Verfasser: Dr. Kurt Prein DDr. Michael Gehrer Theresia Fürpaß · (BM für soziale Sicherheit und Generation, Feb. 2001). Die Auswahl der verwendeten Anreicherungs-, Universal- und

Resistenzbericht 2011

des Mikrobiologischen Laboratoriums im LKH Leoben

Verfasser:

Dr. Kurt Prein

DDr. Michael Gehrer

Theresia Fürpaß Biomedizinische Analytikerin

Steiermärkische Krankenanstalten

GesmbH

LKH Leoben

Institut für Pathologie

Mikrobiologisches Laboratorium

Vorstand: Prim. Dr. G. Leitner

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Resistenzbericht 2011

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Inhalt

EINLEITUNG ....................................................................................................................................................... 4

ORGANISATION UND RAHMENBEDINGUNGEN: .................................................................................................... 4 RESISTENZTESTUNG IM MIKROBIOLOGISCHEN LABOR DES LKH LEOBEN .......................................................... 4 ZU DIESEM BERICHT ............................................................................................................................................ 7

INFEKTIONSERREGER IM RESPIRATIONSTRAKT (INKLUSIVE NASENNEBENHÖHLEN,

OHREN UND AUGEN) ........................................................................................................................................ 9

ALLGEMEINES ..................................................................................................................................................... 9 STREPTOCOCCUS PYOGENES (STREPTOKOKKEN DER GRUPPE A) ...................................................................... 10 STREPTOKOKKEN DER GRUPPE C UND G ........................................................................................................... 11 STREPTOCOCCUS PNEUMONIAE ......................................................................................................................... 12 HAEMOPHILUS INFLUENZAE .............................................................................................................................. 14 MORAXELLA CATARRHALIS .............................................................................................................................. 15 PSEUDOMONAS AERUGINOSA (OHR) .................................................................................................................. 16 PSEUDOMONAS AERUGINOSA (TIEFER RESPIRATIONSTRAKT) ............................................................................ 16 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 17 KLEBSIELLA SP. (TIEFER RESPIRATIONSTRAKT) ................................................................................................ 19 BESONDERE ERREGER IM RESPIRATIONSTRAKT ................................................................................................ 19 MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS ..................................................................................................................... 20

INFEKTIONSERREGER IM GASTROINTESTINALTRAKT ................................................................... 21

SALMONELLA SP. ............................................................................................................................................... 22 CAMPYLOBACTER SP. ........................................................................................................................................ 22 SHIGELLA SP. ..................................................................................................................................................... 22 YERSINIA SP. ..................................................................................................................................................... 22 EHEC ................................................................................................................................................................ 23 AEROMONAS HYDROPHILA ................................................................................................................................ 23 CLOSTRIDIUM DIFFICILE .................................................................................................................................... 23 HELICOBACTER PYLORI ..................................................................................................................................... 24 ROTAVIRUS: ...................................................................................................................................................... 24

INFEKTIONSERREGER DER HARNWEGE ............................................................................................... 25

ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 25 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 26

Ciprofloxacinresistenz bei E.coli im Harn im Detail: .................................................................................. 26 PROTEUS-MORGANELLA-GRUPPE ..................................................................................................................... 28 KLEBSIELLA SP. ................................................................................................................................................. 29 PSEUDOMONAS AERUGINOSA ............................................................................................................................ 30 ENTEROBACTER-GRUPPE .................................................................................................................................. 30 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 31 STAPHYLOCOCCUS SAPROPHYTICUS .................................................................................................................. 31 ENTEROKOKKEN ................................................................................................................................................ 32

KEIMNACHWEIS AUS PROBEN DES WEIBLICHEN GENITALTRAKTS ........................................... 33

ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 33 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 34 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 34 STREPTOCOCCUS AGALACTIAE (STREPTOKOKKEN DER GRUPPE B) ................................................................... 35

INFEKTIONSERREGER AUS WUNDEN, DRAINS, ABSZESSEN ............................................................ 36

ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 36 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 37 KOAGULASE NEGATIVE STAPHYLOKOKKEN ...................................................................................................... 38 ENTEROKOKKEN ................................................................................................................................................ 38 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 39 PSEUDOMONAS AERUGINOSA ............................................................................................................................ 39 PROTEUS-MORGANELLA GRUPPE ...................................................................................................................... 40


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KLEBSIELLA SP. ................................................................................................................................................. 40

INFEKTIONSERREGER AUS BLUTKULTUREN ....................................................................................... 41

ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 41 KOAGULASE NEGATIVE STAPHYLOKOKKEN ...................................................................................................... 42 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 42 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 43

KEIME AUS LIQUORKULTUREN ................................................................................................................ 44

ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 44

KEIME VON GEFÄßKATHETERSPITZEN ................................................................................................. 45

ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 45 KOAGULASE NEGATIVE STAPHYLOKOKKEN ...................................................................................................... 46

KEIME AUS GELENKSPUNKTATEN ........................................................................................................... 47

STAPHYLOKOKKEN ............................................................................................................................................ 48

KEIME VON INTENSIVSTATIONEN ........................................................................................................... 49

PSEUDOMONAS AERUGINOSA ............................................................................................................................ 49 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 50 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 51 KLEBSIELLA SP. ................................................................................................................................................. 51 ENTEROBACTER GRUPPE ................................................................................................................................... 52 STENOTROPHOMONAS MALTOPHILIA ................................................................................................................. 52

MULTIRESISTENTE ERREGER ................................................................................................................... 53

STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 53 MULTIRESISTENTE ENTEROBAKTERIEN UND BREITSPEKTRUMBETALAKTAMASEN............................................ 56

ESBL (extended spectrum Betalaktamase) ................................................................................................... 56 AmpC ............................................................................................................................................................ 56 Carbapenemresistenz ................................................................................................................................... 57

ANAEROBIER ................................................................................................................................................... 60

PILZE .................................................................................................................................................................. 62

ANHANG ............................................................................................................................................................. 64

INTERESSANTE LINKS: ....................................................................................................................................... 64 LITERATUR ........................................................................................................................................................ 64


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Einleitung

Organisation und Rahmenbedingungen:

Das Mikrobiologische Labor ist Teil des Pathologischen Instituts des LKH Leoben und führt seit

1978 mikrobiologische Untersuchungen für Einsender aus der Obersteiermark durch. Im Jahr 2011

stammen 94% der Proben aus Spitälern (stationär und ambulant) oder sonstigen Organisationen, 6%

von niedergelassenen Ärzten. Die Einsendungen kommen somit aus einem gut definierten

geographischen Bereich und sind in erster Linie repräsentativ für das „Krankenhaus Obersteiermark“.

Im Jahr 2011 wurden 42631 Untersuchungen in 37733 Proben für insgesamt 16326 Patienten

durchgeführt.

Institutsvorstand: Prim. Dr. Gerhard Leitner

MitarbeiterInnen

im Mikrobiolg.

Labor:

Theresia Fürpaß (BMA,Leiterin)

Corina Iordache

(BMA,Stv.)

Gerda Hold

(BMA)

Regina Jeitler

(BMA)

Sandra Mosleitner

(BMA)

Bettina Kernbichler

(BMA)

Irene Pretterhofer

(BMA)

Gerlinde Weberhofer

(BMA)

Amschl Helga

(Laborgehilfin)

Resistenztestung im Mikrobiologischen Labor des LKH Leoben

Die mikrobiologische Diagnostik des Labors orientiert sich an der Richtlinie „Standardisierung und

Qualitätssicherung in der mikrobiologischen Diagnostik“ (BM für soziale Sicherheit und Generation, Feb. 2001). Die

Auswahl der verwendeten Anreicherungs-, Universal- und Selektivmedien für den Keimnachweis

richtet sich nach dem am Entnahmeort zu erwartenden Erregerspektrum. Präzise Angaben über

Erkrankung und Entnahmeort sind dafür unumgängliche Voraussetzungen.

Die Resistenztestung erfolgt seit 1.3.2011 nach den Kriterien von EUCAST (European Committee on

Antimicrobial Susceptibility Testing, siehe www.eucast.org).

Sie wird bei Isolaten durchgeführt, die möglicherweise klinisch relevant sind.

Resistenztestungen werden mit dem Agardiffusionstest und mit VITEK 2 (bioMerieux, erhebt MHK-

Werte) durchgeführt. Bei seltenen und anspruchsvollen Keimen werden die MHK-Werte mittels E-

Test (Bio Merieux) ermittelt.

Abbildung 1: MHK-

Bestimmung mittels E-Test

Abbildung 2:

Agardiffusionstest

Abbildung 3:

Karte für die Bestimmung

von MHK-Werten im Vitek


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Für die diversen Bakterien-oder Pilzgruppen werden in Anlehnung an die Empfehlungen der

Österreichischen Gesellschaft für Chemotherapie, EUCAST und entsprechend den lokalen Usancen

jene Antibiotika routinemäßig getestet, die für die Therapie sinnvoll sind.

Keime Sinnvolle Therapie

Streptokokken ABCG

Penicillin, Aminopenicillin, Cefotaxim, Erythromycin, Clindamycin,

Tetracyclin, Imipenem, Levofloxacin, Moxifloxacin

In Blutkulturen und Liquorkulturen: Zusätzliche Angabe des MHK Wertes

von Ceftriaxon.

Ausnahmen

Streptokokken B in Genitalabstrichen bei Schwangeren: Penicillin,

Aminopenicillin, Cefotaxim, Erythromycin, Clindamycin, Imipenem

Streptokokken B im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam,

Cefuroxim, Cefotaxim, Nitrofurantoin

Streptokokken ACG im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam,

Cefuroxim, Cefotaxim, Trimethoprim+Sulfamethoxazol

Streptokokken

“Viridans”

Penicillin, Aminopenicillin, Cefotaxim, Clindamycin, Imipenem

In Blut und Liquorkulturen: Zusätzliche Angabe des MHK Wertes von

Penicillin und Ceftriaxon

Ausnahme

Im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Cefuroxim, Cefotaxim

Pneumokokken

Penicillin MHK Wert, Aminopenicillin, Cefotaxim, Erythromycin,

Clindamycin, Tetracyclin, Imipenem, Levofloxacin, Moxifloxacin

In Blutkulturen: Zusätzliche Angabe der MHK Werte von Meropenem,

Ceftriaxon und Vancomycin

Ausnahme

In Liquorkulturen: Nur Angabe der MHK Werte von Penicillin,

Meropenem, Ceftriaxon und Vancomycin

Enterokokken

Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Vancomycin, Teicoplanin,

Linezolid, Tigecyclin

In Blut und Liquorkulturen: Zusätzliche Testung des MHK Wertes von

Gentamycin um den Synergieeffekt von Penicillin oder Ampicillin mit

Gentamicin, bzw. Vancomycin mit Gentamicin bewerten zu können

Ausnahme

Im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Teicoplanin,

Vancomycin, Nitrofurantoin (nur bei Enterococcus faecalis)

Staphylokokken

Penicillin, Oxacillin, Augmentin, Gentamicin, Rifampicin, Erythromycin,

Clindamycin, Ciprofloxacin, Fusidinsäure, Linezolid, Tigecyclin

In Blut- und Liqurkulturen: Zusätzliche Angabe des MHK Wertes von

Vancomycin

Ausnahme

Im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Gentamicin,

Trimethoprim, Ciprofloxacin (für Staphylococcus saprophyticus

zusätzliche Angabe von Nitrofurantoin)

Enterobakterien

Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Cefuroxim, Cefotaxim,

Gentamicin, Imipenem, Meropenem, Ciprofloxacin

In Liquorkulturen: Zusätzliche Angabe des MHK Wertes von Ceftriaxon

Ausnahme

Im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Cefuroxim, Cefotaxim,

Gentamicin,Trimethoprim, Trimethoprim+Sulfamethoxazol,


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Ciprofloxacin. Für Escherichia Coli im Harn zusätzlich auch

Nitrofurantoin.

Pseudomonaden

Tazonam, Ceftazidim, Cefepim, Gentamicin, Amikacin, Imipenem,

Meropenem, Ciprofloxacin

Acinetobacter

Gentamicin, Amikacin, Imipenem, Meropenem, Ciprofloxacin, bei

Harnkeimen auch Trimethoprim+Sulfamethoxazol

Stenotrophomonas

maltophilia

Trimethoprim+Sulfamethoxazol, Minocyclin, Levofloxacin

Salmonellen,

Shigellen, Aeromonas

hydrophila

Aminopenicillin, Cefotaxim, Trimethoprim+Sulfamethoxazol, Ciproxin

Campylobacter

Tetracyclin, Ciprofloxacin, Erythromycin

Hämophilus

Aminopenicillin, Augmentin, Cefuroxim, Ceftriaxon, Moxifloxacin,

Tetracyclin

Blut und Liquorkulturen: Zusätzliche Angabe der MHK Werte von

Aminopenicillin, Ceftriaxon und Meropenem

Helicobacter pylori

Testung der MHK Werte von Amoxicillin, Clarithromycin, Metronidazol,

Tetracyclin, Levofloxacin, Rifampicin

Moraxella catarrhalis

Augmentin, Erythromycin, Ciprofloxacin, Doxycyclin

Meningokokken

Testung der MHK Werte von Penicillin, Ceftriaxon, Ciprofloxacin,

Rifampicin

Anaerobier

Angabe der MHK Werte von Augmentin und Metronidazol.

Candida

Amphotericin B, Caspofungin, Fluconazol, Voriconazol

Alle am Begleitschein angegebenen Antibiotika einer vorangegangen, derzeitigen

oder beabsichtigten Antibiotikatherapie werden zusätzlich getestet, sofern sie nicht in

der Routinetestung enthalten sind. Exakte Angaben am Begleitschein sind dafür die

Voraussetzung.

Eine Resistenztestung dauert in der Regel einen Tag, bei langsam wachsenden Keimen (z. B.

Helicobacter pylori) kann die Testung bis zu 2 Wochen in Anspruch nehmen.

Die Resistenz von Anaerobiern wird routinemäßig nur untersucht, wenn die empirische Therapie nicht

zielführend war oder eine Infektion durch eine Reinkultur vorliegt.


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Zu diesem Bericht

Die vorliegende Zusammenstellung ist nach den Jahren 2003, 2004, 2005, 2007 und 2009 der 6.

Bericht zur Resistenzlage des Mikrobiologischen Labors des LKH Leoben und lehnt sich in

Fragestellung und Layout wiederum an die Resistenzberichte des Instituts für Hygiene, Mikrobiologie

und Umweltmedizin der Medizinischen Universität Graz (Feierl, Buzina et al.) an. Dem interessierten

Leser soll damit ein Datenvergleich ermöglicht werden. (siehe auch www.hygiene-graz.at).

Die Daten stammen aus dem Befundprogramm des Mikrobiologischen Laboratoriums Leoben (PAS-

V2, Fa. GRZ Linz) und wurden nach bestem Wissen zusammengestellt. Die Grafiken am Beginn der

Kapitel enthalten alle Isolate und sollen einen groben Überblick über Häufigkeiten der Isolate und der

betroffenen Patienten vermitteln.

Im Gegensatz dazu beziehen sich die Daten in den Resistenztabellen auf Primärisolate, d.h. nur das

erste Isolat eines Patienten (mit der jeweiligen Fragestellung) geht in die Auswertung ein.

