Kursprogrammbroschu¨re Deckblatt vorne 2017 Bild neu · Dieses Modul schlägt einen praxisorientierten Bogen von der Homogenisation des nativen Materials über Liquid Handling, Zentrifugationstechniken

Kursprogramm 2017

TopLab Kompetenz im Labor Ein gemeinsamer Service des Universitätsklinikums Heidelberg, der Universität Heidelberg und der Medizinischen Fakultät Mannheim

TopLab – Kompetenz im Labor

1

InhaltsverzeichnisTopLab ‐ Expertennetzwerk .................................................................................................................... 2

Was ist TopLab ‐ Wie funktioniert TopLab .............................................................................................. 4

TopLab vernetzt! ............................................................................................................................. 4

TopLab bildet weiter! ...................................................................................................................... 4

TopLab berät individuell! ................................................................................................................ 4

TopLab Gebrauchtes und Gerätemarkt ........................................................................................... 4

Kurse in Modulform ................................................................................................................................ 5

Unsere Module in der Übersicht ............................................................................................................. 5

12.01 Modul 1 Homogenisation ‐ Vortrag ....................................................................................... 6

12.02 Modul 1 SDS‐Gele, Westernblots, Antikörperinkubationen ‐ Vortrag .................................. 7

12.03 Modul 1 SDS‐Gele. Westernblots, Antikörperinkubationen ‐ Praxis ..................................... 8

12.04 Modul 1 Isolierung von Zellorganellen und Subfraktionen ................................................... 9

12.05 Modul 1 Zusatzangebote und individuelle Schulungen....................................................... 10

12.06 Modul 2 Einführung in die Zellkultur ‐ THEORIE .................................................................. 11

12.07 Modul 2 Einführung in die Zellkultur ‐ PRAXIS .................................................................... 12

12.08 Modul 3 PCR‐Methoden zur SNP‐Genotypisierung Seminar mit praktischem Teil ........... 13

12.09 Modul 3 RNA‐Isolierung / Quantifizierung / Qualifizierung ................................................ 14

12.10 Modul 3 Relative Quantifizierung der Genexpression mittels Real‐Time‐PCR (QRT‐PCR) 15

12.11 Modul 4 Deskriptive Statistik (Kurs 1) ................................................................................. 16

12.12 Modul 4 Einfache statistische Tests (Kurs 2) ....................................................................... 17

12.13 Modul 4 Lineare Regressionsanalysen (Kurs 3) ................................................................... 18

12.14 Modul 4 Logistische Regression (Kurs 4) ............................................................................. 19

12.15 Modul 4 Varianzanalysen (Kurs 5) ....................................................................................... 20

12.16 Modul 4 Fachrechnen im Labor ........................................................................................... 21

12.17 Modul 5 Hellfeld und Phasenkontrast‐ Mikroskopie ........................................................... 22

12.18 Modul 5 Von der Probennahme bis zum fertigen Präparat ................................................ 23

12.19 Theoriekurs Durchflusszytometrie und FACS Kurs in Heidelberg ........................................ 24

12.20 Einführung in die Durchflusszytometrie Kurs in Mannheim ............................................... 25

Referentenportraits ............................................................................................................................... 26

Teilnahmeinformationen ...................................................................................................................... 28

Anmeldeformular .................................................................................................................................. 29


2

TopLab‐Expertennetzwerk

TopLab versteht sich als Servicestelle. Wir bieten kompetente und gezielte individuelle

Unterstützung undBeratung an,wenn im Labor besonders spezielles Know‐how gefragt ist –

beispielsweisezukomplexenVersuchsreihen,seltenenSubstanzen,ZelllinienoderGeräten.Ihre

individuellen Anfragen werden direkt beantwortet oder umgehend an unser TopLab‐

Expertennetzwerk–bestehendausgegenwärtig64fachkundigenKolleginnenundKollegendes

Universitätsklinikums Heidelberg und der Universitätsmedizin Mannheim – weitergeleitet.

UnsereExpertengebenihrWissenanihremArbeitsplatzundwährendihrerArbeitszeitweiter.

DieVorteilediesesServiceliegenaufderHand:

- keineKostenfürdieWeiterbildungeinesMitarbeitersundkeineAusfallzeitenfürIhre

Arbeitsgruppe

- dauerhafteEtablierungneuerMethodenkompetenzenmitminimalemZeitaufwand

- leichtereundschnellereBearbeitungIhrerFragestellungenwährendderProjektlaufzeit

- BriefingdurchExpertenauchnachderWeiterbildungmöglich

- AufbauvonKontaktenzuanderenArbeitsgruppen(z.B.WofindeicheinebestimmteZelllinie?)

AufdieseWeise findet sich schnell undunkompliziert einWeg zumAustauschunddamit zur

KlärungIhrerFragebzw.zurLösungIhresProblems.DasspartnichtnurwertvolleZeit,sondern

trägtauchinhohemMaßezurSicherungIhrerForschungsergebnissebei.


