAKI SPKADEIGAEALARMLTVYPQTKTYFSHWADLSPGSGPVKKHGKTI MGAVGEAI : 71 Lachs : S LTARDKSVVNAFWGKI KGKADVVGAEALGRMLTAYPQTKTYFSHWADLSPGSAPVKKHGGVI MGAI GNAV : 71 Salamander : K LTAEDKHNVKAI WDHVKGHEEAIGAEALYRMFCCMPTTRI YFPAK-DLSERSSYLHSHGKKVVGALTNAV : 70 L3 DK nVk 5 k GaE L R6f P T4 YF h D6 S 6 HGkk6 A6 A 80 * 100 * 120 * 140 Ente : N HVDDIAGALSKLSDLHAQKLRVDPVNFKFLGHCFLVVVAI HHPAALTPEVHASLDKFMCAVGAVLTAKYR : 141 Gans : N HIDDI AGALSKLSDLHAQKLRVDPVNFKFLGHCFLVVVAI HHPSALTPEVHASLDKFLCAVGTVLTAKYR : 141 Huhn : N HIDDI AGTLSKLSDLHAHKLRVDPVNFKLLGQCFLVVVAI HHPAALTPEVHASLDKFLCAVGTVLTAKYR : 141 Taube : N HIDDI AGALSKLSDLHAQKLRVDPVNFKLLGHCFLVVVAVHFPSLLTPEVHASLDKFVLAVGTVLTAKYR : 141 Krokodil : N HIDDLPGALCRLSELHAHSLRVDPVNFKFLAQCVLVVVAI HHPGSLTPEVHASLDKFLCAVSSVLTSKYR : 141 Alligator : N HIDDLPGALCRLSELHAHSLRVDPVNFKFLAHCVLVVFAI HHPSALSPEIH ASLDKFLCAVSAVLTSKYR : 141 Schildkröt : N HIDDI ATALSALSDKHAHI LRVDPVNFKLLSHCLLVVVARHHPTLFTPDVHVSLDKFMGTVSTVLTSKYR : 141 Wal : G HLDTLPDALSDLSDLHAHKLRVDPVNFKLLSHCLLVTLAAHLPGDFTPSVHASLDKFLASVSTVLTSKYR : 141 Mensch : A HVDDMPNALSALSDLHAHKLRVDPVNFKLLSHCLLVTLAAHLPAEFTPAVHASLDKFLASVSTVLTSKYR : 141 Zebrafisch : SK IDDLVGGLAALSELHAFKLRVDPANFKI LSHNVIV VIA MLFPADFTPEVHVSVDKFFNNLALALSEKYR : 142 Lachs : GL MDDLVGGMSGLSDLHAFKLRVDPGNFKI LSHNI LVTLAI HFPADFTPEVHIA VDKFLAALSAALADKYR : 142 Salamander : A HIDDI DTAFSKLSDKHAEELMVDPANFPKLAHNI LVVLGI HLKPHFTYSVHRSVDKFLSTVAYVLASKYR : 141 h6Dd6 LS lHA LrVDP NFk L h 6V a h p 3p 6H s6DKF 6 vL KYR
Selbst zugefügte Hämoglobin-α-Sequenzen
Name Lateinischer Name Accession number Esel Equus hemionus AAB93466 Frosch Xenopus leavis AAH54259 Kakadu Cuculus canorus BAC57968 Kugelfisch Taikifugu rubripes AA061492 Leguan Iguana iguana P18974 Luchs Lynx lynx AAB23120 Meerkatze Levcopithecus aethiops P01926 Mönchsgeier Aegypius monachus P07417 Rochen Torpedo marmorata P20245 Schaf Ovis aries CAA49751 Seepferd Hippocampus come AAR11385
Stammbäume:
Stammbaum 1: Erstellt nach der UPGMA-Methode mit HbA-Alignment
0.1
Salamander
Zebrafisch
Lachs
Wal
Mensch
Schildkröt
Krokodil
Alligator
Taube
Huhn
Ente
Gans
Stammbaum 2: Erstellt nach der NJ-Methode mit HbA-Alignment
0.1
Zebrafisch
Lachs
Salamander
Wal
Mensch
Schildkröt
Krokodil
Alligator
Taube
Huhn
Ente
Gans
Stammbaum 3: Erstellt nach der maximum-parsimony Methode mit HbA-Alignment
Lachs
Zebrafisch
Salamander
Mensch
Wal
Schildkröt
Alligator
Krokodil
Huhn
Taube
Gans
Ente
Zebrafisch
Lachs
100
Salamander
Wal
Mensch
100
Schildkröt
Alligator
Krokodil
100
Taube
Huhn
Ente
Gans
98
46
98
87
57
72
Statistische Überprüfung der Stammbäume: Erstellung der 100 pseudo samples in seqboot. Danach Erstellung von Consensus-Stammbäumen: Stammbaum 4: Consensus-Stammbaum erstellt nach der NJ Methode
Stammbaum 5: Consensus-Stammbaum erstellt nach der maximum-parsimony Methode
Lachs
Zebrafisch
100
Salamander
Wal
Mensch
98
Schildkröt
Krokodil
Alligator
100
Huhn
Taube
Ente
Gans
56
55
84
73
67
71
Hinzufügen eigener Hämoglobin-Sequenzen � HbAneu-Alignment Stammbaum 6: Erstellt nach der UPGMA-Methode mit HbAneu-Alignment
Zitterroch
Salamander
Kugelfisch
Seepferd
