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Page1
Tipps und Tricks zur
Methodenentwicklung U/HPLC
Selektivität
stationäre und mobile Phase
Gradientenoptimierung
Thomas Bienert
Agilent Technologies
Page 2
Chromatographische Grundgleichung
Auflösung für HPLC und UHPLC
N = Bodenzahl - Säulenlänge und Partikelgröße
a = Selektivität – stationäre und mobile Phase
k = Kapazitätsfaktor – isokratische Elution
k = Retentionsfaktor – Gradienten-Elution
( - 1)
[ ] Rs = N k-Faktor
Page 3
Methodenentwicklung
Einfluss der Selektivität, Trenneffizienz und Retention
0.00
1.00
2.00
3.00
4.00
5.00
6.00
7.00
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21
Re
so
luti
on
Increase N
Increase Alpha
Increase k'
Selektivität beinflusst die Auflösung am
stärksten
• Stationäre und mobile Phase
• Temperatur
• N stark beeinflussbar durch a
Rs = N½/4 ( -1)/ k’/(k’+1)
Böden: 5000 10000 15000 20000 25000
Alpha: 1.10 1.35 1.60 1.85 2.1
k’: 2.0 4.5 7.0 9.5 12.0
Page 4
Welche ZORBAX Phase für welche Analytik?
StableBond C18 … Eclipse XDB C18… Bonus RP Extend-C18
Empfohlener Bereich:
pH: 0.8-8.0 pH: 2.0-9.0 pH: 2.0-9.0 pH: 2.0 -11.5
T: bis 90/100ºC T: bis 60ºC T: bis 60ºC T: bis 40/60ºC
NEU! Eclipse Plus ... für Basen/Säuren NEU! SB Aq, Phenyl, CN
Page 5
Säulen: RRHT 4.6 x 50 mm 1.8um Mobile Phase A: pH 5 0.05 M Na Acetat, B: ACN (70:30) Flussrate: 1 mL/min
Inj. Vol: 2 ul Detektion: UV 219 nm
RRHT SB-CN,
1.8um
min 0 2 4 6 8
RRHT Eclipse XDB-C18,
1.8um
min 0 2 4 6 8
min 0 2 4 6 8
RRHT SB-C18,
1.8um Indol Pindolol
Optimale Selektivität: Methodenentwicklung
Optimal!
Page 6
Optimale Selektivität für ultra-schnelle Trennungen
min
RRHT SB-Phenyl: schnellste Selektivität!
Elutionsordnung: Peaks 3,4 & 5
Probe:
1. Tolmetin
2. Naproxen
3. Diflunisal
4. Ibuprofen
5. Diclofenac
für SB-Phenyl
SB-Phenyl 1.8um
SB-C8 1.8um
SB-C18 1.8um
SB-CN 1.8um
0 1 2 3 4 5
mAU
0
50
100
150
200
250
300
350
400
450
Optimal!
doppelte Zeit
Tailing
sek. Wechselwirkungen
Co-Elution
Page 7
min 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5
mAU
0
10
20
min 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5
mAU
0
10
20
min 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5
mAU
0
10
20
Phenol
Methylparaben Ethylparaben
N,N-Diethyl-m-
toluamid
Propylparaben Butylparaben
Toluen
Heptylparaben
Eclipse Plus C18
Eclipse Plus
PhenylHexyl
Bonus RP
Säulen – Scouting zur Methodenentwicklung
Flussrrate: 0.5ml/min; Gradient::25 to 80%ACN in 3min, at 4min 90%ACN,at 4.5min 25%ACN, bei 6min25%ACN
Run time: 6min; Injektionsvol.: 3µl mit needle wash (Wasser/Methanol=50/50) für 6 s; T: 30°C (storage/run)
DAD: 254nm bw 10, ref. 360/100nm, 4nm slit, peak width 0.01min
Page 9
Selektivität - mobile Phase
Auswahl der Elutionsbedingungen
Wässriger Anteil – pH Wert
Organischer Anteil – Typ des organischen Lösungsmittels
Page 10
Puffer pKa Pufferbereich Puffer pKa Pufferbereich
Phosphat Formiat 3,8 2,8 - 4,8
pK1 2,1 1,1 - 3,1 Acetat 4,8 3,8 - 5,8
pK2 7,2 6,2 - 8,2 Tris(hydroxymethyl) 8,1 7,1 - 9,1
pK3 12,3 11,3 - 13,3 Aminomethan 8,3 7,3 - 9,3
Ammonium 9,2 8,2 - 10,2
Citrat Borat 9,2 8,2 - 10,2
pk1 3,1 2,1 - 4,1 1-Methyl-Piperidin 10,3 9,3 - 11,3
pK2 4,7 3,7 - 5,7 Pyrrolidin 10,5 9,5 - 11,5
pK3 5,4 4,4 - 6,4 Triethylamin 10,7 9,7 - 11,7
pH Stabilisatoren für pH-Werte < 2,5
Phosphorsäure, 0,1% TFA
Puffer für die HPLC
Page 11
Einfluss des pH-Wertes auf verschiedene
Substanzklassen
unpolar polar ionisierbar
Naphthalin Benzylalkohol Benzoesäure
Acenaphthen Nitrobenzol Benzanilid
pH 3
pH 7
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
0 1 2 3 4 5 6 7 8
0 1 2 3 4 5 6 7 8 0 1 2 3 4 5 6 7 8
0 1 2 3 4 5 6 7 8
Time (min) Time (min) Time (min)
Page 12
pH, pKa (Säurestärke) und schwache Basen
pH 9 – das Molekül liegt im Verhältnis von 1:1 protoniert und deprotoniert vor
Resultat: Peakform kann schlecht sein.