Dieser Bericht besteht bewusst vorwiegend aus Tabellen mit der Intention, sich anhand der aktuellen

Resistenzsituation im Vergleich zu den Ergebnissen der Vorjahre selbst ein Bild machen zu können.

Der Aufbau der Ergebnistabelle ist wie folgt:

Antibiotika Getestet %S %I %R %R Vorjahre

Getestete Antibiotika

Anzahl der Isolate

(zumeist Primärisolate)

Ergebnis „sensibel“ in Prozent

Ergebnis „intermediär“

in Prozent

Ergebnis resistent

in Prozent

Resistenzraten in den früheren

Berichten

Die interessierten Leser ersuchen wir um kritische Auseinandersetzung mit den dargestellten

Ergebnissen und Kontaktaufnahme mit dem Labor bei Auftreten von Fragen.

Alle konstruktiven Anregungen sind uns willkommen!

Für alle Mitarbeiter des Mikrobiologischen Laboratoriums

Leoben, im Mai 2012 DDr. Michael Gehrer / Dr. Kurt Prein / Theresia Fürpaß

http://www.hygiene-graz.at/


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Zusammenstellung und für den Inhalt verantwortlich (2012©)

Dr. Kurt Prein

Pathologisches Institut im LKH Graz West

Göstinger Straße 22, A-8020 Graz

Tel: 0316/5466/4672

E-Mail: [email protected]

DDr. Michael Gehrer

Medizinische Universität Graz

Institut für Hygiene, Mikrobiologie und

Umweltmedizin

Universitätsplatz 4, A-8010 Graz

Tel. 0316/380-4375

E-mail: [email protected]

Theresia Fürpaß, Biomedizinische Analytikerin

Pathologisches Institut im LKH Leoben/Eisenerz

Vordernbergerstr. 42, A-8700 Leoben

Tel.: 03842/401-2416

E-Mail: [email protected]

Erreichbarkeit des Mikrobiologischen Labors:

Telefon Mikrob.

Labor: 03842/401-2416

Fax: Mikrob. Labor: 03842/401-2737

Öffnungszeiten:

Probenannahme:

Mo-Fr. 7:00 - 15:00

Mo-Fr. 7:00 – 13:00 (in dringenden Fällen bis 14:30)

Internet: www.lkh-leoben.at > Einrichtungen > Pathologie >

Mikrobiologisches Laboratorium

Intranet: http://intranet.leo.kages.at > Medizinisches > Abteilungen >

Pathologie > Mikrobiologie

Kurzsuche: 1002.1823

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Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Respirationstrakt Resistenzbericht 2011

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Infektionserreger im Respirationstrakt (inklusive Nasennebenhöhlen, Ohren und Augen)

Allgemeines

In diesem Kapitel werden Keime aus dem Respirationstrakt inklusive Nasennebenhöhlen, Ohren und

Augen behandelt. Im Jahr 2011 wurden von diesen Lokalisationen insgesamt 7084 Proben von 3998

Patienten untersucht. Die Keimverteilung bei diesen Entnahmeorten ist immer sehr heterogen, oftmals

werden mehrere Keime in einer Probe nachgewiesen. In der folgenden Tabelle werden daher nur die

häufigsten Erreger dieser Entnahmelokalisation aufgelistet ohne Aussage hinsichtlich ihrer

Pathogenität. Negative Proben (Kein Wachstum) wurden exkludiert.

Abbildung 4: Respiratorische Proben 2011, Verteilung der häufigsten nachgewiesenen Keime (Darstellung aller Keime mit mehr als 50 positiven Isolaten)

Das Grundproblem bei Proben aus dem Respirationstrakt ist die Mischung von Keimen der normalen

Standortflora des Mund-Rachenbereiches mit möglichen pathogenen Erregern.

Bei ungezielter Entnahme (z.B. Sputum) ist die richtige Entnahmetechnik und eine rasche

Verarbeitung (am besten innerhalb von 2 Stunden) von eminenter Bedeutung. Da dies in der

Praxis bei externen Zuweisern kaum durchführbar ist, empfehlen wir alternativ einen Abstrich

vom suspekten Sputumanteil (eitrig, blutig) zu gewinnen.

Am anderen Ende des Spektrums steht eine sehr gezielte Probenentnahme (z.B. BAL), welche

färberisch und quantitativ kulturell bearbeitet wird, inklusive Suche seltener Erreger wie

Legionella, auf Anfrage auch Nocardia und Actinomyces.

Anaerobe Bakterien werden in BAL oder Bronchialsekret nur bei Aspirationspneumonie und auf

Anfrage gesucht.

Die Suche nach Mykobakterien erfordert die Einsendung eines gesonderten Materials mit der

entsprechenden Fragestellung am Begleitschein.


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Streptococcus pyogenes (Streptokokken der Gruppe A)

Streptokokken der Gruppe A wurden im Jahr 2011 in 218 Proben nachgewiesen, in 101 Fällen

wurde ein Antibiogramm erstellt.

Die überwiegende Mehrzahl dieser Keime wurde aus Tonsillen- und Rachenabstrichen isoliert. In

dieser Lokalisation wird nur in Ausnahmefällen ein Antibiogramm erstellt (Penicillinallergie, Therapie

mit Makroliden), da noch keine Fälle von Penicillin- oder Cephalosporinresistenz bekannt sind.

Außerdem sind 10-20% der Normalbevölkerung asymptomatische Träger von Streptokokken der

Gruppe A, und nicht jeder Keimnachweis ist daher mit einer Infektion gleichzusetzen.

Bei Streptokokken der Gruppe A von allen anderen Entnahmeorten wird immer ein Antibiogramm

erstellt.

Die folgende Auswertung bezieht sich auf alle Keimnachweise mit Antibiogramm von allen

Lokalisationen.

Tabelle 1: Streptococcus Gruppe A 2011, alle Materialien, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009

%R

2007

%R

2005

%R

2004

%R

2003

%R

2002

Penicillin 100 100,00

Ampicillin 101 100,00

Cefotaxim 101 100,00

Erythromycin 100 93,00 7,00 9,9 3,5 3,3 7,4 8 11,6

Clindamycin 100 93,00 7,00 8 3,5 3,3 6,6 4 1,8

Tetracyclin 99 92,93 7,07 11,88 11,8 13 25,4 18,1 23,6

Imipenem 99 100,00

Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.

Laut EUCAST gilt das Ergebnis „Penicillin empfindlich“ für alle ß-Lactam-Antibiotika (ausgenommen: Ticarcillin +/- ß-Lactamase-Inhibitor, Mecillinam, Cefixim, Ceftazidim).

Ciprofloxacin und Ofloxacin werden als nicht wirksam eingestuft.


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Streptokokken der Gruppe C und G

Das klinische Spektrum der Streptokokken der Gruppe C und G ist ähnlich dem der Streptococcus

pyogenes-Infektionen (mit Ausnahme von Scharlach und Rheumatischem Fieber).

Tabelle 2: Streptococcus Gruppe C 2011, alle Materialien, alle Zuweiser

Antibiotika getestet %S %I %R %R 2009

%R 2007

%R 2005

%R 2004

%R 2003

%R 2002

Penicillin 45 100

Ampicillin 45 100

Cefotaxim 45 100

Erythromycin 45 80 20 14,9 22 20 8,5 7 13,3

Clindamycin 45 86,67 13,33 17 16,7 13,3 8,5 7,1 6,7

Tetracyclin 45 86,67 13,33 19,6 23,8 6,7 21,3 11,3 12,5

Imipenem 45 100


Tabelle 3: Streptococcus Gruppe G 2011, alle Materialien, alle Zuweiser

Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin 27 100

Ampicillin 29 100

Cefotaxim 29 100

Erythromycin 27 85,19 14,81 14,71 7,7 20,7 14,3 3,8 0

Clindamycin 27 85,19 14,81 14,71 10,3 17,2 8,8 3,8 0

Tetracyclin 27 62,96 37,04 45,45 43,6 37,9 51,4 43,3 41,7

Imipenem 27 100


Die Resistenzproblematik bezüglich Makrolide, Clindamycin und Tetrazyklin ist auch bei anderen ß-

hämolysierenden Streptokokken nachweisbar.

Laut EUCAST gilt das Ergebnis „Penicillin empfindlich“ für alle ß-Lactam-Antibiotika (ausgenommen: Ticarcillin +/- ß-Lactamase-Inhibitor, Mecillinam, Cefixim, Ceftazidim).

Ciprofloxacin und Ofloxacin werden als nicht wirksam eingestuft.


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Streptococcus pneumoniae

109 Isolate von 96 Patienten stammen überwiegend aus dem Respirationstrakt (inklusive

Nasennebenhöhlen, Ohren und Augen), nicht jeder Keimnachweis ist mit einer Infektion assoziiert.

Bei 5 Patienten wurden Pneumokokken in der Blutkultur, bei 1 Patienten in der Liquorkultur

nachgewiesen.

Tabelle 4: Streptococcus pneumoniae 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 89 91.12 8,88 1,01 intermed

10,5 intermed

4 intermed

4,3 Intermed

7,4 Intermed

4,6 Intermed

4

Cefotaxim 91 97,8 2,2

Erythromycin 93 86,02 13,98 11,5 11 8,6 7,5 10,6 8,3

Clindamycin 93 90,32 9,68 7,2 5,1 5,4 3,2 8,6 4,2

Tetracyclin 93 89,25 10,75 7,2 5,1 8,3 5,3 8,3 11,1

Imipenem 92 98,91 1,09


Ein Ansteigen der Resistenzrate bei Pneumokokken in verschiedenen europäischen Ländern ist

beschrieben. Um die Resistenzentwicklung besser verfolgen zu können, wird seit Beginn 2004 im

Mikrobiolog. Labor Leoben bei jedem isolierten Streptococcus pneumoniae die Minimale

Hemmkonzentration (MHK) von Penicillin mit einem E-Test überprüft.

Laut EUCAST werden einige ß-Lactam-Antibiotika als nicht wirksam eingestuft (Cefadroxil,

Cefalexin, Cefazolin, Cefixim, Ceftazidim, Ceftibuten).

Auch Ciprofloxacin und Ofloxacin zeigen keine gute Wirksamkeit, Wildtypen (ohne zusätzlich

erworbene Resistenz) werden automatisch als intermediär interpretiert.

Abbildung 5: MHK-Verteilung bei Pneumokokken


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Im Jahr 2011 wurden in unserem Einsendegut 8 Isolate mit verminderter Empfindlichkeit gegenüber

Penicillin dokumentiert:

Tabelle 5: Pneumokokkenisolate mit verminderter Penicillinempfindlichkeit

Patient minimale Hemmkonzentration zusätzliche Resistenzen

51 jähriger Mann, Nasenabstrich MHK 0,19 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,

Tetracyklin

91 jährige Frau, Trachealsekret MHK 0,5 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,

Tetracyklin

53 jähriger Mann, Unterarm MHK 0,19 µg/ml Erythromycin

17 jährige Frau, Nasenabstrich MHK 1 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,

Tetracyklin

64 jährige Frau, Sputum MHK 0,125 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,

Tetracyklin

71 jähriger Mann, Nasenabstrich MHK 3 µg/ml

Erythromycin, Clindamycin, Tetracyklin,

Trimethoprim/Sulfamethoxazol, Cefotaxim intermediär, Ofloxacin intermediär

57 jähriger Mann, Pharynxabstrich MHK 0,75 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,

Tetracyklin

76 jährige Frau, Sputum MHK 0,094 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,

Tetracyklin, Imipenem

Im Jahr 2011 wurde ein Penicillin-resistenter Stamm mit einer MHK von 3 aus einem

Nasenabstrich bei der klinischen Diagnose Pansinusitis nachgewiesen. Das Isolat stammte aus

dem niedergelassenen Bereich.


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Haemophilus influenzae

Haemophilus influenzae wurde in 168 Proben von 159 Patienten isoliert, der Erreger wird teilweise

der normalen Flora des Respirationstraktes zugeordnet, er kann aber auch Ursache einer Infektion

sein. Die Hauptmasse unserer isolierten Stämme stammt aus dem Respirationstrakt, selten aus anderen

Lokalisationen.

Tabelle 6: Haemophilus influenzae 2011, alle Materialien, allen Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Ampicillin 175 82,86 17,14 5,02 6,9 2,5 2,7 4,6 2,2

Cefuroxim-Axetil 36 100

Cefuroxim-Sodium 139 98,56 1,44

Ceftriaxon 171 100

Tetracyclin 175 98,86 1,14 0,9 0,5 0,8

Trimethoprim/Sulfonamid 73 79,45 20,55 20,31 12,6 7,7 --- --- ---

Ciprofloxacin 34 100

Ofloxacin 45 100

Amoxicillin/Clavulansäure 144 95,83 4,17

Moxifloxacin 141 100 Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.

Die Wirksamkeit von Makroliden gegen H. influenzae wird als nicht ausreichend eingeschätzt

(Wildtyp zeigt intermediäres Verhalten) , und das Ergebnis von Erythromycin gilt auch für

Azithromycin, Clarithromycin und Roxithromycin.

Außerdem werden Cefalosporine wie Cefaclor, Cefalexin, Cefatolin und Ceftazidim als nicht wirksam

eingestuft.


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Moraxella catarrhalis

In 26 Proben von 24 Patienten wurde Moraxella

catarrhalis nachgewiesen. Sie ist Bestandteil der normalen

Rachenflora, kann aber auch zu Infektionen des

Respirationstraktes führen.

Die Resistenztestung wurde mit E-Tests (Bio Merieux)

durchgeführt.

Abbildung 6

Grampräparat von Moraxella

catarrhalis im Sputum bei

Pneumonie

Tabelle 7: Moraxella catarrhalis 20011, alle Materialien, alle Zuweiser

Antibiotika getestet %S %I %R %R2009

Erythromycin 24 75 25 Intermed: 8,3

Ciprofloxacin 24 91,67 8,33 2,8

Doxycyclin 13 92,31 7,69 ---

Amoxicillin/Clavulansäure 22 95,45 4,55 ---


Der stark erhöhte Prozentsatz an Resistenz gegen Erythromycin dürfte sich aus den stark verminderten

Breakpoints von EUCAST im Vergleich zu CLSI ergeben.


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Pseudomonas aeruginosa (Ohr)

Pseudomonas aeruginosa ist ein Wasserkeim und wird häufig in den äußeren Gehörgängen als

Krankheitserreger nachgewiesen. Eine Häufung von Infektionen ist vor allem in den Sommermonaten

zu beobachten (Bäderbesuche). Oft erhalten die Patienten Augmentin zur Behandlung einer Otitis

media. Dieses Antibiotikum ist gegen Pseudomonas aber unwirksam. Eine natürliche Resistenz

besteht weiters auf Penicillin, Aminopenicilline, Ceph 1 und Ceph 2, Trim./Sulf.