Zebrafisch
Lachs
gruenerLeg
Frosch
Luchs
Wal
Mensch
Meerkatze
Wildesel
Schaf
Schildkröt
Krokodil
Alligator
Taube
Moenchsgei
Ente
Gans
Huhn
Kakadu
Zitterroch
Frosch
Lachs
Kugelfisch
Zebrafisch
Seepferd
Salamander
gruenerLeg
Luchs
Wildesel
Schaf
Wal
Mensch
Meerkatze
Schildkröt
Krokodil
Alligator
Taube
Ente
Gans
Moenchsgei
Huhn
Kakadu
Stammbaum 7: Erstellt nach der NJ- Methode mit HbAneu-Alignment (Zitterrochen als Außengruppe)
0.1
Lachs
Kugelfisch
Zebrafisch
Seepferd
Frosch
Zitterroch
Salamander
gruenerLeg
Luchs
Wildesel
Schaf
Wal
Mensch
Meerkatze
Schildkröt
Krokodil
Alligator
Taube
Ente
Gans
Moenchsgei
Huhn
Kakadu
Stammbaum 8: Erstellt nach der NJ- Methode mit HbAneu-Alignment (Knochenfische als Außengruppe)
Stammbaum 9: Erstellt nach der maximum-parsimony Methode mit HbAneu (Knochenfische als Außengruppe)
Lachs
Zebrafisch
Kugelfisch
Seepferd
Frosch
Salamander
Zitterroch
gruenerLeg
Luchs
Meerkatze
Mensch
Wal
Schaf
Wildesel
Schildkröt
Alligator
Krokodil
Huhn
Kakadu
Taube
Moenchsgei
Gans
Ente
Stammbaum 10: Consensus-Stammbaum erstellt nach der NJ-Methode
Lachs
Kugelfisch
Zebrafisch
Seepferd
50
63
99
Frosch
Zitterroch
45
Salamander
gruenerLeg
35
Luchs
Schaf
Wildesel
42
Wal
Mensch
Meerkatze
98
44
79
99
Schildkröt
Alligator
Krokodil
100
Taube
Ente
Gans
97
Moenchsgei
Huhn
Kakadu
47
39
52
91
49
76
68
45
Stammbaum 11: Consensus-Stammbaum erstellt nach der maximum-parsimony Methode
Lachs
Zebrafisch
Seepferd
Kugelfisch
78
76
96
Frosch
Salamander
Zitterroch
gruenerLeg
34
Luchs
Schaf
Wildesel
64
Wal
Meerkatze
Mensch
69
40
46
80
Schildkröt
Alligator
Krokodil
100
52
Moenchsgei
Taube
34
Gans
Ente
72
Huhn
Kakadu
39
26
62
57
20
15
40
Auswertung / Diskussion Die unbekannte Sequenz konnte als Hämoglobin-Untereinheit-α-Sequenz identifiziert werden. Die Verwendung einer Hämoglobin-Sequenz in diesem Kursteil hatte mehrere Gründe: Im Stukturteil des Praktikums wurde Hämoglobin bereits untersucht und bearbeitet. Außerdem ist Hämoglobin allgemein gut untersucht und es sind viele Sequenzen in Datenbanken vorhanden. Mit dieser Hämoglobin-Sequenz sowie mit weiteren vorgegebenen Hämoglobin-Sequenzen wurde dann ein multiples-Seqeunz-Alignment erstellt (siehe Abb. von Genedoc) und dann zunächst ein UPGMA-Stammbaum konstruiert. Bei diesem Stammbaum wurde automatisch der Salamander als Außengruppe bestimmt. Dies ist jedoch falsch, dass der Salamander z.B. näher mit der Schildkröte verwandt ist als die Fische. Salamander gehören nämlich ebenso wie die Schildkröte zu den Tertapoden während dies für die Fische nicht der Fall ist. Deshalb hätten die Fische korrekterweise als Außengruppe dargestellt werden müssen. Bei der Erstellung des NJ-Stammbaums (sowie bei Erstellung der Parsimony- sowie der Consensus-Stammbäume) konnte diese Erkenntnis mit einbezogen und manuell die Fische als Außengruppe gewählt werden. Der daraus resultierende Stammbaum ist in Abb.3 zu sehen. Dieser Stammbaum stimmt sehr gut mit dem Stammbaum aus der Literatur überein (z.B. aus Campell, Reece; BIOLOGIE, Spektrum Verlag). Deutlich zu sehen ist hier auch das Paraphylum