pH 10 – 91% der Moleküle liegen unprotoniert vor – keine Ladung – höhere
Retardierung zu erwarten
pH 8 – 91% der Moleküle leigen protoniert vor – eindeutige Ladung verschiebt die
Retention zu kleinen k’-Werten
Ka = [R3N][H+]
[R3NH+]
Ka = 1 x 10-9
pKa = 9 CHOCH CH N
2 2
CH3
CH3
+
HCH
3
CH3
CHOCH CH N2 2
R3NH+ R3N + H+
+ H+
Diphenhydramin
Page 13
pH-Einfluss auf die Retention von Säuren, Basen
und Neutralsubstanzen
Säule: Bondapak-C18
3.9 x 300 mm
Mobile Phase: 60% 25 mM phosphate buffer
40% Methanol
Flussrate: 2.0 mL/min
Temperatur: RT
Probe: pKa
1. Salicylsäure 3.0
2. Phenobarbital 7.4
3. Phenacetin 2.2
4. Nicotin 7.9
5. Methamphetamin 10.1
J.Chromatogr., 111(1975) 149
Retention und Selektivität zeigen starke Abhängigkeit vom pH-Änderungen
5
SCD
+
+
2 +
1
1.5
1.0
0.5
0.0
-0.5
log
k«
3 4 5 6 7 8 pH
A B C
2
4
5
3
3 5 7 9
ELUENT pH
40
30
20
10
10
Ret
entio
n
+++
3
17,12 - OC
UDC
SOC4
6
C12-OC
Page 14
pH-Änderungen ändern Selektivität und Auflösung
1. Procainamid
2. Buspiron
3. Pioglitazon
4. Eletriptan
5. Dipyridamol
6. Diltiazem
7. Furosemid (4-Chlor-2-
[(2-furylmethyl)amino]-5-
sulfamoylbenzoesäure;
4-Chlor-N-furfuryl-5-
Sulfamoylanthranilsäure;
min 0 2 4 6 8
1
2
3
4
5
6
7 pH 2.7: 0.1% Ameisensäure/ACN
min 0 2 4 6 8
1
7 4
2 6
5 3
pH 4.8: NH4Acetat/ACN
0 2 4 6 8
1
2
3
4 5
6 7 pH 7: NaPO4/ACN
Säulen: Eclipse Plus C18, 4.6
x 100mm, 5um
Gradient: 10 – 90% in 10 min.
Detektion: UV 254 nm
Page 15
(Vorstufe Antidepressiva)
Page 16
Page 17
Eluentvergleich: verschiedene pH-Werte
Säule konstant: Extend C18
H5931A © Agilent Technologies 2011
0 5
1
2,3
4
5
Zeit (min)
7
6
pH 7
30% 20 mM Na2HPO4
70% MeOH
Säule: 4.6 x 150 mm, 5 m
Mobile Phase: wie beschrieben
Flussrate: 1.0 mL/min
Temperatur: RT
Detektion: UV 254 nm
Probe: 1. Maleate
2. Pseudoephedrin
3. Scopolamin
4. Doxylamin
5. Chlorpheniramin
6. Triprolidin
7. Diphenhydramin
Zorbax Extend C18
pH 11
30% 20 mM TEA-Puffer
70% MeOH
0 5 10
1
2
3
4
Zeit (min)
6
5
7
Bessere Auflösung Trennung basischer
Antihistamine überhalb ihres pka-Wertes
Page 19
Organischer Anteil
Page 20
Optimierung der RPC-Trennung
Methanol
Tetrahydorfuran Acetonitril
J.L. Glajch, J.J. Kirkland, K.M. Squire, and
J.M. Minor, J. Chromatogr., 199 (1980) 57.
