Modulhandbuch - bimo.uni-kiel.de · Biochemie und Molekularbiologie, Master, 1-Fach, Version 2016. Stand: 01. September 2018 Christian-Albrechts-Universität zu Kiel Seite 1 von 170

Biochemie und Molekularbiologie, Master, 1-Fach, Version 2016

Stand: 01. September 2018 Christian-Albrechts-Universität zu Kiel Seite 1 von 170

Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät Medizinische Fakultät

Modulhandbuch

für Biochemie und Molekularbiologie Master, 1-Fach

Version 2016



Inhaltsverzeichnis

Seite

BCMB Biochemie und Molekularbiologie 4

Lehrplan Übersicht 4

Modul Lehrveranstaltung

Pflichtmodule

bcmb201 BCM 1 „Die Zelle“ 6

bcmb202 BCM 2 „Organismen“ 8

bcmb203 BCM 3 „Funktion“ 10

bcmb206 Strukturbiologie 12

bcmb221 Wahlpflichtbereich FS-1 (fachspezifische Vertiefung) 15



bcmb207 Wahlpflichtbereich AF (allgemeiner Fächerbereich der CAU) 21

bcmb222 Wahlpflichtbereich FS-C (Chemie-spezifische Vertiefung) 23

bcmb210 Masterarbeit [85|025|-|H|2016|1050] 25

Wahlmodule im Fach Biochemie und Molekularbiologie (sortiert nach anbietender Einrichtung)

Institut für Humangenetik (Medizinische Fakultät)

bcmb251 Klinische Genetik / Humangenetik 27

bcmb252 Tumorgenetik 29

Pharmazeutisches Institut (Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät)

bcmb254 Klinische Chemie / Medizinische Chemie für Biochemiker und Chemiker 31

bcmb269 Pharmazeutische Instrumentelle Analytik für Biochemiker und Chemiker 33

bcmb270 Evaluation von Wirkstofftargets für Biochemiker und Chemiker 35

Biochemisches Institut (Medizinische Fakultät)

bcmb255 Regulation von Zellpolarität 37

bcmb256 Stammzelldifferenzierung 39

bcmb257 Genregulation in Stammzellen 41

bcmb258 Molekulare Biologie der Zytokine 43

bcmb259 Molekularbiologie von Zytokinen 45

bcmb261 Molecular Modelling 47

bcmb262 Strukturbestimmung von Proteinen, CD-, NMR-Spektroskopie 49

bcmb275 Molekulare Zellbiologie der Lysosomen 51

bcmb276 Molekulare Funktionsanalyse von Proteasen und proteolytischen Prozessen 53

bcmb283 Proteinchemie: Insektenzellen zur Expression komplexer Proteine 55

bcmb287 Signaltransduction: Von den molekularen Grundlagen zur spezifischen Therapie 57



Medizinische Klinik IV (Medizinische Fakultät)

bcmb260 Untersuchungen zur Suppression der T-Zellaktivierung 59

bcmb281 Funktionelle Charakterisierung von programmierter Nekrose (PN) 61

Institut für Immunologie (Medizinische Fakultät)

bcmb263 Immunologie 63

Forschungszentrum Borstel

med-imm001 Zelluläre und Molekulare Grundlagen der Immunologie 65

bcmb265 Molekulare Grundlagen der Pathogen-Wirt-Interaktion 68

Institut für Pflanzenbau und Pflanzenzüchtung (Agrar- und Ernährungswissenschaftliche Fakultät)

bcmb266 Molekulare Analyse des eukaryotischen Genoms 71

Institut für Infektionsmedizin (Medizinische Fakultät)

med-mib001 Molekulare Infektionsbiologie: Molekulare Virologie 73

Institut für experimentelle Tumorforschung im Krebszentrum Nord – CCC (Medizinische Fakultät)

med-oncol01 Molekulare Onkologie I 75

med-oncol02 Molekulare Onkologie II 77

Institut für Toxikologie und Pharmakologie für Naturwissenschaftler (Medizinische Fakultät)

med-tox001 Toxikologie für Naturwissenschaftler 79

Zentrum für Biochemie und Molekularbiologie (BiMo, Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät)

bcmb271 Indikator Proteine 82

bcmb272 Proteinkristallographie 84

bcmb273 Molekulare Biologie der Vitamine 86

bcmb277 Membrantransport 88

bcmb278 Proteinchemie: Proteinexpression und Reinigung 90

bcmb280 Cellular Redox Processes, ROS and Antioxidants 92

bcmb282 Industriepraktikum / Berufspraktikum 94

bcmb285 Schüler*innen-Labor 96

bcmb286 Forschungsmodul 99

bcmb289 Redoxproteine in der Regulation von Proliferation und Migration 101

bcmb290 Zell- und Molekularbiologische Analyse von extrazellulären Disulfid Switch 103



Klinik für Neurochirurgie (Medizinische Fakultät)

bcmb274 Neurobiochemie 105

bcmb288 Grundlagen der Neurowissenschaften: Anatomie, Physiologie, Biochemie mit Bezug zu Klinik und aktueller Forschung

107

Klinik für Dermatologie

bcmb291 Antimikrobielle Proteine: Expressionsanalyse und rekombinante Herstellung 109

Institut für Experimentelle Medizin

bcmb292 Proteinanalytik und Proteomics 111

Wahlmodule aus dem Fachbereich Chemie

für eine detaillierte Beschreibung dieser Module bitte Modulübersicht der Chemie heranziehen

chem1001 Anorganische Reaktionsmechanismen 113

chem1002 Fortgeschrittene Methoden der Strukturaufklärung in der Organischen Chemie 115

chem1020 Spektroskopie-Praktikum für Studierende der Biochemie 116

chem1004A Vom Molekül zum Material 120

chem1004B Moderne Synthesemethoden der Organischen Chemie 123

chem1004C Molekülstruktur und Moleküldynamik 126

chem1004D Theoretische Chemie / Computerchemie 129

chem2004A Kolloidchemie und Nanomaterialien 132

chem2004B Supramolekulare Chemie 134

chem-2004D Biologische Chemie 137

Wahlmodule aus dem Fachbereich Biologie

für eine detaillierte Beschreibung dieser Module bitte Modulübersicht der Biologie heranziehen

biol215 Immunobiology of Invertebrates 140

biol217 Biochemie der Mikroorganismen I 142

biol218 Molekulargenetik und Zellbiologie von Pflanzen und Pilzen 144

biol220 Molekulare Biotechnologie mit Pflanzen und Pilzen 146

biol222 Molecular Fundamentals of Ethology and Neurobiology 148

biol226 Biostatistics 150

biol232 Biologie des menschlichen Alterns 152

biol233 Evolution and Development (EvoDevo) 155

biol235 Developmental Biology of Marine Invertebrates 157

biol236 Vielfalt der Biotechnologie 159

biol237 Molecular microbiology: (Transposon)mutagenesis Approaches and Biotechnology 161

biol239 Biochemie der Mikroorganismen II 163

biol246 Molekulare Hormonsteuerung von Entwicklungsprozessen in Pflanzen 166

biol256 Simple Animal Models for Human Disease 168



Titel Kennzeichen/Code

Biochemie und Molekularbiologie 85|025|-|H|2016|1200

Veranstalter

Zentrum für Biochemie und Molekularbiologie

Fakultät


Prüfungsamt

Biologie

Leistungspunkte 120

Bewertung Benotet

Verwendung Pflicht/Wahl Fachsemester

Master, 1-Fach, Biochemie und Molekularbiologie, (Version 2016) Pflicht -

Lehrplan

Sem. 5 LP 10 LP 15 LP 20 LP 25 LP 30 LP

4. Masterarbeit 30 LP (BCMB210)

3. BCM 3 5 LP

(BCMB203)

Wahlpflichtbereich FS-3 10 LP

(BCMB224)

Wahlpflichtbereich AF 15 LP

(BCMB207) 2. BCM 2

5 LP (BCMB202)

Strukturbiologie 10 LP

(BCMB206)


(BCMB223)

alternative Fächer; Wahl aus der ganzen CAU

1. BCM 1

5 LP (BCMB201)


(BCMB221)

Wahlpflichtbereich FS-C 15 LP

(BCMB222)



MNF-bcmb201 BCM 1 "Die Zelle"

Semesterlage / Dauer 1. Semester Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Paul Saftig Telefon 0431-880-4286, Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Axel Scheidig

Verwendung Master, 1-Fach, Biochemie und Molekularbiologie (Version 2016) Pflicht

Veranstalter Zentrum für Biochemie und Molekularbiologie

Fakultät Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät

Prüfungsamt Biologie

Lehrveranstaltungen Bezeichnung der Lehrveranstaltung / Lehrende(r) SWS Status

Vorlesung BCM 1 "Die Zelle" 2 Pflicht

Seminar BCM 1 "Die Zelle" 2 Pflicht

Zahl der Plätze Vorlesung: 20 Seminar: 20

Lehrende(r) Dozenten der Biologie, Medizin und Agrarwissenschaften

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Findet nur im Wintersemester statt

Arbeitsaufwand pro Leistungspunkt

30 Stunden

Arbeitsaufwand insgesamt

150 Stunden

Präsenzstudium 21,6 Stunden

Selbststudium 128,4 Stunden

Lehrsprache Deutsch, Englisch

Voraussetzungen B.Sc. oder Äquivalentleistung in Biochemie, Biologie oder Chemie. Englischkenntnisse sind erforderlich.

Erwünschte Vorkenntnisse

Lernziele Die Studierenden haben ein vertieftes Verständnis über verschiedene Organisationsformen von Zellen in verschiedenen Spezies. Die Studierenden haben vertiefte Kenntnisse von Stoffwechselvorgängen und intrazellulären Prozessen im Allgemeinen. Die Studierenden können anhand einer vorgegebenen, aktuellen Primärliteratur eine Präsentation zu dieser Publikation ausarbeiten, einen Kurzvortrag (in Deutsch oder Englisch) zu dem Themengebiet der Publikation halten und die Aussagen der Publikation kritisch bewerten. Die Studierenden haben einen Überblick über die aktuellen Forschungsprojekte der Arbeitsgruppen des Biochemischen Institutes.



Lehrinhalte • Organisation des Genoms • DNA Transkription und Translation • Transkriptionelle Regulation & Chromatin • Protein Faltung • Protein Sortierung • Endozytose • Proteolytische Regulation • Cytoskelett • Membran-Transport • Extrazelluläre Matrix, Mucine • Rezeptor & Ligand • Autophagie • Signaltransduktion • Metabolische Steuerung

Prüfung(en)

Prüfungstitel Prüfungsform Bewertung Pflicht/Wahl Gewicht

Seminarleistung: BCM I "Die Zelle" Seminarleistung Benotet Pflicht 100

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en)

Modulnote geht mit LP-Zahl gewichtet in die Endnote ein.

Literaturangaben • Primärliteratur u.a. aus Science, Nature und Cell • Alberts et al. „Molekularbiologie der Zelle“ , Wiley-VCH • Löffler, Petrides, Heinrich „Biochemie & Pathobiochemie“, 8. Auflage Springer

Verlag

weitere Angaben



MNF-bcmb202 BCM 2 "Organismen"


Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Stefan Rose-John Telefon 0431-880-3336, Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Stefan Rose-John, Prof. Dr. Axel Scheidig






Vorlesung BCM 2 "Organismen" 2 Pflicht

Seminar BCM 2 "Organismen" 2 Pflicht


Lehrende(r) Dozenten der Fachbereiche Biologie, Chemie, Medizin, Pharmazie und Agrarwissenschaften.

Leistungspunkte 5

Bewertung unbenotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Findet nur im Sommersemester statt


30 Stunden

Arbeitsaufwand insgesamt 150 Stunden




Voraussetzungen Bachelor of Science oder Äquivalentleistung in Biochemie, Biologie und Chemie. Englischkenntnissse sind erforderlich.

Erwünschte Vorkenntnisse k.A.



Lernziele Die Studierenden haben vertiefte Kenntnisse zu den Mechanismen der Signaltransduktion Die Studierenden haben ein vertieftes Verständnis über die biochemischen und molekularen Steuerungsprozesse des Organismus. Die Studierenden haben vertiefte Kenntnisse über die aktuellen Modellorganismen für die zellbiologische und biochemische Untersuchung von Vorgängen in menschlichen Zellen. Die Studierenden können anhand einer vorgegebenen, aktuellen Primärliteratur eine Präsentation zu dieser Publikation ausarbeiten, einen Kurzvortrag (in Deutsch oder Englisch) zu dem Themengebiet der Publikation halten und die Aussagen der Publikation kritisch bewerten.

Lehrinhalte • Hormonelle und neuronale Steuerung • Moderne molekulare Medizin • Entwicklungsbiologie • Immunologie • Ernährung • Modellorganismen • Neurobiochemie

Prüfung(en)


Seminarleistung: BCM 2 "Organismen" Seminarleistung bestanden Pflicht -


Literaturangaben • Primärliteratur u. a. aus Science, Nature, EMBO J., J Biol. Chem., Immunity und Cell

• Alberts et al. „Molecular Biology of the Cell“, 4. Auflage (2002). Garland Science • Lodish et al. „Molecular Cell Biology“, 5. Auflage (2004), Freeman • Löffler, Petrides, Heinrich „Biochemie und Pathobiochemie“, 8. Auflage (2007),

Springer Verlag • Müller-Esterl „Biochemie“, 1. Auflage (2004), Spectrum Verlag • Lehninger, Nelson, Cox „Biochemistry“, 4. Auflage (2005), Freeman • Berg, Tymoczko, Stryer „Biochemistry“, 6. Auflage (2007), Freeman • Devlin „Textbook of Biochemistry“, 6. Auflage (2006), Wiley-Liss

weitere Angaben k.A.



MNF-bcmb203 BCM 3 "Funktion"


Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Christoph Becker-Pauly Telefon 0431-880-7118, Email: [email protected]







Vorlesung BCM 3 "Funktion" 2 Pflicht

Seminar BCM 3 "Funktion" 2 Pflicht


Lehrende(r) Dozenten der Fachbereiche Biologie, Chemie, Medizin, Pharmazie und Agrarwissenschaften.

Leistungspunkte 5

Bewertung unbenotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden




Voraussetzungen B. Sc. or equivalent in biochemistry, biology or chemistry. English language proficiency required.


k.A.



Lernziele Die Studierenden haben vertiefte Kenntnisse über die aktuellen Fragestellungen der Biochemie und Molekularbiologie des Menschen. Die Studierenden sind auf dem aktuellsten Stand moderner Untersuchungsmethoden und Techniken zur Charakterisierung biochemischer Prozesse auf der Ebene von Molekülen, einzelnen Zellen oder des gesamten Organismus. Die Studierenden können nach spezifischer Fachliteratur recherchieren und deren Qualität und Relevanz in der Aussage kritisch bewerten. Die Studierenden können ihre eigenständig durchgeführte Literaturrecherche in einem Kurzvortrag (vorzugsweise in Englisch) auf hohem Niveau präsentieren.

Lehrinhalte • Angeborene Immunität • Antigen-Prozessierung und Präsentation • Idiotypisches Netzwerk • Interaktion komplementärer Proteine • Apoptose • Zellteilung, Zellzyklus • Photosynthese (Photosysteme, Hydrogenase, N-Assimilation, Chloro-Mito-

Kopplung, ROS): • Differenzierung • Energiestoffwechsel

Prüfung(en)


Seminarleistung: BCM 3 "Funktion" Seminarleistung bestanden Pflicht -


Literaturangaben • Das Vorlesungsskript und die aktuelle Primärliteratur (Artikel in Fachzeitschriften) wird als PDF Datei zur Verfügung gestellt.

• G. Löffler, P.E. Petrides, P.C. Heinrich „Biochemie und Pathobiochemie“, 8. Auflage (2006), Springer Verlag

• W. Müller-Esterl „Biochemie“, 1. Auflage (2004), Elesevier • C. Janeway, P. Travers, M. Walport, M. Shlomchik, “Immunobiology”, 5.

Auflage (2001), Churchill Livingstone




MNF-bcmb206 Strukturbiologie


Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Axel Scheidig, Zentrum für Biochemie und Molekularbiologie Telefon 0431-880-4286, Email: [email protected]







Vorlesung Strukturbiologie / Structural Biology 3 Pflicht

Übung Strukturbiologie / Structural Biology 2 Pflicht

Seminar Strukturbiologie / Structural Biology 1 Pflicht

Praktikum Strukturbiologie / Structural Biology 5 Pflicht

Zahl der Plätze Vorlesung: 20; Übung: 20; Seminar: 20; Praktikum: 20

Lehrende(r) Prof. Dr. Axel Scheidig, Prof. Dr. Joachim Grötzinger, Prof. Dr. Frank Sönnichsen, , wissenschaftliche Mitarbeiter

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden

Präsenzstudium 80 Stunden

Selbststudium 220 Stunden


Voraussetzungen English language proficiency required.


Grundlagen der Biochemie und Molekularbiologie

mailto:[email protected]



Lernziele Nach Abschluss dieses Moduls hat der/die Student/in: • einen tieferen Einblick in die Prinzipien, Möglichkeiten und Limitationen der

verschiedenen Methoden in der Strukturbiologie bekommen; • das Wissen, welche Art und Menge an Material für Proteinkristallograhpie, NMR

und cryo-EM benötigt wird; • die Fähigkeit, Kristallisationsexperimente zu planen, durchzuführen und

auszuwerten. Nach Abschluss dieses Moduls kennt der/die Student/in: • die Grundlagen experimenteller Strukturbestimmung von biologisch aktiven

Makromolekülen; • die Vor- und Nachteile der verschiedenen Diffraktionsmethoden zur Aufklärung

von Biomakromolekülen; • Datenbanken, um nach bekannten Strukturen von Biomolekülen zu suchen.