der Reptilien: durch molekularbiologische Untersuchungen stellte sich heraus, dass Krokodile in Wirklichkeit näher mit Vögeln als mit Echsen und Schlangen verwandt sind. Somit ist die Klasse der Reptilia paraphyletisch und nicht, wie ursprünglich angenommen monophyletisch. Es hat sich also gezeigt, dass die „neighbour-joining“ (NJ)-Methode etwas besser arbeitet als die „UPGMA-Methode“. Bei NJ werden unterschiedliche Evolutionsraten berücksichtigt und es können die Astlängen berechnet werden. Dadurch ist die NJ-Methode eine sehr ehrliche Methode, welche heute noch Verwendung findet während die „UPGMA-Methode“ nur zu didaktischen Zwecken verwendet wird. Der „maximum-parsimony-Stammbaum“ (Abb.4) unterscheidet sich vom NJ-Stammbaum nur durch die Position der Taube bzw. des Huhns innerhalb des Stammbaums. Anhand der vorhandenen Daten kann nicht eindeutig bestimmt werden, welcher Stammbaum in Hinsicht auf die Evolution der Vögel der Richtige ist. Jedoch ist bekannt, dass die „maximum-parsimony-Methoe“ sehr empfindlich gegen Homoplasien sowie gegen Long Branch Attraction ist. Außderdem werden die Astlängen unterschätzt. Dies verleitet zu der Annahme, dass der NJ-Stammbaum der Richtige in Hinblick auf das eben erwähnte Problem ist. Jedoch kann wie gesagt ohne weitere Informationen keine eindeutige Aussage getroffen werden. Zur statistischen Überprüfung wurden so genannte Consensus-Stammbäume erstellt (Abb.5+6). Die Darstellung solcher Consensus-Stammbäume macht nur dann Sinn, wenn die Astlängen nicht dargestellt werden, da „bootstrap-Stammbäume“ keine Informationen mehr über Astlängen enthalten. Die Zahlen innerhalb des Stammbaums geben an in wie vielen der Stammbäume das folgende Schwestern-Paar zusammen steht. Bei beiden Consensus-Stammbäumen wird das Paraphylum der Reptilien sowie das Monophylum der Säuger gut unterstützt.
Jedoch sind bei beiden die Bootstrap-Werte bei Huhn und Taube gering. Diese schlechte Unterstützung könnte daran liegen, dass nur relativ wenige Daten verwendet wurden. In zweiten Schritt wurde das Alignment durch die Sequenzen vom Kakadu, Mönchsgeier, Schaf, Wildesel, Meerkatze, Luchs, grünen Leguan, Frosch, Seepferd, Kugelfisch und Zitterrochen erweitert. Auch mit diesem Alignment wurde zunächst ein „UPGMA-Stammbaum“ erstellt, bei dem der Zitterrochen als Außengruppe automatisch bestimmt wurde. Dies ist an sich richtig, da der Zitterrochen als Knorpelfisch am weitesten von den übrigen Wirbeltieren entfernt ist. Ihm fehlen nämlich Lungen oder Abwandlungen dieser die bei allen anderen verwendeten Tieren vorhanden sind. Jedoch stehen in diesem Stammbaum der Salamander und der Frosch sehr weit auseinander, obwohl beide Amphibien sind. Ansonsten fällt auf, dass der grüne Leguan weit entfernt von seinen Verwandten, den Reptilien steht. Die Monophyla der Knochenfische und der Säuger sowie das Paraphylum der Reptilien sind in diesem Stammbaum zu erkennen. Bei den folgenden Stammbäumen wurden nun die Knochenfische als Außengruppe gewählt, da ansonsten wieder die Vertreter der Amphibien sehr