Änderung der Elutionsmittelstärke
Elutionsmittelstärke-Nomogramm für RPC-Trennungen
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100
0 20 40 60 80 100
0 20 10 40 30 50 60 70 80 90 100
ACN/WASSER
MEOH/WASSER
THF/WASSER
Page 21
Isoelutropische Stärke
% MeOH in H2O % ACN in H2O Relativer k’-Wert
0 0 100
10 6 40
20 14 16
30 22 6
40 32 2.5
50 40 1
60 50 0.4
70 60 0.2
80 73 0.06
90 86 0.03
100 100 0.01
http://www.sanderkok.com/techniques/hplc/eluotropic.html
Page 22
Acetonitril/MeOH - Elutionsmittelstärke/Selektivität
50% MeOH
30% ACN
Säule: ZORBAX RRHT Eclipse Plus C18, 4.6 x 50 mm, 1.8 m Mobile Phase: A: 25 mM NaH2PO4 , pH 3.0 B: Organik;
Flussrate: 2.0 mL/min Temperatur: 30°C Detektion: UV 240 nm
Sample: Cardiac Drugs 1.Pindolol 2. Disopyridamide 3.Propranolol 4.Diltiazem 5. Dipyridamole
1 2
mAU
-20
0
20
40
60
80
100
120
140 1
2
3 4 5
1 2 3
mAU
-20
0
20
40
60
80
100
120
140
2
3 4 5
1
Auflösung der Peakpaare
(2,3), (3,4), (4,5)
ist besser in MeOH
Peak 5 Selektivitätsänderung
Auflösung des Peakpaares
(1,2), ist besser in ACN
kürzere Analysenzeit
höhere Trenneffizienz
Page 23
Selektivitätsoption für aromatische und konjugierte
Systeme
hoch konjugtierte, aromatische Systeme wenig konjugtierte Systeme
Page 24
Steroide – Phenyl-Phasen und ACN
ACN fördert eher die Trennung nach Hydrophobizität
Page 25
Steroide – Phenyl-Phasen und MeOH
MeOH fördert eher die Trennung nach Aromatizität/pi-Elektronen
Page 27
Säulenkits für systematische Methodenentwicklung (400, 600, 1200 bar Systeme)
Kit Bestellnummer Säulen
RRHT Selektivitätskit
2.1*50 mm, 1.8 um
5190-1431 Eclispe Plus C18
Eclipse Plus PhenylHexyl
Bonus RP
RRHT pH-Kit
2.1*50 mm, 1.8 um
5190-1432 Eclispe Plus C18
StableBond C18
Extend C18
RRHT Selektivitätskit
4.6*50 mm, 1.8 um
5190-1433 Eclispe Plus C18
Eclipse Plus PhenylHexyl
Bonus RP
RRHT pH-Kit
4.6*50 mm, 1.8 um
5190-1434 Eclispe Plus C18
StableBond C18
Extend C18
RRHT Selektivitätskit
4.6*100 mm, 3.5 um
5190-1435 Eclispe Plus C18
Eclipse Plus PhenylHexyl
Bonus RP
RRHT pH-Kit
4.6*100 mm, 3.5 um
5190-1436 Eclispe Plus C18
StableBond C18
Extend C18
“The lazy man’s system”
DAD
Binäre
Pumpe
ALS
Solvent
selection
valve
Puffer 1-12
Organisch 1,2
(Degasser siehe nächste Folie)
x
bypass (oder 8te Säule)
Waste (oder 7te Säule
TCC cluster (2-3 TCCs)
“The lazy man’s system” – Anwendungen
Page 29
Vollautomatische Methodenoptimierung
• AutoChrom for ChemStation
• ChromSword for ChemStation
Vollautomatische Methodenentwicklung und Optimierung!
Partner-
lösungen!
30
Optimierung einer
(U)HPLC Methode
bezüglich Auflösung und
Geschwindigkeit
Übersicht
31
• Einleitung
• Anforderungen an die Anwendung
• Van Deemter Kurven
• Voraussetzungen für den Methodentransfer
• Optimierung einer (U)HPLC Methode bezüglich Geschwindigkeit
• Reduktion der Säulenlänge
• Anpassung der Gradientenzeit
• Beispiele
• Optimierung einer (U)HPLC Methode bezüglich Auflösung
• Beispiele
• Thema: Selektivität
• Zusammenfassung
32
Anforderungen an die Anwendung
Kürzere Laufzeit (bei gleicher Auflösung)
Mehr
Empfindlichkeit Applikation
Mehr Auflösung (bei gleicher Laufzeit)
Mehr Auflösung
bei kürzerer Laufzeit
33
Van Deemter Kurven für verschiedene
Partikelgrößen
0.0000
0.0005
0.0010
0.0015
0.0020
0.0025
0.0030
0.0035
0.0040
0.0045
0.0 0.5 1.0 1.5
Reduzie
rte T
rennstu
fenhöhe
Fluss
5.0 m
3.5 m
1.8 m
1. Kleine Partikel ergeben niedrigere Trenn-
stufenhöhen und damit höhere Trenneffizienz
2. Für kleine Partikel leidet die Trenneffizienz
weniger wenn man die Flussrate erhöht
Page 34
Chromatographische Grundgleichung
Auflösung für HPLC und UHPLC
N = Bodenzahl - Säulenlänge und Partikelgröße
a = Selektivität – stationäre und mobile Phase
k = Kapazitätsfaktor – isokratische Elution
k = Retentionsfaktor – Gradienten-Elution
( - 1)
[ ] Rs = N k-Faktor
35
Voraussetzungen
Keine Änderung der Selektivität (stationäre und mobile Phase)
Stationäre Phase in versch. Partikelgrößen und
Säulenlängen verfügbar
Keine Änderung der Gradientenspanne (Methode)
Immer z.B. von 20 – 100 % B
k
kNRs
1
1
41
Effizienz Selektivität Kapazität
36
Voraussetzungen
Systemvolumina stehen in passendem Verhältnis zu den
Säulendurchmessern und Flussraten.
2.1 mm 3 mm 4.6 mm
1100 / Standard 1200
1200 RRLC (standard delay vol.)
1200 RRLC (low delay vol.)
1290 Infinity LC
Keine Änderung des Säulendurchmessers beim Methodentransfer!
37
Säulenlänge und Partikelgröße Optimierung der Analyse bezüglich Laufzeit
Kürzere Laufzeit (bei gleicher Auflösung)
Applikation
Page 38
Kürzere Laufzeit – Reduktion der
Säulenlänge
Lc1
Säule 1: 2.1 mm x 150 mm, 5.0 µm
Lc2
Säule 2: 2.1 mm x 50 mm, 5.0 µm
(Kapillare)
Reduziert! (für FIA = 0)
N = Lc / H
(H = HETP)
Was passiert mit der Bodenzahl?