Nach Abschluss dieses Moduls kann der/die Student/in: • Programme und Datenbanken zur Evaluation der Qualität und zur Interpretation

von Biomakromolekülstrukturen für eigene Forschungsthemen nutzen; • die Qualität einer Strukturpublikation beurteilen; • graphische Darstellungen von Strukturen erstellen.

Lehrinhalte Röntgenkristallographie Mit der Röntgenkristallographie können die Strukturen von biologischen Makro-molekülen bis auf Atomebene aufgelöst (bestimmt) werden. Im Seminar werden die Grundlagen dieser Methoden mit besonderem Schwerpunkt auf der Biokristallographie behandelt. Einzelne Themen sind: Kristallisation, Kristalle, Symmetrie und Raumgruppen, Röntgenquellen und -detektoren, Datensammlung, Streuung von Röntgenstrahlen und Neutronen, Phasenproblem, Phasenbestimmung und Phasenverfeinerung, Strukturbestimmung kleiner Verbindungen mit Hilfe der Patterson-Funktion und direkter Methoden, Strukturbestimmung von Biomolekülen mit Molekularem Ersatz, Schweratomersatz und anomaler Dispersion, Modellbau und Visualisierung von Strukturen, Struktur-verfeinerung, Analyse, Bewertung und Interpretation, graphische Darstellung von Strukturen, Vergleich mit Daten von NMR und cryo-EM Praktikum (Teil Röntgenkristallographie): Der/Die Student/in wird lernen Protein in E.coli zu exprimieren und aufzureinigen; die verschiedenen Techniken der Proteinkristallisation werden angewandt; Daten-sammlung und Phasierung mit anormalen Daten; eigenständige Interpretation von Elektronendichte, Modellverfeinerung und Abschätzung der (Daten)Qualität wird vermittelt. Falls möglich wird eine Exkursion an das Synchrotron DESY in Hamburg Teil des Kurses sein. NMR In der Vorlesung werden die theoretischen Grundlagen der mehrdimensionalen NMR Spektroskopie (Produktoperatorformalismus, Kohärenztransfer, zwei- und höher dimensionale Spektroskopie, homonukleare Korrelationsspektroskopie und sequentielle Zuordnung, Tripelresonanzexperimente und Strukturinformation aus NMR Daten (NOE, skalare Kopplungen, Relaxation)) behandelt. In den Übungen wird der Vorlesungsstoff an exemplarischen Aufgaben vertieft. Im Praktikum werden mehrdimensionale NMR Experimente zur strukturellen Charakterisierung durchgeführt und ausgewertet. EM Es werden die zwei generellen Aufnahmetechniken TEM und SEM vorgestellt. Schwerpunkt liegt auf Methoden zur Abbildung molekularer Strukturen.

Voraussetzungen für die Zulassung zu der/den Prüfung(en) (Vorleistungen)



Regelmäßige und aktive Teilnahme an Seminar, Übung und Praktikum

Prüfung(en)


Kolloquium: Strukturbiologie Kolloquium Benotet Pflicht 50

Praktikumsprotokoll: Strukturbiologie Praktikumsprotokoll Benotet Pflicht 50

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich, mit gleicher Gewichtung aus dem Kolloquium und dem Protokoll zusammen.

Am Ende des Sommersemesters oder zu Beginn des folgenden Wintersemesters findet ein Kolloquium für alle TeilnehmerInnen des Moduls statt. Literaturangaben • Scripte zu den einzelnen Versuchsteilen werden in Olat zu Beginn der

Lehrveranstaltung zur Verfügung gestellt. • G. Rhodes "Crystallography Made Crystal Clear. A Guide for Users of

Macromolecular Models", (2006) 3. Auflage, Academic Press;. • D. Blow "Outline of Crystallography for Biologists" ,(2002) Oxford University Press

weitere Angaben



MNF-bcmb221 Wahlpflichtbereich FS-1 (fachspezifisch Vertiefung)

Semesterlage / Dauer ab 1. Semester Dauer: 1-2 Semester



Verwendung Master, 1-Fach, Biochemie und Molekularbiologie (Version 2016) Wahlpflicht





abhängig vom gewählten Modul Wahlpflicht

Zahl der Plätze abhängig vom gewählten Modul

Lehrende(r) abhängig vom gewählten Modul

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit abhängig vom gewählten Modul


30 Stunden


300 Stunden

Präsenzstudium abhängig vom gewählten Modul

Selbststudium abhängig vom gewählten Modul


Voraussetzungen Bachelor of Science


abhängig vom gewählten Modul

Lernziele Die Studierenden sollen ihre Kenntnisse und Kompetenz in den Teilgebieten der Biologie, Chemie und Biochemie/Molekularbiologie entsprechend dem von ihnen gewähltem Profil vertiefen. Schlüsselqualifikationen: • Vertiefung wissenschaftlicher Kompetenz in einem Teilgebiet, • Selbstkompetenz.




Lehrinhalte MNF-bcmb221 steht als Platzhalter für frei wählbare Module zur Vertiefung der Kenntnisse in den Teilgebieten der Biologie, Chemie und Biochemie/Molekularbiologie im Gesamtumfang von 10 LP; Es gilt das Verbot der Doppelbelegung (das gewählte Modul darf nicht zweimal angerechnet werden und darf nicht mit einem Pflichtmodul des Studiengangs identisch sein).

Prüfung(en) abhängig vom gewählten Modul

Literaturangaben abhängig vom gewählten Modul

weitere Angaben Die Studierenden wählen in freier Wahl aus dem Wahlbereich des Studiengangs laut Anhang der FPO im Umfang von 10 LP. Die gewählten Module müssen mit Note ausgewiesen werden!















Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer ein bis zwei Semester

Angebotshäufigkeit Wintersemester und/oder Sommersemester


30 Stunden


450 Stunden





























Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden

















MNF-bcmb207 Wahlpflichtbereich AF (allgemeiner Fächerbereich der CAU)










Wahlpflicht

Zahl der Plätze k.A.

Lehrende(r) Prof. Dr. Axel Scheidig

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer ein bis zwei Semester

Angebotshäufigkeit Wintersemester und/oder Sommersemester


30 Stunden


450 Stunden






k.A.

Lernziele Erweiterung der persönlichen Kompetenz bzw. Vertiefung. Profilbildung

Lehrinhalte Der Studierende kann aus dem Fächerangebot der CAU frei wählen, so diese allgemein offen sind. Er kann auch aus den fachspezifischen Modulen des Studiengangs 'Biochemie und Molekularbiologie' wählen


Literaturangaben k.A.




weitere Angaben Die Studierenden wählen in freier Wahl aus dem Angebot der CAU eine beliebige, auch fachfremde Lehrveranstaltung im Umfang von bis zu 15 LP. Dabei sollte auf einen berufsspezifischen Zusammenhang mit der Biochemie geachtet werden. Hier können generell alle Module der CAU gewählt werden, die für fachfremde Studierende offen (und geeignet) sind und benotet werden. Die gewählten Module müssen mit Note ausgewiesen werden!



MNF-bcmb222 Wahlpflichtbereich FS-C (Chemie-spezifische Vertiefung)

Semesterlage / Dauer 1./2. Semester Dauer: 1-2 Semester








Wahlpflicht

Zahl der Plätze je nach gewähltem Modul

Lehrende(r)

Lehrende(r)

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


450 Stunden







Lernziele Die Studierenden sollen ihre Kenntnisse und Kompetenz in dem Teilgebiet der Chemie entsprechend dem von ihnen gewähltem Profil vertiefen. Schlüsselqualifikationen: • Vertiefung wissenschaftlicher Kompetenz in einem Teilgebiet, • Selbstkompetenz.




Lehrinhalte MNF-bcmb222 steht als Platzhalter für drei wählbare Module zur Vertiefung der Kenntnisse im Teilgebiet der Chemie im Gesamtumfang von 15 LP; Es gilt das Verbot der Doppelbelegung (das gewählte Modul darf nicht zweimal angerechnet werden und darf nicht mit einem Pflichtmodul des Studiengangs identisch sein).

Schlüsselqualifikationen abhängig vom gewählten Modul



weitere Angaben Das Modul MNF-bcmb222 steht als Platzhalter für wählbare Module im Umfang von insgesamt 15 LP aus dem Programm des BSc-Studiengangs bzw. MSc-Studiengangs Chemie.

Wählbare Module aus dem MSc-Programm sind:

• chem1001 Anorganische Reaktionsmechanismen

• chem1002 Fortgeschrittene Methoden der Strukturaufklärung in der Organischen Chemie

• chem1020 Spektroskopiepraktikum für Studierende der Biochemie

Wählbare Module aus dem BSc-Programm sind:

• chem0010 Stereochemie und Naturstoffe für Studierende der Biochemie

• chem0202 Mathematik für Chemiker 2 (bzw. entsprechendes Exportmodul mit 5 LP)

• chem0407 Einführung in die Computerchemie (bzw. entsprechendes Exportmodul mit 5 LP)

Die gewählten Module müssen mit Note ausgewiesen werden!



Modultitel Modulcode

Masterarbeit 85|025|-|H|2016|1050 bcmb210

Modulverantwortliche(r)

Prof. Dr. Axel Scheidig

Veranstalter


Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 30

Bewertung Benotet

Dauer 6 Monate

Angebotshäufigkeit Findet in jedem Semester statt



Präsenzstudium

Selbststudium

Lehrsprache Deutsch

Zugangsvoraussetzung laut Prüfungsordnung

Zur Masterarbeit kann zugelassen werden, wer durch Modulprüfungen in Pflicht- und Wahlpflichtbereichen mindestens 80 Leistungspunkte erworben hat.

Prüfung(en)


Masterarbeit Schriftlich Benotet Pflicht 80

Vortrag zur Masterarbeit Vortrag Benotet Pflicht 20



Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich aus der schriftlichen Masterarbeit und dem Vortrag zur Masterarbeit zusammen.

Kurzzusammenfassung

Selbstständige Laborarbeit (Projekt) unter Anleitung eines Fachwissenschaftlers.

Lehrinhalte

Abhängig von der gewählten Fachrichtung findet eine Bearbeitung eines wissenschaftlichen Teilproblems statt.

Lernziele

Die Studierenden sind in der Lage, selbstständig ein wissenschaftliches Problem zu bearbeiten, schriftlich abzufassen und im wissenschaftlichen Kontext einzuordnen.

Literatur


Master, 1-Fach, Biochemie und Molekularbiologie, (Version 2016)

Pflicht -



MNF-bcmb251-02a Klinische Genetik / Humangenetik

Semesterlage / Dauer 2. Semester

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Priv.-Doz. Dr. med. Almuth Caliebe

Telefon: 0431-500-30601, Email: [email protected]

Studiengang / -gänge Master of Science Biochemie und Molekularbiologie Wahlpflicht

Beratung zum Modul

Lehrveranstaltungen Bezeichnung der Lehrveranstaltung SWS Status

Vorlesung Klinische Genetik / Humangenetik 2 Pflicht

Seminar Klinische Genetik / Humangenetik 1 Pflicht

Laborpraktikum Klinische Genetik / Humangenetik 17 Pflicht

Zahl der Plätze Vorlesung: 2

Seminar: 2

Praktikum: 2

Lehrende(r) Priv.-Doz. Dr. med. Almuth Caliebe, Dr. med. Marc-Phillip Hitz

Dr. rer. nat. Inga Vater

Lehrsprache Deutsch

Arbeitsaufwand 300 h

Leistungspunkte 10


Erwünschte Vorkenntnisse k. A.

Lernziele Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die Anwendung verschie-dener zytogenetischer, molekularzytogenetischer und molekulargenetischer Methoden in der klinisch-genetischen Diagnostik incl. klassischer und moderner Methoden zum Nachweis konstitutioneller Chromosomenveränderungen. Die Studierenden sollen außerdem Anwendungsbereiche der genetischen Diagnostik in der klinischen Genetik, der pränatalen Diagnostik und der somatischen Genetik verstehen und interpretieren können. Dazu gehört auch die formalgenetische Einordnung von Befunden.

Im Praktikum werden u.a. wesentliche Arbeitsmethoden der humangenetischen Diagnostik und Forschung (z.B. verschiedene PCR-Techniken, Sequenzierung, Labeling-Techniken, GeneScan-Analysen, Chromosomenanalyse, Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH), Methylierungsanalysen, Array-CGH, Stammbaum-analyse) erlernt und z. T. selbständig, z. T. unter Anleitung durchgeführt.



Lehrinhalte • Durchführung konventioneller molekulargenetischer Methoden zum Nachweis monogen erblicher Erkrankungen beim Menschen wie z.B. DNA-Extraktion, PCR, Gelelektrophorese, Southern Blot, PCR

• Interphase- und Metaphase- FISH (Painting-, Vielfarben-, und locusspezifische FISH) einschließlich Generierung von nicht-radioaktiv markierten DNA-Sonden, Präparation von BAC/PAC/Cosmid-Klonen - Nachweis epigenetischer Störungen z.B. bei Imprinting-Syndromen mittels methylierungsspezifischer PCR und Bisulfit-sequenzierung

• GeneScan-Analysen zum Nachweis von uniparentalen Disomien und zur indirekten Gendiagnostik

• Durchführung von Mikroarray-Analysen, z.B. Array-CGH

• Spezielle Probleme der molekulargenetischen Pränataldiagnostik wie z. B.

• Trinukleotidblock-Expansionserkrankungen

• Chromosomenanalyse zum Nachweis konstitutioneller Chromosomenveränderungen an verschiedenen Zellsystemen einschließlich Zellkultivierung

• Interpretation von Ergebnissen molekulargenetischer Untersuchungen im Hinblick auf deren praktische Bedeutung für den Patienten und dessen Familie

• Einführung in verschiedene genetische Datenbanken (z. B. NCBI); Durchsuchen von Datenbanken; Sequenz-Alignments und –Vergleiche

• In Abhängigkeit vom Thema der problemorientierten Laborarbeit zusätzlich: RNA-Präparation; PCR-RFLP; Klonierung von PCR-Fragmenten; Southern-Blot-Analysen und weitere Chip-Technologien wie Me-DIP, CHIP on CHIP, SNP-CHIP

Schlüsselqualifikationen k. A.

Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Klinische Genetik Seminarvortrag Benotet Pflicht 50

Mündliche Prüfung: Humangenetik Seminarvortrag Benotet Pflicht 50

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich aus der Seminarleistung und dem Protokoll zusammen (zusammengesetzte Prüfung)


Literaturangaben • Murken,Grimm & Holinski „Humangenetik“ (2006), Thieme-Verlag

• Tariverdian & Buselmaier „Humangenetik“ (2006), Springer-Verlag

• Strachan & Read „Molekulare Humangenetik“ (2004), Spektrum-Verlag

weitere Angaben Vermittelte Kompetenzen:

Grundlagen humangenetischer Fachkompetenz sowie zytogenetischer, molekular-zytogenetischer und molekulargenetischer Methodenkompetenz, grundlegende Kenntnisse der im Internet zugänglichen Datenbanken und ihre Nutzung in der Humangenetik, Kenntnis über pathogene Mutationen und deren Diagnostik.



MNF-bcmb252-02a Tumorgenetik


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Priv.-Doz. Dr. rer. nat. Eva Maria Murga Penas



Beratung zum Modul Priv.-Doz. Dr. rer. nat. Eva Maria Murga Penas


Vorlesung Humangenetik 2 Pflicht

Seminar Neuere Arbeiten in der Tumorgenetik 1 Pflicht

Laborpraktikum Tumorgenetik 17 Pflicht


Seminar: 2

Praktikum: 2

Lehrende(r) Priv.-Doz. Dr. rer. nat. Eva Maria Murga Penas

Dr. rer. nat. Inga Vater

Lehrsprache Deutsch


Leistungspunkte 10


Erwünschte Vorkenntnisse k. A.

Lernziele Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in klassische zytogenetische sowie moderne molekularzytogenetische und molekulargenetische Methoden in der Tumorgenetik. Ihnen wird aktuelles Wissen zu den genetischen Grundlagen von Tumorentstehung und Tumorprogression vermittelt. Die Studierenden sollen außerdem Anwendungsbereiche wie die genetische Diagnostik bei Leukämien/Lymphomen und Tumordispositionssyndromen verstehen sowie erhobene Befunde interpretieren können. Dazu gehört auch die formalgenetische Einordnung.

Im Praktikum werden u. a. wesentliche zytogenetische, molekularzytogenetische und molekulargenetische Arbeitsmethoden (z. B. Chromosomenanalyse an Tumorzellen, Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH), Stammbaumanalyse, PCR, SNP-CHIP-Analyse, Array-CGH) erlernt und unter Anleitung durchgeführt.



Lehrinhalte • unstimulierte und stimulierte Kurzzeitkultivierung verschiedener Tumorgewebe • Chromosomenanalyse zum Nachweis tumorspezifischer Chromosomen-

veränderungen nach R-Bänderung • Interphase- und Metaphase- FISH (Painting-, Vielfarben-, und locusspezifische

FISH) einschließlich Generierung von nicht-radioaktiv markierten DNA-Sonden; • Nachweis tumorspezifischer genetischer Veränderungen mittels PCR und Array-

Technologien (Array-CGH; SNP-CHIP-Analysen, Methylierungs-Profiling) • epigenetische Untersuchungen bei Tumoren

Schlüsselqualifikationen k. A.

Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Tumorgenetik (I) Seminarvortrag Benotet Pflicht 50

Mündliche Prüfung: Tumorgenetik (II) Seminarvortrag Benotet Pflicht 50



Literaturangaben • Murken,Grimm & Holinski „Humangenetik“ (2006), Thieme-Verlag

• Tariverdian & Buselmaier „Humangenetik“ (2006), Springer-Verlag

• Strachan & Read „Molekulare Humangenetik“ (2004), Spektrum-Verlag

weitere Angaben Vermittelte Kompetenzen:

Umfassendes Verständnis von genetischen und epigenetischen Mechanismen der Tumorentstehung und der Tumorprogression,

methodenübergreifende Fachkompetenz in der Tumordiagnostik.