Tabelle 8: Pseudomonas aeruginosa 2011, Ohr, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Piperacillin/Tazobactam 73 98,63 1,37 0,7 1,3 0,6

Ceftazidim 105 100 0,7 0,6 1,2

Cefepim 105 97,14 2,86 --- --- --- --- --- ---

Imipenem 105 95,24 4,76 2,9 3,1 1,6 5,5 0,5 1,9

Meropenem 105 94,29 1,9 3,81 2,9 1,9 --- --- ---

Gentamicin 105 91,43 8,57 2,9 1,3 6,4 4,8 4,8 8,3

Amikacin 104 93,27 2,88 3,85 2,9 2,5 2,1 2,4 3,3 2,6

Ciprofloxacin 105 94,29 0,95 4,76 2,2 2,5 3,2 1,2 0,5 2,6

Colistin 39 92,31 7,69 1,7 3,6 --- --- --- ---


Hauptproblem bei der Pseudomonas-Therapie ist die eingeschränkte Verfügbarkeit von oralen

Antibiotika. Die weiterhin niedrige Resistenzrate bei Ciprofloxacin ist daher erfreulich, obwohl doch

eine tendenzielle Resistenzzunahme zu beobachten ist.

Ebenso sollte der Aufwärtstrend der Resistenz gegenüber Carbapenemen nicht übersehen werden.

Pseudomonas aeruginosa (tiefer Respirationstrakt)

Tabelle 9: Pseudomonas aeruginosa 2011, tiefer Respir. Trakt, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Piperacillin/Tazobactam 90 83,33 16,67 8,6 7,2 13,4 11,4 6,2 8

Ceftazidim 99 82,83 2,02 15,15 9,4 5,1 8,3 4,3 4,8 10

Cefepim 99 93,94 6,06 --- --- --- --- --- ---

Imipenem 99 80,81 1,01 18,18 9,5 22,5 19,6 19,7 15,6 13,6

Meropenem 99 83,84 2,02 14,14 11,2 6,5 13,7 --- --- ---

Gentamicin 99 88,89 1,01 10,1 4,4 4,3 15,9 12,7 14,4 9,1

Amikacin 98 89,8 5,1 5,1 5,2 1,4 4,5 6,3 10,3 3,9


Wie bereits oben angeführt, ist ein Ansteigen der Resistenz gegnüber Carbapenemen zu beobachten.

Ein Teil dieser Zunahme ist allerdings auch auf die durch EUCAST veränderte Resistenz-

Interpretation zurückzuführen.

Grundsätzlich ist zu bemerken, dass Pseudomonas aeruginosa bei längerer Therapie gegen alle

Antibiotika resistent werden kann. Eine konsekutive Resistenztestung sollte deshalb bei einer

therapiewürdigen Infektion unbedingt durchgeführt werden.


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Staphylococcus aureus

Tabelle 10: Staphylococcus aureus 2011, Respirationstrakt, Krankenhaus (stat. und amb.)


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin 381 25,72 74,28 66,5 71 80 72,2 75 74,4

Isoxazolylpenicillin 381 95,8 4,2 3 3,9 16 16,6 14,7 13,3

Amoxicillin/Clavulansäure 381 95,8 4,2 3 3,9 16 16,6 14,3 --

Cefazolin 60 95 5 3 3,9 16 16,6 14,7 --

Gentamicin 381 98,43 1,57 6,9 7,1 22 20,1 25,3 18,7

Tetracyclin 216 98,15 1,85 2,5 1,6 0,7 2,8 2,9 --

Fosfomycin 216 99,54 0,46 0,3 1,6 2,5 3,5 3,8 3,9

Fusidinsäure 381 99,48 0,52 0,3 0,5 1,4 0,3 0,8 0,6

Erythromycin 381 84,78 15,22 12,7 13 24 33 26,2 27,5

Clindamycin 381 85,56 0,26 14,17 12,5 13 22 29,6 17,5 15,3

Ciprofloxacin 381 94,23 5,77 4,7 6,3 22 19,7 26,5 --

Rifampicin 381 100 0,7 0,4 0,6

Vancomycin 195 100

Linezolid 359 99,72 0,28

Mupirocin 279 100 2,5 6,5 15,6

Sulf/Trimethoprim 230 99,13 0,87 0,4 0,5 3

Tigecyclin 358 100

Teicoplanin 195 100


Die meisten Staph aureus-Stämme sind Penicillinasebildner und somit resistent gegen nicht-

penicillinase-stabile Penicilline. Eine Wirksamkeit von Amoxicillin/Clavulansäure,

Cephalosporinen und Carbapenemen ist bei diesen Keimen gegeben.

3% der Isolate aus dem Respirationstrakt sind schon im Primärisolat resistent gegen

Isoxazolylpenicillin und sind als methicillinresistente Staph aureus-Stämme (MRSA) zu werten.

Die niedrige MRSA-Rate der letzten Jahre bleibt unverändert bestehen.

Bemerkenswert ist die 100%ige Empfindlichkeit auf Mupirocin (100% sensibel)


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Tabelle 11: Staphylococcus aureus 2011, Respirationstrakt, Niedergelassene


%R 2007

%R 2005

%R 2004

%R 2003

%R 2002

Penicillin 99 29,29 70,71 71,4 67 78 63,8 71,1 73,6

Isoxazolylpenicillin 98 96,94 3,06 1,4 0,7 1 2,3 0,8

Amoxicillin/Clavulansäure 98 96,94 3,06 1,4 0,7 1 2,3

Gentamicin 98 100 1,4 3 5 3,8 4,8 4,8

Tetracyclin 63 96,83 3,17 5 3 4 3,8 6,1 4,3

Fosfomycin 62 100 1,7

Fusidinsäure 98 98,98 1,02

Erythromycin 99 89,9 10,1 12,1 13 14 13,1 10,4 18,4

Clindamycin 99 89,9 1,01 9,09 11,4 12 10 11,5 1,7 2

Ciprofloxacin 98 96,94 3,06 0,7 1,5 5 7 6,8 7,5

Rifampicin 98 100

Vancomycin 48 100


Nicht jeder Nachweis von MRSA bedeutet zwangsläufig eine Infektion. Häufig handelt es sich nur um

eine Kolonisation von Haut, Nasen-Rachen-Raum und anderen Lokalisationen. Diese Keime können

aber die Quelle einer zukünftigen Infektion sein.


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Klebsiella sp. (tiefer Respirationstrakt)

Tabelle 12: Klebsiella sp. 2011, tiefer Respirationstrakt, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Amoxicillin/Clavulansäure 87 87,36 12,64 10,8 10,1 12,4 5 4,1 10,1

Piperacillin/Tazobactam 86 84,88 5,81 9,3 6,9 10,2 6,2 2,9 1,6 7,1

Cefuroxim 71 85,92 14,08 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 87 96,55 1,15 2,3 0,8 3,7 6,3 2,2 2

Ceftazidim 74 94,59 2,7 2,7 0,8 3,7 4,5 2,4 --- ---

Imipenem 87 100

Meropenem 87 100 --- --- ---

Gentamicin 87 98,85 1,15 2,3 0,9 2,7 0,8

Trimethoprim/Sulfonamid 76 92,11 7,89 4,6 3,7 TMP 16,8

TMP 12,3

TMP 9.8

TMP 12,1

Ciprofloxacin 87 83,91 3,45 12,64 3,1 1,9 8 4,3 2,4 1,9


Klebsiella ist ein wesentlicher Pneumonieerreger.

Betalaktamasebildung ist der wichtigste Resistenzmechanismus. Multiresistenzen bestehen bei ESBL

(extended spectrum Betalaktamase-), AmpC-Bildung (Resistenz gegen Amoxicillin plus

Clavulansäure, Cephalosporine I, II und III und Cefoxitin) und Carbapenemasebildung (Resistenz

gegen alle ß-Lactam-Antibiotika, also auch Carbapeneme).

Besondere Erreger im Respirationstrakt

Legionella pneumophila ist ein bedeutsamer Pneumonieerreger. Die wichtigen Serogruppen 1 und 6

können auf sehr einfache Weise mit einem immunchromatographischen Schnelltest aus dem Harn

diagnostiziert werden, die Anzucht der Erreger auf Nährboden erfordert Selektivagar und spezielle

Bebrütungsbedingungen.

Im Jahr 2011 wurden im Mikrobiologischen Labor keine Legionella-Isolate gefunden..

Von 57 serologischen Untersuchungen des Harn auf Legionella-AG reagierten 2 Proben ( von

2 Patienten) positiv. Bei den selben Patienten konnte Legionella aus Materialien vom

Respirationstrakt nicht nachgewiesen werden.


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Mycobacterium tuberculosis

Im Mikrobiologischen Labor

Leoben wird Tuberkulosediagnostik

mit

ZN-Färbung und kultureller

Anzucht von Mykobakterien

durchgeführt.

Positive Kulturen werden zur PCR-

Identifizierung und zur

Resistenztestung an das Institut für

Krankenhaushygiene und

Mikrobiologie in Graz geschickt.

In der Abbildung 7 ist graphisch die

Zahl der Primärisolate/Jahr von

Mycobacterium tuberculosis

complex vom Jahr 1996 bis 2011

dargestellt.

Abbildung 7: Tb-Diagnostik 1996 – 2011

Im Jahr 2011 wurden 929 Proben mit der Fragestellung ZN-Färbung und/oder Tb-Kultur von 354

Patienten untersucht.

Bei 19 Patienten konnten Tuberkuloseerreger (Mycobacterium tuberculosis complex)

nachgewiesen werden.

Tabelle 13: Materialverteilung bei pos. Tb-Befunden 2011

Keim-Name Material Primärisolat

Mycobacterium tuberculosis complex

Lunge und Pleura 13

Lymphknoten 3

Knochen 1

weibl.Genitale 1

GI-Trakt 1

Im Jahr 2011 wurden bei 24 Patienten sogenannte nicht tuberkulöse Mykobakterien

(Mycobacterium avium und avium complex 6x, Mycobacterium fortuitum 12x, Mycobacterium

gordonae 5x, Mycobacterium intracellulare 1x, Mycobacterium kansasii 1x, Mycobacterium

malmoense 1x) isoliert.

Sie stammten aus den Atemwegen.

Tabelle 14: Mycobacterium tuberculosis complex 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Ethambutol 19 100 12,5

Isoniacid 19 100 10 9,5 12,5 4 4,5 4

Pyrazinamid 19 100 4,8 12,5 4,5

Rifampicin 19 100 10 6,3 4

Streptomycin 19 100 9,5 6,3 4


Mikrobiologisches Labortorium Leoben Gastrointestinaltrakt Resistenzbericht 2011

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Infektionserreger im Gastrointestinaltrakt

6974 Stuhlproben (für bakterielle Untersuchung) von 3568 Patienten wurden untersucht.

Abbildung 8: potentiell pathogene bakterielle Stuhlkeime 2011

Die Vorgangsweise hinsichtlich Meldepflicht ist im Steirischen Seuchenplan festgelegt (siehe

http://www.verwaltung.steiermark.at/cms/ziel/2651878/DE/)

Die bedeutsamsten bakteriellen Durchfallserreger sind Salmonella und Campylobacter.

Die folgende Abbildung veranschaulicht die Häufigkeiten aller untersuchten Isolate im Verlauf der

Jahre.

Abbildung 9: Häufigkeit Salmonellen und Campylobacter

http://www.verwaltung.steiermark.at/cms/ziel/2651878/DE/


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Salmonella sp.

2011 wurden 49 Isolate bei 35 Patienten nachgewiesen. Die Anzahl der Primärisolate ist somit

ähnlich wie 2009

Tabelle 15: Salmonella sp. 2011, Stuhl, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Ampicillin 36 55,56 44,44 6,3 11,4 6,4 5,1 2,6 10,1

Cefotaxim 37 100

Trimethoprim/Sulfonamid 37 91,89 8,11 2,9 1,6 1,4

Ciprofloxacin 37 100 2,1


Der massive Anstieg der Resistenz gegenüber Ampicillin ist mit hoher Wahrscheinlichkeit auf die

veränderte MHK-Bewertung gemäß EUCAST zurückzuführen.

Campylobacter sp.

2011 wurden 186 Isolate bei 143 Patienten nachgewiesen. Die Anzahl der Primärisolate ist somit

ähnlich wie 2009.

Tabelle 16: Campylobacter 2011, Stuhl, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Tetracyclin 147 70,75 0,68 28,57 24,8 19 19,5 21,9 23,5 16,5

Ciprofloxacin 146 35,62 0,68 63,7 53,1 53 35,5 37,4 31,7 43,1

Nalidixinsäure 146 38,36 0,68 60,96 56,6 53 38,5 38,1 32,2 46,5

Erythromycin 146 99,32 0,68 0,7 1,7 1,3 0,5


Shigella sp.

2011 wurde keine Shigella gefunden.

Yersinia sp.

4 Isolate von Yersina enterocolitica bei 4

Patienten wurden 2011 im Stuhl nachgewiesen,

eine routinemäßige Resistenztestung wurde nicht

durchgeführt, weil noch keine Resistenzen gegen

die normalerweise wirksamen Antibiotika

aufgetreten sind. Alle Keime werden zum

Yersinia-Referenzzentrum zur Serotypisierung

geschickt.

Abbildung 10:

Yersinia enterocolitica auf Yersinia C.I.N.-

Agar von Bio Merieux


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EHEC

Seit Beginn 2005 werden im Mikrobiologischen Labor Leoben bei Stuhlproben mit der

Fragestellung EHEC, bei Verdacht auf HUS oder TTP, bei blutigen Stuhlproben, bei Durchfall

nach Auslandsaufenthalt Verotoxin-bildende Escherichia coli-Stämme gesucht. Bei einem

positiven Ergebnis wird das Untersuchungsmaterial für die weitere Abklärung an die

Referenzzentrale in Graz gesandt.

Bei der Diagnose HUS oder TTP soll vom behandelnden Arzt unabhängig vom Screening eine

Stuhlprobe und eine Serumprobe für einen Antikörpernachweis direkt an die Referenzzentrale in

Graz gesandt werden.

Von einer antibiotischen Therapie ist wegen der möglichen Toxinfreisetzung und der Entwicklung

eines hämolytisch urämischen Syndroms (HUS) abzuraten.

Im Jahr 2011 wurden in unserem Einsendematerial 2 Verotoxin-bildende E. coli (22-jährige

Frau, 72-jähriger Mann) in 175 Proben von 171 Patienten gefunden.

Aeromonas hydrophila

27 Isolate vom potenentiellen Durchfalleserreger Aeromonas hydrophila wurden bei 20 Patienten

nachgewiesen.

Clostridium difficile

Im Jahr 2011 wurden 1939 Proben von 1532 Patienten untersucht. In 139 Proben von 103 Patienten

wurden toxinbildende Clostridium difficile Stämme gefunden (Toxin A und/oder Toxin B).

Die übliche Therapie bei Clostrium difficile Colitis sind Metronidazol bzw. Vancomycin p. o..

Eine Resistenztestung ist nicht notwendig und wird nur auf ausdrücklichen Wunsch des Einsenders

durchgeführt.

Bedingt durch die Fähigkeit des Erregers zur Sporenbildung, sind gehäufte Clostridium difficile –

Infektionen eine große Herausforderung an die Krankenhaushygiene.


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Helicobacter pylori

Serologisch wurden 18 Stuhlroben von 18

Patienten auf HP-AG untersucht. Alle

Proben waren negativ.

43 Isolate von Helicobacter pylori wurden

aus den Magenbiopsien von 32 Patienten

gezüchtet.

Proben auf Helicobacter pylori erfordern eine

Einsendung in einem speziellen

Transportmedium (Portagerm pylori).