3

UnserExpertennetzwerkerfährteinefortlaufendeAusweitung.FallsSiesichvorstellenkönnen,

uns als Expertin/Experte bzw. AnsprechpartnerIn zur Verfügung zu stehen, laden wir Sie

herzlichst dazu ein.Gernenehmenwir auch Ihre Ideen zuneuenBildungsangebotenoder ein

Feedback zu unseren bestehenden Fortbildungskursen entgegen. Natürlich erhalten Sie auch

Unterstützung, z.B. durch Mitteilung von Resonanz, Erfolgen und Problemen der eigenen

Expertenarbeit.

Sollten Sie Interesse an einer Unterstützung unseres Expertennetzwerkes haben, melden Sie

sichbitteuntertoplab@uni‐hd.de.


4

WasistTopLab‐WiefunktioniertTopLab

TopLabvernetzt!Sie wollen wissen, welchen HEC‐Zelltyp Sie für die Virenproduktion am besten benutzenkönnen? Ob eine Aufreinigung der Viren mittels Ultrazentrifuge oder Heparinsepharosevorzuziehen ist? Oder Sie müssen ein neues Gerät bedienen, mit dem Sie sich nicht gutauskennen?TopLab unterstützt Sie, bei Ihren Fragestellungen und Problemen, indem wir Sie an eine/nExpertin/ExpertenausunseremExpertennetzwerkvermitteln.

TopLabbildetweiter!Sie müssen Ihre Kompetenzen auf neue Arbeitsgebiete ausdehnen oder IhreGrundlagenkenntnisse zu bestimmten Techniken auffrischen? Nutzen Sie dasWeiterbildungsangebotindenKursenundSeminarenvonTopLab!Es ist auf den Schulungsbedarf von LabormitarbeiterInnen aus dem lebenswissenschaftlichenundmedizinischenBereichausgerichtetundgreiftzugleichneueEntwicklungeninLabortechnikund‐methodenauf.

TopLabberätindividuell!DieTopLab‐ServicestellestehtIhnentelefonischoderperE‐MailfürAuskünfteundindividuelleBeratungzurVerfügung.WirsuchengemeinsammitIhnennachLösungenfürFragenrundumIhre Arbeit im Labor und nehmen Ihre Vorschläge für neue Weiterbildungsthemen gerneentgegen.

TopLabGebrauchtesundGerätemarktBieten Sie anderen an, was Sie selbst nichtmehr benötigen. In der Rubrik „Gebrauchtes undGerätemarkt“aufderTopLab–HomepagefindensichAnbieterundSuchende.AlleInformationenrundumTopLabstehenIhnenonlinezurVerfügung.WiekönnenwirSieunterstützen?TopLab‐ServicestelleUlrikeTraut,HeribertMohrImNeuenheimerFeld(INF)3272.OG.,Raum205Telefon:06221–548699Fax:06221–548695E‐Mail:toplab@uni‐hd.deHomepage:www.toplab.uni‐hd.deDieaktuellenÖffnungszeitenunsererServicestelleentnehmenSiebitteunsererHomepage.


5

KurseinModulformModuleallgemein:

InnerhalbderModulebauendieKurseinderRegelaufeinanderauf, inhaltlichsindsieabersokonzipiert, dass sie einzeln und unabhängig von anderen Modulteilen zu verwertbarenLernergebnissenführen.

UnsereModuleinderÜbersichtModul1:ZellbiologischeTechniken:

MitzellbiologischenTechnikenkönnenSieIhreArbeitsergebnisseimWesternBlot–Bereichdeutlichverbessern.DiesgiltimBesonderen,wennvorderSDS‐Gel‐AuftrennungdieMengeunwichtigerProteinedeutlichreduziertwird,wodurchwiederumdierelativeKonzentrationdesZielproteinsansteigt.DiesesModulschlägteinenpraxisorientiertenBogenvonderHomogenisationdesnativenMaterialsüberLiquidHandling,ZentrifugationstechnikenzurVorreinigungundAnreicherung,anschließenderSDS‐Gel‐TrenntechnikenbishinzuverschiedenenWestern‐Blot‐Techniken.Modul2:Zellkultur:

In2ModulteilenlernenSiedieGrundlagenderZellkulturinTheorieundPraxis.Modul3:Nucleinsäureanalytik:

IndiesemModulwerdenStandardmethodenzurIsolierungundAnalysevonGesamt‐RNA,diePrinzipienderrelativenQuantifizierungderGenexpressionmittelsReal‐Time‐PCRundeinfacheMethodenzurPCR‐basiertenGenotypisierungvonSingleNucleotidePolymorphismsvermittelt.Modul4:StatistikundFachrechnen:

Die5Modulteile„Statistik“vermittelndenTeilnehmerneinenÜberblicküberverschiedenestatistischeMethoden.DasModulteil„Fachrechnen“frischtIhreKenntnissefürpraxisorientierteBerechnungenimLaboralltagauf.Modul5:MikroskopieundhistologischeTechniken(geplant:Fluoreszenzmikroskopie):

DasModulteil„Mikroskopie“solldasrichtigeArbeitenmitverschiedenenMikroskopenvermittelnundmöglicheFehlerquellenaufzeigen(geplant:Fluoreszenzmikroskopie)DasModulteil„histologischeTechniken“zeigt,wasbeiGewebeentnahme,Fixierung,ZuschneidenundFärbenzubeachtenistundwelcheFehlersichdabeieinschleichenkönnen.