MNF-bcmb254 Klinische Chemie/Medizinische Chemie für Biochemiker und Chemiker


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Bernd Clement

Telefon 0431-880-1126, Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Bernd Clement

Verwendung Master, 1-Fach, Biochemie und Molekularbiologie (Version 2016) Wahl





Praktikum zur Vorlesung Pharmazeutische Chemie/Medizinische Chemie für Biochemiker und

7 Pflicht

Vorlesung Pharmazeutische Chemie/Medizinische Chemie für Biochemiker und Chemiker

3 Pflicht

Seminar zur Vorlesung Pharmazeutische Chemie/Medizinische Chemie für Biochemiker und

2 Pflicht

Zahl der Plätze Vorlesung: 12 Seminar: 12 Praktikum: 12

Lehrende(r) Prof. Dr. Bernd Clement

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden




Empfohlene Voraussetzung

Grundlagenkenntnisse in Organischer Chemie und Biochemie



Lernziele Der Studierende erlangt grundlegende Kenntnisse und praktische

Fertigkeiten in der Pharmazeutischen/Medizinischen bzw. Klinischen Chemie.

Die Studierenden werden in der Lage sein, Forschungsprojekte zu planen, durchzuführen, zu interpretieren sowie schriftlich darzustellen und zu präsentieren.

Des Weiteren werden die Studierenden in der Lage sein, klinische Parameter qualitätsgesichert zu bestimmen und zu bewerten.

Grundlagen und Probleme der Arzneistoffentwicklung können erkannt und gelöst werden.

Lehrinhalte • Es werden grundlegende Kenntnisse der Pharmazeutischen/Medizinischen sowie der Klinischen Chemie vermittelt. Im Vordergrund des pharmazeutisch/medizinisch Teils steht das Verständnis der Wirkung von Arzneistoffen auf molekularer Ebene und der Metabolismus der Wirkstoffe.

• Biochemische Arbeitstechniken einschließlich des molekular-biologischen Arbeitens werden erlernt.

• Im klinisch-chemischen Teil werden sowohl die Erhebung der klinischen Parameter als auch die Bedeutung einzelner Werte für die jeweiligen Krankheitsbilder vermittelt.

• Die Vorlesung stellt die wichtigsten Grundlagen der Arzneistoffindung (drug discovery) und Arzneistoffentwicklung sowie pharmakokinetischen Aspekte der Arzneistoffwirkung vor. Die Biotransformation der Arznei- undWirkstoffe wird im Detail besprochen.

Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Klinische Chemie/Medizinische Chemie für Biochemiker und Chemiker

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Seminarleistung: Klinische Chemie/Medizinische Chemie für Biochemiker und Chemiker

Seminarleistung Benotet Pflicht 25

Protokoll: Klinische Chemie/Medizinische Chemie für Biochemiker und Chemiker

Protokoll Benotet Pflicht 25

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Es handelt sich um eine Prüfungsleistung, welche sich aus der mündliche Prüfung, der Seminarleistung und dem Protokoll zusammensetzt.


Literaturangaben • Dörner, Klaus: Taschenlehrbuch Klinische Chemie und Hämatologie.

• Bruhn, Hans D., Ulrich, R. & Fölsch: Lehrbuch der Labormedizin.

• Mutschler, Ernst, Geisslinger, Gerd, Kroemer, Heyo K.: Arzneimittelwirkungen.




MNF-bcmb269 Pharmazeutische Instrumentelle Analytik für Biochemiker und Chemiker


Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Eric Beitz Telefon 0431-880-1809, Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Eric Beitz






Praktikum Pharmazeutische Instrumentelle Analytik 7 Pflicht

Seminar Pharmazeutische Instrumentelle Analytik 2 Pflicht

Vorlesung Pharmazeutische Instrumentelle Analytik 3 Pflicht


Lehrende(r) Prof. Dr. Eric Beitz

Prof. Dr. Bernd Clement

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden

Präsenzstudium 75,6

Selbststudium 224,4

Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Organischer Chemie, chemischer Analytik und Biochemie



Lernziele Grundlegende Kenntnisse und praktische Fertigkeiten in der

Pharmazeutischen Instrumentellen Analytik.

Die Studierenden sollen in der Lage sein, Forschungsprojekte zu planen,

durchzuführen, zu interpretieren sowie schriftlich darzustellen und zu

präsentieren.

Des weiteren sollen die Studierenden in der Lage sein, Analysenergebnisse

qualitätsgesichert zu bestimmen und zu bewerten.

Grundlagen und Probleme der Arzneistoffanalytik sollen erkannt und gelöst werden.

Lehrinhalte Es werden grundlegende Kenntnisse der Pharmazeutischen Instrumentellen Analytik vermittelt. Im Vordergrund stehen das Verständnis der physikalisch-chemischen Grundlagen der instrumentellen Analytik und Grundlagen der Qualitätssicherung bei der Arzneistoffanalytik.

Instrumentell analytische Arbeitstechniken aus den Bereichen der

Elektrochemie, Spektroskopie und Chromatographie werden erlernt.

Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Pharmazeutische Instrumentelle Analytik für Biochemiker und Chemiker

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Pharmazeutische Instrumentelle Analytik für Biochemiker und Chemiker


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich zu gleichen Anteilen aus der mündlichen Prüfung und dem Protokoll zusammen.


Literaturangaben • G. Rücker, M. Neugebauer, G.G. Willems „Pharmazeutische Instrumentelle Analytik“

• D.A. Skoog, J.J. Leary „Instrumentelle Analytik“




MNF-bcmb270 Evaluation von Wirkstofftargets für Biochemiker und Chemiker


Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Eric Beitz Telefon 0431-880-1809, Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Eric Beitz






Seminar Evaluation von Wirkstofftargets für Biochemiker und Chemiker

1 Pflicht

Praktikum Evaluation von Wirkstofftargets für Biochemiker und Chemiker

10 Pflicht

Vorlesung Pharmazeutische/Medizinische Chemie 3 Pflicht


Lehrende(r) Prof. Dr. Eric Beitz

Prof. Dr. Bernd Clement

Prof. Dr. Thomas Kunze

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Organischer Chemie und Biochemie



Lernziele Grundlegende Kenntnisse und praktische Fertigkeiten in der Evaluation von

Wirkstofftargets werden vermittelt.

Die Studierenden sollen in der Lage sein, Forschungsprojekte zu planen,

durchzuführen, zu interpretieren sowie schriftlich darzustellen und zu

präsentieren.

Des weiteren sollen die Studierenden in der Lage sein, Analysenergebnisse

qualitätsgesichert zu bestimmen und zu bewerten.

Grundlagen und Probleme der Proteinherstellung und Proteintestung sollen erkannt und gelöst werden.

Lehrinhalte Es werden grundlegende Kenntnisse der Evaluation von Wirkstofftargets

vermittelt. Im Vordergrund stehen das Verständnis der nötigen

Eigenschaften eines Proteins zur Eignung als Wirkstoffziel sowie die

Herstellung von Proteinen zur Wirkstofftestung. Arbeitstechniken aus den

Bereichen der Molekularbiologie, Proteinchemie und funktioneller Assays

zum Wirkstoffscreening werden erlernt.

Prüfung(en)


Seminarleistung: Evaluation von Wirkstofftargets für Biochemiker und Chemiker


Protokoll: Evaluation von Wirkstofftargets für Biochemiker und Chemiker


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich zu gleichen Anteilen aus der Seminarleistung und dem Protokoll zusammen.


Literaturangaben • E. Mutschler, G. Geisslinger, H.K. Kroemer & M. Schäfer-Korting „Arzneimittelwirkungen“

• L. Stryer „Biochemie“

• W. Müller-Esterl „Biochemie“




MNF-bcmb255 Regulation von Zellpolarität

Semesterlage / Dauer k.A.

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Ursula Just


Beratung zum Modul Prof. Dr. Ursula Just



Fakultät Medizinische Fakultät



Praktikum Regulation von Zellpolarität 6 Pflicht

Seminar Regulation von Zellpolarität 2 Pflicht

Zahl der Plätze Praktikum: 4

Seminar: 4

Lehrende(r) Prof. Dr. Ursula Just

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Molekularbiologie, Genetik, Zellbiologie und Biochemie

Lernziele

Einführung in molekulare Mechanismen zur Regulation von Zellpolarität, Erarbeitung von Methoden der molekularen Biochemie

Verständnis und Darstellung von Originalliteratur, Planung und Durchführung von Experimenten in der molekularen Biochemie (Hypothesen, Kontrollen, statistische Auswertung, Darstellung)



Lehrinhalte Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die molekulare Biochemie. Die Studierenden sollen außerdem Anwendungbereiche wie Gentechnologie und Biotechnologie verstehen und einorden können. Im Praktikum werden u.a. wesentliche moderne Arbeitsmethoden (z.B. Klonierung und PCR; Expression rekombinanter Proteine) erlernt und selbstständig geplant und angewendet.

Schlüsselqualifikationen k.A.

Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Regulation von Zellpolarität Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Regulation von Zellpolarität Protokoll Benotet Pflicht 50

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich, mit gleicher Gewichtung, aus der mündlichen Prüfung und dem Protokoll zusammen.


Literaturangaben Originalpublikationen und Übersichtsartikel




MNF-bcmb256 Stammzelldifferenzierung


Dauer: 1 Semester









Praktikum Regulation der Stammzelldifferenzierung

Prof. Dr. Ursula Just

6 Pflicht

Seminar Regulation der Stammzelldifferenzierung

Prof. Dr. Ursula Just

2 Pflicht


Seminar: 4

Lehrende(r) Prof. Dr. Ursula Just

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch



Lernziele Einführung in molekulare Mechanismen zur Regulation von Differenzierungs- entscheidungen während der mesodermalen Differenzierung embryonaler Stammzellen der Maus; Erarbeitung von Methoden der molekularen Biochemie




Lehrinhalte Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die molekulare Biochemie. Die Studierenden sollen außerdem Anwendungbereiche wie Gentechnologie und Biotechnologie verstehen und einorden können. Das Praktikum beinhaltet die Planung und Durchführung von Experimenten sowie das Erlernen verschiedener biochemischer, zell- und molekularbiologischer Methoden (Säuger-Zellkultur, insb. Kultur embryonaler Stammzellen und mesodermaler Differenzierungssysteme, Immunpräzipitation, Fluoreszenzmikroskopie, RNA-Isolation, RT-PCR, Western Blot, Transfektionen von Säugerzellen, Luciferase-Assays, ChIPAssays).


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Stammzelldifferenzierung Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Stammzelldifferenzierung Protokoll Benotet Pflicht 50



Literaturangaben Originalpublikationen und Übersichtsartikel




MNF-bcmb257 Genregulation in Stammzellen


Dauer: 1 Semester









Praktikum Genregulation in Stammzellen 6 Pflicht

Seminar Genregulation in Stammzellen 2 Pflicht


Seminar: 4

Lehrende(r) Prof. Dr. Ursula Just, Dr. Ralf Schwanbeck

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch





Lernziele Einführung in die genregulatorischen Prozesse der Stammzellen und deren

Differenzierung sowie molekulare Mechanismen, die zu Zelllinienentscheidungen führen.

Erlernung von biochemischen und molekularbiologischen Methoden

• Grundkenntnisse in der Biologie von Stammzellen

• Erlernung verschiedener molekularbiologischer und biochemischer Methoden

• Verstehen des theoretischen Hintergrunds der durchgeführten Techniken

• Planung und Durchführung von Experimenten in der molekularen Biochemie

• Analyse und kritische Betrachtung der eigenen Ergebnisse im wissenschaftlichen Kontext

• Wissenschaftliche Präsentation

Lehrinhalte Es sollen umfassende Kenntnisse in die molekularen Mechnismen der genregulatorischen Aktivitäten von Zellen, insbesondere von Stammzellen, vermittelt werden. Dabei soll der Signaltransduktionsweg vom extrazellulären Auslöser (z.B. Zytokin) über den Rezeptor bis zu der Chromatin-vermittelten Regulation der potentiellen Zielgene verfolgt werden. Dazu werden neben üblichen molekular-biologischen Techniken (z.B. Klonierung und Mutagenese) auch moderne quantitative Methoden wie die Real-time PCR und Chromatinimmunopräzipitation (ChIP) eingesetzt werden. Weiterhin sollen die Studierenden den Umgang mit Zellkulturen erlernen und die Auswertung von biologischen Experimenten durch statistische Tests kennenlernen. Die Planung, Durchführung und adäquate Protokollierung von Experimenten soll den Studierenden nahegebracht werden, um die wissenschaftliche Selbstständigkeit zu fördern.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Genregulation in Stammzellen Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Genregulation in Stammzellen Protokoll Benotet Pflicht 50



Literaturangaben Originalpublikationen und Übersichtsartikel (wird zur Verfügung gestellt), Sambrook und andere einschlägige Lehrbücher




MNF-bcmb258 Molekulare Biologie der Zytokine


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. S. Rose-John


Beratung zum Modul Prof. Dr. S. Rose-John






Praktikum Molekulare Biologie der Zytokine 6 Pflicht

Seminar Molekulare Biologie der Zytokine 2 Pflicht


Seminar: 4

Lehrende(r) Prof. Dr. Stefan Rose-John, Dr. Atena Chalaris

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Zellbiologie und Biochemie

Lernziele Einführung in die Struktur-Funktionsbeziehungen von Zytokinen, Erarbeitung von Methoden der molekularen Biochemie




Lehrinhalte Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die molekulare Biochemie, insbesondere der Zytokine. Die Studierenden sollen außerdem Anwendungsbereiche wie Gentechnologie und Biotechnologie verstehen und einordnen können. Im Praktikum werden u.a. wesentliche moderne Arbeitsmethoden (z.B. Klonierung und PCR; Expression rekombinanter Proteine) erlernt und selbstständig geplant und angewendet.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Molekulare Biologie der Zytokine Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Molekulare Biologie der Zytokine Protokoll Benotet Pflicht 50



Literaturangaben Sambrook und andere einschlägige Lehrbücher, per-review Originalliteratur (Paper, Review)




MNF-bcmb259 Molekularbiologie von Zytokinen


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Stefan Rose-John


Beratung zum Modul Prof. Dr. S. Rose-John






Praktikum Molekularbiologie von Zytokinen 6 Pflicht

Seminar Molekularbiologie von Zytokinen 2 Pflicht


Seminar: 4

Lehrende(r) Prof. Dr. Stefan Rose-John

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Zellbiologie und Biochemie

Lernziele Einführung in die Molekularbiologie von Zytokinen und deren Rezeptoren, Verständnis des modularen Zusammenspiels der Rezeptorkomponenten

Die Studierenden sollen nach Abschluss dieses Moduls in der Lage sein, Vor- und Nachteile verschiedener Methoden beurteilen zu können, die sie während des praktischen Teils angewendet haben. Sie sollen während des Moduls Originalliteratur verstehen und darstellen können, die eigenen Experimente planen und die eigenständige Einteilung ihrer Zeit für die einzelnene Schritte erlernen. An Hand der Beobachtungen aus den verschiedenen Experimenten sollen sie eine Modellvorstellung von der Interaktion zwischen dem Zytokin und den einzelnen Komponenten des Rezeptorkomplexes entwickeln können.



Lehrinhalte Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die Molekularbiologie von Zytokinen und deren Rezeptorinteraktion. Die Interaktionen sollen durch Verände-rung der einzelnen Proteine untersucht werden und hierbei verschiedene molekular-biologische Methoden wie Immunpräzipitation, ELISA und eventl. FRET angewendet werden.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Molekularbiologie von Zytokinen Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Molekularbiologie von Zytokinen Protokoll Benotet Pflicht 50



Literaturangaben Lehrbücher und weiterführende per-review Originalliteratur (Originalarbeiten, Review)




MNF-bcmb261 Molecular Modelling

Semesterlage / Dauer 1.Semester

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Joachim Grötzinger


Beratung zum Modul Prof. Dr. Joachim Grötzinger






Praktikum Molecular Modeling 6 Pflicht

Seminar Molecular Modeling 2 Pflicht


Seminar: 4

Lehrende(r) Prof. Dr. Joachim Grötzinger

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Biochemie und Proteinchemie

Lernziele Einführung in die Struktur der Proteine, Einführung in die theoretische Methoden des molecular modelings

Verständnis und Darstellung von Originalliteratur, Planung und Durchführung eines Molekularen Modellbaus, Generierung einer dreidimensionalen Proteinstruktur

Lehrinhalte Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die Strukur von Proteinen und deren Theoriebasierte Generierung




Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Molecular Modelling Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Molecular Modelling Protokoll Benotet Pflicht 50







MNF-bcmb262 Strukturbestimmung von Proteinen, CD- NMR-Spektroskopie

Semesterlage / Dauer 1.Semester

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Joachim Grötzinger


Beratung zum Modul Prof. Dr. Joachim Grötzinger






Praktikum Strukturbestimmung von Proteinen, CDNMR-

Spektroskopie

6 Pflicht

Seminar Strukturbestimmung von Proteinen, CDNMR-

Spektroskopie

2 Pflicht


Seminar: 4

Lehrende(r) Prof. Dr. Joachim Grötzinger

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Biochemie, Physik und Proteinchemie

Lernziele Einführung in die Strukturuntersuchung von Proteinen, Einführung in die spektros-kopischen Methoden zur Strukturuntersuchung von Proteinen

Verständnis und Darstellung von Originalliteratur, Planung und Durchführung eines spektroskopischer Experimente, Auswertung von mehrdimensionalen NMR-Spektren

Lehrinhalte Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die Struktur von Proteinen und deren spektroskopische Untersuchung




Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Strukturbestimmung von Proteinen, CD- NMR-Spektroskopie

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Strukturbestimmung von Proteinen, CD- NMR-Spektroskopie


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die gesamte Prüfungsleistung bildet sich zu gleichen Teilen aus der mündlichen Prüfung und dem Protokoll.






