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Agrar- und Ernährungswissenschaftliche Fakultät Christian-Albrechts- Universität zu Kiel Institut für Tierzucht und Tierhaltung der Christian-Albrechts-Universität Kiel Strategien zur Behandlung von Weideparasiten E. Schallenberger Agrar- und Ernährungswissenschaftliche Fakultät

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Agrar- und Ernährungswissenschaftliche Fakultät

Christian-Albrechts-Universität zu Kiel

Institut für Tierzucht und Tierhaltung der Christian-Albrechts-Universität Kiel

Strategien zur Behandlung von Weideparasiten

E. Schallenberger

Agrar- und Ernährungswissenschaftliche Fakultät

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Was wollen wir?

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Was wollen wir nicht ?

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Was ist zu tun ?

• Probleme erkennen• Denken in Kreisläufen• Beachtung von Zoo-Anthroponosen

besonders in Natur-Erlebnis-Gebieten• Regelmäßige gezielte Überwachung und

Diagnostik• Therapie nach Plan und Notwendigkeit

unter Beachtung der Umweltwirkungen

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Neue alte Maßnahmen -Prophylaxe

• Weidehygiene – Weidewechsel

• Unterbrechung von Parasitenzyklen (2 – 4 Wochen Rhythmus)

• Möglichst nur Auftrieb von parasitenfreien Tieren• Prophylaxe mit Ohrclips, Pour-on – Spot-on-

Präparaten, oral

• Vorsicht: Ungezielte Prophylaxe erhöht Resistenzen

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Neue alte Maßnahmen -Diagnostik

• Kotproben: Einzeltiere – Herde – Weide (zum Teil in Spezialmedien z.B. Cryptosporidien)

• Rachentupfer (z.B. Lungenwürmer)

• Hautgeschabsel – UV Lampe (Differenzierung Ektoparasiten – Pilze)

• Erregerisolierung: Anreicherung, Differenzierung (klassisch, serologisch bis PCR), Resistenzbestimmung

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Neue alte Maßnahmen -Therapie

• Herdentherapie in regelmäßigen Intervallen vorWeideumtrieb – Beachtung des Wildtierbestands

• Gemeinsame Therapie mehrerer Landwirte• Pour-on, Spot-on, Vernebelung, Bäder • oral über Kraftfutter, mit Eingeber• Per Injektion• Breitbandpräparate vs. Einzelpräparate

(Beachtung spezifischer Vorschriften im Ökolandbau)

• Mehrmalige Therapie nach dem Einstallen im Herbst

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Prophylaxe und Therapie sind nur zielführend bei Kenntnis

der Parasiten und ihrer Zyklen

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Endoparasiten

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Protozoen – Kokzidien

Ohne Zwischenwirt

Eimeria spp.Isospora spp.

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Entwicklungszyklus von Kokzidien

Kein Zwischenwirt

Ansteckungsgefahr: Alle Haus- und Wildtiere, Mensch

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Kokzidien Oocyste sporoliert Isosporaaus Rinderkot

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Protozoen – Kryptosporidien

ohneZwischenwirt

Cryptosporidium parvum

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Entwicklungszyklus Cryptosporidium parvum

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Kryptosporidien Oocysten im blutigen Kälberkot

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Protozoen – Sarcocysten

Sarcocystis cruziKokzidien mit obligatem Wirtswechsel

Endwirt: Hund, Katze, MenschZwischenwirt: Wiederkäuer, Schweine, Mäuse

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Entwicklungs-zyklusSarcozystoseKokzidien mit Zwischenwirt

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Oozysten von Sarcocystis cruzi in Hundekot

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Sarcozysten in Zungenmuskulatur Rind

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Protozoen - Toxoplasmose

Toxoplasma gondii – Säugetiere und Mensch

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Toxoplasmose Entwicklungs-zyklus

Haustiere -Mensch

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Toxoplasma gondii Pseudozysten MRT Großhirn Mensch