6

12.01 Modul1 Homogenisation‐VortragTeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung

Zielgruppe: LabormitarbeiterInnen,wissenschaftlicheMitarbeiterInnenundDoktorandInnen,NachwuchsgruppenleiterInnenundPost‐DocsderUniversitätunddesUniversitätsklinikumsHeidelbergsowiederUniversitätsmedizinMannheim(UMM)

Zielsetzung:

QualitätundErgebniseinesZellkultur‐ oderGewebeaufschlusseshängtwesentlichvomangewendetenHomogenisationsverfahrenab.VorstellungverschiedenerZellaufschlussverfahren.KorrektangewendetePipettiertechnik,vorausschauendeAliquotierungundgeeigneteProteinbestimmungenerleichterndieweiterenexperimentellenSchritte.

Inhalte:

‐ VerschiedeneAufschlussverfahrenundAnwendungenbeiunterschiedlichenexperimentellenZielen.Unteranderem:„Potter“UltraschallKugel‐Schüttel‐Homogenisation

‐ Aliquotierung,Lagerung,Verdünnungsberechnung

Referent:

HeribertMohr,AusbildungsleitungBiologielaboranten,Heidelberg

Anmerkung: WennSiezudiesemTerminkeineZeithabenodernureinedetaillierteAuskunftbenötigen,wendenSiesichfüreineindividuelleSchulungdirektanTopLab(toplab@uni‐hd.de)

Termin Uhrzeit Ort Teilnehmerzahl

17.03.2017 09:00–17:00Uhr

ZentralbereichNeuenheimerFeldDerVeranstaltungsortstandbeiDruckschlussnochnichtfest.ErwirddenTeilnehmerInnenrechtzeitigmitgeteilt

2‐6


7

12.02 Modul1 SDS‐Gele,Westernblots,Antikörperinkubationen‐VortragTeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung


Zielsetzung:

AnfängerundFortgeschrittenevertiefenihrWissenüberdieverschiedenenOptimierungsmöglichkeitenimZusammenspielvonKamm,Laufstrecke,BeladungsmengeundGelzusammensetzung.

Inhalte:

‐ AuswahlundOptimierungderpassendenTrenngele‐ VerschiedeneWesternBlot‐Techniken‐ ErgebnisoptimierungderAntikörperinkubation‐ Fehlerquellen,Troubleshooting

Referent:




24.03.2017 9:00–12:00Uhr

ZentralbereichNeuenheimerFeldDerVeranstaltungsortstandbeiDruck‐schlussnochnichtfest.ErwirddenTeilnehmerInnenrechtzeitigmitgeteilt

4‐20


8

12.03 Modul1 SDS‐Gele.Westernblots,Antikörperinkubationen‐PraxisTeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung


Zielsetzung:

ArbeitstechnikvondernativenProbezumfertigenWesternBlot.

Inhalte:

‐ DenaturierungundHerstellungeinerGelprobe‐ BeladenundfahrendesSDS‐Gels‐ AusführeneinesSemi‐Dry‐WesternBlots‐ Antikörper‐Inkubation,NachweisderAK‐markiertenBande‐ SilberfärbungundCoomassie‐BlauFärbungdesSDS‐Gels‐ SensitivitätsvergleichderFärbemethoden

Referent:



Termin Uhrzeit Ort Raum Teilnehmerzahl

27.3.–28.3.2017

09:00–17:00Uhr

ImNeuenheimerFeld30769120Heidelberg

Ausbildungs‐labor(3.OG)

2‐6


9

12.04 Modul1 IsolierungvonZellorganellenundSubfraktionenTeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung


Zielsetzung:

Mit geringemEinsatzvonMaterialundKostenlassensichüberraschend„saubere“Zellorganell‐SubfraktionenundderenMembranenherstellen.(Zellkerne,schwereMitochondrien,Lysosomen/Peroxisomen/leichteMitochondrien,Mikrosomen,Cytosol)

Inhalte:

‐ Homogenisation‐ Zentrifugationstechnik,Differential‐undUltrazentrifugation‐ PraktischeundtheoretischeInhaltewechselnsichab

Referent:




05.05.2017 09:00–14:30Uhr

ImNeuenheimerFeld30769120Heidelberg

Ausbildungs‐labor(3.OG)

2‐6


10

12.05 Modul1 ZusatzangeboteundindividuelleSchulungenTeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung


Zielsetzung:

SiehabeneinenmeinerKurseverpasstodereinedringendeFrage?MitdiesemAngebothabenSiedieMöglichkeit,unabhängigvomKursangebot,meineBeratunginAnspruchzunehmen.GernehelfeichIhnenmitindividuellenSchulungenanIhrenzellbiologischenFragestellungenzuarbeiten.