Einsenderichtlinien siehe Homepage des LKH

Leoben (www.lkh-leoben.at > Abteilungen >

Pathologisches Institut > Mikrobiologisches

Labor > Einsenderichtlinien)

Abbildung 11: Helicobacter pylori,

Grampräparat von einer Magenbiopsie

Tabelle 17: Helicobacter pylori 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


Amoxicillin 22 95,45 4,55

Clarithromycin 29 10,34 3,45 86,21 85

Levofloxacin 29 82,76 17,24 ---

Metronidazol 30 40 60 70

Rifampicin 28 89,29 10,71 6,7

Tetracyclin 29 100


Rotavirus:

Bedeutsame virale Durchfallserreger sind Rotaviren. Im Jahr 2011 wurden 1527 Proben von 1388

Patienten serologisch untersucht, bei 59 Proben von 59 Patienten konnte ein positiver Rotavirus-

Nachweis geführt werden.

Im Jahr 2009 wurden 1468 Proben von 1337 Patienten untersucht. 39 Proben von 39 Patienten waren

positiv.

Im Jahr 2008 wurden 1779 Proben von 1624 Patienten serologisch untersucht, dabei waren 111

Proben von 109 Patienten positiv.

Die Hauptmasse der untersuchten Proben stammt von der Kinderabteilung des LKH Leoben. Die

deutliche Verminderung der notwendigen Untersuchungen und der positiven Fälle ist sicherlich als

Erfolg der Rotavirus-Schluckimpung zu interpretierten.

http://www.lkh-leoben.at/

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Harnwege Resistenzbericht 2011

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Infektionserreger der Harnwege

Allgemeines

Im Jahr 2011 wurden aus Materialien des Harntraktes 6443 Befunde von 4130 Patienten erstellt.

Ein Teil der Einsendungen erfolgte als bereits vorbebrütete Objektträgerkultur (Uricult), welche sich

nicht zur Untersuchung auf Gonokokken, Anaerobier, div. Streptokokken und

antibiotikageschädigte Keime eignet. Alternativ gibt es daher die Möglichkeit der Untersuchung von

Nativharn (übersandt in einem Stabilisatorröhrchen oder – wenn die Transportzeit entspechend kurz ist

- in einem sterilen Röhrchen).

Abbildung 12: Harnproben 2011, Verteilung der am häufigsten nachgewiesenen Keime


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Escherichia coli

Escherichia coli ist der häufigste im Harn nachgewiesene Keim. In den folgenden Tabellen werden

Isolate aus dem Krankenhaus (stationär und ambulant) und aus dem niedergelassenen Bereich

(Fachärzte, Praktiker) gegenübergestellt.

Tabelle 18: Escherichia coli 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Ampicillin 1299 54 0,1 46 43,3 39 31,1 30,1 26,5 29,4

Amoxicillin/Clavulansäure 1299 83 1,1 16 9,4 9,5 5,8 4,3 4,7 4

Piperacillin/Tazobactam 1211 92 2,2 5,9 6,5 5,9 0,9 0,3 0,6 0,4

Cefuroxim 1077 89 0,1 11 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 1294 92 0,2 8 6,3 5,9 0,8 0,1 0,1

Gentamicin 1293 95 0,8 4,7 6,3 5,4 4,2 3,5 2,2 1,3

Trimethoprim 1301 71 0,1 29 30,5 27,5 21,8 17,7 16,7 17,3

Ciprofloxacin 1300 74 0,5 26 23,7 22,1 12,7 9,5 6,9 5

Nitrofurantoin 1252 97 0,4 2,3 1 1,1 0,7 0,5 0,7 1,3


Tabelle 19: Escherichia coli 2011 Harn, Niedergelassene Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Ampicillin 292 57,53 42,47 41 35,2 34,7 36,4 26,5 25,7

Amoxicillin/Clavulansre 292 82,19 1,37 16,44 10 6,6 6,3 6,2 1,4 3,8

Piperacillin/Tazobactam 242 91,74 3,31 4,96 9 3,6 0,3 0,6 0,9

Cefuroxim 237 86,08 13,92 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 292 90,41 9,59 8,7 2,7 0,3

Gentamicin 292 94,18 5,82 3,9 4,3 2,4 3,3 1,8 1,2

Trimethoprim 291 69,07 30,93 29,5 28,8 22,9 22,2 20,5 17,7

Ciprofloxacin 292 77,74 1,03 21,23 20 17,3 10,1 12,7 10,1 6,2

Nitrofurantoin 280 97,14 0,71 2,14 1,9 0,9 0,3 0,3 0,4 1,5


Die tendenzielle Verschlechterung der Resistenzsituation ist vor allem auf das zahlenmäßig vermehrte

Auftreten von extended spectrum Betalaktamase bildenden Escherichia coli (ESBL-Coli) im Harn

zurückzuführen. Die typische Empfindlichkeit von ESBL-Coli ist im Kapitel „Multiresistente Erreger

- Enterobakterien und Breitspektrumbetalaktamasen“ dargestellt.

Ciprofloxacinresistenz bei E.coli im Harn im Detail:

Ciprofloxacin gehört zur 1. Wahl beim schweren (komplizierten) Harnwegsinfekt und bei Prostatitis.

Interessant sind die Ciprofloxacin-Resistenzraten verschiedener Einsendergruppen.

Über die Jahre hin kann man in allen Bereichen einen kontinuierlichen Anstieg erkennen.

Der Bereich Krankenhaus ambulant (entspricht in erster Linie der urologischen Ambulanz

Leoben) hat die Entwicklung vorweggenommen (Hinweis für selektioniertes Krankengut mit

häufiger Antibiotikatherapie).

Ciprofloxacin als ungezielte Primärtherapie ist zunehmend problematisch.


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Tabelle 20: Ciprofloxacin-Resistenz 1996 bis 2011 im Detail, Harn

Zuweiser getestet %S %I %R %R %R %R %R %R %R %R %R

2011 2009 2007 2005 2004 2003 2002 1999 1996

Krankenhaus gesamt 1639 73,4 0,43

26,17 23,7 22,1 12,7 9,5 6,9 5 5,5 2

Niedergelassene 292 77,74 1,03 21,23 20 17,3 10,1 12,7 10,1 6,2 2,3 5,3

Krankenhaus ambulant 370 73,24 0,27

26,49 26,2 23,9 15,7 13,8 13,6 7,7 8,7 3,2


Abbildung 13: Ciprofloxacinresistenz von E.coli im Harn

Der Trend einer zunehmenden Resistenzentwicklung von E.coli gegen Ciprofloxacin ist ungebrochen,

vor allem gleicht die Häufigkeit im LKH gesamt der Häufigkeit in der Ambulanz.


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Proteus-Morganella-Gruppe

Tabelle 21: Proteus-Morganella-Gruppe 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Ampicillin 360 44,72 55,28 50,5 56,5 54,7 58 52,3 38,2

Amoxicillin/Clavulansre 363 72,73 0,28 27 19,4 18,8 21,3 20,4 21,1 10,1

Piperacillin/Tazobactam 309 96,76 1,29 1,94 2 1

Cefuroxim 260 86,15 0,38 13,46 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 358 96,65 1,12 2,23 2 1,6 1,7 1,9 0,8 1,1

Gentamicin 357 81,23 0,56 18,21 16 13,7 12,2 14,9 8,9 12,3

Trimethoprim 357 52,66 1,12 46,22 55 47,8 55,9 49,8 43,9 47,8

Ciprofloxacin 358 69,55 3,35 27,09 20,8 21,1 23,8 23,8 15,2 24,6


Tabelle 22: Proteus-Morganella-Gruppe 2011, Harn, Niedergelassene


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Aminopenicilline 41 51,22 48,78 57,9 35 44 67,3 31,1 40,5

Amoxicillin/Clavulansre 41 78,05 2,44 19,51 28,2 10 20 16,3 6,7 21,6

Piperacillin/Tazobactam 28 96,43 3,57 5,3 5,9

Cefuroxim 33 84,85 15,15 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 41 95,12 2,44 2,44 2,6 4

Gentamicin 41 87,8 12,2 15,4 16 6,1 11,1 2,7

Trimethoprim 40 67,5 2,5 30 56,4 55 45,5 44,9 28,9 46

Ciprofloxacin 41 80,49 7,32 12,2 20,5 12,5 12 18,4 13,3 10,8


Detailergebnisse für

Proteus mirabilis

Tabelle 23: Proteus mirabilis 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)


Ampicillin 268 56,34 43,66 33,3

Amoxicillin/Clavulansäure 269 85,13 0,37 14,5 1,5

Piperacillin/Tazobactam 231 98,27 0,87 0,87

Cefuroxim 216 95,83 0,46 3,7 ---

Cefotaxim 268 98,13 1,12 0,75

Gentamicin 268 80,97 0,75 18,28 15,7

Trimethoprim 267 49,81 0,37 49,81 60,5

Ciprofloxacin 268 65,3 4,48 30,22 19,8


Tabelle 24: Proteus mirabilis 2011, Harn, Niedergelassene


Ampicillin 31 67,74 32,26 40,7

Amoxicillin/Clavulansäure 31 90,32 3,23 6,45 10,7

Piperacillin/Tazobactam 21 100 3,6

Cefuroxim 29 96,55 3,45 ---

Cefotaxim 31 100 3,6

Gentamicin 31 87,1 12,9 21,4

Trimethoprim 30 66,67 3,33 30 53,6

Ciprofloxacin 31 77,42 9,68 12,9 17,9



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Klebsiella sp.

Tabelle 25: Klebsiella sp. 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Ampicillin 294 100 100 100 100 100 100 100

Amoxicillin/Clavulansäure 300 82 1 17 7,7 12,1 9,3 11,5 10,8 6,9

Piperacillin/Tazobactam 295 87,8 2,03 10,17 5,2 6,5 5,1 3,9 4,4

Cefuroxim 249 84,34 0,8 14,86

Cefotaxim 298 93,96 1,01 5,03 0,9 2,6 4,2 1,7

Gentamicin 296 94,93 5,07 0,4 0,5 0,6 0,5

Trimethoprim 296 73,31 1,69 25 16,4 17,3 27,6 13,8 8,4 15,9

Ciprofloxacin 295 80,34 1,69 17,97 6,4 7,3 14 5,5 3 8,2


Abbildung 14:

Grampräparat von Klebsiella pneumoniae im Harn

Tabelle 26: Klebsiella sp. 2011, Harn, Niedergelassene


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Ampicillin 57 100 100 100 100 100 100 100

Amoxicillin/Clavulansre 57 89,47 10,53 9,8 9,8 7,7 7,1 11,1 5,7

Piperacillin/Tazobactam 54 92,59 1,85 5,56 9,8 2,4 2,6 2,8 0

Cefuroxim 53 84,91 15,09 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 57 94,74 5,26 9,8 2,4 3,4

Gentamicin 57 94,74 5,26 2,4 2,6 2,8 8,6

Trimethoprim 56 82,14 17,86 24,4 15 28,2 14,3 16,7 25,7

Ciprofloxacin 57 84,21 3,51 12,28 17,1 4,9 15,4 3,6 13,9 11,4

Nitrofurantoin --- 19,1 12,8 10,5 7,1 5,6 5,7


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Pseudomonas aeruginosa

Tabelle 27: Pseudomonas aeruginosa 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)


%R 2007

%R 2005

%R 2004

%R 2003

%R 2002


Ceftazidim 248 92,34 0,4 7,26 4,2 3,5 3,3 4,5 3,1 6

Cefepime 250 94,8 5,2 3,4 1,7 1,9 2,7 3,9

Gentamicin 254 89,76 10,24 6,3 9,5 9,4 18,1 19,2 9,9

Amikacin 248 93,15 4,03 2,82 2,8 2,3 3,1 5,4 6 5,9

Imipenem 249 89,56 0,8 9,64 10 11,1 6,3 8,1 18,2 5,8

Meropenem 252 88,49 2,78 8,73 10,1 7,8 6,4 --- --- ---


Tabelle 28: Pseudomonas aeruginosa 2011, Harn, Niedergelassene


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Piperacillin/Tazobactam 20 90 10 4,4 3,8

Ceftazidim 20 90 10 4,4 12,5

Cefepime 20 95 5

Gentamicin 20 90 10 3,3 23,1 15,8

Amikacin 20 85 10 5 5,3 15 17,7

Imipenem 20 90 10 12,5 5 11,8

Meropenem 20 90 5 5 5 --- --- ---


Enterobacter-Gruppe

Tabelle 29: Enterobacter Gruppe 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Piperacillin/Tazobactam 84 75 1,19 23,81 13 10,8 4,3 5,3 8,8 0

Cefuroxim 34 38,24 2,94 58,82 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 85 69,41 1,18 29,41 23,4 23,5 16,2 20,4 20,9 10,4

Gentamicin 82 97,56 2,44 4 3,4 7,4 3,3 2,6

Trimethoprim 82 89,02 10,98 9,3 15,7 17,9 13,2 15,4 11,7

Ciprofloxacin 82 87,8 1,22 10,98 7,8 14 15,4 12,9 13,2 5,2

Nitrofurantoin 16 56,25 18,75 25 13,2 23,8 15,5 12,9 17,2 13,2


Bei Behandlung mit einem Cephalosporin der 3. Generation besteht die Gefahr der Induktion einer

Resistenz gegen Cephalosporine der 2. und 3. Generation.

Das in vitro Ergebnis „empfindlich“ bei Piperacillin/Tazobactam lässt nicht sicher auf eine

Wirksamkeit der Substanz in vivo schliessen.


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Tabelle 30: Staphylococcus aureus 2011 Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin 86 25,58 74,42 69,8 70,3 82,1 89,5 75 75

Ampicillin 85 27,06 72,94 67,4 70,3 83,8 81,3 71,2 76,4

Piperacillin/Tazobactam 85 85,88 14,12 2,3 10,8 --- --- --- ---

Isoxazolylpenicillin 86 86,05 13,95 2,3 10,8 14,3 18,4 23,2 7,3

Gentamicin 86 86,05 13,95 30,2 27 43,6 44,7 42,4 32,1

Trimethoprim 85 91,76 8,24 9,3 10,8 15,1 8,6 10,7 9,1

Fosfomycin 33 100 2,4 3,7 6,9 4,8

Ciprofloxacin 86 70,93 29,07 25,6 35,1 42,9 42,1 46,6 34,6

Nitrofurantoin 35 100

Vancomycin 15 100

Tetracyclin 11 100 Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.

Ciprofloxacin wird zwar im Harn angereichert, doch Staphylokokken entwickeln während der

Therapie häufig eine Resistenz.

Interessant ist die ausgezeichnete Nitrofurantoin-Wirksamkeit

Staphylococcus saprophyticus

Tabelle 31: Staphylococcus saprophyticus 2011 Harn, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G --- 45,5 18,2 28,6 36,4 16,7

Aminopenicilline 12 33,33 66,67 45,5 18,2 33,3 25 14,3 21,4

Amoxicillin/Clavulansre 12 91,67 8,33

Piperacillin/Tazobactam 11 100

Isoxazolylpenicillin 12 91,67 8,33

Gentamicin 12 100 8,3

Trimethoprim 11 100 4,55 13,3 8,3 7,1 7,1

Ciprofloxacin 12 100

Nitrofurantoin ---


Staphylococcus saprophyticus ist verantwortlich für das Dysurie-Syndrom bei jüngeren Frauen sowie

für einen Teil der unspezifischen Urethritis bei Männern. Staphylococcus saprophyticus ist generell

gut antibiotikaempfindlich. Fosfomycin gilt als unwirksam.