MNF-bcmb275 Molekulare Zellbiologie der Lysosomen



Beratung zum Modul Prof. Dr. Paul Saftig






Seminar Molekulare Zellbiologie der Lysosomen 2 Pflicht

Praktikum Molekulare Zellbiologie der Lysosomen 6 Pflicht

Zahl der Plätze Seminar: 4

Praktikum: 4

Lehrende(r) Prof. Dr. Paul Saftig, Dr. Bernd Schröder, Dr. Judith Blanz, Dr. Michael Schwake

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Biochemie und Zellbiologie

Lernziele Verständnis und Darstellung der komplexen Funktion des lysosomalen Komparti-mentes; Übertragung von in vitro Befunden auf in vivo Funktionen; kritische Evaluierung von Stand des Wissens in der Literatur bezogen auf eigene durchgeführte Experimente, Planung und möglichst neigenständige Durchführung von zellbiologischen Experimenten.



Lehrinhalte Lysosomale Funktionen sind von erheblicher Bedeutung für die Biologie des Säuger-organismus. Mit Hilfe gendefizienter Mäuse und daraus abgeleiteter Zellen sollen Funktion ausgewählter lysosomaler Proteine näher untersucht werden. Mit „state-of-the-art“ Techniken der molekularen Zellbiologie sollen intrazelluläre Prozesse, wie z.B. Autophagozytose und Phagozytose näher beleuchtet werden.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Molekulare Zellbiologie der Lysosomen

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Molekulare Zellbiologie der Lysosomen Protokoll Benotet Pflicht 50

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Es handelt sich um eine Prüfungsleistung, welche sich aus der mündlichen Prünfung und dem Protokoll zusammensetzt


Literaturangaben • „Lysosomes“, Editor Saftig, Springer Verlag

Primärliteratur (eigene Arbeiten und Arbeiten aus dem Forschungsfeld)




MNF-bcmb276 Molekulare Funktionsanalyse von Proteasen und proteolytischen Prozessen



Beratung zum Modul Prof. Dr. Paul Saftig






Seminar Molekulare Funktionsanalyse von Proteasen und proteolytischen Prozessen

2 Pflicht

Praktikum Molekulare Funktionsanalyse von Proteasen und proteolytischen Prozessen

6 Pflicht


Praktikum: 4 Lehrende(r) Prof. Dr. Paul Saftig, Dr. Bernd Schröder, Dr. Judith Blanz, Dr. Michael Schwake

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch



Lernziele Verständnis und Darstellung von proteolytischen Ereignissen im Kontext der Zellphysiologie und möglichen pathologischen Veränderungen.

Kritische Evaluierung von Stand des Wissens in der Literatur bezogen auf eigene durchgeführte Experimente, Planung und möglichst eigenständige Durchführung von zellbiologischen Experimenten.

Lehrinhalte Proteolysevorgänge in der Zelle, an und in der Zellmembran und im Extrazellulär-raum sind von steigendem Interesse für das Verständnis von regulatorischen Zellprozessen. Mit Hilfe von pharmakologischen Modulierungen, aber auch durch die Analyse von Knockoutmäusen und Zelllinien soll die Funktion der Proteasen (z.B: ADAM-Proteasen, Signal Peptid Peptidasen, Cathepsine) besser verstanden werden.




Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Molekulare Funktionsanalyse von Proteasen und proteolytischen Prozessen

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Molekulare Funktionsanalyse von Proteasen und proteolytischen Prozessen


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Es handelt sich um eine Prüfungsleistung, welche sich aus der mündlichen Prünfung und dem Protokoll zusammensetzt.


Literaturangaben Stryer und andere einschägige Lehrbücher, reviews, Originalliteratur (aktuelle Veröffentlichungen) Primärliteratur (eigene Arbeiten und Arbeiten aus dem Forschungsfeld)




MNF-bcmb283 Proteinchemie: Insektenzellen zur Expression komplexer Proteine


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Christoph Becker-Pauly

Beratung zum Modul Prof. Dr. Christoph Becker-Pauly






Seminar: Heterologe Expression humaner Metalloproteasen in Insektenzellen

2 Pflicht

Praktikum: Heterologe Expression humaner Metalloproteasen in Insektenzellen

8 Pflicht

Zahl der Plätze Seminar: 4 Praktikum: Einer- oder Zweier-Gruppen

Lehrende(r) Prof. Dr. Christoph Becker-Pauly

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden



Lehrsprache Deutsch





Lernziele Den Teilnehmern wird das Baculovirus-Expressionssystem zur Herstellung rekombinanter Proteine in Insektenzellen vermittelt. Inhaltlich wird die Klonierung der gewünschten cDNA, die Generierung rekombinanter Viren, die Infektion der Insektenzellen, sowie die affinitätschromatographische Reinigung des gewünschten Proteins behandelt. Die Herstellung zielt auf humane Metalloproteasen, die nach der Reinigung auch proteolytisch aktiviert und funktionell charakterisiert werden. Ziel ist es, diese Enzyme für biochemische Analysen und zur Überprüfung bestimmter Hypothesen hinsichtlich pathophysiologischer Konditionen zu nutzen.

Lehrinhalte Bac-to-Bac Expressionssystem, Affinitätschromatographie zur Proteinreinigung, Enzymaktivitätsassays, Inhibitionsstudien, Western Blot, SDS-PAGE, PCR

Vermittelte Kompetenzen Die Teilnehmer werden an einem etablierten System erlernen rekombinante Proteine für biochemische und physiologische Analysen zu produzieren. Dabei wird von der Generierung der cDNA, über die Herstellung der rekombinanten Baculoviren, bis hin zur Gewinnung des gewünschten Proteins aus Insektenzellen der gesamte Ablauf des Bac-To-Bac-Expressionsystems vermittelt. Zudem werden die Teilnehmer die gereinigten proteolytischen Enzyme biochemisch charakterisieren und deren Aktivität in FRET-Assays und Inhibitionsversuchen analysieren.

Schlüsselqualifikationen

Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Proteinchemie: Insektenzellen zur Expression komplexer Proteine

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Proteinchemie: Insektenzellen zur Expression komplexer Proteine


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Es handelt sich um eine Prüfungsleistung, welche sich aus der mündlichen Prünfung und dem Protokoll zusammensetzt.


Literaturangaben http://tools.invitrogen.com/content/sfs/manuals/bactobac_topo_exp_system_man.pdf Rehm – Der Experimentator: Proteinbiochemie / Proteomics Schrimpf – Gentechnische Methoden Mülhardt – Der Experimentator: Molekularbiologie / Genomics.

weitere Angaben

http://tools.invitrogen.com/content/sfs/manuals/bactobac_topo_exp_system_man.pdf



MNF-bcmb287 Signaltransduktion: Von den molekularen Grundlagen zur spezifischen Therapie


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Dr. Christoph Garbers


Beratung zum Modul Dr. Christoph Garbers






Praktikum Signaltransduktion 6 Pflicht

Seminar Signaltransduktion 2 Pflicht


Seminar: 4

Lehrende(r) Dr. Christoph Garbers

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Findet im Wintersemester und Sommersemester statt


30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Biochemie, Molekularbiologie und Zellbiologie

Lernziele Einführung in die molekularen Grundlagen der Signaltransduktion, insbesondere der folgenden Signalwege: Jak/STAT, PI3K, ERK sowie mTOR. Ein besonderer Schwer-punkt liegt auf der Möglichkeit, diese Signalwege spezifisch auf verschiedenen Wegen zu inhibieren, um einen therapeutischen Effekt zu erzielen. Dies geschieht sowohl theoretisch als auch durch praktische Experimente im Labor.

Die Studierenden sollen nach Abschluss dieses Moduls in der Lage sein, Vor- und Nachteile verschiedener Methoden beurteilen zu können, die sie während des praktischen Teils angewendet haben. Außerdem sollen sie Originalliteratur verstehen und darstellen können, die eigenen Experimente planen und die eigenständige Einteilung ihrer Zeit für die einzelnen Schritte erlernen.



Lehrinhalte Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die molekularen Grundlagen verschiedener Signaltransduktionswege. Die theoretischen Kenntnisse werden praktisch anhand verschiedener experimenteller Methoden (z.B. Western Blot, Proliferationsassays, qPCR, ELISA) vertieft. Ziel ist es ferner, verschiedene medizinisch relevante therapeutische Ansätze kennenzulernen und zu beurteilen.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Signaltransduktion: Von den molekularen Grundlagen zur spezifischen Therapie

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Signaltransduktion: Von den molekularen Grundlagen zur spezifischen Therapie


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich aus der mündlichen Prünfung und dem Protokoll zusammen.


Literaturangaben Lehrbücher und weiterführende Originalliteratur (Originalarbeiten, Reviews)




MNF-bcmb260 Untersuchungen zur Suppression der T-Zellaktivierung


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Stefan Krautwald



Beratung zum Modul Prof. Dr. Stefan Krautwald


Laborpraktikum: Untersuchung zur Suppression der T-Zellaktivierung

Prof. Dr. Stefan Krautwald

8 Pflicht

Zahl der Plätze Laborpraktikum: 6

Lehrende(r) Prof. Dr. Stefan Krautwald

Lehrsprache Deutsch


Leistungspunkte 10



k.A.

Lernziele Die Studierenden sollen einen umfassenden Einblick in klassische Arbeitsmethoden und Techniken der Molekularbiologie vermittelt bekommen. Sie sollen dabei unter-schiedliche Anreicherungs- und Aufreinigungsmethoden von RNA/DNA und Proteinen verstehen, einordnen und auch anwenden können.

Im Praktikum sind Techniken wie die Klonierung und Expression rekombinanter Proteine selbständig erlernbar.

Immunologisch relevante Primärzellen werden isoliert, aufgetrennt (MACS) und charakterisiert (FACS). Diese Zellen werden nachfolgend in verschiedenen Bio-Assays eingesetzt.

Übergreifendes Methodenspektrum sowie soziale Kompetenz durch Integrierung in das bestehende Laborteam.

Lehrinhalte Im Rahmen des Moduls soll zunächst theoretisch als dann auch praktisch der Aufbau molekularer Expressionssysteme und deren spezifische Anwendung vermittelt werden. Die Studierenden lernen, wie man sich in einem gentechnischen Sicherheitsbereich (S1) verhalten muss und wie man darin arbeitet.

Neben dem Erstellen eines eigenständigen Forschungsplans sollen die Studierenden vermittelt bekommen, wie man sich wissenschaftlichen Fragestellungen annähert, sie experimentell untersuchen und aufklären kann.




Prüfung(en) Protokoll (Prof. Dr. Krautwald)

Bewertungsmodus: benotet (Notenwichtung: 50%)

Mündliche Prüfung (Prof. Dr. Krautwald)

Bewertungsmodus: benotet (Notenwichtung: 50%)

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich zu gleichen Anteilen aus der mündlichen Prüfung und dem Protokoll zusammen.

Literaturangaben • Stryer “Biochemie”

• CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY

• CURRENT PROTOCOLS IN IMMUNOLOGY, Wiley




MNF-bcmb281 Funktionelle Charakterisierung von programmierter Nekrose (PN)

Semesterlage / Dauer 1. - 4. Semester

Dauer: 1 Semester; Angebot jedes Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Stefan Krautwald



Beratung zum Modul Prof. Dr. Stefan Krautwald


Laborpraktikum (3-wöchiges Blockpraktikum; ganztägig; auch außerhalb der Vorlesungszeiten) Prof. Dr. Stefan Krautwald

10 Pflicht


Lehrende(r) Prof. Dr. Stefan Krautwald und wissenschaftl. Mitarbeiter

Lehrsprache Deutsch


Leistungspunkte 10



Biochemische Kenntnisse; Basisverständnis der Immunologie

Lernziele Die Studierenden sollen einen umfassenden Einblick in klassische Arbeitsmethoden und Techniken der Molekularbiologie vermittelt bekommen. In unterschiedlichen Signalwegen miteinander interagierende Proteine sollen zunächst in vitro analysiert werden. Ihr spezifischer Anteil bei der Vermittlung einzelner programmierter Zelltod-Mechanismen (PCD) soll u.a. mittels Ko-Immunpräzipitationen ermittelt werden. Zur Verifizierung der Ergebnisse wird der Einsatz spezifischer siRNAs (shRNAs) erfolgen.

Im Praktikum sind darüber hinaus Techniken wie die Klonierung und Expression rekombinanter Proteine selbständig erlernbar. Zur Anwendung kommen zellgängige, transduzierfähige TAT-Proteine, die nach säulenchromatographischer Aufreinigung in verschiedenen, klinisch relevanten Tiermodellen eingesetzt und analysiert werden. Bei Interesse können die Studierenden bei Untersuchungen zum PCD in unterschiedlichen Mausmodellen assistieren.



Lehrinhalte Im Rahmen dieses Moduls soll der Stellenwert von programmiertem Zelltod (Apoptose und programmierte Nekrose) theoretisch vermittelt als auch praktisch untersucht werden.

Mechanismen der signalweg-übergreifenden Inhibierung von PN sollen analysiert werden. Ein Schwerpunkt des Arbeitsprogramms ist die therapeutische Anwendung selbstgenerierter rekombinanter Proteine.

Der Aufbau molekularer Expressionssysteme und deren spezifische Anwendung werden vermittelt. Die Studierenden lernen, wie man in einem gentechnischen Sicherheitsbereich (S1) arbeitet.

Neben dem Erstellen eines eigenständigen Forschungsplans sollen die Studierenden vermittelt bekommen, wie man sich wissenschaftlichen Fragestellungen annähert, sie experimentell untersuchen und aufklären kann.

Vermittelte Kompetenzen • im Rahmen des angebotenen Moduls wird ein generelles, übergreifendes Methodenspektrum der Molekularbiologie vermittelt werden

• gängige Methoden wie PCR, reverse Transkription, Klonierung, DNA-Präparation, SDS-PAGE, Western-Blot werden angewandt

• die säulenchromatographische Aufreinigung von rekombinanten Proteinen und deren Verwendung in vitro als auch in vivo wird erlernt; Optimierungsmöglichkeiten werden erarbeitet

• steriles Arbeiten unter S1-Bedingungen wird erlernt • ein Transfer der gewonnen Daten von der „Zelllinie“ in entsprechende Tiermodelle soll eigenständig erarbeitet werden

Schlüsselqualifikationen Vermittlung molekularbiologischer Techniken; Assistenz bei verschiedenen Tiermodellen;

Prüfung(en) Laborjournal / Protokoll zum Praktikum

Bewertungsmodus: benotet

Notenwichtung: 75%

Mündliche Prüfung

Bewertungsmodus: benotet

Notenwichtung: 25%

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich aus der mündlichen Prüfung (25 %) und dem Protokoll (75 %) zusammen.

Literaturangaben • Stryer, Biochemie

• CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY

• CURRENT PROTOCOLS IN IMMUNOLOGY (Wiley)

• aktuelle Primärliteratur (Nutzen von Datenbanken wie PubMed)

weitere Angaben Wählbar als Wahlmodul für bcmb205, bcmb207, bcmb208 und bcmb209.



MNF-bcmb263 Immunologie


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Dieter Adam


Beratung zum Modul Prof. Dr. Dieter Adam






Immunologie Fortgeschrittenenpraktikum II 8 Pflicht

Vorlesung Allgemeine Immunologie 2 Pflicht

Vorlesung Molekulare Immunologie 2 Pflicht

Praktikum Molekulare Immunologie 6 Pflicht

Zahl der Plätze Vorlesungen: 20

Praktika: 10

Lehrende(r) Prof. Dr. Dieter Adam, Prof. Dr. Alexander Scheffold, Prof. Dr. Ottmar Janßen

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Findet im Winter- und Sommersemester statt


30 Stunden


300 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in Biochemie, Molekularbiologie und Zellbiologie



Lernziele Kenntnis, Verständnis der Allgemeinen und Molekularen Immunologie, Fähigkeiten zur praktischen Anwendung aktuellster Technologien der Molekularen Immunologie

• Umfassendes Verständnis der Immunologie auf allgemeiner Ebene

• Vertieftes Verständnis ausgewählter Aspekte der molekularen Immunologie

• Erwerb der Fähigkeit zur selbständigen Planung, Durchführung und Auswertung von Experimenten, Darstellung der erzielten Ergebnisse und Gewichtung/Diskussion gegen Daten aus der Originalliteratur.

Lehrinhalte Allgemeine Immunologie: Angeborene Immunität, T-Zellen, Antigenpräsentation & Dendritische Zellen, Antikörper und B-Zellen, Allergie, Autoimmunität, Tumor-immunologie, Immundefekte.

Molekulare Immunologie: Zellwachstum und programmierter Zelltod, Zytokine und Zytokinrezeptoren, T-Zell-Rezeptoren und Durchflusszytometrie, Komparti-mentierung von Signalwegen am Beispiel der TNF- und CD95-induzierten Signal-transduktion, Signaltransduktion der Lymphozytenaktivierung, Dynamik der Aktivierung und Zytotoxizität.

Praktika: selbständige Bearbeitung eines Teilaspekts der aktuellen Forschungsarbeiten im Labor des jeweiligen Betreuers nach Absprache.

Weitere Informationen unter www.immunologie-kiel.uk-sh.de


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Allgemeine Immunologie Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Protokoll: Molekulare Immunologie Protokoll Benotet Pflicht 25

Protokoll: Fortgeschrittenenpraktikum II Immunologie Protokoll Benotet Pflicht 25

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfunsleistung setzt sich aus der mündlichen Prüfung (50 %) und zwei Protokollen, welche jeweils zu 25 % in die Note eingehen, zusammen.


Literaturangaben • Janeway „Immunologie“, 9. Auflage, Spektrum Verlag

• Kuby “Immunology”, 7. Auflage, Palgrave McMillan

• Folien/Skripten zu den Vorlesungen, Originalpublikationen




MED-imm001 Zelluläre und Molekulare Grundlagen der Immunologie

Semesterlage / Dauer 1. + 2. Semester Dauer: 2 Semester (Praktikum im Oktober vor Vorl.beg.)