Inhalte:

‐ VerschiedeneHomogenisationsmethoden‐ Zentrifugationstechnik,Ultrazentrifugen‐undRotorenpflege,

Differentialzentrifugation,Dichtegradientenzentrifugation‐ IsolierungvonZellorganellen,Kernfraktion,Membranen‐ Blue‐Native‐Gele,2‐D‐GelemitBNP‐Geleninder1.Dimension‐ OptimierungvonSDS‐Gelen,Western‐BlotTechnik

Referent:


Anmerkung: WennSiedasZusatzangebotinAnspruchnehmenmöchten,schreibenSieanTopLab(toplab@uni‐hd.de)


variabel variabel variabel variabel


11

12.06 Modul2 EinführungindieZellkultur‐THEORIETeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung


Zielsetzung:

KennenlernenundAuffrischungdertheoretischenGrundlagenderZellkultur.

Inhalte:

‐ SterileArbeitstechnik‐ FunktionsprinzipderSterilwerkbank‐ Zellkulturreagenzien‐ KontaminationeninderZellkultur‐ UmgangmitadhärentenundSuspensionszellen

Anmerkung:

SagenSieunsgerneimVorfeldBescheid,wennSiebesondereFragenhaben.

Referentinnen:

Prof.Dr.KarenBieback,SusanneElvers‐HornungInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,UniversitätsmedizinMannheim


20.6.2017 9:00–ca.12:00Uhr

UniversitätsmedizinMannheimTridomus,HausC,Ebene5Ludolf‐Krehl‐Str.13‐1768167Mannheim

C‐517 3‐15


12

12.07 Modul2 EinführungindieZellkultur‐PRAXISTeilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeamKurs12.06EinführungindieZellkultur–THEORIE.AufgrundderbegrenztenPersonenzahlrichtetsichderKursausschließlichanPersonen,diekonkretZellkulturtechnikenerlernenmöchtenundsehrwenigErfahrunghaben.


Zielsetzung:

AuffrischungundKennenlernenderpraktischenGrundlagenderZellkultur.EswerdenlediglichgrundlegendeArbeitenvermitteltanhandvonzweiadhärentenZelllinienundeinerSuspensionskultur.

Inhalte:

DerPraxisteilumfasst:‐ SterilesArbeitenmitZellen‐ EinfrierenundAuftauenvonZellen‐ MediumwechselundSubkultivierenvonadhärentenund

Suspensionszellen‐ Zellzahl‐undVitalitätsbestimmung

Anmerkung:

SagenSieunsgerneimVorfeldBescheid,wennSiebesondereFragenhaben.

Referentinnen:

Prof.Dr.KarenBieback,SusanneElvers‐Hornung,StefanieUhlig,InstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,UniversitätsmedizinMannheim

Termine Uhrzeit Ort Raum Teilnehmerzahl

20.06.2017 13:00–16:30Uhr


C‐517 3‐6


13

12.08 Modul3 PCR‐MethodenzurSNP‐Genotypisierung SeminarmitpraktischemTeilTeilnahme‐voraussetzung:

GrundkenntnisseinDNA‐IsolierungundPCR


Zielsetzung:

IndiesemSeminarwerdeneinfacheMethodenzurPCR‐basiertenGe‐notypisierungvonSNPs(SingleNucleotidePolymorphisms)bzw.DNA‐Punktmutationenvermittelt.DieTeilnehmerInnensollendanachinderLagesein,selbstständigTestsystemefürbeliebigeSNPsaufzubauenunddieGenotypisierungdurchzuführen.

Inhalte:

‐ TheoretischeGrundlagenderGenomvariation‐ BedeutungvonSNPsinderDiagnostik‐ GrundlagenderallelspezifischenPCRundderallelischen

DiskriminierungmittelsallelspezifischerTaqMan‐Sonden‐ PrimerdesignundAssaydesign‐ DurchführungeinerallelspezifischenPCRundTaqMan‐PCR‐ Ergebnisauswertung

ReferentInnen:

Prof.(apl.)Dr.rer.nat.PeterBugertundGabiRink(MTA),InstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,UniversitätsmedizinMannheim


30.03.2017 9:00–15:00Uhr

DRK‐BlutspendedienstFriedrich‐Ebert‐Str.10768167Mannheim

109 2‐8


14

12.09 Modul3 RNA‐Isolierung/Quantifizierung/Qualifizierung SeminarmitpraktischemTeilTeilnahme‐voraussetzung:

GrundkenntnisseinderIsolierungvonNukleinsäurenausZellen


Zielsetzung:

IndiesemSeminarwerdenStandardmethodenzurIsolierungundAnalysevonGesamt‐RNAauseukaryotischenZellenvermittelt.DieTeilnehmerInnensollendanachinderLagesein,RNAausbeliebigenbiologischenProbenzuisolierenunddieQuantitätbzw.QualitätderRNAzubeurteilen

Inhalte:

‐ MethodenderRNA‐ExtraktionausZellen/Geweben‐ IsolierungvonGesamt‐RNAausZellkulturmittelsTrizolund

Minisäulen‐ QuantifizierungvonRNAmittelsUV‐Photometrie‐ FunktionundAnwendungeinesBioanalyzers‐ RNAIntegryNumber(RIN)‐ RNA‐QualifizierungamBioanalyzer

ReferentInnen:

Prof.(apl.)Dr.rer.nat.PeterBugertundGabiRink(MTA),InstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologieUniversitätsmedizinMannheim


20.04.2017 09:00–15:00Uhr


109 2‐8


15

12.10 Modul3 RelativeQuantifizierungderGenexpressionmittels Real‐Time‐PCR(QRT‐PCR)–SeminarTeilnahme‐voraussetzung:

GrundkenntnisseinPCRundReal‐Time‐PCR sowieinTabellenkalkulationmitExcel


Zielsetzung:

IndiesemSeminarwerdendiePrinzipienderrelativenQuantifizierung vonGenexpressionmittelsReal‐Time‐PCRvermittelt.MiteinfacherTabellenkalkulation(Excel)wirddierelativeExpressionsstärkevonZielgenenbestimmt.DieTeilnehmerInnensollendanachinderLagesein,beliebigeZielgenezuanalysierenundhinsichtlichihrerExpressionsstärkestatistischzubeurteilen.

Inhalt:

‐ GrundlagenderRT‐ undQRT‐PCR‐ GrundlagenundPrinzipienverschiedenerAssays‐ BedeutungundAuswahlderReferenzgene‐ GrundlagenderrelativenQuantifizierung‐ BestimmungderEffizienzvonPCR‐Systemen

Referent:

Prof.(apl.)Dr.rer.nat.PeterBugertInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,UniversitätsmedizinMannheim


1 04.05.2017 9:00–12:00Uhr


109 4‐20

2 9.11.2017 9:00–12:00Uhr


109 4‐20


16

12.11 Modul4 DeskriptiveStatistik(Kurs1)Teilnahme‐voraussetzung:

Keine


Zielsetzung:

Sieerfahren,nachwelchenKriteriensichMerkmaleunterscheidenlassenundwiemandiecharakteristischenEigenschafteneineseinzelnenMerkmalsbeschreibt.AußerdemlernenSiediewichtigstenLage‐undStreuungsmaßekennenundsollenverstehen,wiemandieseinterpretiert.

Inhalte:

‐ MerkmaleundihreEigenschaften‐ Häufigkeiten(absoluteundrelative)‐ GraphischeDarstellungenvonHäufigkeiten‐ OddsRatio‐ Lage‐undStreuungsmaße‐ Box‐andWhisker‐Plots

Referentin:

Prof.Dr.ChristelWeiß,Dipl.‐Math.LeiterinderAbteilungfürMed.StatistikundBiomathematikderMedizinischenFakultätMannheimderUniversitätHeidelberg

Termine Uhrzeit Ort Teilnehmerzahl

04.10.2017 09:00–13:00Uhr

UniversitätsmedizinMannheimDergenaueVeranstaltungsortstandbeiDruckschlussnochnichtfest.ErwirddenTeilnehmerInnenrechtzeitigmitgeteilt

5‐20


17

12.12 Modul4 EinfachestatistischeTests(Kurs2)Teilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeamKurs1(DeskriptiveStatistik)odervergleichbareKenntnisse


Zielsetzung:

SielernendasPrinzipeinesstatistischenTests,diebekanntestenTestszumVergleichvon2GruppenundderenAnwendungsmöglichkeitensowiedieBedeutungundInterpretationdesp‐Werteskennen.

Inhalte:

‐ SchrittebeiderDurchführungeinesstatistischenTests‐ DieBedeutungundInterpretationeinesp‐Wertes‐ Chi2‐TestzumVergleichvonHäufigkeiten‐ t‐TestzumVergleichvonMittelwerten‐ U‐TestvonMannundWhitney

Referentin:



05.10.2017 09:00–13:00Uhr


5‐20


18

12.13 Modul4 LineareRegressionsanalysen(Kurs3)Teilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeandenKursen1und2(DeskriptiveStatistikundEinfachestatistischeTests)odervergleichbareKenntnisse


Zielsetzung:

ZunächstlernenSie,wiemandenZusammenhang(dessenStärkeunddieArt)zwischenzweiquantitativenMerkmalenbeschreibt.DanachwirdanhandeinesBeispieldatensatzesdasPrinzipeinermultiplenlinearenRegressionerläutert,beiderdieWirkungmehrererEinflussgrößenaufeinequantitativeZielgrößesimultananalysiertwird.

Inhalte:

‐ Korrelatonskoeffizienten‐ EinfachelineareRegression‐ MultiplelineareRegression‐ DasBestimmtheitsmaß

Referentin:



10.10.2017 09:00–13:00Uhr


5‐20


19

12.14 Modul4 LogistischeRegression(Kurs4)Teilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeandenKursen1 bis3(DeskriptiveStatistik,EinfachestatistischeTestsundLineareRegressionsanalysen)odervergleichbareVorkenntnisse


Zielsetzung:

BeivielenFragestellungenistdieZielgrößebinär(etwamitdenAusprägungenja/nein).DazueignetsicheineLogistischeRegression.DasPrinzipunddieAnwendungsmöglichkeitenlernenSieindiesemKursanhandvonBeispieldatensätzenkennen.