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Enterokokken

Tabelle 32: Enterokokken 2011 Harn, Krankenhaus (stat. und amb.) Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009

%R

2007

%R

2005

%R

2004

%R

2003

%R

2002

Aminopenicilline 763 93,32 6,68 6,4 9,1 4,4 1,9 7 6,9

Amoxicillin/Clavulansre 764 93,32 6,68 6,4 8,9 4,4 1,9 6,7 6,9

Piperacillin/Tazobactam 757 94,19 5,81 6,4 8,9 4,3 1,9 6,6

Trimethoprim 150 4 96 100 100 --- --- --- ---

Nitrofurantoin 749 97,33 2,67 4,1 5,4 1,1 0,8 2,3

Linezolid 513 99,81 0,19 0,2

Vancomycin 760 99,87 0,13

Teicoplanin 760 100

Ciprofloxacin 218 52,29 47,71 36,9 --- --- --- --- ---


In dieser Tabelle sind neben Enterococcus faecalis und faecium auch Enterococcus casselliflavus und

gallinarum enthalten.

Tabelle 33: Enterokokken 2011 Harn, Niedergelassene


%R 2007

%R 2005

%R 2004

%R 2003

%R 2002

Ampicillin 88 98,86 1,14 2,1 3,2 0,8 0,7 0,8

Amoxicillin/Clavulansre 88 98,86 1,14 2,1 3,2 0,8 0,7 0,8

Piperacillin/Tazobactam 88 98,86 1,14 2,1 3,2 0,8 0,7

Trimethoprim 12 8,33 91,67 100 --- --- --- ---

Nitrofurantoin 87 98,85 1,15 3,2 0,7 0,6 2 0

Linezolid 53 100

Vancomycin 88 100

Teicoplanin 88 100


Auf Grund einer umfassenden natürlichen Antibiotika-Resistenz (Cephalosporine, Aminoglykoside in

Monotherapie, Chinolone, Trimethoprim [+Sulfamethoxazol ] und Lincosamide) stehen für die

Therapie von Enterokokkeninfektionen nur wenige Substanzen zur Verfügung.

Einschränkungen in der Resistenztestung nach EUCASTbei Bakterien aus dem Harntrakt:

Mecillinam:

Für Mecillinam gibt es nur für E. coli, Klebsiella spp. und Proteus mirabilis

Interpretationsrichtlinien.

Fosfomycin:

Für Fosfomycin-Trometamol gibt es keine Breakpoints für Agardiffusionstests.Es

ist somit eine MHK-Testung notwendig. Diese wird routinemäßig nicht

durchgeführt, sondern nur auf Anforderung bzw. wenn am Zuweisungsschein die

Gabe von Monuril angegeben ist.

Nitrofurantoin:

Für Nitrofurantoin gibt es nur für E. coli, Staphylokokken und Enterococcus

faecalis Interpretationsrichtlinien.

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben weibliches Genitale Resistenzbericht 2011

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Keimnachweis aus Proben des weiblichen Genitaltrakts

Allgemeines

Im Jahr 2011 wurden von dieser Lokalisation 2804 Proben von 2572 Patientinnen untersucht.

Im Vordergrund stehen dabei 1926 Screening-Untersuchungen auf Streptokokken der Gr. B.

Dabei wird mit einfacher Methodik nur die Frage nach Vorhandensein oder Fehlen dieser Keime

beantwortet. Diese Untersuchungsart ist bei der folgenden Zusammenstellung der Häufigkeiten der

Erreger exkludiert.

Abbildung 15: Weiblicher Genitaltrakts 2011, Verteilung der häufigsten nachgewiesenen Keime

Die Vagina ist schon physiologisch ein Gebiet mit dichter Keimbesiedelung. Mitunter kann es

schwierig sein, zu verstehen, ob es sich bei den nachgewiesenen Keimen um Infektionserreger oder

um physiologische Flora handelt. Für die pathogene Relevanz und damit für eine Resistenztestung

sprechen hohe Keimzahlen möglicher Infektionserreger und ein stark entzündliches Zellbild in der

Gramfärbung.


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Escherichia coli

Tabelle 34: Escherichia coli 2011, weibliches Genitale, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Aminopenicilline 84 69,05 30,95 27,9 32,1 30,2 20 21,8 31,3

Amoxicillin/Clavulansre 85 91,76 8,24 3 4,9 6 5,9 9 8,4

Piperacillin/Tazobactam 69 94,2 4,35 1,45 1,5 1,2 2,4

Cefuroxim 78 96,15 3,85 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 84 98,81 1,19 1,5 1,2

Imipenem 84 100

Meropenem 84 100 --- --- ---

Gentamicin 84 97,62 2,38 1,5 6,2 1,2 1,3 2,4

Amikacin

Ciprofloxacin 84 94,05 5,95 11,1 1,2 2,4 3,8 1,2

Trimethoprim --- --- --- --- --- --- 15,7 10,6 6,4 17,1

Trimethoprim/Sulfa. 71 78,87 21,13 16,4 21



Tabelle 35: Staphylococcus aureus 2011, weibliches Genitale, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 17 17,65 82,35 68 83,87 61,9 68,2 59,6 75,9

Isoxazolylpenicillin 17 100 2,4 2,1

Amoxicillin/Clavulansre 17 100 2,4 2,6

Gentamicin 17 88,24 11,76 8 4,8 6,7

Tetracyclin 4 9,1 5

Fosfomycin 2,4 4,9

Fusidinsäure 17 100 4,5 2,4 6,3

Ciprofloxacin 17 100 4 4,8 5,1

Erythromycin 17 88,24 11,76 24 19,35 9,5 18,2 23,8

Clindamycin 17 88,24 11,76 24 19,35 9,5 13,6 9,5

Rifampicin 17 100



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Streptococcus agalactiae (Streptokokken der Gruppe B)

Tabelle 36: Streptococcus agalactiae 2011, weibliches Genitale, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin 423 100

Ampicillin 423 100

Cefotaxim 423 100

Erythromycin 423 73,29 26,71 29,6 25,6 21,2 19,8 20,5 18

Clindamycin 423 71,87 28,13 27,5 25,3 21,5 19,4 14,9 17,7

Tetracyclin 256 23,44 76,56 77,5 79,4 73,7 78,1 78,9 72,2


Auffällig ist auch die seit Jahren enorm hohe Resistenzrate gegen Tetracyclin im Vergleich zu anderen

Streptokokkenspezies.

Ciprofloxacin und Ofloxacin werden von EUCAST als nicht wirksam eingestuft.

Die hohe Zahl an Isolaten von Streptokokken der Gruppe B ist durch das umfangreiche Screening von

Schwangeren erklärbar. Ein positives Ergebnis wird sofort telefonisch an den Einsender

durchgegeben, wodurch eine gezielte Antibiotikaprophylaxe gegen Streptococcus agalactiae bei der

Geburt vorgenommen werden kann.

Dieses Screening-Programm ist ein effizienter und effektiver Weg, Neugeborenen-Erkrankungen und

Todesfälle zu verhindern, zumal die Untersuchung billig und einfach durchzuführen ist.

Die Positivrate der Screeninguntersuchungen auf Streptokokken der Gruppe B bei Schwangeren ist

ident mit dem Ergebnis aus dem Jahr 2007 und 2009 (Positivrate = 15%)

Abbildung 16: Strept B Screening

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Wunde – Drain - Abszess Resistenzbericht 2011

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Infektionserreger aus Wunden, Drains, Abszessen

Allgemeines

In die folgenden Auswertungen gehen 1715

Proben aus Wunden, Drains, Abszessen und

Entzündungsprozessen von insgesamt 1071

Patienten ein.

Durch ungenaue Angaben am Zuweisungsschein

(z.B.: Material „Unterschenkel“ anstatt „Abstrich

von einer Wunde am Unterschenkel“oder

„Abstrich von einem Abszess am Unterschenkel)

gehen leider sehr viele Proben für die

Auswertung verloren. Die folgende Tabelle bietet

somit nur orientierende Informationen über die

Häufigkeit der Erreger in diesen

Untersuchungsmaterialien

Abbildung 17:

Histologisches Präparat von einer vereiterten,

rupturierten epidermalen Einschlusszyste

Abbildung 18: Wunde_Drain_Abszess 2011, Verteilung der häufigsten nachgewiesenen aerob oder fakultativ aerob wachsenden Keime

Die Häufigkeit von anaerob wachsenden Keimen wird nicht in dieser Grafik dargestellt, diesbezüglich

siehe Kapitel „Anaerobier“.


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Tabelle 37: Staphylococcus aureus 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 210 30 70 68,1 76 76,8 67,7 73,9 71,7

Isoxazolylpenicillin 209 92,82 7,18 0,4 2,4 6,9 5,8 4 4,6

Amoxicillin/Clavulansre 0,4 2,4 6,9 5,8 4,3 3,8

Gentamicin 209 94,26 5,74 6,5 11 13,2 13,9 12,3 10,1

Tobramycin 151 94,04 5,96 4,5 10 --- --- --- ---

Sulf/Trimethoprim 156 96,79 3,21 0,6 1,4 --- --- --- ---

Rifampicin 209 99,52 0,48 0,6 0,5 0,5 0

Erythromycin 209 86,12 0,48 13,4 13,3 12 14,4 15,8 17,3 15,3

Clindamycin 209 86,6 0,48 12,92 12,9 12 11,5 12,4 10,5 6,9

Tetracyclin 166 96,39 0,6 3,01 4,9 3,8 3,2 3,2 4,9 3,5

Tigecyclin 196 100 --- --- --- --- ---

Ciprofloxacin 208 87,98 0,48 11,54 6,1 12 13,5 10,5 14,2 15,2

Levofloxacin 152 87,5 0,66 11,84 2,8 9,5 --- --- --- ---

Moxifloxacin 154 88,31 1,3 10,39 2,2 6,6 --- --- --- ---

Fosfomycin 165 100 0,4 1,4 1,9 2,8 4,3

Fusidinsäure 209 99,04 0,96 0,4 0,3 1,2 0,8 1,4

Vancomycin 153 100

Teicoplanin 151 100 --- --- --- ---

Linezolid 196 100 --- --- --- ---

Mupirocin 153 100 0,5


Auffällig ist ein Wiederanstieg der Chinolonresistenz und somit ein Ende des erfreulichen

Trends der letzten Jahre.


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Koagulase negative Staphylokokken

Als Hauptbestandteil der physiologischen Haut- und Schleimhautflora treten koagulasenegative

Staphylokokken häufig als Kontaminanten im Untersuchungsmaterial auf. Eine Resistenztestung wird

deshalb nur bei Isolaten durchgeführt, denen möglicherweise eine pathogene Bedeutung zukommt.

Die Anzahl der Primärisolate von koagulase-negativen Staphylokokken mit Antibiogramm ist daher

gering. Siehe diesbezüglich auch das Kapitel „Gefäßkatheter“ und „Gelenkspunktate“.

Tabelle 38: koag. neg. Staphylokokken 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 19 5,26 94,74 80,4 79,6 80,2 73,3 79,3 76,2

Isoxazolylpenicillin 19 31,58 68,42 62,5 51,4 54,8 47,4 50 52,6

Amoxicillin/Clavulansre 19 31,58 68,42 61,7 51,1 54,4 47,4 51,5 48

Gentamicin 19 47,37 52,63 28,9 30,3 34,7 27,6 31,8 28,4

Rifampicin 19 100 2,2 5,1 4 2,2 3,3 2,9

Erythromycin 19 15,79 84,21 56,3 50,7 61,6 54 58,5 54,7

Clindamycin 19 31,58 68,42 53,3 48,2 52 46 44,6 38,9

Tetracyclin 11,1 12,9 8,8 6,7 12,9 12,2

Ciprofloxacin 19 36,84 63,16 33,3 32,9 42,7 35,8 40,9 48

Fosfomycin 47,8 40,1 30,6 44,5 37,7 36,8

Fusidinsäure 19 68,42 31,58 27,1 15,7 21,8 16,9 17,1 16,9

Vancomycin 0,7


Der massive Anstieg der Resistenz gegenüber Gentamicin und Erythromycin bzw. Clindamycin ist

mit hoher Wahrscheinlichkeit auf die veränderte MHK-Interpretation gemäß EUCAST

zurückzuführen.

Enterokokken

Tabelle 39: Enterokokken 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Aminopenicilline 144 81,94 18,06 15,9 13,5 10,6 9,6 6,7 9,1

Amoxicillin/Clavulansre 144 81,94 18,06 15,9 13,7 10 9,6 6,7 9,2

Linezolid 143 100 0,6

Vancomycin 146 97,95 2,05 2,4 0,5

Teicoplanin 144 100 0,6 --- ---- ----

Tigecyclin 127 100

Piperacillin/Tazobactam 142 83,1 16,9

Ampicillin/Sulbactam 33 84,85 15,15 Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.

Bei der Auswertung in obiger Tabelle wurde keine Unterscheidung zwischen Enterococcus sp.,

Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium und anderen gemacht.


Seite 39 von 64

In Übereinstimmung mit EUCAST

werden Enterokokken als natürlich

resistent betrachtet gegen:

Cephalosporine

Aminoglykoside in

Monotherapie

Trimethoprim

(und Trim./Sulf. )

Clindamycin

Chinolone

Abbildung 19: Infizierte Bauchwunde

Escherichia coli

Tabelle 40: Escherichia coli 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Aminopenicilline 162 60,49 39,51 43 34,4 29,5 25,8 22,6 29,2

Amoxicillin/Clavulansre 160 76,88 1,88 21,25 14 8,1 10,1 7,5 6,9 6,3

Piperacillin/Tazobactam 147 85,71 1,36 12,93 12 6,2 2,6 1,4 1 1

Cefuroxim 131 87,02 0,76 12,21

Cefotaxim 160 93,13 6,88 9,7 5,2 2,6 0,5 0,5 0,6

Imipenem 160 100 0

Meropenem 160 100 --- --- --- ---

Gentamicin 160 97,5 2,5 4,8 6,7 4,8 3,8 0,5 1,1

Amikacin 0,5 0,6

Tigecyclin 137 99,27 0,73 2,9

Sulf/Trimethoprim 138 81,16 18,84 21 22,1 TMP 16,7

TMP 17,1

TMP 9,8

TMP 14,7

Ciprofloxacin 161 78,26 2,48 19,25 17 17,5 9 3,4 3 1,7



Tabelle 41: Pseudomonas aeruginosa 2011, Wunde_Drain_Abszess, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002


Ceftazidim 60 90 10 4,4 4,1 4,3 1,5 5,5

Cefepime 61 88,52 11,48 4,6 2,3 2

Imipenem 61 83,61 3,28 13,11 12 15,3 12 12,4 14,5 8,6

Meropenem 61 85,25 1,64 13,11 9,9 5,1 9,9

Gentamicin 60 91,67 8,33 5,6 4,1 6,5 9,5 9,4 10,3

Amikacin 59 91,53 3,39 5,08 3,3 5,1 3,3 1,5 4,3 5,2


Der Anteil an Carbapenem-resistenten Isolaten ist ansteigend. Ursache für eine Unempfindlichkeit

können Veränderungen der Permeabilität, Effluxmechanismen oder Bildung von Enzymen, wie einer

Metallo-ß-Lactamase, sein.