Modulverantwortliche(r) PD Dr. rer. nat. Holger Heine Telefon 04537-188-420, Email: [email protected]

Beratung zum Modul PD Dr. rer. nat. Holger Heine


Veranstalter Leibniz-Institut Borstel




Vorlesung Zelluläre und Molekulare Grundlagen der

Immunologie

1 Pflicht

Praktikum Zelluläre und Molekulare Grundlagen der

Immunologie

5 Pflicht


Praktikum: 16

Lehrende(r) PD Dr. Frank Petersen, PD Dr. rer. nat. Holger Heine

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester

Angebotshäufigkeit Findet nur im Wintersemester und Sommersemester statt


30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Vertiefte Kenntnisse in Biochemie, Molekularbiologie und Zellbiologie



Lernziele Die Studierenden erwerben eine umfassende Kenntnis der zellulären und molekularen Grundlagen des Immunsystems. Im Praktikum werden wesentliche immunologische Arbeitsmethoden vorgestellt und von den Studierenden erlernt.

Nach Absolvierung dieses Moduls sollen die Studenten:

den Aufbau des Immunsystems und die Prinzipien und Mechanismen der Immunantwort verstanden haben

Kenntnisse der guten mikrobiologischen Praxis und guten Laborpraxis besitzen und diese umsetzen können

die Planung und Durchführung von Experimenten in der Immunologie (Hypothesen, Kontrollen, statistische Auswertung, Darstellung) erläutern, unter Anleitung durchführen und die Ergebnisse analysieren können

Die genannten Methoden interpretieren können und die wichtigsten Fehlerquellen kennen

Lehrinhalte Vorlesung:

Prinzipien des angebborenen und adaptiven Immunsystems, Entwicklung

des lymphozytären Repertoires, Manipulation der Immunantwort,

Immunologische Toleranz, Infektionsabwehr

Praktikum:

Einführung in die gute mikrobiologische Laborpraxis, Anwendung von

Reportersystemen bei der Erkennung pathogener Strukturen durch

Mustererkennungs-Rezeptoren; die Herstellung von Knock-Out-Mäusen

und ihre Genotypisierung mittels PCR am Beispiel von TLR2-defizienten

Mäusen.

"Lebenszeichen": Nachweis zellphysiologisch relevanter Parameter mittels

Immunfluoreszenz

Immunzytochemischer Nachweis von T-Zell-Subpopulationen in der

Mausmilz

"Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA)"

Immunologische Grundlagen der Allergie - diagnostischer Nachweis und

Therapieansätze

Phänotypische Darstellung von Differenzierungs- und Aktivierungsantigenen mittels Durchflußzytometrie

Grundlagen und Anwendungen der Polymerase-Kettenreaktion

Mastzelln: morphologische Charakterisierung und Bestimmung der Aktivierung


Prüfung(en)


Klausur: Zelluläre und Molekulare Grundlagen der Immunologie

Klausur Benotet Pflicht 100




Die Prüfung wird insgesamt drei Mal angeboten: Im ersten und im zweiten Prüfungszeitraum des laufenden Semesters und im ersten Prüfungszeitraum des Folgesemesters. Modulnote geht mit LP-Zahl gewichtet in die Endnote ein.

Literaturangaben Fachbücher:

• Janeway „Immunobiology“, 6. Auflage

• „Roitt´s Essential Immunology“ (Essentials), 11. Auflage

• B. Alberts „Lehrbuch der Molekularen Zellbiologie“, 3. Auflage

weitere Angaben Alte Modulbezeichnung: MNF-bcmb264



MNF-bcmb265 Molekulare Grundlagen der Pathogen-Wirt-Interaktion


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Stefan Ehlers


Beratung zum Modul Prof. Dr. Stefan Ehlers


Veranstalter Leibniz-Institut Borstel




Praktikum Molekulare Grundlagen der Pathogen-Wirt-

Interaktion

4 Pflicht

Seminar Molekulare Grundlagen der Pathogen-Wirt-

Interaktion

1 Pflicht


Seminar: 8

Lehrende(r) Prof. Dr. Stefan Ehlers

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch





Lernziele Kennenlernen verschiedener Pathogene (grundlegende Unterschiede,

Gemeinsamkeiten)

Erkennen von grundlegenden Mechanismen der Pathogen-Wirtszell Interaktion und Pathogen-induzierten Signaltransduktion

Erkennen von molekularen und zellbiologischen Konsequenzen der Pathogen-Wirt Interaktion (Infektionsimmunologie)

Verstehen ausgewählter molekularer diagnostischer Methoden Erlernen biochemischer, molekularbiologischer und zellbiologischer Methoden

Lehrinhalte • Einführung in die gute mikrobiologische Laborpraxis

• Analyse der Signaltransduktion in mykobakterien-infizierten murinen Makrophagen; Keimzahlentwicklung in mykobakterien-infizierten Knochenmarksmakrophagen der Maus

• TH2-Deviation durch Bestandteile humanpathogener Würmer

• Immuntherapie und zelluläre Zytotoxizität induziert durch Biological Response Modifiers aus Mykobakterien

• diagnostisch und epidemiologisch relevante molekulare Genetik von Mykobakterien

• Resistenzgenbestimmung bei Mycobacterium tuberculosis mittels Real-Time-PCR / DNA-Sequenzierung

• Nachweis humanpathogener Erreger in Gewebeschnitten

• Klonierung aktiver Fragmente monoklonaler Antikörper, Fluoreszenznachweis pathogener Keime, Proteinreinigung, Bindungsassays

• Erkennung pathogener Strukturen durch Mustererkennungs-Rezeptoren

• Bearbeitung aktueller Literatur mit Bezug zu den Praktikumsinhalten

• Vorstellung aktueller Literatur in Seminarform, Einordnung in den Kontext des Moduls


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Molekulare Grundlagen der Pathogen-Wirt-Interaktion

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Seminarleistung: Molekulare Grundlagen der Pathogen-Wirt-Interaktion


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich zu gleichen Anteilen aus der mündlichen Prüfung und der Seminarleistung zusammen.




Literaturangaben Originalpublikationen, Internet,

Fachbücher:

• Janeway „Immunobiology“, 6. Auflage

• Alberts” Molecular Biology of the Cell”

• S.H.E. Kaufmann & H. Hahn “Mycobacteria and TB” (2003), Karger Verlag

• T. Parish & N.G. Stoker “Mycobacterium tuberculosis protocols” (2000), Humana Press

• W.N. Rom & S.M.Garay “Tuberculosis” (2004)




MNF-bcmb266 Molekulare Analyse des eukaryotischen Genoms


Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Christian Jung Telefon 0431-880-7364, Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Christian Jung






Vorlesung: Aufbau des eukaryotischen Genoms Seminar: Analyse des eukaryotischen Genoms Praktikum: Genomanalyse

1 1 2

Pflicht Pflicht Pflicht

Zahl der Plätze je nach Modul

Lehrende(r) je nach Modul

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch



je nach Modul

Lernziele Die Studierenden erweitern ihre fachlichen Grundlagen und erlernen komplexe Zusammenhänge mit interdisziplinären Konzepten zu bearbeiten.

Die praktischen Fähigkeiten in der Pflanzengenomforschung und der Anwendung in der agrarwissenschaftlichen Forschung und Entwicklung werden vertieft und die Selbstständigkeit in der Projektbearbeitung erweitert

Lehrinhalte Fachspezifische Vertiefung (FSV)

Aktuelle Fragestellungen von agrarwissenschaftlicher Relevanz


Prüfung(en)



Prüfung(en)


Klausur: Molekulare Analyse des eukaryotischen Genoms


Protokoll: Molekulare Analyse des eukaryotischen Genoms


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung ergibt sich aus zu 20 % der Klausur und zu 80 % aus dem Protokoll.


Literaturangaben

weitere Angaben Die Studierenden wählen aus dem Nebenfachangebot der Fachabteilung Pflanzenzüchtung der Agrar- und Ernährungswissenschaftlichen Fakultät für Studierende im Studiengang Biologie bzw. Biochemie und Molekularbiologie mit dem Abschluss Master of Science.

Die jeweils aktuelle Liste der angebotenen Wahlmodule ist auf der Internet-Seite der Agrar- und Ernährungswissenschaftlichen Fakultät unter der Rubrik „Nebenfachstudierende“ zu finden.



MED-mib001-02a Molekulare Infektionsbiologie: Molekulare Virologie Semesterlage / Dauer Angebot jährlich im: Wintersemester

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Helmut Fickenscher Telefon 0431-597-3300, Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Helmut Fickenscher






Vorlesung Virologie 2 Pflicht

Seminar Virologie 2 Pflicht

Praktikum Virologie 11 Pflicht

Zahl der Plätze Vorlesungen: 9 Seminar: 9 Praktikum: 9

Lehrende(r) Prof. Dr. H. Fickenscher, Prof. Dr. P. Rautenberg, PD Dr. T. Harder, PD Dr. M. Winkler

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden






Lernziele Die Studierenden kennen die Mechanismen der Molekularen Virologie und die Grundzüge der virologischen Systematik. Die Studierenden beherrschen grundlegende Methoden der Molekularen Biologie, der bakteriellen Genetik und der Virologie, sowie des Arbeitens mit infektiösen Materialien.



Lehrinhalte Virusaufbau und Virusgenome, Viruseintritt, RNA-Virus-Replikation, Reverse Transkription und Rekombination, DNA-Virus-Replikation, Genexpression, RNA-Prozessierung, Translationsstrategien, Reifung und Freisetzung von Viren, Latenz und Reaktivierung, Transformation und Onkogenese, Pathogenese, Antivirale Therapie, Impfungen; Grundlagen diagnostischer Verfahren, Methoden der molekularen Virologie am Beispiel therapieresistenter Cytomegaloviren und der Rekonstitution replikationsfähiger Viren aus bacterial artificial chromosomes.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Molekulare Infektionsbiologie: Virologie

Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 50

Seminarleistung: Molekulare Infektionsbiologie: Virologie

Seminarvortrag Benotet Pflicht 25

Protokoll: Molekulare Infektionsbiologie: Virologie Protokoll Benotet Pflicht 25


Die Prüfungsleistung setzt sich aus dem Seminarvortrag (25%), dem Praktikumsprotokoll (25%) und abschließend der standardisierten mündlichen Prüfung (50%) zusammen.


Literaturangaben • Vorlesungsskript, Original-Publikationen, Praktikumsskript • Flint et al. “Principles of Virology”, (2009), 3. Auflage ASM press • Modrow et al.“Molekulare Virologie“, (2010), 3. Auflage, Spektrum

Akademischer Verlag

weitere Angaben Alte Modulbezeichnung war MNF-bcmb268



MED-oncol01 Onkologie I Semesterlage / Dauer Beginn des Moduls im: Sommersemester oder Wintersemester

Dauer: 2 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. rer. nat. Susanne Sebens

Beratung zum Modul Prof. Dr. rer. nat. Susanne Sebens


Veranstalter Institut für Experimentelle Tumorforschung




Vorlesung: Vertiefungsbereich Onkologie I (WS) 2 Pflicht

Seminar: Molekularen Onkologie (SS) 2 Pflicht

Seminar: Experimentelle Tumorforschung (WS und SS) 1 Pflicht

Praktikum: Experimentelle Tumorforschung (WS oder SS) 9 Pflicht


Lehrende(r) Prof. Dr. Susanne Sebens, Prof. Dr. Anna Trauzold, PD Dr. Eva Murga, Prof. Dr. Heiner Schäfer, Dr. Christian Röder, Dr. Sanjay Tiwari, Prof. Dr. Matthias Peipp, Prof. Dr. Thomas Valerius

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester

Angebotshäufigkeit Jährlich im Winter- und Sommersemester


30 Stunden


450 Stunden



Lehrsprache Deutsch (Praktikum), Englisch (Vorlesung und Seminare)


Vertiefte Kenntnisse in Biochemie, Genetik und Zellbiologie



Lernziele Vertiefte Kenntnis, Verständnis und praktische Fähigkeiten in der Molekularen Onkologie und Zellbiologie unter besonderer Berücksichtigung naturwissenschaftlicher Aspekte der klinisch-onkologischen Forschung, Themenschwerpunkte sind: Ursachen der Krebsentstehung, Tumorsuppressor-/Onkogene, Dysregulation von Zellteilung, Epigenetik/Mikro-RNA, Formen des Zelltodes,

Lehrinhalte Apoptoseresistenzmechanismen, Tumorevasion, Entzündung & Krebs, Maligne Progression & Metastasierung, Angiogenese, Metabolismus von Tumorzellen, Tumorevolution, Krebsstammzellen, Tumordiagnostik, Molekulare Bildgebung, Onkologische Therapieverfahren, methodische Aspekte zellbiologischer und molekular-onkologischer Forschung

Vermittelte Kompetenzen Verständnis und Darstellung von onkologischer Primärliteratur, Planung und Durchführung von Experimenten in der Tumorforschung (Modelle, Hypothesen, Kontrollen, statistische Auswertung, Darstellung) inkl. Beschreibung und kritische Diskussion von wissenschaftlichen Texten


Prüfung(en)


Seminarvortrag: Molekulare Onkologie Seminarvortrag Benotet Pflicht 50

Protokoll: Experimentelle Tumorforschung Protokoll Benotet Pflicht 50

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich zu gleichen Anteilen aus dem Seminarvortrag und dem Protokoll zusammen (zusammengesetzte Prüfung).

Literaturangaben Lehrbücher, Originalpublikationen, Vorlesungsskript, Versuchsanleitungen

weitere Angaben nur alternativ zu med-oncol02 wählbar weitere Informationen unter: http://www.iet.uni-kiel.de/de/lehre



MED-oncol02 Onkologie II Semesterlage / Dauer Angebot jährlich im: Sommersemester

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. rer. nat. Susanne Sebens

Beratung zum Modul Prof. Dr. rer. nat. Susanne Sebens


Veranstalter Institut für Experimentelle Tumorforschung




Seminar: Molekulare Onkologie (SS) 2 Pflicht

Praktikum: Experimentelle Tumorforschung (WS oder SS) 4 Pflicht


Lehrende(r) Prof. Dr. Susanne Sebens, Prof. Dr. Anna Trauzold, PD Dr. Eva Murga, Prof. Dr. Heiner Schäfer, Dr. Christian Röder, Dr. Sanjay Tiwari, Prof. Dr. Matthias Peipp, Prof. Dr. Thomas Valerius

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Jährlich im Sommersemester


30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Englisch


Vertiefte Kenntnisse in Biochemie, Genetik und Zellbiologie

Lernziele Grundlegende Kenntnis, Verständnis und praktische Fähigkeiten in der Molekularen Onkologie und Zellbiologie unter besonderer Berücksichtigung naturwissenschaftlicher Aspekte der klinisch-onkologischen Forschung, Themenschwerpunkte sind: Ursachen der Krebsentstehung, Tumorsuppressor-/Onkogene, Dysregulation von Zellteilung, Epigenetik/Mikro-RNA, Formen des Zelltodes, Apoptose-



Lehrinhalte resistenzmechanismen, Tumorevasion, Entzündung & Krebs, Maligne Progression & Metastasierung, Angiogenese, Tumorevolution, Krebsstammzellen, Metabolismus von Tumorzellen, Tumordiagnostik, Molekulare Bildgebung, Onkologische Therapieverfahren, methodische Aspekte zellbiologischer und molekular-onkologischer Forschung

Vermittelte Kompetenzen Grundlagen zum Verständnis und Darstellung von onkologischer Primärliteratur, Planung und Durchführung von Experimenten in der Tumorforschung (Modelle, Hypothesen, Kontrollen, statistische Auswertung, Darstellung) inkl. Beschreibung und kritische Diskussion von wissenschaftlichen Texten


Prüfung(en)


Seminarvortrag: Molekulare Onkologie Seminarvortrag Benotet Pflicht 100

Protokoll: Experimentelle Tumorforschung Protokoll unbenotet Pflicht -


Literaturangaben Lehrbücher, Originalpublikationen, Vorlesungsskript, Versuchsanleitungen

weitere Angaben nur alternativ zu med-oncol01 wählbar weitere Informationen unter: http://www.iet.uni-kiel.de/de/lehre




Toxikologie für Naturwissenschaftler Med-tox001


Prof. Dr. Edmund Maser

Veranstalter


Institut für Toxikologie und Pharmakologie für Naturwissenschaftler

Fakultät

Medizinische Fakultät

Prüfungsamt


Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer Zwei Semester


Arbeitsaufwand pro Leistungspunkt 30

Arbeitsaufwand insgesamt 450

Präsenzstudium 170

Selbststudium 280

Lehrsprache Deutsch


Modulveranstaltung(en)

Veranstaltungsart Lehrveranstaltungstitel Pflicht/Wahl

Vorlesung Grundlagen der Toxikologie für Naturwissenschaftler Pflicht

Vorlesung Einführung in die Umwelttoxikologie Pflicht

Vorlesung Spezielle Toxikologie für Naturwissenschaftler Pflicht



Seminar Ausgewählte Kapitel der Toxikologie Pflicht

Seminar Toxikologische Chemikalienbewertung und Risiko-abschätzung

Pflicht

Praktikum Toxikologisches Praktikum für Naturwissenschaftler Pflicht

Prüfung(en)


Klausur: Grundlagen der Toxikologie Klausur unbenotet Pflicht -

Mündliche Prüfung: Spezielle Toxikologie Mündliche Prüfung

Benotet Pflicht 100

Praktikumsprotokoll: Toxikologisches Praktikum für Naturwissenschaftler

Protokoll Unbenotet Pflicht -

Seminarvortrag: Ausgewählte Kapitel der Toxikologie

Seminarvortrag Unbenotet Pflicht -



Lehrinhalte

Vorlesung Grundlagen der Toxikologie: Toxikokinetik, Mechanismen toxischer Wirkungen, toxikologische

Prüfverfahren und Chemikalienbewertung, Kanzerogenese Vorlesung Spezielle Toxikologie: Natürliche

Gifte, regulatorische Toxikologie, Toxikologie relevanter Umweltschadstoffe, Schadstoffanalytik,

Innenraumluft, Lebensmitteltoxikologie

Vorlesung Umweltttoxikologie: Schadstoffkreislaufe, Akkumulationen, toxische Effekte auf Ökosysteme,

aktuelle Themen der Umwelttoxikologie, Bewertungen;

Seminar Chemikalienbewertung: Methoden und Konzepte der toxikologischen Chemikalienbewertung,

Sicherheitsbeurteilung und Risikoabschätzung

Praktikum mit Seminar: Spurenanalytik, Vermittlung molekular-biologischer Methoden, Einführung in die

Zellkultur und Zell-toxikologie, Fremdstoffmetabolismus

Lernziele

Die Studierenden können die toxische Wirkung und die toxikologische Relevanz verschiedener Schadstoffgruppen für Mensch und Umwelt abschätzen; sie sind fähig, toxikologische Risikoabschätzungen zu beurteilen; sie können verschiedenste Methoden für toxikologische Untersuchungen anwenden

Literatur



Praktikumsskript, Vorlesungsunterlagen; Lehrbücher:

• H. Greim, E. Deml (Hrsg.), Toxikologie: Eine Einführung für Naturwissenschaftler und Mediziner, VCH VerlagsgesellschaftmbH, Weinheim;

• H. Marquardt, S. Schäfer (Hrsg.), Lehrbuch derToxikologie, Wissenschaftliche Verlagsgesellschaft mbH,Stuttgart;

• F.-X. Reichel (Hrsg.), Taschenatlas der Toxikologie:Substanzen, Wirkungen, Umwelt, Georg Thieme Verlag, Stuttgart;

• K. Fent, Ökotoxikologie – Umweltchemie, Toxikologie, Ökologie, Thieme Verlag, Stuttgart

Weitere Angaben


Bachelor, 1-Fach, Biochemie und Molekularbiologie, (Version 2016)

Pflicht 1.