weit auseinander stehen (siehe Stammbaum 7). Beim „NJ-Stammbaum“ stehen die Amphibien jedoch immer noch nicht in einer Gruppe jedoch schon näher als beim „UPGMA-Stammbaum“. Das Monophylum der Säugetiere und der Knochenfische wird bei der Bootstrap-Analyse von 99 der 100 Stammbäume unterstützt, das Monophylum aus Reptilien und Vögeln von 76. Auch diesmal steht der grüne Leguan nicht bei den Reptilien. Der „maximum-parsimony-Stammbaum“ unterscheidet sich vom „NJ-Stammbaum“ nur minimal. Die Unterschiede treten hauptsächlich bei der Anordnung der Spezies innerhalb der Taxa auf. Weiterhin wird im Gegensatz zum „NJ-Stammbaum“ das Monophylum der Säugetiere nur mit „bootstrap-Werten“ von 80, das Monophylum der Knochenfische nur mit „bootstrap-Werten“ von 96 unterstützt. Das Monophylum aus Reptilien und Vögeln wird hier auch nur mit einem „bootstrap-Wert“ von 57 unterstützt. Auch bei diesem Stammbaum treten fehlerhafte Gruppierungen auf: Zitterrochen und Leguan werden als Schwestergruppe dargestellt. Hingegen stehen hier aber Frosch und Salamander im Gegensatz zum vorhergehenden Stammbaum sehr nah beieinander. Fazit: Aus allen Stammbäumen wird klar ersichtlich, dass die Säugetiere ein Monophylum darstellen, die Reptilien jedoch ein Paraphylum. Außerdem wird deutlich, dass man die mit Hilfe molekularer Daten erstellten Stammbäume sehr differenziert betrachten muss, da auch hier wie oben ersichtlich Fehler auftreten können, die von den Programmen nicht erkannt werden.
Molekulare Phylogenie Teil 2 : Erstellung eines molekularen Stammbaums der Hämocyaninsuperfamilie
Einleitung
Am diesem Kurstag geht es um die Evolution der Arthropoden- Hämocyaninsuperfamilie. Zu ihr gehören neben den Arthropoden-Hämocyaninen, welche respiratorische Proteine sind, die Arthropoden-Phenoloxidasen. Arthorpoden-Phenoloxidasen sind sauerstoffumsetztende Enzyme, die unter anderem an der Sklerotisierung der Cutikula und der humoralen Immunantwort beteiligt sind. Die aktiven Zentren beider Proteine ähneln sich sehr. Weiterhin gehören zu der Hämocyanin-Superfamilie die Pseudohämocyanine der Crustaceen (die keine Kupferzentren mehr besitzen) und als letztes die Hexapoden-Hexamerine- und Hexemrinrezeptoren. Die Funktion der Hexamerine ist noch nicht vollständig verstanden, ihnen wird aber eine Funktion als Speicherproteine zugeschrieben. Zur Vermeidung von Missverständnissen sei hier angemerkt, dass die Hämocyanine der Mollusken nicht zu der untersuchten Proteinsuperfamilie gehören. An diesem Kurstag sollen die Verwandschaft von Arthropoden-Hämocynianen mit Hexapoden-Hexamerinen und Arthropoden-Prophenoloxidasen untersucht werden.
Material und Methoden
Es wurden alle mit dem srs-tool von ebi gefundenen Arthropoden-Hämocyanine sowie jeweils fünf beliebig gewählte Arthropoden-Prophenoloxidasen und Hexapoden-Hexamerine in das Alignement mit einbezogen. Hinzu kam noch ein sogenanntes embryonales Hämocyanin. Mit diesen Sequenzen wurden wieder molekulare Stammbäume erstellt. Die genaue Vorgehensweise ist im Protokoll zum Hämoglobinteil beschrieben.