39
Reduktion der Säulenlänge Tabelle
Säulenlänge (mm) Bodenzahl N
5 μm Partikel
Bodenzahl N
3.5 μm Partikel
Bodenzahl N
1.8 μm Partikel
150 13050 18650 36250
100 8700 12400 24150
50 4350 6200 12100
2
2
1
1~p
c
p
c
d
L
d
LN
Page 40
Reduktion der Säulenlänge unter Erhalt der
Bodenzahl
Reduktion der Säulenlänge
Säule 1: 2.1 mm x 150 mm, 5.0 µm Säule 2: 2.1 mm x 50 mm, 1.8 µm
Reduktion der Partikelgröße
Daumenregel
41
5 μm 3.5 μm ⅔
5 μm 1.8 μm ⅓
3.5 μm 1.8 μm ½
Page 42
Reduktion der Laufzeit
= Reduktion auf 1/3
Laufzeit = Reduziert um Längenfaktor
Gradientenzeiten = Reduziert um Längenfaktor
z.B. 15 min 5 min
35 - 60 % in 15 min 35 - 60 % in 5 min
150 mm 50 mm
43
Gradientensteigung Laufzeit
Ft
VSb
G
m
b: Gradientensteigung
S: Konstante
ΔΦ: Änderung in % org. Phase
Vm: Systemvolumen
tG: Gradientenzeit
F: Flussrate
Hält man b konstant ändert sich das Elutionsprofil nicht!
Ft
Vb
G
c~Vc: Säulenvolumen
Vm ≈ Vc war Voraussetzung
Lc: Länge Säule Ft
L
G
c~
Beispiel 1
44
min 0 2 4 6 8
mAU
0
10
20
30
40
Ura
cil
Phenol
Meth
yl para
ben
Eth
yl para
ben
Pro
pyl para
ben
N,N
-die
thyl-m
-Tolu
am
ide
Buty
l para
ben
Tolu
ene
Hepty
l para
ben
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 150 mm, 5 µm
Beispiel 1
45
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 150 mm, 5 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
9 min 100 % B
10 min 100 % B
Fluss: 0.3 mL/min
Stopzeit: 10 min
Postzeit: 5 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 40 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
46
Beispiel 1
Säulenlänge (mm) Bodenzahl N
5 μm Partikel
Bodenzahl N
3.5 μm Partikel
Bodenzahl N
1.8 μm Partikel
150 13050 18650 36250
100 8700 12400 24150
50 4350 6200 12100
2
2
1
1~p
c
p
c
d
L
d
LN
Beispiel 1
47
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 100 mm, 3.5 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
6.0 min 100 % B (9 min)
6.7 min 100 % B (10 min)
Fluss: 0.3 mL/min
Stopzeit: 6.7 min (10 min)
Postzeit: 3.4 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 40 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Beispiel 1
48
min 0 1 2 3 4 5 6
mAU
0
20
40
60
80
min 0 2 4 6 8
mAU
0
10
20
30
40
150 mm, 5 μm 100 mm, 3.5 μm
Beispiel 2
49
Säulenlänge (mm) Bodenzahl N
5 μm Partikel
Bodenzahl N
3.5 μm Partikel
Bodenzahl N
1.8 μm Partikel
150 13050 18650 36250
100 8700 12400 24150
50 4350 6200 12100
Die Laufzeit soll weiter verkürzt werden.
Beispiel 2
50
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
3.0 min 100 % B (6 min)
3.4 min 100 % B (6.7 min)
Fluss: 0.3 mL/min
Stopzeit: 3.4 min (6.7 min)
Postzeit: 1.7 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 40 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Beispiel 2
51
min 0 1 2 3 4 5 6
mAU
0
20
40
60
80
min 0 2 4 6 8
mAU
0
10
20
30
40
150 mm
5 μm
100 mm
3.5 μm
min 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140 50 mm
1.8 μm
52
Säulenlänge und Partikelgröße Optimierung der Analyse bezüglich Laufzeit
Kürzere Laufzeit (bei gleicher Auflösung)
Applikation
.~ konstFt
Lb
G
c
p
c
d
LN ~
Kürzen der Säulenlänge
unter Beibehalt der
Bodenzahl
Verkleinern der
Partikel
53
Säulenlänge und Partikelgröße
Optimierung der Analyse bezüglich Auflösung
Applikation
Mehr Auflösung (bei gleicher Laufzeit) p
cS
d
LNR ~~
.~ konstFt
Lb
G
c
Verlängern der Säule
54
Werkzeuge Tabelle
Säulenlänge (mm) Bodenzahl N
5 μm Partikel
Bodenzahl N
3.5 μm Partikel
Bodenzahl N
1.8 μm Partikel
150 13050 18650 36250
100 8700 12400 24150
50 4350 6200 12100
55
Säulenlänge und Partikelgröße
Optimierung der Analyse bezüglich Auflösung
Applikation
Mehr Auflösung (bei gleicher Laufzeit) p
cS
d
LNR ~~
Verkleinern der Partikel
56
Werkzeuge Tabelle
Säulenlänge (mm) Bodenzahl N
5 μm Partikel
Bodenzahl N
3.5 μm Partikel
Bodenzahl N
1.8 μm Partikel
150 13050 18650 36250
100 8700 12400 24150
50 4350 6200 12100
Beispiel 3
57
min 0 1 2 3 4 5 6
mAU
0
20
40
60
80
min 0 2 4 6 8
mAU
0
10
20
30
40
150 mm, 5 μm 100 mm, 3.5 μm
Beispiel 3
58
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 100 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
6.0 min 100 % B
6.7 min 100 % B
Fluss: 0.3 mL/min
Stopzeit: 6.7 min
Postzeit: 4 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 40 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Beispiel 2
59
min 0 1 2 3 4 5 6
mAU
0
20
40
60
80
min 0 2 4 6 8
mAU
0
10
20
30
40
150 mm, 5 μm 100 mm, 3.5 μm
min 0 1 2 3 4 5 6
mAU
0
20
40
60
80
100 100 mm, 1.8 μm
Beispiel 3
60
Säulenlänge (mm) Bodenzahl N
5 μm Partikel
Bodenzahl N
3.5 μm Partikel
Bodenzahl N
1.8 μm Partikel
150 13050 18650 36250
100 8700 12400 24150
50 4350 6200 12100
Ausgehend von einer 150 mm Säule mit 5 µm Partikeln soll
sowohl die Laufzeit verkürzt als auch die Auflösung verbessert
werden.