MNF-bcmb271 Indikator Proteine


Modulverantwortliche(r) Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth Telefon 0431-880-3888, Email: [email protected]

Beratung zum Modul Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth






Seminar Indicator proteins Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth

2 Pflicht

Praktikum Indicator proteins Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth

8 Pflicht

Zahl der Plätze Seminar: 4 Praktikum: 4

Lehrende(r) Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden


Selbststudium 174Stunden

Lehrsprache Deutsch


Vertiefte Kenntnisse in Biochemie, Biophysik und Molekularbiologie

Lernziele Einführung in den Gebrauch von Indikatorproteinen

Verständnis und Darstellung von Originalliteratur, soziale und fachliche Kompetenzen durch Einbeziehung in die bestehende Labor-Arbeitsgruppe.

Stark übergreifendes Methodenspektrum: Eigenständige Planung und Durchführung eines Projektes zur Konzeption und/oder zur Optimierung eines neuartigen Reporterproteins beginnend von der Entwicklung einer Klonierstrategie, über Klonierung, Proteinexpression, Proteinaufreinigung, spektroskopische In-Vitro-Charakterisierung, transiente Transfektion von eukaryontischen Zellen, bis hin zu physiologischen Experimenten zur Charakterisierung der In-Vivo-Performance des neuen Indikators und kinetischen Analysen der gewonnenen Datenreihen.



Lehrinhalte Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in das Design, den Gebrauch und die Limitierungen fluoreszierender und lumineszierender Reporterproteine.

Grundzüge der zellulären Signaltransduktion, des subzellulären 'Cross- Talks' und des Membrantransportes.

Schlüsselqualifikationen k.A..

Prüfung(en)


Seminarleistung: Indicator Proteins Seminarleistung Benotet Pflicht 50

Protokoll: Indicator Proteins Protokoll Benotet Pflicht 50



Literaturangaben Primärliteratur: Reviews and peer-reviewed original articles

Sekundärliteratur: Chalfie & Kain "Green Fluorescent Protein"




MNF-bcmb272 Proteinkristallographie

Semesterlage / Dauer ab 1. Semester

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Axel Scheidig, Zentrum für Biochemie und Molekularbiologie








Seminar Proteinkristallographie 2 Pflicht

Praktikum Proteinkristallographie 4 Pflicht


Lehrende(r) Prof. Dr. Axel Scheidig

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Vertiefte Kenntnisse in Biophysik, erfolgreiche Teilnahme am Modul MNF-bcmb206

Lernziele Die Studierenden erwerben einen umfassenden Einblick in die Expression, Reinigung und Kristallisation von Proteinen. Sie können die entsprechenden Experimente eigenständig planen und durchführen. Die Studierenden haben praktische Erfahrung in verschiedenen Techniken der Proteinkristallisation. Weiterhin erlangen die Studierenden die Fähigkeit Datenmessungen und Auswertung sowie einfache Verfeinerungen durchzuführen.

Lehrinhalte Die Schritte Proteinexpression, Reinigung, Kristallisation, Röntgendiffraktion und Auswertung werden in den Grundzügen vermittelt und praktisch durchgeführt.

Anhand von aktuellen Fachpublikationen werden die erworbenen Kenntnisse für die kritische Bewertung erprobt.





Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Proteinkristallographie Seminarleistung Benotet Pflicht 50

Protokoll: Proteinkristallographie Protokoll Benotet Pflicht 50



Literaturangaben Primärliteratur: Reviews and peer-reviewed original articles Sekundärliteratur: D. Blow “Outline of Crystallography for Biologists”




MNF-bcmb273 Molekulare Biologie der Vitamine

Semesterlage / Dauer Ab 2. Semester Dauer: 1 Semester (Sommer- und Wintersemester)

Modulverantwortliche(r) PD Dr. Rainer Schindler Telefon 0431-880-3950, Email: [email protected]

Beratung zum Modul PD Dr. Rainer Schindler






Vorlesung Vitamine 2 Pflicht

Übungen zur Vorlesung Vitamine 1 Pflicht


Übungen: 20 Lehrende(r) PD Dr. Rainer Schindler

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Kenntnisse der Grundlagen der Zoologie, Chemie, Biochemie, Human – und Ernährungsbiologie sowie der Labortechnik

Lernziele Die Studierenden -überblicken, welchen Beitrag Pflanzen, Mikroorganismen und Tiere zur Entstehung von Vitaminen leisten -kennen Struktur, molekulare Wirkmechanismen, Stoffwechsel und Bestimmungsmethoden der Vitamine -verfügen über Grundlagenwissen bezogen auf Wechselwirkungen zwischen Vitaminen einerseits und Pharmaka, Schadstoffen, ess. Elementen sowie Nähr – und Begleitstoffen andererseits. -sind in der Lage den Vitamin –Versorgungsgrad des Menschen zu

beurteilen, das Auftreten erster Mangelsymptome zu erkennen bzw. Empfehlungen zu deren Vermeidung auszusprechen.



Lehrinhalte Molekulare Wirkungsmechanismen, Stoffwechsel, Wirkungsweise von Antagonisten und Synergisten sowie Bestimmungsmethoden der Vitamine; Nahrungsquellen und deren Beitrag zur Bedarfssicherung sowie praktische Aspekte bei der Vitaminversorgung, insbesondere in Verbindung mit entsprechend exponierten Personen; Vorkommen, Symptomatologie, Diagnostik und Therapie von Vitaminmangelkrankheiten


Prüfung(en)


Klausur: Molekulare Biologie der Vitamine Klausur Benotet Pflicht 100



Literaturangaben • M. E. Shils, J. A. Olson u. M. Shike „Modern Nutrition in Health and • Disease ” (1994), Lea and Febiger • K.H. Bässler, I. Golly, D. Loew u. K. Pietrzik „Vitamin-Lexikon“, (2002), Urban

und Fischer • C. E. Bowell u. J. W. Erdman „Nutrient Interactions“, (1988) Marcel Dekker • J. I. Boullata u. V. T. Armenti „Handbook of Drug-Nutrient Interactions“, (2004)

Humana Press • Graedon u. T. Graedon „Dangerous Drug Interaction“, St. Martin’s • Paperbacks • weitere Lehrbücher werden zu Beginn der Vorlesung vorgestellt. • Kopien der in den Vorlesungen gezeigten Folien werden teilweise zur

Verfügung gestellt.




MNF-bcmb277 Membrantransport


Modulverantwortliche(r) Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth Telefon 0431-880-3888, Email: [email protected]







Praktikum Membrantransport Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth

8 Pflicht

Seminar Membrantransport Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth

2 Pflicht


Seminar: 4 Lehrende(r) Priv.-Doz. Dr. Christoph Plieth

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in der Molekularbiologie, Biochemie, Biophysik und Zellbiologie

Lernziele Verständnis der Funktion von Transportproteinen Verständnis und Darstellung von Originalliteratur, Soziale und fachliche Kompetenzen durch Einbeziehung in die bestehende Labor-Arbeitsgruppe. Stark übergreifendes Methodenspektrum: Eigenständige Planung und Durchführung eines Projektes zur Charakterisierung eines Transporterproteins beginnend von der Entwicklung einer Klonierstrategie, über Klonierung, Proteinexpression, Proteinaufreinigung, transiente Transfektion von eukaryontischen Zellen, bis hin zu zell- und elektrophysiologischen Experimenten zur Charakterisierung der In-Vivo-

Performance des Transporters und kinetischen Analysen der gewonnenen Daten-reihen.



Lehrinhalte Neben Grundzügen der zellulären Signaltransduktion erwerben die Studierenden einen umfassenden Einblick in die Mechanismen transmembraner Transportprozesse, und deren Charakterisierung mittels elektrophysiologischer und fluoreszenzoptischer Methoden.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Membrantransport Seminarleistung Benotet Pflicht 50

Protokoll: Membrantransport Protokoll Benotet Pflicht 50



Literaturangaben Primärliteratur: Reviews and peer-reviewed original articles




MNF-bcmb278 Proteinchemie: Expression und Reinigung


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Axel J. Scheidig

Beratung zum Modul Prof. Dr. Axel J. Scheidig, Prof. Dr. Joachim Grötzinger, Prof. Dr. Matthias Leippe, Prof. Dr. Eric Beitz; PD Dr. Inken Lorenzen






Seminar: Expression und Reinigung von Proteinen

2 Pflicht

Praktikum: Expression und Reinigung von Proteinen

8 Pflicht

Zahl der Plätze Seminar: 10 Praktikum: je nach Arbeitsgruppe 2-4 (bevorzugt in Zweier-Gruppen)

Lehrende(r) Prof. Dr. Axel J. Scheidig Prof. Dr. Joachim Grötzinger Prof. Dr. Matthias Leippe Prof. Dr. Eric Beitz PD Dr. Inken Lorenzen

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Im Wintersemester und/oder Sommersemester


30 Stunden


300 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in der Molekularbiologie, Biochemie und Biophysik



Lernziele Die Teilnehmer erlangen einen Überblick über die wichtigsten Expressionssysteme und Proteinreinigungstechniken. Sie können unter Vorgabe der cDNA und Nutzung von Internet-Programmen geeignete Proteinkonstrukte für die Expression auswählen. Sie erlangen die Fähigkeit, das Design von entsprechende Expressionsplasmide sowie die zugehörigen molekular-biologischen Arbeitsschritte durchführen. Sie können eigenständig die Expression und Reinigung von Proteinen planen und durchführen. Problemsituationen wie ‚codon usage‘, Fehlfaltung und posttranslationale Modifizierung können analysiert und Strategien für die Problemlösung erarbeitet werden.

Lehrinhalte Planung und Konstruktion von Expressionsplasmiden Expressionstests und Expressionsoptimierung Proteinreinigung mit Hilfe klassischer Methoden und moderner Methoden.

Vermittelte Kompetenzen Die Teilnehmer erlangen einen Überblick über die wichtigsten Expressionssysteme und Proteinreinigungstechniken. Sie können unter Vorgabe der cDNA und Nutzung von Internet-Programmen geeignete Proteinkonstrukte für die Expression auswählen. Sie erlangen die Fähigkeit, das Design von entsprechende Expressionsplasmide sowie die zugehörigen molekular-biologischen Arbeitsschritte durchführen. Sie können eigenständig die Expression und Reinigung von Proteinen planen und durchführen.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Proteinchemie: Expression und Reinigung


Protokoll: Proteinchemie: Expression und Reinigung Protokoll Benotet Pflicht 50

Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich, mit gleicher Gewichtung, aus der Seminarleistung und dem Protokoll zusammen.


Literaturangaben Mülhardt – Der Experimentator: Molekularbiologie / Genomics. Rehm – Der Experimentator: Proteinbiochemie / Proteomics Schrimpf – Gentechnische Methoden

weitere Angaben



MNF-bcmb280 Cellular Redox Processes, ROS and Antioxidants

Semesterlage/Dauer 1. Semester, Dauer 1 Semester

Verantwortliche(r) PD Dr. Christoph Plieth Telefon 0431 880 3888, Email [email protected]







Cellular Redox Processes, ROS and Antioxidants (Praktikum)

8 Pflicht

Cellular Redox Processes, ROS and Antioxidants (Seminar)

2 Pflicht

Zahl der Plätze 4

Lehrende(r) PD Dr. Christoph Plieth

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden




Lehrsprache Deutsch

Empfohlene Voraussetzung Grundlagenkenntnisse in der Molekularbiologie, Biochemie und Biophysik

Lernziele Einführung in zelluläre Redoxprozesse, enzymatische Redoxketten, Entstehung von reaktiven Sauerstoffspezies (ROS) und deren Scavenging durch Antioxidantien. Verständnis und Darstellung von Originalliteratur.

Verständnis und Anwendung molekularbiologischer, zellbiologischer und biophysikalischer Methoden.

Eingehende Analysen der gewonnenen Datensätze.



Lehrinhalte 1) Einblick in die Vielfalt zellulärer Redoxprozesse und in die Grundzüge der zellulären Signaltransduktion, des subzellulären 'Cross-Talks' und des Membrantransportes.

2) Überblick über die Vielfalt der Methoden, mit denen sich zelluläre Redoxprozesse untersuchen und quantifizieren lassen.

3) 'Experimental Design': Von einer naturwissenschaftlichen Fragestellung über Hypothesen zu Experimenten, die in der Lage sind, die aufgestellten Hypothesen zu veri- oder zu falsifizieren.

Vermittelte Kompetenzen 1) Soziale und fachliche Kompetenzen durch Einbeziehung in die bestehende Labor-Arbeitsgruppe.

2) Eigenständigkeit in praktischer Laborarbeit und in der Durchführung eines Projektes zur Untersuchung von zellulären Redoxprozessen auf der Basis eines vorgegebenen Methodenspektrums, wie z.B. O2-Elektroden, Pulsamplitudenchlorophyllfluoreszenzmodulation (PAM), Quantifizierung antioxidativer Aktivitäten und ROS-Scavenger, und in-vivo-Monitoring von Redoxprozessen mit Hilfe Fluoreszenz-Ratio-Imaging.

Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Cellular Redox Processes, ROS and Antioxidants


Protokoll: Cellular Redox Processes, ROS and Antioxidants




Literatur Primärliteratur: Reviews and peer-reviewed original articles Logan DC 2007 "Plant Mitochondria" Blackwell Publ. Banerjee, R 2008 "Redox Biochemistry" Wiley Publ.

weitere Angaben Wählbar als Wahlmodul für bcmb221, bcmb207, bcmb224 und bcmb222.



MNF-bcmb282 Industriepraktikum / Berufspraktikum

Industrial internship / Professional practical training

Semesterlage / Dauer In der Regel in der vorlesungsfreien Zeit (abhängig vom gewählten Betrieb)

Modulverantwortliche(r) Prüfungsausschussvorsitzende(r) für den M.Sc. Studiengang Biochemie und Molekularbiologie

Beratung zum Modul Prüfungsausschussvorsitzende(r) für den M.Sc. Studiengang






Industriepraktikum 10 Wochen Wahlpflicht

Zahl der Plätze Abhängig vom gewählten Betrieb

Lehrende(r) Abhängig vom gewählten Betrieb

Leistungspunkte 10

Bewertung unbenotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Im Wintersemester und/oder Sommersemester


30 Stunden


300 Stunden


Selbststudium 25 Stunden (Literatursuche und Abfassen des Berichts)


Voraussetzungen • Abhängig vom gewählten Betrieb • Verpflichtende vorherige Absprache mit einem Betreuungsdozenten aus der

Biochemie und Molekularbiologie • Betreuung während des Praktikums durch den Betreuungsdozenten • Genehmigung für MSc Biochemie und Molekularbiologie 1-Fach durch

Prüfungsausschussvorsitzenden erforderlich


Vertiefte Kenntnisse im Fachgebiet des Praktikums



Lernziele • Die Studierenden sollen Querschnitts- und Praxiskompetenzen entsprechend dem von ihnen gewähltem Profil erwerben.

• Ziel des Industrie-/Berufspraktikums ist es, den Studierenden einen Einblick in mögliche Berufs- und Tätigkeitsfelder zu eröffnen. Es vermittelt fachbezogene Kenntnisse und Erfahrungen aus der beruflichen Praxis, die dem besseren Verständnis des Lehrangebotes dienen.

• Ein nicht-chemisches Berufspraktikum dient dem Erwerb zusätzlicher, nicht-biochemischer Fachkompetenzen und Erfahrungen aus der beruflichen Praxis, die mit den im Wahlmodulbereich zu erwerbenden Kompetenzen vergleichbar sind. In beiden Fällen soll das Berufspraktikum die Motivation für das Studium fördern, individuelle Schwerpunkte im Studium zu setzen helfen und den Berufsübergang erleichtern.