Ergebnisse: Stammbaum 1:
Erstellt nach der maximum-parsimony Methode MsePrOHcuPrOAstPrOTmoPrOAgaPrOScoHcDScoHcCScoHcXScoHcBSspHcIScoHcAEcaHcCNinHcBEcaHcBLpoHcIINinHcAEcaHcAAauHc6NinHcEEcaHcENinHcFEcaHcFNinHcDEcaHcDEcaHcGNinHcGCsaHcICsaHcIVCsaHcIICsaHcVCsaHcIIICsaHcVIRflHxIIRmiHxIIIHarHxMdoHxLICviHxLSPIISamEhpPmaHcIPmaHcIIPleHcCmaHcICmaHcIIGroHcIHamHcAPleHcIIPvuHcPinHcBPinHcAPvuHcIIIPvuHcIIPvuHcIPelHcIVPinHcCPvaHc2PvaHc1CmaHcIIICaeHcIICsapHcCmaHcIVCmaHcVICaHcV
Stammbaum 2: Erstellt nach der neighbour-joining Methode
0.1
MsePrOAstPrOHcuPrO
AgaPrOTmoPrO
LpoHcIIEcaHcANinHcA
EcaHcCEcaHcBNinHcB
EcaHcDNinHcD
EcaHcFNinHcF
AauHc6EcaHcE
NinHcEEcaHcG
NinHcGCsaHcI
CsaHcIVCsaHcVICsaHcIIICsaHcVCsaHcII
ScoHcCScoHcD
ScoHcASspHcI
ScoHcBScoHcX
RmiHxIIIRflHxII
HarHxCviHxLSPII
MdoHxLIPmaHcII
PmaHcISamEhp
PleHcCmaHcIICmaHcI
GroHcIPleHcIIHamHcA
PinHcAPinHcB
PvuHcIIPvuHc
PvuHcIPelHcIVPvuHcIII
PvaHc1PvaHc2PinHcC
CaeHcIICmaHcIIICsapHc
CmaHcVICaHcVCmaHcIV
Stammbaum 3: Konsensusstammbaum aus Bootstrap Analyse erstellt
nach der maximum-parsimony Methode MsePrOAstPrOHcuPrOAgaPrOTmoPrO
7737
48
100
ScoHcCScoHcD
95
ScoHcBScoHcX
98
SspHcIScoHcA
62
78
100
EcaHcCEcaHcBNinHcB
94100
LpoHcIINinHcAEcaHcA
10095
NinHcFEcaHcF
96
EcaHcDNinHcD
100
52
AauHc6NinHcEEcaHcE
10027
EcaHcGNinHcGCsaHcICsaHcIVCsaHcVICsaHcIII
96
CsaHcVCsaHcII
82
44
90
74
97
99
40
88
71
100
95
RflHxIIRmiHxIII
99
HarHxMdoHxLICviHxLSPII
10081
100
SamEhpPmaHcI
100
PmaHcIIPleHcCmaHcIICmaHcI
100100
GroHcIPinHcCPvaHc1PvaHc2
10077
CmaHcIIICaeHcII
100
CsapHcCmaHcIVCmaHcVICaHcV
7198
100
100
100
HamHcAPleHcII
94
PvuHcPinHcBPinHcA
10086
PvuHcIIPvuHcIIIPvuHcIPelHcIV
8547
100
100
97
92
100
100
81
100
100
Stammbaum 4: Konsensusstammbaum aus Bootstrap Analyse erstellt
nach der neighbour-joining MethodeMsePrOAstPrOHcuPrOTmoPrOAgaPrO
9591
55
100
ScoHcCScoHcD
96
SspHcIScoHcA
42
ScoHcBScoHcX
100
65
100
LpoHcIINinHcAEcaHcA
10099
EcaHcCNinHcBEcaHcB
100100
EcaHcDNinHcD
100
NinHcFEcaHcF
100
AauHc6EcaHcENinHcE
10046
EcaHcGNinHcGCsaHcICsaHcIVCsaHcIICsaHcV
79
CsaHcVICsaHcIII
97
42
98
99
100
100
63
50
100
55
100
47
RflHxIIRmiHxIII
100
HarHxCviHxLSPIIMdoHxLI
10071
100
PmaHcIIPmaHcISamEhp
100
PleHcCmaHcICmaHcII
100100
GroHcIPleHcIIHamHcA
100
PinHcAPinHcB
100
PvuHcPvuHcIIPvuHcIIIPelHcIVPvuHcI
4876
49
100
100
80
PvaHc1PvaHc2
100
PinHcCCaeHcIICmaHcIII
100
CsapHcCmaHcVICaHcVCmaHcIV
77100
100
100
64
100
48
94
100
50
58
100
Legende
= Prophenoloxidasen (Aussengruppe)
= Chelicerata = Myriapoda = Crustacea = Hexapoda Zusammenfassung/Diskussion
Zur Aussengruppe Betrachtet man die Evolution eines Proteins, so kann man daraus Rückschlüsse auf die Evolution des Tieres ziehen, denn die Funktion eines Proteins und die Anpassungen auf molekularer Ebene spiegeln die Veränderungen der gesamten Spezies wieder. Man kann dementsprechend sagen, dass die Proteine eines Organismus dessen phylogenetische Geschichte teilen, und physiologische Anpassungen während der Evolution auf Veränderungen der Proteinsequenzen zurück gehen. Dayhoff et al.(1975) postulierten, dass Proteingruppen, die einen gemeinsamen Vorfahren haben, in Proteinfamilien- und Superfamilien zusammengefasst werden können. In unserem Fall sind wir davon ausgegangen dass der gemeinsame Vorfahr der Arthropoden-Hämocyanin-Superfamile eine Phenoloxidase war die im Laufe der Evolution ihre Fähigkeit Sauerstoff zu binden und umzusetzen verlor und ihn dann als Hämocyanin nur noch zu binden vermochte. Für die Abstammung der Hämocyanine von Phenoloxidasen spricht weiterhin dass Phenoloxidasen und Hämocyanine sehr ähnliche aktive Zentren besitzen und auch einige Hämocyanine unter bestimmten Umständen eine Phenoloxidaseaktivität entwickeln können (Decker und Tuczek, 2000; Decker et al., 2001). Da zum Vergleich eine externe Außengruppe fehlte, haben wir in allen vier Stammbäumen die Phenoloxidasen als Außengruppe gewählt. Jedes andere Konzept der Evolution der Arthropoden-Hämocyaninsuperfamilie würde eine mehrfache und unabhängige Entstehung von Hämocyaninen und Phenoloxidasen voraussetzen was ziemlich unwahrscheinlich ist. Viel eher ist ein monophyletischer Ursprung dieser Proteine anzunehmen (Burmester, 2001).