Beispiel 4
61
Säulenlänge (mm) Bodenzahl N
5 μm Partikel
Bodenzahl N
3.5 μm Partikel
Bodenzahl N
1.8 μm Partikel
150 13050 18650 36250
100 8700 12400 24150
50 4350 6200 12100
Eine 150 mm Säule mit 3.5 µm Partikeln soll durch eine Säule
mit 1.8 µm Partikel ersetzt werden, d.h. die Säulenlänge kann
halbiert werden. Eine 75 mm Säule ist aber nicht verfügbar.
Soll eine 50 oder eine 100 mm lange Säule verwendet
werden?
Method Translator
62
Agilent 1290 Infinity LC DVD
Pub.# 5990-4930EN
63
Zusammenfassung
Der Methodentransfer funktioniert immer dann gut, wenn:
• Die stationäre Phase mit identischer Selektivität in
verschiedenen Partikelgößen verfügbar ist.
• Die Systemvolumina in passendem Verhältnis zum
Säulendurchmesser (Flussraten) stehen.
• Die Gradientenspanne nicht verändert wird.
• Der Säulendurchmesser nicht verändert wird.
64
Fragen?
65
Erhöhen der Flussrate
Verkürzen der Analysenzeit
67
Anforderungen an die Anwendung
Kürzere Laufzeit (bei gleicher Auflösung)
Mehr
Empfindlichkeit Applikation
Mehr Auflösung (bei gleicher Laufzeit)
Mehr Auflösung
bei kürzerer Laufzeit
Rückblick Teil 1 Optimierung der Analyse bezüglich Laufzeit
68
Säulenlänge (mm) Bodenzahl N
5 μm Partikel
Bodenzahl N
3.5 μm Partikel
Bodenzahl N
1.8 μm Partikel
150 13050 18650 36250
100 8700 12400 24150
50 4350 6200 12100
Reduktion der Säulenlänge Reduktion der Partikelgröße
Laufzeit = Reduziert um Längenfaktor
Gradientenzeiten = Reduziert um Längenfaktor
Rückblick Teil 1
69
min 0 1 2 3 4 5 6
mAU
0
20
40
60
80
min 0 2 4 6 8
mAU
0
10
20
30
40
150 mm
5 μm
100 mm
3.5 μm
min 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140 50 mm
1.8 μm
70
Rückblick Teil 1 Optimierung der Analyse bezüglich Laufzeit
Kürzere Laufzeit (bei gleicher Auflösung)
Applikation
.~ konstFt
Lb
G
c
p
c
d
LN ~
Kürzen der Säulenlänge
unter Beibehalt der
Bodenzahl
Verkleinern der
Partikel
71
Van Deemter Kurven für verschiedene
Partikelgrößen
0.0000
0.0005
0.0010
0.0015
0.0020
0.0025
0.0030
0.0035
0.0040
0.0045
0.0 0.5 1.0 1.5
Reduzie
rte T
rennstu
fenhöhe
Fluss
5.0 m
3.5 m
1.8 m
1. Kleine Partikel ergeben niedrigere Trenn-
stufenhöhen und damit höhere Trenneffizienz
2. Für kleine Partikel leidet die Trenneffizienz
weniger wenn man die Flussrate erhöht
72
Verkürzung der Analysenzeit Erhöhung der Flussrate
Im „Teil1“ wurde zum Ausgleich der
Verkürzung der Gradientenzeit die
Säulenlänge reduziert. .konst
Ft
Lb
G
c
Ausgleich kann aber auch durch die
Erhöhung der Flussrate erzielt
werden. .konst
Ft
Lb
G
c
Beispiel 1
73
min 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
Beispiel 1
74
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
3.0 min 100 % B
3.4 min 100 % B
Fluss: 0.3 mL/min
Stopzeit: 3.4 min
Postzeit: 3 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 40 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Peakwidth: > 0.003 min (80 Hz)
Beispiel 1
75
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
1.5 min 100 % B (3 min)
1.7 min 100 % B (3.4 min)
Fluss: 0.6 mL/min
Stopzeit: 1.7 min (3.4 min)
Postzeit: 2 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 40 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Peakwidth: > 0.003 min (80 Hz)
Druck: ca. 440 bar
76
Beispiel 1
min 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140
min 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 1.4 1.6
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140
0.3 mL/min 0.6 mL/min
Beispiel 2
77
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
0.75 min 100 % B (1.5 min)
0.9 min 100 % B (1.7 min)
Fluss: 1.2 mL/min
Stopzeit: 0.9 min (1.7 min)
Postzeit: 1.0 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 40 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Peakwidth: > 0.003 min (80 Hz)
Druck: ca. 770 bar
78
Beispiel 2
min 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140
min 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 1.4 1.6
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140
0.3 mL/min 0.6 mL/min
min 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8
mAU
0
20
40
60
80
100
120 1.2 mL/min
Beispiel 3
79
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
0.38 min 100 % B
0.45 min 100 % B
Fluss: 2.4 mL/min
Stopzeit: 0.45 min
Postzeit: 0.5 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 40 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Peakwidth: > 0.003 min (80 Hz)
Druck: > 1200 bar
80
Erhöhung der Temperatur Veringerung Viskosität, Rückdruck
22
41000
pc
c
dd
LFp
~pT
1~ln
η: Viskosität der mobilen Phase
Rückdruck hängt u.a. ab von
der Viskosität der mobilen
Phase.