Lehrinhalte • Berufspraxis in einem biochemisch / chemischen / biotechnologischen oder molekularbiologischen Betrieb bzw. Forschungskreis

Vermittelte Kompetenzen Abhängig vom gewählten Betrieb / Forschungsinstitut

Schlüsselqualifikationen • Praxiserfahrung in einem Industriebetrieb bzw. Forschungsinstitut • Sozial- und Selbstkompetenz

Prüfung(en)


Seminarleistung: Industriepraktikum Seminarleistung bestanden Pflicht 50

Protokoll: Industriepraktikum Protokoll bestanden Pflicht 50


Praktikumszeugnis des betreffenden Betriebes; Schriftlicher Bericht und Vortrag in der Gruppe des Betreuungsdozenten.

Literaturangaben Abhängig vom gewählten Betrieb

weitere Angaben • Für dieses Modul gilt die Praktikumsordnung der CAU in ihrer jeweils gültigen Fassung.

• Für die Anerkennung der vorgesehenen 10 LP für ein Industriepraktikums in einem biotechnologischen/medizinischen Betrieb ist eine vorherige Abstimmung mit einem Betreuungsdozenten aus der Biochemie und Molekularbiologie erforderlich.

• Es besteht kein Anspruch auf Vermittlung eines Praktikumsplatzes.



MNF-bcmb285 Schüler*innen-Labor

Semesterlage/ Dauer 1. – 4. M.Sc und Beteiligung von 3. – 6. B.Sc Dauer: Praktikum und Seminar: 2 Tage (Anfang Oktober) Organisation: Juni - September

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Axel Scheidig

Beratung zum Modul Prof. Dr. Axel Scheidig & Studierende des Studiengangs





Lehrveranstaltungen Bezeichnung der Lehrveranstaltung / Lehrende(r) ECTS Status

Organisation Seminar Praktikum

3 0,5 1,5

Wahlpflicht Wahlpflicht Pflicht

Zahl der Plätze 10 (Organisation: 3-4; Seminar & Praktikum: 10)

Lehrende(r) Prof. Dr. Axel Scheidig PD Dr. Christoph Plieth Studierende der Biochemie und Molekularbiologie

Leistungspunkte 5

Bewertung unbenotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Start im Sommersemester und Durchführung im Wintersemester


30 Stunden


150 Stunden

Präsenzstudium 30 Stunden (2,5 Tage Betreuung der Schüler*innen im Labor) 40 Stunden Vorbereitung und Testen der Praktikumsversuche

Selbststudium 80 Stunden (Organisation und Planung)

Lehrsprache Deutsch

Voraussetzungen Grundpraktikum Biochemie bzw. umfangreiche Laborerfahrung


Grundprinzipien der Transkription und Translation; einfache molekularbiologische Methoden (PCR, Restriktionsverdau, Transformation, Proteinreinigung)

Lernziele Die Studierenden erwerben im Rahmen der Organisation eines Schülerlabors die Fähigkeiten,

• zielgruppenorientierte Experimente zu planen, die theoretischen Grundlagen zu lehren und im Labor deren Durchführung zu betreuen;

• notwendige Fördermittel aus der Wirtschaft durch Kontaktaufnahme mit Unternehmen und Projektpräsentation zu akquirieren;

• Interessenten für das Studienfach „Biochemie und Molekularbiologie“ zu werben und zu beraten.



Die Studierenden lernen, wie man komplizierte Experimente so optimiert, dass eine erfolgreiche Durchführung durch Fachunkundige unter entsprechender Betreuung gewährleistet werden kann. Sie sind weiterhin dazu befähigt, grundlegende für die Experimente notwendige biochemische Kenntnisse publikumsorientiert in Form von Seminaren weiterzugeben, Arbeitstechniken zu vermitteln sowie Ergebnisse fachdidaktisch auszuwerten und zu diskutieren.

Lerninhalte • geeignete molekularbiologische Experimente wie PCR, Restriktionsverdau und Transformation planen und optimieren

• Proteinreinigungsprotokolle etablieren • Kommunikation mit Schulen, Firmen und Presse • Erstellen zielgruppenorientierter Präsentationen • Betreuung und Hilfestellung bei der selbständigen Durchführung

molekularbiologischer Experimente • Interesse und Begeisterung am Studium wecken • Aufklärung über Voraussetzungen und Inhalte des Studiengangs • Erläuterung komplexer Zusammenhänge auf einfache Art und Weise • Übernahme von Verantwortung • Problemlösung

Schlüsselqualifikationen Durch die Beteiligung am Modul erlangt der/die Studierende

• Lehrkompetenz • Methodenkompetenz • Organisationserfahrung

Nach Abschluss dieses Moduls ist der/die Student/In in der Lage:

• Organisation: o Planung zielgruppenorientierter Experimente durchzuführen o Interessenten anzuwerben o Kontakte zu Firmen aufzubauen und durch Präsentation des

Projektes entsprechende Fördermittel zu akquirieren o Experimente zu optimiere, um eine erfolgreiche Durchführung

selbst durch Fachunkundige zu gewährleisten • Seminar:

o Vermittlung grundlegender biochemischer Kenntnisse durch geeignete Präsentation.

• Praktikum: o Praktikanten intensiv zu betreuen und zu unterstützen o Arbeitstechniken zu vermitteln o Seminarinhalte zu vertiefen o Rückfragen detailliert aber leicht verständlich zu beantworten o Praktikanten hinsichtlich eines Biochemie-Studiums zu beraten o Ergebnisse entsprechend auszuwerten und zu diskutieren o angemessenes Verhalten und Sicherheitsregeln im Labor zu

vermitteln

Prüfung(en) Bescheinigung der erfolgreichen Teilnahme durch Modulverantwortlichen

Prüfung(en)


Praktikumsleistung: Schüler’innen-Labor Praktikumleistung Unbenotet Pflicht 100




Bescheinigung der erfolgreichen Teilnahme durch Modulverantwortlichen


Weitere Angaben Das Modul muss über mehrere Semester durchgeführt werden (mindestens zweifache Teilnahme), um geforderten Arbeitsaufwand zu erfüllen (siehe Fußnote 1) *1 Bonus-System:

- Im Bachelor-Studiengang können durch Beteiligung Bonuspunkte erworben werden, die dann im Master angerechnet werden.

- Das Modul umfasst grob eine zweimalige Beteiligung am Schülerlabor, wobei beim zweiten Mal organisatorische Aufgaben übernommen werden sollten (die meisten Punkte verteilen sich auf die Organisation).



MNF-bcmb286 Forschungsmodul

Semesterlage/ Dauer 1. – 4. M.Sc während des Masterstudiums (bevorzugt im 3. Semester)

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Axel Scheidig






Lehrveranstaltungen Bezeichnung der Lehrveranstaltung / Lehrende(r)

ECTS Status

Praktikum 10 Wahlpflicht

Zahl der Plätze zwei Studiengruppen mit je 3-5 Studierenden

Lehrende(r) Dozenten des Studiengangs

Lehrsprache Deutsch / Englisch


Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Wintersemester und / oder Sommersemster


30 Stunden



Selbststudium 50 Stunden (Literatursuche und Abfassen des Berichts)


Voraussetzungen Internes Auswahlverfahren

Erwünschte Vorkenntnisse Vertiefte Kenntnisse im gewählten Fachgebiet und hervorragende Methodenkompetenz

Lernziele Die Studierenden erwerben die Fähigkeit, sich selber zu organisieren, um eine Forschungsprojekt in seiner Gesamtheit zu konzipieren. Die Studierenden bearbeiten in einer selbstdefinierten Kleingruppe (3-5 Studierende) eine sich selbst gestellte Forschungsaufgabe.

Lerninhalte Im Rahmen dieses Forschungsmoduls bilden 3-5 StudentInnen eine Studiengruppe zur Bearbeitung einer Forschungsaufgabe. Ausgehend von einem grob formulierten Thema (vorgegeben von einer betreuenden Gruppe von Dozenten oder bevorzugt durch Eigeninteresse gegeben) wird in einer ersten Phase ein "Antrag" für ein Forschungsprojekt ausgearbeitet (schriftlicher Antrag, der von den Dozenten bewertet wird). Im Anschluss



wird dieses Projekt vorwiegend eigenständig von der Studiengruppe durchgeführt (unter Nutzung unterschiedlicher Labors; Dozenten wirken als Berater). Zum Ende der Projektphase werden die Ergebnisse und Erkenntnisse in Form einer "Publikation" zusammengefasst Kompetenz der wissenschaftlichen Dokumentation. Die Studiengruppe sollen in der Vorbereitung der Durchführung dieses Moduls eigenständig Mittel akquirieren (z.B. bei Dozenten, in der Industrie, bei privaten Sponsoren) Kompetenz der Drittmitteleinwerbung. Die Studiengruppe sollte sich aus unterschiedlichen 'Experten' zusammensetzen: Bachelorarbeit in unterschiedlichen Labors, Know-How für unterschiedliche Methoden Kompetenz zu interdisziplinärem Handeln und Kommunizieren.

Schlüsselqualifikationen Durch die Beteiligung am Modul erlangt der/die Studierende

• Forschungskompetenz • Methodenkompetenz • Organisationserfahrung

Prüfung(en)


Protokoll: Forschungsmodul Protokoll Benotet Pflicht 100


Als Prüfungsleistung wird für die gesamte Gruppe das Abschlussprotokoll gewertet. Bescheinigung durch Modulverantwortlichen


Weitere Angaben Den Studierenden wird Eigenverantwortung über Methodik, Planung, Durchführung und Budget für ein Forschungsprojekt gegeben. Sie müssen sich selber organisieren, müssen aber auch Rechenschaft ablegen. Sie haben die Möglichkeit, interdisziplinär zwischen verschiedenen Fachrichtungen aber auch Studiengängen zu arbeiten. Durch diese Vorgaben wird das kritische und vorausschauende Planen im Team trainiert. Nach Erstellung eines „Antrages“ durch die Studenten liegt die komplette Durchführung des „beantragten“ Forschungsprojektes in den Händen der Studierenden.



MNF-bcmb289-01a Redoxproteine in der Regulation von Proliferation und Migration

Semesterlage / Dauer k. A

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) PD Dr. Inken Lorenzen


Beratung zum Modul PD Dr. Inken Lorenzen






Seminar: Redoxproteine in der Regulation von Proliferation und Migration

1 Pflicht

Praktikum: Redoxproteine in der Regulation von Proliferation und Migration

4 Pflicht

Zahl der Plätze Seminar: 4 Praktikum: 4 (auch in Zweier-Gruppen)

Lehrende(r) PD Dr. Inken Lorenzen

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Jedes Semester


30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in der Molekularbiologie, Proteinbiochemie und Zellbiologie




Lernziele Der Einfluss von Redoxprozessen in der physiologischen und pathophysiologischen Regulation von biologischen Prozessen und dessen Signaltransduktion wird zunehmend deutlicher. Diese Vorgänge werden von intra- und extrazellulären Redox-sensitiven Proteinen der Thioredoxin Familie vermittelt, reguliert und kontrolliert. Um die Funktion von extrazellulären Redox-sensitiven Proteinen und dessen Zusammenspiel zu verstehen werden sie in diesem Modul molekularbiologisch und proteinbiochemisch analysiert. Dabei werden die Fähigkeiten zur selbständigen Planung und Durchführung der Experimente sowie dessen Protokollierung, und Evaluierung erlernt und gefestigt. Dies erfolgt im Kontext von wissenschaftlicher Diskussion innerhalb der Arbeitsgruppe und Seminaren.

Lehrinhalte Es erfolgt zunächst die Herstellung von hoch reinen, rekombinanten Redox-sensitiven Proteinen, welche im Laufe des Moduls biophysikalisch und proteinchemisch analysiert werden. Dabei liegt ein Fokus auf der Identifikation von Interaktionspartner, deren Affinitäten und Redox-Verhalten. Enzymatisch katalysierten Redox-Reaktionen werden mittels RP-HPLC Analysiert und ausgewertet. Im Verlaufe des Moduls wird ein zunehmend selbständiges wissenschaftliches Arbeiten erlernt.

Vermittelte Kompetenzen Die Teilnehmer schulen und vertiefen ihr molekularbiologisches und proteinbiochemisches Methodenspektrum. Die Studierenden erhalten eine Übersicht, wie Redox-Prozesse auf molekularer Ebene untersucht werden können und wo die experimentellen Herausforderungen liegen. Dies umfasst eine kritische Evaluation der Ergebnisse und reflektierende Planung folgender Experimenten.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Redoxproteine in der Regulation von Proliferation und Migration


Protokoll: Proteinchemie: Redoxproteine in der Regulation von Proliferation und Migration




Literaturangaben Original Publikationen und Übersichtsartikel

weitere Angaben



MNF-bcmb290-01a Zell- und Molekularbiologische Analyse von extrazellulären Disulfid Switch


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) PD Dr. Inken Lorenzen


Beratung zum Modul PD Dr. Inken Lorenzen






Seminar: Zell- und Molekularbiologische Analyse von extrazellulären Disulfid Switch

2 Pflicht

Praktikum: Zell- und Molekularbiologische Analyse von extrazellulären Disulfid Switch

8 Pflicht


Lehrende(r) PD Dr. Inken Lorenzen

Leistungspunkte 10

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


300 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in der Molekularbiologie, Proteinbiochemie und Zellbiologie




Lernziele Disulfid Switch sind posttranslationale Modifikationen, welche die Aktivitäten von Proteinen schnell ändern. Hierbei werden geschlossenen Disulfidbrücken durch die Aktivität von Proteindisulfidisomerasen geöffnet. Es erfolgt eine strukturelle Umordnung im Zielprotein, dies führt zur Änderung seiner Eigenschaften. In diesem Modul werden die Grundlagen und Regulationsmechanismen dieses wenig beschriebenen Schalters analysiert. Hierzu dienen molekular- und zellbiologischen Ansätzen, dessen Planung und Durchführung anfänglich eng abgestimmt werden, jedoch zunehmend selbständiger erfolgen. So das letztendlich ein eigenständiges Arbeiten erreicht wird. Die wissenschaftliche Diskussion und Präsentation der Arbeit wird in den ersten Schritten im Rahmen des Seminars erworben.

Lehrinhalte Es werden die vielfältigen zell- und molekularbiologische Methoden erlernt. Hierzu zählen Durchflusszytometrie, Oberflächen-Biotinylierung, Co-Immunopräzipitationen und Western Blots, oder enzymatische Aktivitätsassays sowie die Charakterisierung von Zelllinien. Dabei werden gegebene Fragestellungen hinsichtlich des zeitlichen Verlaufes und des Effektes verschiedener Einflüsse analysiert. Dadurch ist es möglich eine zunächst begrenzte Fragestellung im Kontext der studierenden und betreuenden Person, im Verlaufe des Moduls zunehmend auszubauen. Hierbei wird besonders die retrospektive Betrachtung der erhaltenden Daten und ihre Kombination mit aktueller Literaturrecherche gefördert. Zudem selbständigen Planen, auswerten und evaluieren der Ergebnisse ist wird die kritische Diskussion innerhalb einer wissenschaftlichen Gruppe erworben.

Vermittelte Kompetenzen Die Studierenden erlernen und vertiefen die Anwendung von zell- und molekularbiologischen Methoden. Sie lernen die Vor- und Nachteile verschiedener Methoden kennen und lernen es abzuschätzen für welche Fragestellung, welche Methode die besten Ergebnisse bringen.

Kompetenzen in der Darstellung und Diskussion von Daten innerhalb einer wissenschaftlichen Arbeitsgruppe werden geschult.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Zell- und Molekularbiologische Analyse von extrazellulären Disulfid Switch


Protokoll : Zell- und Molekularbiologische Analyse von extrazellulären Disulfid Switch





weitere Angaben



MNF-bcmb274 Neurobiochemie

Semesterlage / Dauer Wintersemester, ab 1. Semester ein Semester

Modulverantwortliche Prof. Dr. Dr. Janka Held-Feindt Telefon 0431-597-4901: Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Dr. Janka Held-Feindt





Lehrveranstaltungen Bezeichnung der Lehrveranstaltung / Lehrende SWS Status

Vorlesung Neurobiochemie 2 Pflicht

Praktikum Neurobiochemie 8 Pflicht

Zahl der Plätze Vorlesung: 4 Praktikum: 4

Lehrende Prof. Dr. Dr. Janka Held-Feindt

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester

Angebotshäufigkeit Vorlesung - jährlich jeweils im Sommersemester (alle 4 Studierende) Praktikum - Studierende werden aufgeteilt auf das Winter- bzw. Sommersemester eines Jahres (2+2 Studierende)


30 Stunden




Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in der Molekularbiologie, Biochemie und Zellbiologie; solide Kenntnisse im experimentellen Arbeiten und Protokollieren

Voraussetzungen Bachelor of Science, Biochemie


k.A.

Lernziele Den Studierenden sollen die morphologischen, zellulären und biochemischen Grundlagen des zentralen und peripheren Nervensystems sowie von Transmittern und Rezeptoren vermittelt werden. Darüber hinaus erhalten sie Einblicke in Grundlagen wichtiger Erkrankungen des ZNS. Sie sollen ein Projekt im Rahmen der aktuellen Forschungsarbeiten durchführen / relevante neurobiochemische Methoden erlernen sowie ein Protokoll erstellen. Damit haben die Studierenden die Kompetenz erworben, die sie zur Anfertigung einer experimentellen Masterarbeit befähigt.





• Morphologischer / Anatomischer Aufbau des ZNS einschließlich Hirnhäute, Liquorsystem, Schrankensysteme und funktionellen Aspekten

• Zellen des ZNS und PNS einschließlich ihrer Funktion

• Relevante / häufige Erkrankungen des ZNS mit klinischen Beispielen, speziell Tumoren

• Neurotransmitter, ihre Inaktivierung, Rezeptoren und Signaltransduktion

• Grundlagen der Neuropharmakologie Praktikum:

• Einführung in die gute zell- und molekularbiologische Laborpraxis

• Zellkultur, Herstellung von Primärkulturen

• DNA-, RNA-Isolation, cDNA Synthese, qRT-PCR

• Immunhisto-/cytochemie einschließlich Fluoreszenzmikroskopie

• Western Blot

• ELISA Alternativ: Bearbeitung eines Projektes im Rahmen der laufenden Forschungsarbeiten

Schlüsselqualifikation k.A.