Inhalte:

‐ DasPrinzipdereinfachenlogistischen Regression‐ MultiplelogistischeRegression

Referentin:



12.10.17 09:00–13:00Uhr


5‐20


20

12.15 Modul4 Varianzanalysen(Kurs5)Teilnahme‐voraussetzung:

TeilnahmeandenKursen1bis4(DeskriptiveStatistik,EinfachestatistischeTests,Regressionsmodelle)odervergleichbareKenntnisse


Zielsetzung:

BeiVarianzanalysenwirdderEinflussvonqualitativenFaktorenaufeinequantitativeZielgrößeuntersucht.DieseMethodeistsehrvielseitiganwendbar.AufbauendaufdereinfachstenForm(1‐faktorielleVarianzanalyse)werden2‐fundmehr‐faktorielleAnalysensowieVarianzanalysenmitMesswiederholungenvorgestellt.

Inhalte:

‐ DasPrinzipeiner1‐faktoriellen Varianzanalyse‐ 2‐faktorielleVarianzanalysen‐ Interaktionen‐ VarianzanalysenmitMesswiederholungen

Referentin:



16.10.2017 09:00–13:00Uhr


5‐20


21

12.16 Modul4 FachrechnenimLaborTeilnahme‐voraussetzung:

Keine


Zielsetzung:

BestimmthabenauchSievor ZeitendasRechnenmitMol,ProzentundKonzentrationengelernt,aberimmerseltenerangewendet.DurchgemeinsameÜbungenwirdIhrWissenaufgefrischt.

Inhalte:

‐ RechnenmitMol,Prozent,VerdünnungenundKonzentrationen‐ EinbeziehenderDichte‐ Dosisberechnen‐ BerechnenderZellzahlinZellkulturen(NeubauerZählkammer)‐ Absoluteµg‐MengenundKonzentrationen

Anmerkung:

BittebringenSieeinenherkömmlicherTaschenrechnerundSchreibmaterialmit.DergenaueTerminstandbeiDruckschlussnochnichtfest.ErwirddenTeilnehmerInnenrechtzeitigmitgeteilt.

Referent:



ImZeitraumOkt.–Dez.2017

09:00–13:00Uhr


5‐20


22

12.17 Modul5 HellfeldundPhasenkontrast‐MikroskopieTeilnahme‐voraussetzung:

Keine


Zielsetzung:

InTheorieundPraxiserwerbendieTeilnehmerInnenspezielleKenntnisseüberAufbauundFunktioneinesHellfeld‐sowiePhasenkontrast‐Mikroskops.SieerlenendasKöhlernsowiedierichtigeMikroskop‐Wartung.SievertiefenIhreKenntnisseimUmgangmitunterschiedlichenmikroskopischenPräparaten(Nativ‐,Ölimmersions‐Präparat,Zählkammer)undvielesmehr…

Inhalte:

‐ AufbauundFunktiondesMikroskops‐ Mikroskopiertechniken:HellfeldundPhasenkontrast‐ Immersionsöl,Nativpräparate‐ ZellzählunginderZählkammermitBerechnungsbeispielen‐ PraktischeÜbungen:„MikroskopischeEbene“,Artefakterkennung‐ VorstellungdermikroskopischenDigitalfotografie

Referentin:

JosefineNeuendorf,MTLA,DozentinfürLabordiagnostik,LehrerinanderAkademiefürGesundheitsberufedesUniversitätsklinikumsHeidelberg


02.06.2017 09:30–14:00Uhr


5‐9


23

12.18 Modul5 VonderProbennahmebiszumfertigenPräparatTeilnahme‐voraussetzung:

Keine


Zielsetzung:

EssollenProblemebeiderEntnahmevonGewebeprobenvonLabortierenundbeiderweiterenAufarbeitungderProbenbesprochenwerden,dieeinespäterehisto‐pathologischeAuswertungbeeinflussenoderstörenkönnen.SchondieTötungsmethodebeispielsweise,diebeidenLabortierenangewendetwird,kanndieGewebeverändernundeinepathohistologischeDiagnostikstören.AußerdemwirdesumdenEinflussvonverschiedenenFixierungsartenaufdieGewebegehenoderVeränderungen,diedurchdasZuschneidenderGewebebzw.dasFärbenentstehenkönnen.

Inhalte:

‐ EntnahmevonGewebeprobenvonLabortieren‐ EinflussvonTötungsmethodenaufdieGewebevonLabortieren‐ ProblemebeiderFixierungvonGewebeproben‐ DasrichtigeZuschneidenvonOrganen‐ TippsfürdasFärbenunddieImmunhistochemie

Referentin:

Dr.BettinaKränzlin,LeitungderTierhaltungundLeitungdeshistologischenundklinisch‐chemischenLaborsderMedizinischenFakultätMannheimimZentrumfürMedizinischeForschung(ZMF)


27.06.2017 10:00–12:00Uhr

DerVeranstaltungsortstandbeiDruckschlussnochnichtfest.ErwirddenTeilnehmerInnenrechtzeitigmitgeteilt

Mind.4


24

12.19 TheoriekursDurchflusszytometrieundFACS KursinHeidelbergTeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung


Zielsetzung:

DerKursvermitteltdietheoretischenGrundlagenderDurchflusszytometrieundFluoreszenzaktiviertenZellsortierung(FACS).DieTeilnehmerInnenerhalteneinenÜberblicküberdietechnischenKomponenteneinesDurchflusszytometerssowiepraktischeAnleitungenzurMessungundDatenanalyse.