Analyse der Stammbäume In allen vier Stammbäumen stehen die Hämocyanine der zur selben Klasse gehörenden Spezies zusammen. Dies spricht dafür, dass die Evolution der Hämocyanine sich gemäß der Evolution der Klassen entwickelt hat. Abweichungen zwischen den verschiedenen Stammbäumen gibt es nur sehr wenig. Zum Beispiel stehen als einziges im „neighbour-joining-Stammbaum“ (ohne bootstrap) die Myriapoden als Schwestergruppe eines Phylums aus (Crustacea und Hexapoda). In den anderen drei Stammbäumen bilden die Myriapoden mit den Cheliceraten ein Monophylum, was allerdings im „neighbour-joining-Stammbaum“ mit bootstrap nur schlecht unterstützt wird (bootstrap-Wert von 47). Weiterhin kann man sagen dass innerhalb der Klassen eine komplexe Evolution der Untereinheiten stattgefunden hat, so dass in vielen Fällen die Untereinheiten ein und desselben Hämocyanins nicht mehr zusammenstehen sondern mit Untereinheiten von Hämocyaninen anderer Spezies (der gleichen Klasse). Die Crustaceen Hämocyanine bilden in allen vier Stammbäumen mit den Hexapoden-Hexamerinen und -Hämocyaninen ein Monophylum. Bei den Bootstrap-Analysen ist dies beidesmal sogar in 100 von 100 der generierten Stammbäume der Fall. Innerhalb des Phylums aus Crustacea und Hexapoda ist noch zu erkennen, dass die Hexamerine eine evolutiv isolierte Gruppe darstellen die bei bootstrap-Analyse mit beiden verwendeten Methoden als monophyletisch dargestellt und durch bootstrap-Werte von 100 unterstützt wird. Wie oben schon erwähnt bilden die Myriapoden-Hämocyanine in den ermittelten Stammbäumen entweder mit den Cheliceraten ein Monophylum oder sie sind Schwestergruppe eines Phylums aus Hexapoda und Crustacea. Nie jedoch bilden sie mit den Hexapoden ein Monophylum wie die sogenannte Tracheata-Hypothese es besagt. Diese Hypothese ist noch in alten Stammbäumen vorhanden und stützt sich auf gemeinsame morphologische Merkmale dieser beiden Gruppen, wie z.B. das Vorhandensein von Tracheen und ektodermalen malpighischen-Gefäßen. Die Tracheata-Hypothese wird also durch die obigen Stammbäume nicht unterstützt. Eine Hypothese die durch die obigen molekularen Stammbäume gestützt wird, ist die sogenannte „Pancrustacea-Hypothese“. Nach ihr bilden die Insekten gemeinsam mit den Crustaceen, ein monophyletisches Taxon, das als Pancrustacea oder auch Tertaconata bezeichnet wird. Diese Hypothese wird inzwischen nicht nur durch molekulare Daten wie diese hier gestützt, sondern auch durch gemeinsame morphologische Merkmale der Augen und des Nervensystems.
Legende zu den verwendeten Hämocyaninsequenzen
Accesion # Beschreibung Spezies Abkürzung Bild
P84293 Hemocyanin
subunit 2
(CaeSS2).
CARCINUS AESTUARII
(GREEN CRAB)
CARCINUS
MEDITERRANEUS
CaeHcII
P04253 Hemocyanin II. LIMULUS POLYPHEMUS
(ATLANTIC
HORSESHOE CRAB)
LpoHcII
P80476 Hemocyanin
AA6 chain.