Seite 40 von 64

Proteus-Morganella Gruppe

Tabelle 42: Proteus-Morganella-Gruppe 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser


%R 2007

%R 2005

%R 2004

%R 2003

%R 2002

Aminopenicilline 77 46,75 53,25 57,1 56,7 59 57,5 61,8 51,1

Amoxicillin/Clavulansre 78 65,38 34,62 23,8 22 23,8 21,1 24,3 19,8

Piperacillin/Tazobactam 72 100 2,4 1 0

Cefuroxim 62 87,1 12,9 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 76 93,42 5,26 1,32 3,6 1,3 1,2

Ceftazidim 64 95,31 3,13 1,56 3,6 1,3 --- ----

Meropenem 75 100 --- --- --- ---

Gentamicin 75 82,67 17,33 4,9 3,4 10,3 7,5 9,9 5,6

Amikacin 1,1

Sulf/Trimethoprim 64 76,56 23,44 25,6 22 TMP 37,7

TMP 27,4

TMP 30,4

TMP 29,1

Ciprofloxacin 76 80,26 6,58 13,16 6,1 9,8 12,8 12,3 4 4,4


Detailergebnisse

für Proteus

mirabilis

Tabelle 43: Proteus mirabilis 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser


Aminopenicilline 55 63,64 36,36 31,5

Amoxicillin/Clavulansre 55 80 20 5,6

Piperacillin/Tazobactam 53 100

Cefuroxim 52 100 -

Cefotaxim 55 100

Ceftazidim 50 100

Meropenem 55 100

Gentamicin 55 83,64 16,36 5,6

Amikacin

Sulf/Trimethoprim 50 78 22 29,6

Ciprofloxacin 55 81,82 7,27 10,91 7,4


Klebsiella sp.

Tabelle 44: Klebsiella sp. 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Amoxicillin/Clavulansre 38 81,58 18,42 10,7 7,7 12 14,1 4,8 9,5

Piperacillin/Tazobactam 8 7,7 10,8 9,9 3,2 4,2

Cefuroxim 33 78,79 3,03 18,18 - - - - - -

Cefotaxim 38 92,11 7,89 1,5 4,9 5,6 2,7

Ceftazidim 26 92,31 3,85 3,85 4,9 6,2 --- ---

Imipenem 38 100

Meropenem 38 100

Gentamicin 38 97,37 2,63 1,3 1,2

Amikacin 1,2

Trimethoprim --- 12,2 11,3 4,8 9,5

Sulf/Trimethoprim 26 88,46 11,54 6,8 7,6

Ciprofloxacin 38 89,47 10,53 5,3 4,6 3,7 1,4


Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Blut Resistenzbericht 2011

Seite 41 von 64

Infektionserreger aus Blutkulturen

Allgemeines

Im Jahr 2011 wurden 4657 Blutkulturen von 1761 Patienten untersucht. Das Material langt als

beimpfte Bactec-Kulturflasche ein, die in einem Automaten bebrütet und hinsichtlich Wachstum von

Mikroorganismen detektiert wird. Die überwiegende Zahl der Proben zeigt kein Keimwachstum.

Abbildung 20: Blutkulturen 2011, Verteilung der am häufigsten nachgewiesenen Keime (Darstellung aller Keime mit mehr als 6 Isolaten)

Auch unter den seltener nachgewiesenen Keimen finden sich interessante Ergebnisse:

1 Patient mit Brucella melitensis

1 Patient mit Neisseria meningitidis

3 Patienten mit Listeria monozytogenes


Seite 42 von 64


Koagulase negative Staphylokokken können auch als Kontaminationen von der Haut oder von

Gefäßkathetern in Blutkulturen vorkommen. Eine kritische Wertung des Blutkulturergebnisses ist

notwendig. Der mehrfache Nachweis des selben Keimes ist ein wichtiger Hinweis auf eine Infektion.

Tabelle 45: koag. neg. Staphylokokken 2011, Blutkulturen, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 118 7,63 92,37 90,5 91 89,7 88,1 86 91

Isoxazolylpenicillin 120 29,17 70,83 76,1 72 72,5 72,7 71 78,2

Amoxicillin/Clavulansre 120 29,17 70,83 76,6 72 72,5 72,7 68,5

Gentamicin 119 59,66 40,34 30,3 42 38,2 43,1 37,3 48,7

Tetracyclin 60 61,67 15 23,33 19,4 12 19,1 15,5 19,2

Fosfomycin 59 42,37 57,63 58 53 56,1 61,1 54,5 62,8

Fusidinsäure 121 78,51 21,49 33,3 26 30,9 33,6 24 29,1

Ciprofloxacin 120 39,17 1,67 59,17 60,7 60 55,5 54,5 44 68,4

Erythromycin 121 32,23 67,77 76,8 70 75,7 84,5 66 78,2

Clindamycin 121 38,02 0,83 61,16 70 62 65,7 76,6 53,5 66,7

Rifampicin 118 96,61 3,39 5,8 4,9 4,6 4,5 6 5,2

Vancomycin 71 100

Moxifloxacin 60 35 31,67 33,33 35,1 --- --- --- --- ---

Tigecyclin 109 99,08 0,92 --- --- --- --- ---



Tabelle 46: Staphylococcus aureus 2011, Blutkulturen, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 58 41,38 58,62 65,1 78 79,1 77,3 76,2 85,7

Isoxazolylpenicillin 59 98,31 1,69 9,3 11,4 4,8 14,3

Amoxicillin/Clavulansre 59 98,31 1,69 9,3 11,4 3,6 ---

Gentamicin 59 91,53 8,47 4,7 3,4 9,3 15,9 9,5 26,2

Tetrazyklin 26 88,46 11,54 5,1 7 7 7,1 ---

Fosfomycin 26 100 4,7 7 2,4

Fusidinsäure 59 100 1,7

Ciprofloxacin 59 93,22 6,78 7 5,1 11,6 23,3 11,1 54,5

Erythromycin 59 84,75 15,25 4,7 10 18,6 11,4 19 28,6

Clindamycin 59 88,14 11,86 4,7 10 16,3 11,4 4,8 19

Rifampicin 59 100 4,7 2,3

Vancomycin 35 100

Teicoplanin --- --- --- ---

Linezolid 54 100 --- --- --- ---


Der massive Anstieg der Resistenz gegenüber Gentamicin und Erythromycin bzw. Clindamycin ist mit

hoher Wahrscheinlichkeit auf die veränderte MHK-Interpretation gemäß EUCAST zurückzuführen.


Seite 43 von 64

Escherichia coli

Tabelle 47: Escherichia coli 2011, Blutkulturen, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Aminopenicilline 93 46,24 53,76 40,8 42 35,3 34,4 34,4 19,1

Amoxicillin/Clavulansre 94 69,15 2,13 28,72 10 17 5,9 15,6 12,9

Piperacillin/Tazobactam 88 86,36 4,55 9,09 5,7 13 6,3 3,2

Cefuroxim 79 83,54 16,46 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 93 86,02 13,98 5,7 11

Ceftazidim 47 87,23 8,51 4,26 5,7 11 --- ---

Imipenem 93 100

Meropenem 93 100 --- --- --- ---

Gentamicin 93 94,62 5,38 2,9 5,6 3,2

Ciprofloxacin 93 63,44 1,08 35,48 20 24 8,8 15,6 12,9 0

Sulf/Trimethoprim 43 62,79 37,21 27,5 29 TMP 20,6

TMP 12,5

TMP 16,1

TMP 4,8


Bemerkenswert ist die Resistenzzunahme insbesondere bei Aminopenicillin, Amoxicillin/Clavulansre,

Ciprofloxacin und Trimethoprim/Sulf..

.

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Liquor Resistenzbericht 2011

Seite 44 von 64

Keime aus Liquorkulturen

Allgemeines

Im Jahr 2011 wurden 133 Liquorkulturen von 116 Patienten untersucht.

Abbildung 21: Liquorkulturen 2011, Verteilung aller positiven Keimnachweise.

Erreger einer Meningitis (Meningokokken, Pneumokokken, Enterobakterien) sind gut empfindlich

gegen die übliche ungezielte Therapie, ein Resistenzproblem ist nicht auszumachen.

Bei den gezüchteten koag.neg. Staphylokokken ist kritisch zu hinterfragen, ob es sich dabei nicht um

eine Kontamination durch Hautkeime bei der Punktion handelt. Der mehrmalige Nachweis des selben

Keimes spricht jedoch für eine Infektion.

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Gefäßkatheter Resistenzbericht 2011

Seite 45 von 64

Keime von Gefäßkatheterspitzen

Allgemeines

Im Jahr 2011 wurden 654 Gefäßkatheterspitzen von 452 Patienten untersucht.

Abbildung 22: Gefäßkatheterspitzen 2011, Verteilung der am häufigsten nachgewiesenen Keime (Darstellung aller Keime mit mehr als 10 positiven Isolaten)

Von besonderer Bedeutung bei der Besiedelung von

Kathetern ist die Fähigkeit vieler Keime, einen

Biofilm zu entwickeln.

Grundsätzlich ist eine Untersuchung von

Gefäßkatheterspitzen sinnvoll, wenn Verdacht auf

eine mögliche Katheterinfektion besteht. Zur

Klärung dieser Frage ist auch die Abnahme einer

peripheren Blutkultur, eventuell auch einer

Blutkultur durch den noch liegenden Katheter

notwendig.

Für die Operative Intensivstation des LKH Leoben

erfolgt die Keimzahlbestimmung semiquantitativ

nach Maki. Alle anderen Einsender schicken die

Spitzen in einer Nährlösung bzw. in einem

Abstrichröhrchen mit Transportmedium. Eine

Keimzahlbestimmung ist hier nicht möglich.

Abbildung 23:

Katheter-Biofilm Quelle:http://people.ku.edu/~gijis/portfolio/cou

rses/course_1/assign_3/index.html

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Gefäßkatheter Resistenzbericht 2011

Seite 46 von 64


Tabelle 48: koag. neg. Staphylokokken 2011, Gefäßkatheter, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 159 2,52 97,48 96,6 96 96,2 92,2 92 91,2

Isoxazolylpenicillin 160 18,75 81,25 82,9 81 81,1 79,9 74,4 77,7

Amoxicillin/Clavulansre 160 18,75 81,25 83,3 81 81,1 79,9 72

Gentamicin 159 49,06 50,94 55,9 56 54,9 50,3 43,5 52,7

Tetracyclin 133 51,13 27,82 21,05 15,6 21 15 10,2 17,5 18,2

Fosfomycin 131 45,04 54,96 61,7 58 55,7 54,2 48,1 55,2

Fusidinsäure 159 66,67 1,89 31,45 23,8 32 40 35,2 35,7 30,7

Ciprofloxacin 161 24,22 0,62 75,16 74,4 71 68,8 64,8 69,7 77,6

Erythromycin 160 31,25 68,75 76,3 81 82,6 76,5 79,3 77,9

Clindamycin 160 33,13 66,88 70,4 78 77,5 72,6 65,4 57,8

Rifampicin 159 91,19 8,81 4,4 3,6 10,5 9 10 5,7


Linezolid 148 99,32 0,68 --- --- --- --- ---

Moxifloxacin 120 20,83 45 34,17 47,7 --- --- --- --- ---


Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Gelenkspunktate Resistenzbericht 2011

Seite 47 von 64

Keime aus Gelenkspunktaten 553 Gelenkspunktate und –abstriche von 297 Patienten wurden untersucht.

Eine bakterielle Infektion eines Gelenks ist immer ein dramatisches Ereignis. Eitrige Entzündungen

(z.B. mit Staphylococcus aureus) zerstören die Gelenksstruktur und erfordern chirurgisches Handeln

und antibiotische Therapie.

Chronische Infekte mit koag.neg. Staphylokokken (und anderen Hautkeimen) sind wesentlich an der

Problematik der Prothesenlockerung beteiligt.

Abbildung 24: Gelenke 2011, Verteilung der am häufigsten nachgewiesenen Keime

(Darstellung aller Keime mit zumindest 2 positiven Isolaten)

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Gelenkspunktate Resistenzbericht 2011

Seite 48 von 64

Staphylokokken

Tabelle 49: Staphylococcus aureus 2011, Gelenke, alle Zuweiser

Antibiotika getestet %S %I %R %R2009 %R2007

Penicillin G 26 50 50 58,8 61,1

Isoxazolylpenicillin 26 96,15 3,85

Amoxicillin/Clavulansre 26 96,15 3,85

Gentamicin 26 96,15 3,85 11,8 5,6

Fosfomycin 23 100

Fusidinsäure 26 96,15 3,85

Ciprofloxacin 26 96,15 3,85 17,7

Erythromycin 26 92,31 7,69 17,7 11,1

Clindamycin 26 92,31 7,69 17,7 11,1

Rifampicin 26 96,15 3,85

Vancomycin 23 100

Linezolid 26 100 ---

Moxifloxacin 23 95,65 4,35 20 ---

Mupirocin 23 100 ---

Teicoplanin 23 100 ---


Tabelle 50: koag. neg. Staphylokokken 2011, Gelenke, alle Zuweiser


Penicillin G 30 23,33 76,67 71,4 75

Isoxazolylpenicillin 27 62,96 37,04 50 63,6

Amoxicillin/Clavulansre 27 62,96 37,04 50 63,6

Gentamicin 27 74,07 25,93 30 45,5

Fosfomycin 26 57,69 42,31 47,6 27,3

Fusidinsäure 27 74,07 25,93 20 36,4

Ciprofloxacin 27 70,37 29,63 30 36,4

Erythromycin 28 46,43 53,57 61,9 81,8

Clindamycin 28 60,71 39,29 57,1 81,8

Rifampicin 27 85,19 14,81 20 9,1

Vancomycin 24 100

Linezolid 26 100 ---

Moxifloxacin 21 71,43 4,76 23,81 12,5 ---

Teicoplanin 21 95,24 4,76 ---

Tigecyclin 26 100 ---


Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Intensivstation Resistenzbericht 2011

Seite 49 von 64

Keime von Intensivstationen


Pseudomonas aeruginosa kann unter laufender

Antibiotikatherapie gegen jedes Antibiotikum

resistent werden.