Inhalte:

‐ GrundlagenderDurchflusszytometrieundFluoreszenzaktiviertenZellsortierung(FACS)

‐ Gerätetechnik,EinstellungundQualitätskontrolle‐ Messung‐ Datenanalyse

Referentin:

Dr.MonikaLanglotz,FlowCytometry&FACSCoreFacility,ZentrumfürMolekulareBiologiederUniversitätHeidelberg(ZMBH)

Anmerkung:

IndividuellepraktischeGeräteschulungenamDurchflusszytometersindjederzeitaufAnfragemöglich(bittemax.2TeilnehmerInnen).


14.03.2017 09:00–11:00Uhr

ZentrumfürMolekulareBiologieImNeuenheimerFeld28269120Heidelberg

020b/EG 5‐20


25

12.20 EinführungindieDurchflusszytometrie KursinMannheimTeilnahme‐voraussetzung:

Laborerfahrung


Zielsetzung:

SieerhalteneinenÜberblicküberdieGrundlagenundAnwendungsgebietederDurchflusszytometrie.

Inhalte:

‐ GrundlagenderDurchflusszytometrie‐ PrinzipderFluoreszenz‐ ÜberblicküberMehrfarb‐Analysen‐ KontrolleninderDurchflusszytometrie‐ Kompensation‐ Zellsortierung

Referentinnen:

StefanieUhlig,Prof.Dr.KarenBiebackInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,UniversitätsmedizinMannheim

Anmerkung:

AufWunschkannnachindividuellerAbspracheeinTerminfüreinepraktischeEinführungamFACSCantoII,FACSDivaSoftwarefürmax.4Teilnehmerverabredetwerden.DieserTerminmachtnurundausschließlichSinnfürMitarbeiter,dieandiesemGerätundmitdieserSoftwarearbeiten.


19.09.2017 09:00–12:00Uhr


C‐517 3‐15


26

ReferentenportraitsPDDr.rer.nat.KarenBieback

LeitungderzellbiologischenArbeitsgruppeamInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,MedizinischeFakultätMannheim,DRK‐BlutspendedienstBaden‐Württemberg‐Hessen.Themengebiete:AdulteStamm‐undVorläuferzellen.Leitung:Core‐FacilityfürDurchflusszytometrieundZellsortierungderMedizinischenFakultätMannheim.

Prof.(apl.)Dr.rer.nat.PeterBugert

Diplom‐Biologe,PromotionanderBiologischenFakultätderUniversitätHeidelberg,HabilitationanderMedizinischenFakultätMannheimderUniversitätHeidelberg.Seit2000LaborleiteramInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologieMannheim.Arbeitsschwerpunkte:MolekulargenetikundBiochemiederThrombozytenfunktion,Blutgruppengenetik,Nukleinsäureanalytik,Proteinanalytik,Zellbiologie.

SusanneElvers‐Hornung

Biologisch‐technischeAssistentin,seit2005inderzellbiologischenArbeitsgruppeamInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologie,MedizinischeFakultätMannheim.Themengebiete:AdulteStamm‐undVorläuferzellen.

Dr.MonikaLanglotz

LeitungderCoreFacilityFlowCytometry&FluorescenceActivatedCellSorting(FACS)amZentrumfürMolekulareBiologiederUniversitätHeidelberg(ZMBH).

Dr.med.vet.BettinaKränzlin

FachtierärztinfürPharmakologieundToxikologiesowieFachtierärztinfürVersuchstierkunde.LeitungderTierhaltungderMedizinischenFakultätMannheimimZentrumfürMedizinischeForschung(ZMF)undLeitungdeshistologischenundklinisch‐chemischenLaborsdesZMF.

HeribertMohr

BiotechnikermitlangjährigerpraktischerErfahrungimzellbiologischenForschungsbereich.AusbildungsleiterfürBiologielaborantenanderUniversitätHeidelbergundMitgliedderTopLab‐Projektleitung.

JosefineNeuendorf

MTLA,Autorin,DozentinfürLabormedizin,LehrerinfürKlinischeChemieanderMTLA‐SchulederAkademiefürGesundheitsberufedesUniversitätsklinikumsHeidelberg.Themenschwerpunkte:Mikroskopie,Urindiagnostik


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GabrieleRink

Medizinsch‐TechnischeAssistentin,AusbildunganderMedizinischenFachschuleDresdenFriedrichstadt.Seit1999MTAimInstitutfürTransfusionsmedizinundImmunologieMannheiminderBlutbankundInfektionsserologie.Seit2002inderMolekularbiologie,dortseit2010Gruppenleiterin.Arbeitsschwerpunkte:Molekulargenetik,Thrombozytenfunktion,Blutgruppengenetik,Nukleinsäureanalytik,Proteinanalytik.