Viskosität der mobilen Phase
hängt ab von der Temperatur.
81
Thema: Einfluss der Temperatur auf die
Chromatographie
Die Temperatur hat Einfluss auf:
• Viskosität der mobilen Phase (Rückdruck, Analysenzeit)
• Massentransfer (Peakbreite, Auflösung)
• Selektivität
• Stabilität der Analyten
82
Temperatur und Rückdruck
High Temperature LC-MS/MS (HTLC-MS/MS) for High Throughput Bioanalysis
Daniel Tang, PhD, PDM, Michigan Laboratories, PGRD, Pfizer Pharmaceuticals
Flussrate 0.2 mL/min, ZORBAX SB-C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
83
Analysenzeit
Säule: SB-C18
4.6 x 30 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: Wasser/Methanol 40:60
Flussrate: 1 mL/min
Temperatur: siehe Abb.
Probe: 1. Triamcinolon
2. Hydrocortison
84
Bodenzahl (Trennleistung)
High Temperature LC-MS/MS (HTLC-MS/MS) for High Throughput Bioanalysis
Daniel Tang, PhD, PDM, Michigan Laboratories, PGRD, Pfizer Pharmaceuticals
• Kurve wird flacher Unempfindlicher gegen Flussratenerhöhung
• Minimale Bodenhöhe bei 80 °C
85
Selektivität
Säule: ZORBAX SB-C18 4.6 x 50 mm, 1.8 µm
Eluent: A: Wasser + 0.1% Ameisensäure B: Acetonitril + 0.1% Ameisensäure (85:15),
Flussrate: 1 mL/min
86
Stabilität der Analyten
Fluss: 0.25 mL/min Fluss: 0.4 mL/min
High Temperature LC-MS/MS (HTLC-MS/MS) for High Throughput Bioanalysis
Daniel Tang, PhD, PDM, Michigan Laboratories, PGRD, Pfizer Pharmaceuticals
Unter hohem Druck und bei kurzer Verweilzeit auf der
Säule sind viele Analyten stabil.
Beispiel 3
87
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
0.38 min 100 % B (0.75 min)
0.45 min 100 % B (0.9 min)
Fluss: 2.4 mL/min
Stopzeit: 0.45 min (0.9 min)
Postzeit: 0.5 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 60 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Peakwidth: > 0.003 min (80 Hz)
Druck: ca. 1130 bar
88
Beispiel 3
min 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140
min 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 1.4 1.6
mAU
0
20
40
60
80
100
120
140
0.3 mL/min 0.6 mL/min
min 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8
mAU
0
20
40
60
80
100
120 1.2 mL/min
min 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4
mAU
0
20
40
60
80
100 2.4 mL/min
Page 89
Reduzierter
Diffusionspfad
Gross, total
poröser Partikel Klein, total
poröser Partikel
300 Poroshell 5 µm
fester Kern, poröse Schicht
0.25 µm 2.5 µm
Die Diffusionsgeschw. grosser
Biomoleküle ist Faktor 10 kleiner
verglichen zu kleinen Molekülen
5 µm 1.8 µm
Reduzierter
Diffusionspfad
Poroshell 120 2.7um
fester Kern, poröse Schicht
0.5 µm
Partikeltyp – Bodenzahl
Reduzierter
Diffusionspfad
Poroshell 120 Säulen für HPLC und UHPLC:
• 80-90% der Trenneffizienz von “sub 2um”
• bei ~40-50% geringerem Rückdruck
• Partikelgrösse: 2.7um
• Fritte: 2um Porengrösse für minimiertes
Verstopfungspotential
• Druckgrenze: 600 bar
• Der superficial Partikel hat einen festen
Kern (1.7um) und eine poröse
Aussenschicht von nur 0.5 um
February 10, 2012
Confidentiality Label
90
Beschreibung: Poroshell 120
91
Thema: Datenrate Detektor
min 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4
mAU
0
20
40
60
80
100
Zur zuverlässigen Bestimmung
der Peakfläche braucht man
mindestens 10 Datenpunkte über
den Peak!