ANDROCTONUS
AUSTRALIS
(SAHARA SCORPION)
AauHc6
P14750 Hemocyanin A
chain (HcA).
EURYPELMA
CALIFORNICA
(AMERICAN
TARANTULA)
EcaHcA
Q9NFH9 Hemocyanin B
chain (HcB).
EURYPELMA
CALIFORNICA
(AMERICAN
TARANTULA)
EcaHcB
Q9NFL6 Hemocyanin C
chain (HcC).
EURYPELMA
CALIFORNICA
(AMERICAN
TARANTULA)
EcaHcC
P02241 Q9NFH8
Hemocyanin D
chain (HcD).
EURYPELMA
CALIFORNICA
(AMERICAN
TARANTULA)
EcaHcD
P02242 Hemocyanin E
chain (HcE).
EURYPELMA
CALIFORNICA
(AMERICAN
TARANTULA)
EcaHcE
Q9NFL5 Hemocyanin F
chain (HcF).
EURYPELMA
CALIFORNICA
(AMERICAN
TARANTULA)
EcaHcF
Q9NFL4 Hemocyanin G
chain (HcG).
EURYPELMA
CALIFORNICA
(AMERICAN
TARANTULA)
EcaHcG
Accesion # Beschreibung Spezies Abkürzung Bild
P04254 Hemocyanin A
chain.
PANULIRUS
INTERRUPTUS
(CALIFORNIA SPINY
LOBSTER)
PinHcA
P10787 Hemocyanin B
chain.
PANULIRUS
INTERRUPTUS
(CALIFORNIA SPINY
LOBSTER)
PinHcB
P80096 Hemocyanin C
chain.
PANULIRUS
INTERRUPTUS
(CALIFORNIA SPINY
LOBSTER)
PinHcC
Q95P08 Hemocyanin
subunit A
precursor.
SCUTIGERA
COLEOPTRATA
(HOUSE CENTIPEDE)
ScoHcA
Q8IFJ8 Hemocyanin
subunit B
precursor.
SCUTIGERA
COLEOPTRATA
(HOUSE CENTIPEDE)
ScoHcB
Q8T115 Hemocyanin
subunit C
precursor.
SCUTIGERA
COLEOPTRATA
(HOUSE CENTIPEDE)
ScoHcC
Q95P07 Hemocyanin
subunit D
precursor.
SCUTIGERA
COLEOPTRATA
(HOUSE CENTIPEDE)
ScoHcD
Q8T116 Hemocyanin
subunit X
precursor.
SCUTIGERA
COLEOPTRATA
(HOUSE CENTIPEDE)
ScoHcX
Q23707 Hemocyanin
subunit 6.
CANCER MAGISTER
(DUNGENESS CRAB)
CmaHcVI
Q5G2A4 Hemocyanin
subunit 5.
CANCER MAGISTER
(DUNGENESS CRAB)
CaHcV
Q5G2A5 Hemocyanin
subunit 4.
CANCER MAGISTER
(DUNGENESS CRAB)
CmaHcIV
Q5G2A6 Hemocyanin
subunit 3.
CANCER MAGISTER
(DUNGENESS CRAB)
CmaHcIII
Q5G2A7 Hemocyanin
subunit 2.
CANCER MAGISTER
(DUNGENESS CRAB)
CmaHcII
Q5G2A8 Hemocyanin
subunit 1.
CANCER MAGISTER
(DUNGENESS CRAB)
CmaHcI
Q571R4 Hemocyanin
subunit 1
precursor.
GAMMARUS ROESELI GroHcI
Q6Y0Z1 Hemocyanin 2. PACIFASTACUS
LENIUSCULUS
SIGNAL
CRAYFISH
PleHcII
Accesion # Beschreibung Spezies Abkürzung Bild
Q70Q68 Hemocyanin
subunit 2
precursor.
PERLA MARGINATA
(STONEFLY)
PmaHcII
Q70Q69 Hemocyanin
subunit 1
precursor.
PERLA MARGINATA
(STONEFLY)
PmaHcI
P80888 Hemocyanin. PALINURUS VULGARIS
(EUROPEAN SPINY
LOBSTER)
PvuHc
Q86N89 Hemocyanin
subunit G.
NEPHILA INAURATA
MADAGASCARIENSIS
NinHcG
Q86N90 Hemocyanin
subunit F.
NEPHILA INAURATA
MADAGASCARIENSIS
NinHcF
Q86N91 Hemocyanin
subunit E.
NEPHILA INAURATA
MADAGASCARIENSIS
NinHcE
Q86N92 Hemocyanin
subunit D.
NEPHILA INAURATA
MADAGASCARIENSIS
NinHcD
Q86N93 Hemocyanin
subunit B.