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In Katzen-/ Hundekot

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Protozoen

Neospora caninumZwischenwirt: Wiederkäuer, Schwein, Pferd

Endwirt: Hund, Fuchs

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Entwicklungszyklus Neospora caninum

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Neospora caninum Oocyste

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Neospora caninum

Vielfach unterschätzte Abortursache bei Weidetieren

Verbreitung über Hundekot/Wasser

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Trematoden - Plattwürmer

Großer Leberegel – Fasciola hepatica

Kleiner Leberegel – Dicrocoelium dentriticum

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Entwicklungskreislauf des großen Leberegels

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Trematode Fasciola hepaticain den Gallengängen der Leber

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Bindegewebig verdickte kalzifizierte Gallengänge eines Rindes mit Leberegeln

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Fasciola hepatica Großer Leberegel

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UnsporolierteOozyste im Rinderkot

großer Leberegel

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Zwergschlammschnecken Zwischenwirte von Trematoden

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Zwergschlammschnecken Habitat

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Zerkarie Großer Leberegel Fasciola hepatica

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Nematoden – Fadenwürmer

Magen-/Darm Trichostrongyliden der Haustiere

vorwiegend Wiederkäuer

Nematodirus spp.Ostertagia spp.

Oesophagostomum spp.keine Zwischenwirte

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Entwicklungs-zyklusMagen-/ Darm-StrongylidenWiederkäuer

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Wiederkäuer-TrichostrongylidenGrößenvergleich

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Dünndarmläsionen Rind durch StronylidenOstertagia ostertagia

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Trichostrongyliden Oesophagostomum spp.

Wurmknoten Colon

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Oocysten Trichostrongylus Ostertagia ostertagia

Rind

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Befall annährend 100 % aller Haus- und Wildwiederkäuer !

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Nematoden – Lungenwürmer

Dictocaulus viviparus – RindCysticercus tenuicollis – Schaf

Kein Zwischenwirt

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Entwicklungskreislauf des großen Lungenwurms (Dictyocaulus viviparus)

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Großer Lungenwurm Rind Larvenstadium

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Großer Lungenwurm des Rindes Dictyocaulus viviparus

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LungenwürmerCysticercustenuicollis und Dictocaulus viviparus

a „Brutknoten „ in der Lunge

c adulte Würmer in Brochien

b, d, e, f Wanderlarven in Leber und Lunge

c f

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Lungenwurmbefall Schaf

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Lungenwürmer Dictyocaulus viviparus

Rindertrachea

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Befall annähernd 100 % aller Haus – und Wildwiederkäuer auf

feuchteren Standorten !

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Nematoden - Peitschenwürmer

Trichuris trichuria

Vorkommen bei Mensch und allen Haus- und Wildwiederkäuern

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Entwicklungs-zyklusPeitschenwurm Nematoden

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Nematode Peitschenwurm Trichuris trichuria

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Peitschenwürmer Trichuris trichuiria an Colonmucosa

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Cestoden - Bandwürmer

Moniezia expansa

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Entwicklungs-zyklusWiederkäuer-Bandwurm

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Kompletter Bandwurm

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Bandwurm Moniezia expansa

Skolex und Proglottiden

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Oocyste des Bandwurms Moniezia expansa

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Cysticercoide des Bandwurms Moniezia expansa

in einer Milbe

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Cestoden – BandwürmerTaenia spp.

Taenia multiceps – Mensch Taenia saginata – Mensch, Wiederkäuer

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Entwicklungs-zyklusMenschenband-wurmFinnenstadium bei Rind (selten Schwein)

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Bandwurm Taenia saginata im Rinderkot

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Scolex des Bandwurms Taeniasaginata

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Hakenkranz eines Taenien-Skolex

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Bandwurm Taenia saginataim Jejunum vom Rind

Perforationen von Leber und Trachea durch Wanderlarven

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Bandwurm-Proglottiden Taenia spp.

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Typische Bandwurm Oozyste

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Bandwurm Cysticercus (Zyste)

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Mit Bindegewebe und Kalk umkapselter Cysticercus „Finne“ von Taenia spp.