Abbildung 25:


Tabelle 51: Pseudomonas aeruginosa 2011, Primärisolate, alle Materialien, Intensiv


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002


Ceftazidim 75 85,33 1,33 13,33 11,8 8,6 7,7 2,6 5,6 12,8

Cefepime 75 92 8 1,3 3,4 8,6 10,5

Imipenem 75 78,67 1,33 20 13 24 21,1 16,5 20,9 13,2

Meropenem 76 81,58 3,95 14,47 11,7 5,4 14,6

Gentamicin 75 94,67 5,33 2,6 3,2 17,6 19,8 10,9 13

Amikacin 1,3 2,2 4,5 6,3 7,3 6,6



Seite 50 von 64


Tabelle 52: Staphylococcus aureus 2011, Primärisolate, alle Materialien, Intensiv


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 86 25,58 74,42 68 77 83,5 80,3 81,7 76,7

Isoxazolylpenicillin 87 96,55 3,45 1,5 1,6 25,3 18,7 14,6 23,3

Amoxicillin/Clavulansre 86 96,51 3,49 1,5 1,6 25,3 18,7 13,3

Gentamicin 87 94,25 5,75 5,9 16 26,6 29,3 28,9 31

Tetrazyklin 51 96,08 3,92 1,5 3,2 1,3 5,4 3,4 4

Fosfomycin 51 100 1,3 8,1 2,7 1,6

Fusidinsäure 86 98,84 1,16 1,6 1,3 1,4

Ciprofloxacin 87 89,66 10,34 16 16 32,9 30,7 31,7 50

Erythromycin 86 84,88 15,12 13 13 28,2 34,7 24,7 36,7

Clindamycin 86 83,72 1,16 15,12 13 15 25,6 30,7 21,9 28,3

Rifampicin 86 98,84 1,16 2,6

Vancomycin 46 100

Levofloxacin 45 88,89 11,11 12 --- --- --- --- ---

Linezolid 81 100 --- --- --- --- ---

Moxifloxacin 48 87,5 2,08 10,42 11 --- --- --- --- ---

Mupirocin 46 100 --- --- --- --- ---

Teicoplanin 45 97,78 2,22 --- --- --- --- ---

Tigecyclin 80 100 --- --- --- --- ---



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Escherichia coli

Tabelle 53: Escherichia coli 2011, alle Materialien, Intensiv


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Aminopenicilline 160 40,63 59,38 47,2 39,5 41,7 42,4 29 43,9

Amoxicillin/Clavulansre 159 61,01 1,89 37,11 12,1 16,4 19,8 15,2 10,9 18,3

Piperacillin/Tazobactam 145 75,86 3,45 20,69 7,9 8,5 1,9 3 3,3 11,1

Cefuroxim 125 77,6 22,4 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 158 86,71 0,63 12,66 4,3 7 3,7 1 1,2

Ceftazidim 109 82,57 9,17 8,26 4,3 7 3,7 1,1 --- ---

Imipenem 114 100

Meropenem 130 100

Gentamicin 158 93,67 6,33 2,9 7 4,7 3,1 1,2

Amikacin

Sulf/Trimethoprim 100 67 33 18,75 20,4 23,6 TMP

13,1 TMP

18,3 TMP

9,8 TMP

Ciprofloxacin 159 67,92 1,26 30,82 18,4 23,6 11,3 8,2 3,3 7,2

Nitrofurantoin 50 92 4 4

Cefoxitin 151 90,07 3,97 5,96 6,1 10,3

Ertapenem 99 100 --- --- --- --- ---

Tigecyclin 81 100 --- --- --- --- ---


Klebsiella sp.

Tabelle 54: Klebsiella sp. 2011, alle Materialien, Intensiv


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Amoxicillin/Clavulansre 57 85,96 14,04 14,8 13,5 19,4 12 12,3 19,4

Piperacillin/Tazobactam 56 85,71 5,36 8,93 12,3 12,3 12,9 10,7 7,6 17,7

Cefuroxim 52 78,85 21,15 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 57 96,49 3,51 6,8 6,5 5,3 6,1

Ceftazidim 44 95,45 2,27 2,27 6,8 6,5 5,6 --- ---

Imipenem 43 100

Meropenem 53 100 --- --- --- ---

Gentamicin 57 98,25 1,75 1,2 1,4 3,2

Amikacin

Sulf/Trimethoprim 44 88,64 11,36 7,4 8,7 14,5 10,8 9,2 18,2

Ciprofloxacin 57 82,46 1,75 15,79 2,5 6,8 3,2 2,7 4,6



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Enterobacter Gruppe

Tabelle 55: Enterobacter-Gruppe 2011, alle Materialien, Intensiv


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Amoxicillin/Clavulansre 52 100 100 100 100 98,4 97,6 98,2


Cefotaxim 55 61,82 7,27 30,91 32,5 39,1 32,7 20,3 33,3

Ceftazidim 45 57,78 11,11 31,11 35 38,5 30,6 19,4 --- ---

Imipenem 44 100 2,2 1,7

Meropenem 51 100 --- --- --- ---

Gentamicin 52 98,08 1,92 1,6

Amikacin 1,8

Sulf/Trimethoprim 42 97,62 2,38 2,7 4,9 8,2 9,4 2,4 10,9

Ciprofloxacin 52 96,15 3,85 4,7 4,1 7,8 5


Bei Enterobacter, Serratia, Citrobacter, Providentia und Morganella morganii ist eine Therapie

mit Cephalosporinen 2 und 3 auch bei vorhandener in vitro-Empfindlichkeit nicht indiziert, weil es

durch die Induktion von Betalaktamasen zur Selektion von resistenten Mutanten kommen

kann.

Das in vitro Ergebnis „empfindlich“ bei Piperacillin/Tazobactam lässt nicht sicher auf eine

Wirksamkeit in vivo schliessen.

Siehe Kapitel Multiresistente Erreger > Enterobakterien und Breitspektrumbetalaktmasen > AmpC

Stenotrophomonas maltophilia

Stenotrophomonas maltophilia ist ein Keim, der in erster Linie auf Intensivstationen in

Atemwegssekreten gefunden wird. Seine Selektion ist häufig die Folge einer Therapie mit

Carbapenemen (natürliche Resistenz auf Carbapeneme!).

Tabelle 56: Stenotrophomonas maltophilia 2011, alle Materialien, Intensiv

Antibiotika getestet %S %I %R %R2009 %R2007 %R2005 %R2004 %R2003

Sulf/Trimethoprim 16 93,75 6,25 4,8


Für die Resistenztestung von Stenotrophomonas maltophilia gibt es 2011 von CLSI nur

Interpretationsrichtlinien für Ticarcillin/Clavulansäure, Ceftazidim, Minocylin, Levofloxacin und

Trimethoprim/Sulfa. EUCAST gibt überhaupt nur für Trimethoprim/Sulfa Richtlinien an. Für weitere

Therapieoptionen gibt es Informationen unter www.eucast.org

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Multiresistente Erreger Resistenzbericht 2011

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Multiresistente Erreger


Staphylococcus aureus wurde im Jahr 2011 aus

1936 Proben von 1214 Patienten isoliert.

Grundsätzlich unterscheidet man zwischen dem

1. „methicillin-sensiblen“ Staphylococcus

aureus (= MSSA nachgewiesen bei

1162 PatientInnen) und dem

2. „methicillin-resistenten (oder auch

multiresistenten) Staphylococcus aureus

(= MRSA nachgewiesen bei 60

PatientInnen)

4,9% aller Primärisolate von Staph. aureus

waren im Jahr 2011 MRSA.

Abbildung 26:

Staphylococcus aureus in einer Blutkultur

Tabelle 57: Staphylococcus aureus (MSSA) 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 1169 30,71 69,29 67,24 71,4 74,3 68,5 71 71,6

Isoxazolylpenicillin 1169 100

Amoxicillin/Clavulansre 1169 100

Gentamicin 1169 93,93 6,07 6,35 7,1 7,7 7,9 9,8 6,7

Tetrazyklin 736 96,74 0,14 3,13 3,71 2,2 2,4 3,9 4,7 4,8

Fosfomycin 757 99,34 0,66 0,09 0,2 0,5 1,1 2,7 1,8

Fusidinsäure 1099 98,91 0,09 1 0,45 0,2 0,7 0,6 0,6 0,7

Ciprofloxacin 1168 94,43 0,09 5,48 4,47 6 8 6,2 10 13,7

Erythromycin 1099 86,99 0,09 12,92 10,7 11,9 11,5 13,5 14,3 13,2

Clindamycin 1099 87,9 0,18 11,92 10,16 11,6 8,5 10,5 5,1 2,6

Rifampicin 1099 99,91 0,09 0,2 0,3 0,1

Vancomycin 663 100


Rund 70% der Stämme sind „Penicillinasebildner“, zeigen daher keine Empfindlichkeit auf nicht-

penicillinasefeste Penicilline (Penicillin, Ampicillin)

Ausgezeichnete Wirkung besteht bei Zugabe eines Betalaktamase-Hemmers (z.B. Clavulansäure

bei Augmentin)

Ausgezeichnete Wirkung ist schon bei Erstgenerations-Cephalosporinen zu erwarten (z.B.

Cefazolin) >> Beachte die Bedeutung in der perioperativen Antibiotikaprophylaxe.

Ausgezeichnete Wirkung ist auch bei anderen Antibiotika, wie Fosfomycin, Fusidinsäure und

Rifampicin, anzunehmen.

Auf Vancomycin sind MSSA zu 100% sensibel. Vancomycin bringt gegenüber anderen

wirksamen Antibiotika aber keinen Vorteil, es soll bei MSSA daher nicht verwendet werden.

Ciprofloxacin wird nur zur Überwachung der Resistenzsituation getestet und nicht routinemäßig

am Befund angegeben.


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Tabelle 58: MRSA 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Penicillin G 61 100 100 100 100 100 100 100

Isoxazolylpenicillin 61 100 100 100 100 100 100

Amoxicillin/Clavulansre 62 100 100 100 100 100 100

Gentamicin 62 95,16 1,61 3,23 10,8 59,4 88,3 86,9 93,6 96,1

Tetrazyklin 40 92,5 2,5 5 5,6 13,3 2,3 6,1 2,4

Fosfomycin 44 100 10,8 18,8 9,9 16,7 15,4 14,6

Fusidinsäure 50 98 2 3,3 5,7 1,2 1,3 2

Ciprofloxacin 62 14,52 85,48 75,7 68,8 95,7 95,2 96 91,1

Levofloxacin 36 22,22 77,78 77,4 60 --- --- --- ---

Moxifloxacin 36 22,22 77,78 69 55 --- --- --- ---

Erythromycin 50 36 64 75 71 86,2 89,3 93,3 87,8

Clindamycin 51 35,29 64,71 72,2 74,2 86,2 88,1 86,7 85,7

Rifampicin 50 100 2,3 2,6

Vancomycin 44 100

Teicoplanin 37 100 --- --- --- ---

Quinupristin/Dalfopristin 19 100 1,6

Linezolid 55 98,18 1,82

Mupirocin 50 100 23,3 7,5 12,3 11,6 6,5

Sulf/Trimethoprim 49 93,88 6,12 3,4 2,6 7,4 4,9

Berücksichtigt wurden nur Primärisolate

Abbildung 27: MRSA-Raten 1996 bis 2011


Seite 55 von 64

Laut EUCAST sind alle MRSA klinisch resistent auf alle Betalaktam-Antibiotika (Penicilline,

Cephalosporine, Carbapeneme, alle Kombinationen mit Betalaktamasehemmern)

Beim hospital associated MRSA (ha-MRSA, überwiegend bei Patienten mit verschiedenen

Risikofaktoren im Krankenhaus und in Pflegeeinrichtungen nachgewiesen) sind häufig

Resistenzen gegen Aminoglykoside, Chinolone, Makrolide und Lincosamide zu verzeichnen.

Sichere Wirksamkeit in unserem Einsendebereich ist bis jetzt bei Vancomycin und Linezolid zu

erwarten.

Hohe Wahrscheinlichkeit der Wirksamkeit ist bei Fusidinsäure, Rifampicin, Folsäurehemmern

und Tetrazyklinen zu erwarten.

Für die Lokaltherapie steht Mupirocin zur Verfügung, ggf. Schleimhaut-desinfektionsmittel.

Wegen der bereits nachgewiesenen Resistenzen ist jedoch eine Resistenztestung vor der

Verabreichung angezeigt.

Eine zunehmende Bedeutung gewinnen die community acquired methicillinresistenten

Staphylococcus aureus-Stämme (cMRSA). Die klinische Besonderheit dieser Stämme liegt in

ihrer Fähigkeit, multiple, rezidivierende, meist tiefe Abszesse zu verursachen. Beschrieben sind

auch schwer bis letal verlaufende nekrotisierende Pneumonien. Betroffen sind meist Patienten

jüngeren Alters, oft mit einer positiven Reiseanamnese , z. B. Aufenthalt in Südostasien oder den

USA. Erfahrungsgemäß finden sich im engen Umfeld der Patienten asymptomatische Träger, die

saniert werden sollten. Im Gegensatz zu ha MRSA fehlen bei cMRSA meist zusätzliche

Mehrfachresistenzen, jedoch tritt häufig eine Resistenz gegen Fusidinsäure auf.

Molekularbiologisch gelingt meist der Nachweis des sogenannten PVL-Gens.

In den letzten Jahren konnten bei landwirtschaftlich tätigen Personen la-MRSA (lifestock

associated-MRSA) nachgewiesen werden, die erstmals in Holland bei Schweinen endeckt wurden.

Neben der Methicillinresistenz weisen diese Stämme meist nur eine Tetracyclinresistenz auf,

selten eine Resistenz gegen Makrolide und Lincosamide.

Das Patientenmanagement bei MRSA sollte sich an Leitlinien orientieren, die von namhaften

Organisationen erstellt wurden. Für den Bereich der Steiermärkischen Krankenanstalten

Ges.m.b.H. gelten die Fachrichtlinien 11 mit dem Titel „Patienten mit MRSA-was tun?“ und 12

„Erläuterungen zum MRSA-Merkblatt 1994 des BM für Gesundheit und Konsumentenschutz“.


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Multiresistente Enterobakterien und Breitspektrumbetalaktamasen

Ein sehr wichtiger Resistenzmechanismus ist die Bildung von Betalaktamasen, im Jahr 2001 waren

bereits 340 verschiedene bekannt.

Es gibt solche mit engem Spektrum (z.B. TEM bei Ampicillinresistenz bei E.coli) und solche mit

breitem Spektrum (Resistenz auch bei Cephalosporinen der 3.Generation > ESBL und AmpC).

ESBL (extended spectrum Betalaktamase)

Kommt vorwiegend bei E.coli und Klebsiella vor, ist aber auch möglich bei Proteus mirabilis,

Salmonella, Shigella, anderen Enterobacteriaceae und Pseudomonas aeruginosa.

ESBL können alleCephalosporine (auch 3b.Gen.) hydrolysieren, alle Penicilline und

Monobaktame. Die therapeutischen Optionen sind stark eingeschränkt, meist sind nur mehr

Carbapeneme wirksam.

Der Resistenzmechanimus ist in der Regel auf Plasmiden lokalisiert und kann auf andere

Bakterienspecies übertragen werden (sog. infektiöse Resistenz).

Häufig enthalten diese

Resistenzplasmide zusätzliche

Resistenzgene, die den Keim

unempfindlich gegen andere

Substanzgruppen (Aminoglykoside,

Trimethoprim/Sulfamethoxazol,

Chinolone) machen.

Als multiresistente Erreger machen

die ESBL-bildenden Bakterien

strenge Hygienemaßnahmen

erforderlich. Insbesonders ist auf die

Stuhlhygiene zu achten, da der Darm

das natürliche Habitat der

Enterobakterien darstellt. Für den

Bereich der Steiermärkischen

Krankenanstalten Ges.m.b.H. gilt die

Fachrichtlinie 27 mit dem Titel

„Hygienemaßnahmen bei

PatientInnen mit ESBL-bildenden

Bakterien“

Abbildung 28:

ESBL-bildender Escherichia coli

AmpC

Dieser Resistenzmechanismus ist viel häufiger und entwicklungsgeschichtlich älter als die

ESBL-Bildung. Er kommt konstitutiv in Enterobacter, Serratia, Citrobacter freundii und

Morganella morganii vor und ist vorwiegend chromosomal codiert.