Peakbreite 0.2 s
10 Datenpunkte in 0.2 s
= 50 Datenpunkte in 1 s
= 50 Hz Datenrate
Beispiel 4
93
Säule: ZORBAX Eclipse Plus C18 2.1 x 50 mm, 1.8 µm
Mobile Phase: A = Wasser, B = Acetonitril
Gradient: 0 min 20 % B
0.38 min 100 % B
0.45 min 100 % B
Fluss: 2.4 mL/min
Stopzeit: 0.45 min
Postzeit: 0.75 min
Inj.vol.: 3 μL
Säulentemp.: 60 C
DAD: 254 nm / 4 (360 nm / 100)
Peakwidth: > 0.025 min (10 Hz)
94
Beispiel 4
min 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4
mAU
0
20
40
60
80
100 80 Hz
10 Hz
min 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4
mAU
0
10
20
30
40
50
60
95
Zusammenfassung
Beim Verkürzen der Analysenzeit durch Erhöhung der
Flussrate ist folgendes zu beachten:
• Nur bei stationären Phasen mit sub-2-micron Partikel
ist die van Deemter Kurve so flach ansteigend, dass
man nur wenig an Bodenzahl verliert.
• Die van Deemter Kurve ist jedoch nicht komplett
horizontal, d.h. auch bei den sub-2-micron Partikel
verliert man an Bodenzahl.
• Die Temperatur kann als Parameter zur Reduzierung
des Rückdrucks verwendet werden, allerdings hat sie
vielfältigen Einfluss auf die Chromatographie.
96
UV Empfindlichkeit
97
Übersicht
Einleitung • Was bedeutet Empfindlichkeit?
• Welche Parameter haben Einfluss auf die Empfindlichkeit?
Noise (System) • Qualität der mobilen Phasen und Modifier
Noise (Detektor) • Datenrate
• Optischer Spalt
Signal (System) • Säule (Durchmesser, Partikelgröße, Flussrate)
Signal (Detektor) • Datenrate
Zusammenfassung
98
Empfindlichkeit in der UV Detektion
Für das Limit of Detection (LOD), d.h. die Substanzmenge bei der
ein Peak noch vom Rauschen der Basislinie unterschieden
werden kann, gilt üblicherweise:
D.h. ein Peak kann dann noch identifiziert werden, wenn er
doppelt so hoch ist wie das Rauschen in der Basislinie.
Eine Analyse ist umso empfindlicher je höher das Signal und
je niedriger das Rauschen ist.
hSignal = 2 x hNoise
99
„How to enhance S/N“
Aus:
John W. Dolan, LC/GC Europe, March 2010,
Volume 23 Number 3, S. 136 - 140
Increasing the signal:
• Better wavelength
• Better detector
• Modify the analyte
• Inject more sample
• Reduce peak width
Smaller k-value
Smaller column
Higher plate number
Decreasing the noise:
• Increase detector time constant
• Increase signal bunching
• Better temperature control
• Better reagent purity
• Better mixing
• Reduce pump pulsations
100
„How to enhance S/N“
Detektorparameter
Parameter restliches System
Increasing the signal:
• Better wavelength
• Better detector
• Modify the analyte
• Inject more sample
• Reduce peak width
Smaller k-value
Smaller column
Higher plate number
Decreasing the noise:
• Increase detector time constant
• Increase signal bunching
• Better temperature control
• Better reagent purity
• Better mixing
• Reduce pump pulsations
101
„How to enhance S/N“
Increasing the signal:
• Better wavelength
• Better detector
• Modify the analyte
• Inject more sample
• Reduce peak width
Smaller k-value
Smaller column
Higher plate number
Decreasing the noise:
• Increase detector time constant
• Increase signal bunching
• Better temperature control
• Better reagent purity
• Better mixing
• Reduce pump pulsations
UHPLC spezifisch
Allgemein
102
Empfindlichkeit in der UV Detektion
System Detektor System Detektor
Noise Signal
Signal/Noise
103
Basislinienrauschen – System
System Detektor System Detektor
Noise Signal
Signal/Noise
104
Basislinienrauschen – System
Performance der Pumpe
• Pressure Ripple
• Mischung der mobilen Phasen
Mobile Phase
• Absorption der mobilen Phasen und Modifier (TFA)
• Qualität der mobilen Phasen und Modifier
Instrument
• Sauberkeit
• Maintenance
105
Basislinienrauschen – System Mobile Phase – Qualität mobile Phasen und Modifier
Acetonitril 1
Impurity
Acetonitril 2
106
Basislinienrauschen – Detektor
System Detektor System Detektor
Noise Signal
Signal/Noise
107
Basislinienrauschen – Detektor
Design der optischen Einheit, DAD/VWD
Typ und Geometrie der Flusszelle
Datenrate
Optischer Spalt
108
Basislinienrauschen – Detektor Datenrate
min 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4
mAU
0
20
40
60
80
100
Zur zuverlässigen Bestimmung
der Peakfläche braucht man
mindestens 10 Datenpunkte über
den Peak!