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Bandwurm-Larven (Finnen) am/im Zwerchfell (Schaf)

a + b Finnen von Taenia multicepsMenschenbandwurm

d Hydatide von Echinococcus granul. Fuchs-/Hundebandwurm

c Coenurus-Larve von Taenia multiceps

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Röntgen-aufnahme

kalzifizierte Cysticercoidenvon Taeniasaginata in Muskulatur vom Schaf

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Ektoparasiten

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Octapoden

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Zecken

Holzbock-, Hirschzecke – Ixodes spp. Schildzecken – Dermacentor spp.

Unter anderem Überträger der Lyme Borreliose Frühsommer-Meningo-Encephalitis (FSME)

Babesiose (Theileriose)

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Holzbock-Zecke bei Blutmahlzeit

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Holzbock-Zecke Ixodes ricinus

nach Blutmahlzeit

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Größenvergleich Schildzecke Dermacentor

Holzbock Ixodes

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Entwicklungszyklus des Holzbocks Ixodes scapularis

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Metamorphose-Wirt-Interaktionen bei Zecken

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Ixodes scapularis mit Eiern

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Durchtreiben von Rindern durch ein Zecken-Bad („DIP“)

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Octapoden - Milben

Psoroptes – SaugmilbenSarcoptes – Grab-, Krätze-, Räudemilben

Chorioptes – NagemilbenDemodex – Haarbalgmilben

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d e

Milben von Säugetieren

a) PsoroptesSaugmilben

c) SarcoptesGrab-, Krätze, Räudemilben

d) ChorioptesNagemilben

e) DemodexHaarbalgmilbe

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Psoroptes-Milben beim Jungrind

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Schwanzräude Rind

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Chorioptes-Milben in Hautgeschabsel Rind

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Räudemilbe Sarcoptes scabiei

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Räude-Milbe Sarcoptesscabiei

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Sarcoptes-Milben beim Menschen (Krätze)

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Demodex-Milbe Rind

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Demodekose Unterbauch

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Hexapoden

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Anoplura - Läuse

Überträger von bakteriellen und viralen Erregern

Beim Menschen besonders Hepatitis

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Läuse von WiederkäuernHaematopinus erysthemus Linognatus vituli

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Rinderlaus an Haaren

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SchweinelausHaematopinus suis

a+b x 12

c Nisse an Haar x 60

d Mundö ffnung x 150

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Mücken - Diptera

Aedes – WiesenmückenCulidae – Haus-, StechmückenSimuliidae – KriebelmückenCeratoprogonidae - Gnitzen

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Quelle: Spektrum der Wisseakteriellenschaft: Seuchen, Heide lberg (3/1997)

Blutsaugende Mücken übertragen: Plasmodien, Filarien, Viruserkrankungen und Bakterien

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Wiesenmücke Aedes spp. beim Blutsaugen

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Kriebelmücke Simuliidae ca. 2-5 mm

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Kriebelmücken Simuliidae

Ödeme und Intoxikation nach Stichen beim Jungrind

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Culex- (Stech-) Mücke Anopheles

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Gnitze Ceratopogonidae

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Gnitze

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GNITZE REM

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Diptera - Fliegen

Tabaniden - Bremsen Musciden – StubenfliegenStomoxys - Stechfliegen

Calliphoridae – FleischfliegenGlossinidae – Tsetse-Fliegen

Gastrophilus - Dasseln

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Rinder-Bremse Tabanus bovis

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Fliege Musca domestica

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Fliegen-Larven (Maden-) und Puppenstadien

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Aus Larven schlüpfende Fliegen auf Aas

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Subkutane Fliegenmade

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Fliegen-Made

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Entwicklungskreislauf der Dasselfliegen

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Dasselfliege Rind

3. Larvenstadium

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Schaf-Nasendassel-Fliege Rinder-Dassel-Fliege

Oestrus ovis Weibchen Hypoderma lineatum

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Strategische Gesundheits-Prophylaxe ist aktiver Tierschutz

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Vielen Dank für die Aufmerksamkeit