Das Gen ist normalerweise durch einen Repressor unterdrückt, kann bei Anwesenheit von

Antibiotika (z.B.: Cephalosporine der 2. oder 3. Generation) aber induziert werden. Durch die

Hyperproduktion des Enzyms und vor allem durch Selektion bereits vorhandener stabiler

Mutanten kann sich ein ursprünglich noch empfindlich erscheinender Stamm innerhalb

weniger Tage als hoch resistenter Erreger entpuppen.

Bei Enterobacter, Serratia, Citrobacter freundii und Morganella morganii ist eine

Therapie mit Cephalosporinen 2 und 3a auch bei vorhandener in vitro-Empfindlichkeit

nicht indiziert.


Seite 57 von 64

Carbapenemresistenz

Im Jahr 2009 fanden wir in unserem Untersuchungsgut 3 Enterobakterien, die eine

Resistenz gegen Imipenem, Meropenem oder Ertapenem aufwiesen.

2011 fanden wir bereits 10 Enterobakterien mit Carbapenemresistenzen.

Alle Stämme wiesen zusätzlich Resistenzen gegen ß-Lactamantibiotika, Aminoglykoside,

Trimethoprim, Nitrofurantoin, Chinolone oder Tetrazykline auf.

Die folgende Grafik zeigt die Häufigkeitsverteilung von ESBL-bildenden Enterobakterien im

Einsendegut des Mikrobiologischen Labors im LKH Leoben im Laufe der letzten Jahre. Im

Vordergrund stehen ESBL-bildende E.coli und Klebsiella.

Entsprechend dem generellen Trend steigt die Zahl der ESBL-Isolat jährlich an.

Abbildung 29: ESBL-Primärisolate im Jahresvergleich 2005 – 2011


Seite 58 von 64

Die folgenden Tabellen zeigen den Vergleich der Resistenzlage von allen Primärisolaten von E.coli

und Klebsiella („normale“ E.coli + ESBL-Coli/Klebsiella) im Vergleich zu ESBL-Bildnern (nur

ESBL-Coli/Klebsiella) allein.

Tabelle 59: alle Escherichia coli 2011, alle Materialien, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Aminopenicilline 2336 60,23 0,09 39,68 38,4 37 30,6 29,5 25,4 28,7

Amoxicillin/Clavulansre 2335 87,24 1,28 11,48 5,3 8,9 6,4 5,3 5 5,1

Piperacillin/Tazobactam 2094 95,18 1,67 3,15 1,8 5,1 1 0,3 0,5 0,7

Cefuroxim 1925 95,43 0,1 4,47 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 2324 99,05 0,13 0,82 1,3 4,7 0,9 0,1 0,1 0,1

Ceftazidim 1194 98,41 0,92 0,67 1,3 4,6 0,8 0,2 --- ---

Imipenem 552 99,82 0,18 0,2

Meropenem 1162 99,91 0,09

Gentamicin 2326 95,57 0,21 4,21 4,7 4,8 3,6 2,9 1,6 1,2

Amikacin 0,2

Trimethoprim 1790 75,81 0,06 24,13 26,9 26 20 17 15,3 15,8

Ciprofloxacin 2333 80,8 0,81 18,39 17,1 18 10,9 7,8 6,1 4,2

Nitrofurantoin 1722 97,39 0,58 2,03 0,9 0,8 0,7 0,4 0,6 1,3

Tigecyclin 391 100 1,3 --- --- --- --- ---


Tabelle 60: Escherichia coli-ESBL bildend 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


Aminopenicilline 207 100 100 100

Amoxicillin/Clavulansre 207 14,01 85,99 100 100


Cefuroxim 163 100 --- ---

Cefotaxim 207 1,93 1,93 96,14 100 100

Ceftazidim 154 25,32 21,43 53,25 100 100

Cefepime 88 31,82 18,18 50 98,1 100

Gentamicin 207 83,09 4,83 12,08 15,3 14,2

Trimethoprim 165 21,82 78,18 90,2 83,8

Imipenem 128 100 0,8

Meropenem 202 98,02 1,98

Ertapenem 188 100 1,6

Ciprofloxacin 207 13,53 86,47 87,5 93,4

Fosfomycin 167 89,22 10,78 14,8 23,4

Nitrofurantoin 163 95,71 1,23 3,07 3,7 1,1

Mecillinam 64 48,44 51,56 12,4 Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.

Mit der Einführung der EUCAST-Richtlinien erfolgte eine Umstellung in der Definition von ESBL.

Wurden bisher die Cephalosporine , Aminopenicillin+Clavulansäure und Piperacillin+Tazobactam

automatisch als resistent eingestuft, so gilt nun die Devise „report as found“, allerdings für

Aminopenicillin+Clavulansäure und Piperacillin+Tazobactam nur bei Harnkeimen.

.


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Tabelle 61: alle Klebsiella sp. 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Aminopenicilline 582 0,34 99,66 100 100 100 100 100

Amoxicillin/Clavulansre 587 86,71 0,68 12,61 7,94 9 9,1 8,2 8,9 8,7

Piperacillin/Tazobactam 578 89,45 2,94 7,61 5,29 6,1 4,5 3,4 3 4,9

Cefuroxim 492 86,79 0,41 12,8 --- --- --- --- --- ---

Cefotaxim 586 94,88 1,02 4,1 1,59 2,2 3 2,2 0,9

Ceftazidim 374 92,51 3,21 4,28 1,59 2,2 2,7 2,5 --- ----

Imipenem 254 100 0

Meropenem 418 99,76 0,24

Gentamicin 584 96,92 3,08 2,29 0,4 0,9 0,2 0,6 0,7

Amikacin 0,3

Trimethoprim 341 76,25 1,17 22,58 17,5 16,4 18,8 11,8 8,3 12,9

Ciprofloxacin 583 85,25 1,72 13,04 5,63 4,8 8,3 4 3 4,1

Tetrazyklin 132 76,52 3,79 19,7 10,7 12,9 13,6 --- --- ---

Trimethoprim/Sulfonamid 363 87,33 12,67 6,8 --- --- --- --- ---


Tabelle 62: Klebsiella pneumoniae-ESBL bildend 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


Amoxicillin/Clavulansre 13 23,08 76,92 100 100


Cefotaxim 13 23,08 76,92 100 100

Ceftazidim 11 36,36 18,18 45,45 100 100

Gentamicin 13 53,85 46,15 33,3 10

Trimethoprim 9 22,00 11 67,00 100 66,7

Imipenem 11 90,09 9,01

Meropenem 11 90,09 9,01

Ertapenem 8 87,5 12,5 100

Ciprofloxacin 12 25 75 77,8 30


Mit der Einführung der EUCAST-Richtlinien erfolgte eine Umstellung in der Definition von ESBL.

Wurden bisher die Cephalosporine , Aminopenicillin+Clavulansäure und Piperacillin+Tazobactam

automatisch als resistent eingestuft, so gilt nun die Devise „report as found“, allerdings für

Aminopenicillin+Clavulansäure und Piperacillin+Tazobactam nur bei Harnkeimen.

Der weitaus überwiegende Teil der ESBL-bildenden Enterobakterien wurde aus Harnproben isoliert

( 171 aus Harn, 19 aus dem Respirationstrakt, 8 aus Wunden,….).

Hinweise auf multiresistente Erreger durch das Mikrobiologische Laboratorium Leoben

Zur Verhinderung der Übertragung von multiresistenten Erregern

werden die zuständigen ÄrztInnen sofort telefonisch informiert,

wenn die Resistenztestung zwei oder weniger wirksame Antibiotika

zeigt.

Außerdem wird in den mikrobiologischen Befund die Anmerkung

„Multiresistenter Erreger! Eine Übertragung auf andere

Personen ist zu vermeiden!„ geschrieben

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Anaerobier Resistenzbericht 2011

Seite 60 von 64

Anaerobier Im Jahr 2011 wurden von 451 Proben von 356 Patienten Anaerobier identifiziert.

Abbildung 30: Anaerobier 2011, Orientierende Verteilung der häufigsten Gattungen

Bei entsprechenden Entnahmeorten oder Diagnosen (Abszess, Peritoneum, Aspirationspneumonie,

tiefe Wunden…) werden grundsätzlich aerob und anaerob wachsende Bakterien gesucht. Häufig

finden sich Mischinfektionen mit mehreren Erregern; die Reinzüchtung der einzelnen Stämme kann

mehrere Tage dauern.

Ab 2006 werden routinemäßig nur Keime aus Blutkulturen, von Reinkulturen und Isolaten nach

Versagen der empirischen Therapie identifiziert und gegen Amoxicillin/Clavulansäure und

Metronidazol getestet. Bei einer bereits eingeleiteten Therapie mit Penicillin, Ampicillin,

Clindamycin, Carbapenemen oder Piperacillin/Tazobactam wird das entsprechende Antibiotikum

zusätzlich getestet.

Die Auswertung in der folgenden Tabelle bezieht sich auf alle anaeroben Isolate unabhängig von der

Bakterienfamilie, -gattung oder –art (Spezies).

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Anaerobier Resistenzbericht 2011

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Tabelle 63: alle Anaerobier 2011, alle Materialien, alle Zuweiser


2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003 %R

2002

Amoxicillin/Clavulansre 241 100 1,6 0,9 0,8 1,2 1,4 0,9

Metronidazol 260 69,62 0,38 30 21,4 14,5 14,3 10,5 9,3 14,3

Clindamycin 103 78,64 1,94 19,42 12,5 --- --- --- --- ---

Piperacillin/Tazobactam 55 90,91 9,09

Penicillin 24 95,83 4,17


Rifampicin 11 100 Berücksichtigt wurden alle Isolate.

In der hohen Resistenzrate gegen Metronidazol schlägt sich die natürliche Resistenz der

Propionibakterien nieder.

Nach Exklusion der Propionibakterien 2011 beträgt die Resistenzrate für Metronidazol

11,22%.

In der Folge nun einige Spezies im Detail

Tabelle 64: diverse Anaerobier 2011, alle Materialien, alle Zuweiser

Keim Antibiotika getestet %S %I %R %R2009

Bacteroides fragilis

Amoxicillin/Clavulansre 56 100 4,1

Metronidazol 65 95,38 4,62 2,6

Clostridium perfringens

Metronidazol 7 100

Penicillin 6 100

Clindamycin 6 66,67 16,67 16,67 12,5

Finegoldia magna


Metronidazol 18 94,44 5,56

Prevotella bivia


Metronidazol 19 84,21 5,26 10,53 3,3

Propionibacterium acnes


Clindamycin 50 88 12 2,1

Metronidazol 45 100 100


Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Pilze Resistenzbericht 2011

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Pilze

Vor allem Sprosspilze werden im diagnostischen Routinematerial des Mikrobiologischen Labors

Leoben häufig gezüchtet. Bei nicht invasiven Materialien werden diese am Befund angegeben ohne

weitere Identifizierung oder Resistenztestung.

Bei Wachstum in bakteriologischen Kulturen von invasiv gewonnenen Materialien werden die Pilze

immer identifiziert, eine Resistenztestung wird bei Blut- und Liquorproben routinemäßig

durchgeführt, bei allen anderen Materialien nur auf Anforderung.

Gezielte mykologische Untersuchungen (Pilzkulturen) werden im Mikrobiologischen Laboratorium

des LKH Leoben nur auf Anforderung durchgeführt. Der Nährbodensatz ist auf den Nachweis von

Sproßpilzen ausgelegt, bei Materialien von Augen, Ohren und Kieferhöhlen werden auch

Schimmelpilze gesucht. Bei BAL, Lungenbiopsie und Kieferhöhlenausschabungen wird routinemäßig

auf Sproß- und Schimmelpilze untersucht.

Dermatophytendiagnostik wird im Mikrobiologischen Laboratorium des LKH Leoben nicht betrieben.

Die Resistenztestung wird mit E-Tests der Fa. Bio Merieux sowohl bei Spross- als auch bei

Schimmelpilzen durchgeführt. Routinemäßig werden Amphotericin B, Fluconazol, Voriconazol und

Caspofungin getestet. Bei diesen sowie bei Itraconazol und 5-Fluorocytosin gibt es

Interpretationsrichtlinien. Bei den anderen Antimykotika werden im Befund die MHK-Werte ohne

Interpretation angegeben.

Abbildung 31: Verteilung aller Sprosspilzbefunde 2011

Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Pilze Resistenzbericht 2011

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Abbildung 32: Verteilung aller Schimmelpilzbefunde 2011

Tabelle 65: diverse Pilze 2011, alle Materialien, alle Zuweiser

Keim Antibiotika getestet %S %I %R %R

2009 %R

2007 %R

2005 %R

2004 %R

2003

Candida albicans

Amphotericin B 31 100

Caspofungin 30 100 --- ---

Fluconazole 31 93,55 6,45 3 5,6 8,3

Voriconazol 30 96,67 3,33 4,2 --- ---

Candida glabrata

Amphotericin B 14 100

Caspofungin 16 100

Fluconazole 13 46,15 23,08 30,77 40 16,7 29,4

Voriconazol 16 56,25 12,5 31,25


Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Anhang Resistenzbericht 2011

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Anhang

Interessante Links:

Homepage von EARSS: http://www.rivm.nl/earss/

Update des Seuchenplans: http://www.verwaltung.steiermark.at/cms/ziel/2651878/DE/

Homepage des Instituts für Hygiene der Med. Uni Graz: http://www.hygiene-graz.at

(siehe unter Mikrobiologie > Bakteriologie > News > Resistenzbericht 2008,2009, 2010,

2011)

Österreichische Gesellschaft für antimikrobielle Chemotherapie: http://www.oegach.at

European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing: http://www.eucast.org

European Centre for Disease Prevention and Control: http://www.ecdc.europa.eu

Literatur

1. Antibiotika, Oskar Janata 2010, PM-Verlag

2. Antibiotikatherapie, 2. Auflage, Uni-Klinik Graz

3. Resistenzberichte des Hygieneinstituts der Universität Graz (www.hygiene-graz.at)

4. Antibiotikatherapie, Simon-Stille, 11. Auflage, 2005

5. Mikrobiologie im klinischen Alltag, Theuretzbacher, 2004, 2. Auflage

6. EUCAST, Clinical breakpointtables v 1.3 (until Dec. 31, 2011)

7. Prävention und Kontrolle von Clostridium difficile, AGES, 1. Auflage, September 2007

http://www.rivm.nl/earss/

http://www.verwaltung.steiermark.at/cms/ziel/2651878/DE/

http://www.hygiene-graz.at/

http://www.oegach.at/

http://www.oegach.at/

http://www.eucast.org/

http://www.ecdc.europa.eu/

Documents

Verfasser: Dr. Kurt Prein DDr. Michael Gehrer Theresia Fürpaß · (BM für soziale Sicherheit und Generation, Feb. 2001). Die Auswahl der verwendeten Anreicherungs-, Universal- und