Peakbreite 0.2 s
10 Datenpunkte in 0.2 s
= 50 Datenpunkte in 1 s
= 50 Hz Datenrate
109
Basislinienrauschen – Detektor Optische Einheit – Datenrate
min 0 0.5 1 1.5
mAU
0
2
4
6
8
min 0 0.5 1 1.5
mAU
0
2
4
6
8
Noise(PtoP, 0.5 – 1.5 min) = 1.48x10-2 Noise(PtoP, 0.5 – 1.5 min) = 5.43x10-2
Filegröße(DAD1A.ch) = 9 KB Filegröße(DAD1A.ch) = 45 KB
Datenrate = 10 Hz Datenrate = 160 Hz
110
Basislinienrauschen – Detektor Optische Einheit – Datenrate
Wasser/Acetontril 65:35, Laufzeit 2 min, Noise (Peak to Peak) zwischen 0.5 und 1.5 min
Slit 4 nm, Zelle 10 mm Pfadlänge
111
Basislinienrauschen – Detektor Optische Einheit – Programmierbarer Spalt
nm 230 240 250 260 270 280
Absorbance
0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6
(mAU)
1 nm
2 nm
4 nm
8 nm
Noise
Programmierbarer Spalt zur Optimierung von
Empfindlichkeit und spektraler Auflösung
112
Basislinienrauschen – Detektor Optische Einheit – Programmierbarer Spalt
Wasser/Acetontril 65:35, Laufzeit 2 min, Noise (Peak to Peak) zwischen 0.5 und 1.5 min
Datenrate 40 Hz, Zelle 10 mm Pfadlänge
113
Signal – System
System Detektor System Detektor
Noise Signal
Signal/Noise
114
Signalhöhe – System
Säule
• Durchmesser
• Partikelgröße
• Flussrate
Systemvolumina
• Totvolumen
• Dispersionsvolumen
115
Signalhöhe
dcI
IA
0
1log
Lambert-Beersches Gesetz
A: Absorption
α: Extinktionskoeffizient
c: Konzentration
d: Pfadlänge
dcA maxmax
Amax
cmax
Signalhöhe – System Säule – Säulendurchmesser
117
Kleinere Säulendurchmesser erhöhen die Empfindlichkeit?
Idee:
Die gleiche Substanzmenge auf einer Säule mit kleinerem
Durchmesser erhöht die Empfindlichkeit.
Hd
VcA
C
ii
2max ~ Gilt nur bei ciVi = konst.
Signalhöhe – System Säule – Säulendurchmesser
118
Wichtig wenn nur eine limitierte Probenmenge zur Verfügung steht.
• DMPK von Mäusen
• Proteomics
Weniger wichtig wenn genügend Probe zur Verfügung steht.
• Qualitätskontrolle
Hd
VcA
C
ii
2max ~
Signalhöhe – System Säule – Säulendurchmesser
119
Gilt nur wenn gleiche Substanzmenge auf Säule mit kleinerem
Innendurchmesse aufgegeben werden kann!
4.6 mm Säule Injektionsvol. 5 μL DMSO OK!
2.1 mm Säule Injektionsvol. 5 μL DMSO OK???
Signalhöhe – System Säule – Partikelgröße
120
Kleinere Partikel erhöhen die Empfindlichkeit!
Hd
VcA
C
ii
2max ~Säulen mit kleineren Partikeln
verringern die Bodenhöhe und führen
zu schmaleren und damit höheren
Peaks .
40 mAU 150 mm, 5 µm
Tolu
ene
120 mAU 50 mm, 1.8 µm
Tolu
ene
Signalhöhe – System Säule – Flussrate
121
Amax
cmax
Theorie:
Flussrate beeinflusst nur die
Peakbreite und damit die
Peakfläche aber nicht die
Peakhöhe!
Signalhöhe – System Säule – Flussrate
122
Hd
VcA
C
ii
2max ~ Trennstufenhöhe steigt
mit steigender Flussrate!
123
Signal – Detektor
System Detektor System Detektor
Noise Signal
Signal/Noise
124
Signalhöhe – Detektor
Datenrate
Pfadlänge
125
Signalhöhe – Detektor Datenrate
min 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4
mAU
0
20
40
60
80
100
Zur zuverlässigen Bestimmung
der Peakfläche braucht man
mindestens 10 Datenpunkte über
den Peak!
Peakbreite 0.2 s
10 Datenpunkte in 0.2 s
= 50 Datenpunkte in 1 s
= 50 Hz Datenrate
126
Signalhöhe – Detektor Datenrate
min 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4
mAU
0
20
40
60
80
100 Datenrate 80 Hz
Datenrate 10 Hz min 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4
mAU
0
10
20
30
40
50
60 52 mAU
115 mAU
127
Signalhöhe – Detektor Datenrate
Wasser/Acetontril 20 % B nach 100 % B in 0.5 min, 100 % B für 1 min
Flussrate 1.8 mL/min, Säule 2.1 x 50 mm 1.8 µm
128
Datenrate als Optimierungsparameter
in der UHPLC
129
Datenrate als Optimierungsparameter
in der UHPLC
Optimale Datenrate
für höchste
Empfindlichkeit 40 Hz
Zusammenfassung
• Empfindlichkeit hängt ab von der Signalhöhe und vom
Rauschen (Noise).
• Sowohl der Detektor als auch die weiteren Module des (U)HPLC
System haben Einfluss sowohl auf die Signalhöhe als auch auf
das Rauschen.
• Säulen mit kleinen Partikeln ergeben höhere Signale und
damit mehr Empfindlichkeit.
• Höhere Flussraten reduzieren die Signalhöhe.
• Die Datenrate des Detektors hat sowohl Einfluss auf das
Rauschen als auch auf die Signalhöhe. Sie ist damit ein
Methodenoptimierungsparameter in der (U)HPLC Analyse.
131
Fragen?