StefanieUhlig

MedizinischTechnischeAssistentin,seit2011OperatorinderCoreFacilityfürDurchflusszytometrieundZellsortierung,MedizinischeFakultätMannheim,UniversitätHeidelberg

Dr.ChristelWeiß

Biomathematikerin,LeiterinderAbteilungfürMedizinischeStatistikamUniversitätsklinikumMannheim,DozentinfürdieVorlesungenBiomathematikundEpidemiologie,BeraterinfürÄrzteundDoktorandenbeiderPlanungundAnalysemedizinischerStudien,AutorinzweierLehrbücherundCo‐AutorinzahlreicherwissenschaftlicherPapers.


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TeilnahmeinformationenAnmeldungBitteverwendenSiezurAnmeldungdasFormular,dasinderKursprogrammbroschürealsKopiervorlage,bzw.aufunsererWeb‐Seiteunterhttp://www.toplab.uni‐hd.dezumAusdruckvorliegt.

SendenSieunsIhreAnmeldungbitteperFax(54‐8695),mitderHauspostoderelektronischalsPDF‐Datei(toplab@uni‐hd.de)zu.NachderenEingangerhaltenSieeineAnmeldebestätigungundca.zweiWochenvorKursbeginndetaillierteInformationenzurVeranstaltung.

IhreAnmeldungbetrachtenwiralsverbindlich.BittemeldenSiesichdahernurinAusnahmefällenab–undwenn,sofrühwiemöglich.

MindestteilnehmerzahlUnterschreitetdieZahlderAnmeldungendieangegebeneMindestteilnehmerzahl,kanndieVeranstaltungnichtstattfinden.SiewerdenindiesemFallschriftlichdarüberbenachrichtigt.

WartelisteundZusatztermineÜbersteigtdieZahlderAnmeldungendiemaximaleTeilnehmerzahl,werdendiesenachEingangsdatumaufeinerWartelistenotiertundimFallvonAbmeldungenberücksichtigt.BeieinerentsprechendgroßenAnzahlvonAnmeldungenaufderWarteliste,bemühenwirunsumdieOrganisationvonZusatzterminen.

TeilnahmebescheinigungTeilnehmerInnen,diemindestens80%einesKursesbesuchthaben,erhaltennachdemKurseineTeilnahmebestätigungperPost.

WirbittenumRückmeldungundAnregungen!DamitwirunsereAngebotekünftignochstärkeraufIhreBedürfnisseunddieAnforderungenIhresArbeitsplatzeszuschneidenkönnen,benötigenwirIhreUnterstützung.WirfreuenunsdaheraufIhreRückmeldungundAnregungen.


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Anmeldeformular TopLab Fax: 06221/54 8695 Bitte deutlich und vollständig ausfüllen und per Fax oder eingescannt per E-Mail ([email protected]) an die TopLab-Servicestelle schicken Kursnr. Kurstitel Datum

Bei Seminaren/Kursen/Vorträgen mit Teilnahmevoraussetzungen: ☐ Die in der Seminarbeschreibung genannten Teilnahmevoraussetzungen kann ich nachweisen.

Titel:

Name:

Vorname:

Beschäftigt als: ☐ Wissenschaftliche Mitarbeiter/In ☐ Post Doc ☐ Doktorand/In ☐ Wissenschaftliche Hilfskraft ☐ Labormitarbeiter/In (MTA, CTA, BTA, etc.) ☐ Auszubildende ☐ Sonstige: Bitte erläutern Sie, weshalb Sie an dem Seminar teilnehmen möchten:

Mit welchen Aufgaben sind Sie schwerpunktmäßig betraut:

Klinik/Institut/Arbeitsgruppe: Dienstanschrift: (Arbeitsplatz) Telefon-Nr.:

Dienstliche E-Mail-Adresse:

Die Teilnahmeinformationen habe ich in der Broschüre oder unter http://www.toplab.uni-hd.de gelesen und melde mich verbindlich zu den oben genannten Seminare/ Kurse/ Vorträge an. Datum und Unterschrift der/des Mitarbeiterin/Mitarbeiters ___________________________________________ Datum und Unterschrift der/des Vorgesetzten ___________________________________________


TopLab berät individuell! Unsere Servicestelle steht Ihnen telefonisch und per E-Mail für Auskünfte und individuelle Beratung zur Verfügung. Wir suchen mit Ihnen gemeinsam nach Lösungen für anspruchsvolle Probleme. Weitere Informationen zu TopLab, zu unserem Schulungsangebot sowie zu fachlichen Themen, stehen Ihnen auf unserer Homepage zur Verfügung. Wie können wir Sie unterstützen?

TopLab-Servicestelle Ulrike Traut, Heribert Mohr Telefon: 06221 / 54-8699 Im Neuenheimer Feld 327 Fax: 06221 / 54-8695 2. OG / Raum 205 E-Mail: [email protected] 69120 Heidelberg www.klinikum.uni-heidelberg.de www.toplab.uni-hd.de

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Kursprogrammbroschu¨re Deckblatt vorne 2017 Bild neu · Dieses Modul schlägt einen praxisorientierten Bogen von der Homogenisation des nativen Materials über Liquid Handling, Zentrifugationstechniken