NEPHILA INAURATA
MADAGASCARIENSIS
NinHcB
Q86N94 Hemocyanin
subunit A.
NEPHILA INAURATA
MADAGASCARIENSIS
NinHcA
Q8IFT5 Hemocyanin
subunit 4
precursor.
PALINURUS ELEPHAS PelHcIV
Q8MUH8 Hemocyanin. PACIFASTACUS
LENIUSCULUS
(SIGNAL CRAYFISH)
PleHc
Q9NFR6 Hemocyanin
alpha-subunit
precursor
(Fragment).
HOMARUS
AMERICANUS
(AMERICAN LOBSTER)
HamHcA
Q9NFY6 Hemocyanin
precursor
(Fragment).
PENAEUS VANNAMEI
(PENOEID SHRIMP
EUROPEAN WHITE
SHRIMP)
PvaHc1
Q26180 Hemocyanin
precursor.
PENAEUS VANNAMEI
(PENOEID SHRIMP,
EUROPEAN WHITE
SHRIMP)
PvaHc2
Accesion # Beschreibung Spezies Abkürzung Bild
Q95P17 Hemocyanin
subunit 3
precursor
(Fragment).
PALINURUS VULGARIS
(EUROPEAN SPINY
LOBSTER)
PvuHcIII
Q95P18 Hemocyanin
subunit 2
precursor
(Fragment).
PALINURUS VULGARIS
(EUROPEAN
SPINY LOBSTER)
PvuHcII
Q95P19 Hemocyanin
subunit 1
precursor
(Fragment).
PALINURUS VULGARIS
(EUROPEAN
SPINY LOBSTER)
PvuHcI
Q95ZH4 Hemocyanin
subunit 6.
CUPIENNIUS SALEI
(WANDERING SPIDER)
CsaHVI
Q95ZH6 Hemocyanin
subunit 5.
CUPIENNIUS SALEI
(WANDERING SPIDER)
CsaHcV
Q95ZH7 Hemocyanin
subunit 4.
CUPIENNIUS SALEI
(WANDERING SPIDER)
CsaHcIV
Q95ZH8 Hemocyanin
subunit 3.
CUPIENNIUS SALEI
(WANDERING SPIDER)
CsaHcIII
Q95ZH9 Hemocyanin
subunit 2.
CUPIENNIUS SALEI
(WANDERING SPIDER)
CsaHcII
Q95ZI0 Hemocyanin
subunit 1.
CUPIENNIUS SALEI
(WANDERING SPIDER)
CsaHcI
Q9BHJ9 Hemocyanin
subunit 1
precursor.
SPIROSTREPTUS SP
(BT-2000)
SspHcI
Accesion # Beschreibung Spezies Abkürzung Bild
Q9NGL5 Hemocyanin
subunit.
CALLINECTES
SAPIDUS
(BLUE CRAB)
CsapHc
P91922 Hexamerin
LSP-2.
CALLIPHORA VICINA
(BLUE BLOWFLY)
CALLIPHORA
ERYTHROCEPHALA
CviHxLSPII
Q56DL4 Hexamerin
storage protein
3.
ROMALEA
MICROPTERA
(LUBBER
GRASSHOPPER)
RmiHxIII
Q64I77 Hexamerin II. RETICULITERMES
FLAVIPES
(EASTERN
SUBTERRANEAN
TERMITE)
RflHxII
Q68YP2 Hexamerine. HELICOVERPA
ARMIGERA
(COTTON BOLLWORM)
HELIOTHIS ARMIGERA
HarHx
Q86G31 Hexamerin L1. MUSCA DOMESTICA
(HOUSE FLY)
MdoHxLI
O76951 Prophenoloxida
se.
ANOPHELES GAMBIAE
(AFRICAN
MALARIA
MOSQUITO)
AgaPrO
Accesion # Beschreibung Spezies Abkürzung Bild
O77002 Prophenoloxida
se.
HYPHANTRIA
CUNEA
(FALL
WEBWORM)
HcuPrO
O61456 Embryonic
hemolymph
protein
precursor.
SCHISTOCERCA
AMERICANA
(AMERICAN
GRASSHOPPER)
SamEhp
O96453 Prophenoloxida
se.
ANOPHELES
STEPHENSI
(INDO-PAKISTAN
MALARIA
MOSQUITO)
AstPrO
O97047 Prophenoloxida
se.
TENEBRIO
MOLITOR
(YELLOW
MEALWORM)
TmoPrO
Q25519 Prophenoloxida
se.
MANDUCA
SEXTA
TOBACCO
HAWKMOTH
TOBACCO
HORNWORM
MsePrO