Prüfung(en) Protokolle der Praktikumstage (100%) Bewertungsmodus: mit Note

Prüfung(en)


Protokoll: Neurobiochemie Protokoll Benotet Pflicht 100



Literaturangaben • M. Schünke, E. Schulte, U. Schuhmacher, M. Voll, K, Wesker „Prometheus-Lernatlas der Anatomie: Kopf und Neuroanatomie“ Georg Thieme Verlag

• M. Trepel „Neuroanatomie: Struktur und Funktion“, Urban & Fischer • G.J. Siegel, B.W. Agranoff, R.W. Albers, P.B. Molinoff „Basic

Neurochemistry“ Raven Press • Fachspezifische Übersichtsartikel und Originalpublikationen

Weitere Angaben k.A.



MNF-bcmb288 Grundlagen der Neurowissenschaften: Anatomie, Physiologie, Biochemie mit Bezug zu Klinik und aktueller Forschung

Semesterlage / Dauer Ab 1. Semester; Beginn SS 2016 Dauer: Vorlesung und Seminar jeweils jedes Semester, je 90min

Modulverantwortliche Prof. Dr. Dr. Janka Held-Feindt Telefon 0431-597-4901: Email: [email protected]

Beratung zum Modul Prof. Dr. Dr. Janka Held-Feindt






Vorlesung Neuro-Anatomie,-Physiologie,-Biochemie 2 Pflicht

Seminar Neurowissenschaftliche Forschung 2 Pflicht


Lehrende Prof. Dr. Dr. Janka Held-Feindt

Leistungspunkte 5

Bewertung bestanden

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden



Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in der Molekularbiologie, Biochemie und Zellbiologie

Lernziele Die Studierenden sollen die makroskopischen und mikroskopischen Grundlagen des Nervensystems erlernen. Hierbei soll vornehmlich das Verständnis für den Aufbau und die Funktion des zentralen Nervensystems (Gehirn und Rückenmark) vermittelt werden. Sie sollen Einblicke in die biochemischen und physiologischen Funktionen verschiedener Zelltypen des Nervensystems erhalten und Mechanismen der Signalleitung u.a. anhand des Studiums von Aufbau und Funktion der wichtigsten neuronalen Signalmoleküle erlernen. Anhand klinischer Beispiele soll der Bezug zu relevanten Krankheitsbildern hergestellt werden. Parallel sollen die Studierenden aktuelle neurowissenschaftliche Forschung anhand entsprechender Originalliteratur analysieren, präsentieren und im wissenschaftlichen Kontext bewerten.





• Makroskopischer Aufbau der Nervensystems (Hirnhäute, Liquor, Liquorräume, Schrankensysteme, morphologischen Bestandteile des Gehirns und ihre Funktionen)

• Aufbau und Funktion des Rückenmarks

• Zellen des Nervensystems einschließlich ihrer biochemischen und physiologischen Funktionen (Neurone einschließlich Signalleitung und Synapsen, zentrales und peripheres Myelin, Astrozyten, Mikroglia)

• Signalmoleküle und ihre Rezeptoren (biogene Amine, Aminosäuren, Neuropeptide – Synthese, Abbau, Vorkommen, Funktion)

• Relevante Krankheitsbilder des Nervensystems

Seminar:

• Studium der aktuellen neurowissenschaftlichen Forschungs-Literatur (Originalpublikationen, Übersichtsartikel)

• Präsentation, Analyse und Bewertung dieser im wissenschaftlichen Kontext

Schlüsselqualifikation k.A.

Prüfung(en) Teilnahme und Seminarvorträge Bewertungsmodus: mit Note.

Prüfung(en)


Seminarleistung: Grundlagen der Neurowissenschaften

Seminarleistung benotet Pflicht 100


Die Prüfung wird insgesamt drei Mal angeboten: Im ersten und im zweiten Prüfungszeitraum des laufenden Semesters und im ersten Prüfungszeitraum des Folgesemesters.

Literaturangaben • M. Schünke, E. Schulte, U. Schuhmacher, M. Voll, K, Wesker „Prometheus-Lernatlas der Anatomie: Kopf und Neuroanatomie“ Georg Thieme Verlag

• M. Trepel „Neuroanatomie: Struktur und Funktion“, Urban & Fischer • G.J. Siegel, B.W. Agranoff, R.W. Albers, P.B. Molinoff „Basic

Neurochemistry“ Raven Press • Fachspezifische Übersichtsartikel und Originalpublikationen

Weitere Angaben Durch Teilnahme an diesem Model ist die Teilnahme am Modul MNF-bcmb274 (Neurobiochemie) - und umgekehrt - ausgeschlossen!



MNF-bcmb291-1a Antimikrobielle Proteine: Expressionsanalyse und rekombinante Herstellung

Semesterlage / Dauer k.A

Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Jürgen Harder



Beratung zum Modul Prof. Dr. Jürgen Harder


Seminar: Antimikrobielle Proteine: Expressionsanalyse und rekombinante Herstellung

2 Pflicht

Praktikum: Antimikrobielle Proteine: Expressionsanalyse und rekombinante Herstellung

8 Pflicht


Lehrende(r) Prof. Dr. Jürgen Harder

Lehrsprache Deutsch


300 h

Leistungspunkte 10

Voraussetzungen Grundlagenkenntnisse in der Molekularbiologie, Zellbiologie und Proteinbiochemie


k.A.

Lernziele Die Teilnehmer erlernen am Beispiel von Epithelzellen (insbesondere Keratinozyten) wie die Expression von antimikrobiellen Proteinen analysiert wird. Hierzu wird zunächst die selbstständige Kultivierung und Stimulation von Epithelzellen erlernt. Dann werden verschiedene Methoden zur Expressionsanalyse erlernt, mit dem Ziel diese selbstständig durchführen zu können. Ein weiteres Lernziel besteht darin, unter Verwendung eines vorgegebenen E. coli-Expressionsstamms, antimikrobielle Proteine in E. coli selbständig exprimieren zu können und anschließend mittels chromatographischer Methoden zu reinigen. Durch das Erlernen von antimikrobiellen Tests soll die Funktionsfähigkeit des gereinigten antimikrobiellen Proteins analysiert werden. Eine wissenschaftliche Diskussion der durchgeführten Experimente im Rahmen des Seminars rundet die praktischen Arbeiten ab.



Lehrinhalte Erlernung von Zellkulturtechniken (steriles Arbeiten, Passagierung und Stimulation von Epithelzellen) und nachfolgende Durchführung von Expressionsanalysen (insbesondere „Real-Time“-PCR und ELISA). Rekombinante Expression, Aufreinigung und antimikrobielle Funktionsanalyse von antimikrobiellen Proteinen. Die theroretischen Hintergründe der durchgeführten Experimente werden erlernt und diskutiert.

Vermittelte Kompetenzen Die Teilnehmer erlernen die selbstständige Durchführung von Zellkulturtechniken und erlernen Kenntnisse zur Gen- und Proteinexpressionsanalyse. Die Teilnehmer erlernen theoretisch und praktisch, wie man antimikrobielle Proteine in Bakterien herstellen kann. Selbständiges experimentelles Arbeiten und die kritische wissenschaftliche Diskussion der erlangten experimentellen Daten wird geschult.

Strategien zur experimentellen Problemlösung werden vermittelt.


Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Antimikrobielle Proteine: Expressionsanalyse und rekombinante Herstellung


Protokoll / Laborbuch: Antimikrobielle Proteine: Expressionsanalyse und rekombinante Herstellung


Weitere Bemerkungen zu der/den Prüfung(en): Die Prüfungsleistung setzt sich aus der Seminarleistung und dem Protokoll zusammen.


Literaturangaben - Originalpublikationen und Übersichtsartikel. - Antimicrobial Peptides- Methods and Protocols (in Methods in Molecular Biology, 618, 2010)

weitere Angaben



MNF-bcmb292-01a Proteinanalytik und Proteomics


Dauer: 1 Semester

Modulverantwortliche(r) Prof. Dr. Andreas Tholey


Beratung zum Modul Prof. Dr. Andreas Tholey


Veranstalter Institut für Experimentelle Medizin – AG Proteomics & Bioanalytik

Fakultät Medizinische Fakultät (und Mat.-Naturw. Fakultät)



Seminar: Methoden und Anwendungen der Poteinanalytik und Proteomics

2 Pflicht

Praktikum: Aktuelle Probleme aus dem Bereich der LC-MS basierten Proteinanalytik

8 Pflicht


Lehrende(r) Prof. Dr. Andreas Tholey

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester



30 Stunden


150 Stunden





Grundlagenkenntnisse der Analytischen Chemie, Proteinchemie und Organischen Chemie




Lernziele Die Teilnehmer lernen aktuelle Trends und Grundlagen der modernen Protein- und Proteomanalytik mittels Methoden der Flüssigchromatographie-Massenspektrometrie (LC-MS) bzw. anderer Trenntechnologien (wie der Kapillarelektrophorese oder verwandter Methoden) kennen. Essentielle Schritte der Probengewinnung und Vorbereitung (Derivatisierung, labeling) sowie grundlegende Schritte der Auswertung von Massenspektrometrie-Daten sowie der bioinformatischen Auswertung von Proteomics Daten werden vermittelt. Ein Bezug zur Metaboliten- und Metabolomanalytik wird hergestellt.

Lehrinhalte Es werden Methoden der Probenvorbereitung (Reduktion/Alkylierung, labeling), der Trennung (LC, CE, verwandte Methoden) sowie der Elektrospray- bzw. der MALDI Massenspektrometrie behandelt. Grundlagen der bioinformatischen Auswertung von Proteomdaten wie die datenbankgestützte Proteinidentifizierung sowie manuelle und automatisierte Auswertung von Massenspektren von Peptiden/Proteinen werden erlernt. Projektabhängig können die genannten Methoden auch für die Analytik von Metaboliten/Metabolomen angewandt werden.

Vermittelte Kompetenzen Die Teilnehmer schulen und vertiefen ihr proteinbiochemisches Methodenspektrum. Die Studierenden erhalten eine Übersicht über Arbeitsschritte der Probengewinnung, der Probenvorbereitung, der Analytik mittels Methoden der LC-MS sowie der manuellen oder bioinformatischen Auswertung der LC-MS Daten. Dies umfasst auch eine kritische Evaluation der Ergebnisse und reflektierende Planung folgender Experimente.

Schlüsselqualifikationen sichere Kenntnisse der Chemie von Proteinen

Prüfung(en)


Mündliche Prüfung: Methoden und Anwendungen der Poteinanalytik und Proteomics


Protokoll zum Praktikum: Aktuelle Probleme aus dem Bereich der LC-MS basierten Proteinanalytik





weitere Angaben



Wahlmodule aus dem Fachbereich Chemie


Anorganische Reaktionsmechanismen chem1001


Prof. Dr. Felix Tuczek

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät

Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät

Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester


Arbeitsaufwand pro Leistungspunkt 30 Stunden




Lehrsprache Deutsch



Vorlesung Anorganische Reaktionsmechanismen Pflicht

Seminar Seminar zur Vorlesung Anorganische Reaktionsmechanismen

Pflicht

Prüfung(en)




Klausur: Anorganische Reaktionsmechanismen Klausur Benotet Pflicht 100


Die Klausur wird insgesamt drei Mal angeboten: Im ersten und im zweiten Prüfungszeitraum des laufenden Semesters und im zweiten Prüfungszeitraum des Folgesemesters.

Lehrinhalte

• Assoziative, dissoziative und interchange Ligandenaustauschreaktionen, • Redoxreaktionen (Innensphären und Außensphären Mechanismus, Marcus-Theorie), • Zusammenhang der Konzentrationen, Temperatur und Druck mit dem Reaktionsmechanismus, • Techniken zur Bestimmung von Reaktionsmechanismen, • Grundlagen der Polymorphie, • Dünnfilmreaktionen, • Substitutionsreaktionen in Untergittern, • Chemische Transportreaktionen, • Keramische Methoden.

Lernziele

Absolventen und Absolventinnen des Moduls erlangen einen Überblick über moderne und aktuelle Forschungsfelder der Anorganischen Chemie. Die Studierenden erlernen die wichtigsten Aspekte anorganischer Reaktionsmechanismen und lernen unter-schiedliche Typen chemischer Reaktionen (Ligandensubstitution und Elektronenübertragung) kennen. Sie haben zudem vertiefte Kenntnisse über die Aufklärung von Reaktionsmechanismen in der anorganischen Chemie. Sie können Konzepte zur Steuerung von Morphologien anwenden und sind in der Lage, Mechanismen von Festkörperreaktionen zu verstehen. Sie erwerben grundlegende Kenntnisse über geeignete in-situ Methoden sowie über die thermodynamische bzw. kinetische Kontrolle bei die Produktbildung. Die Studierenden erlernen die Grundlagen der anorganischen Photochemie. Sie erhalten die Fähigkeit zum Erkennen und Lösen komplexer Probleme und die Kompetenz das Erlernte auf praktische Fragestellungen anzuwenden.

Literatur

• R. Tilley, Understanding Solids, Wiley VCH, • Huheey Keiter Keiter, Anorganische Chemie: Prinzipien von Struktur und Reaktivität, • Vorlesungsskripte der Dozenten.



Pflicht -

Master, 1-Fach, Chemie, (Version 2007) Pflicht -

Master, 1-Fach, Wirtschaftschemie, (Version 2014) Pflicht -


Master, 2-Fächer, Profil Lehramt an Gymnasien, Chemie, (Version 2007)

Pflicht -




Fortgeschrittene Methoden der Strukturaufklärung in der Organischen Chemie

chem1002


Prof. Dr. Frank Sönnichsen

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester






Lehrsprache Deutsch



Vorlesung Fortgeschrittene Methoden der Strukturaufklärung in der Organischen Chemie

Pflicht

Übung Übungen zur Vorlesung Fortgeschrittene Methoden der Strukturaufklärung in der Organischen Chemie

Pflicht


Teilnahme an der Übung zur Vorlesung.

Prüfung(en)




Klausur: Fortgeschrittene Methoden der Strukturaufklärung in der Organischen Chemie



Die Klausur wird insgesamt drei Mal angeboten: Im ersten und im zweiten Prüfungszeitraum des laufenden Semesters und im zweiten Prüfungszeitraum des Folgesemesters.

Lehrinhalte

• 2D-NMR-Spektroskopie, heteronuclear und homonuclear, NOE, • Spektrenordnung, Kopplung in NMR Spektren, • Produktoperatoren, • ESI-, MALDI-Massenspektroskopie, • Lösung von Übungsaufgaben und Kurzfragen.

Lernziele

Die Studierenden erlernen die Strukturaufklärung organischer Moleküle mit Hilfe spektroskopischer Methoden. Nach Absolvieren des Moduls können die Studierenden geeignete spektroskopische Methoden zur Strukturaufklärung unbekannter Verbindungen auswählen, die mit diesen Methoden erhaltenden Informationen auswerten und zu einem Strukturvorschlag kommen. Sie erhalten die Fähigkeit zum Erkennen und Lösen komplexer Probleme und die Kompetenz das Erlernte auf praktische Fragestellungen anzuwenden.

Literatur

• Hesse/Meier/Zeeh, Spektroskopische Methoden der Organischen Chemie.



Pflicht -

Master, 1-Fach, Chemie, (Version 2007) Pflicht -



Master, 2-Fächer, Profil Lehramt an Gymnasien, Chemie, (Version 2007)

Pflicht -




Spektroskopiepraktikum für Studierende der Biochemie chem1020


Prof. Dr. Gernot Friedrichs

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer ein Semester






Lehrsprache Deutsch (einzelne Versuche ggf. englisch)



Praktikum Spektroskopiepraktikum für Studierende der Biochemie Pflicht

Seminar Spektroskopiepraktikum für Studierende der Biochemie Pflicht


B.Sc. Chemie und Molekularbiologie oder B.Sc. Chemie (2-Fach)

Prüfung(en)




Praktikumstestate: Spektroskopiepraktikum für Studierende der Biochemie

Praktikumstestat Benotet Pflicht 30

Praktikumsprotokoll: Spektroskopiepraktikum für Studierende der Biochemie


Seminarvortrag: Spektroskopiepraktikum für Studierende der Biochemie

Seminarvortrag Benotet Pflicht 40


Lehrinhalte

Praktikum: 6 Versuche zu folgenden Themen • FTIR-Spektroskopie, • UV/VIS-Spektroskopie, • MALDI-Massenspektrometrie eines Proteins, • ESR-Spektroskopie/Reaktionskinetik, • Blitzlichtphotolyse/Relaxationskinetik, • Dynamische Lichtstreuung an (Bio)Polymeren.

Im Praktikum wird ein Schwerpunkt auf die Grundprinzipien der Methoden gelegt, die die Studierenden zu diesem Zeitpunkt noch nicht kennen gelernt haben.

Seminar: • Zu jedem Versuch findet ein in der Regel dreiteiliges Seminar statt, in dem der Bogen von (1) den

theoretischen Grundlagen der verschiedenen Methoden über (2) ihre praktische Realisierung in modernen Geräten bis hin zu (3) Anwendungen in der Biochemie und Molekularbiologie gespannt wird.

Lernziele

Die Studierenden kennen fortgeschrittene physikalisch-chemische Prinzipien. Sie können anspruchsvolle physikalisch-chemische Messungen zur Spektroskopie und Reaktionskinetik ausführen, auswerten und diskutieren. Sie können Fehlerquellen der Messungen anhand ihrer eigenen Ergebnisse erkennen und kritisch beurteilen. Die Studierenden erlangen Schlüsselqualifikationen für:

• Durchführung, Auswertung und Diskussion anspruchsvoller Messungen, • Anwendung von Computergrafik-Programmen mit numerischen Datenauswertungen und

Simulationen, Anfertigung von Versuchsprotokollen; • logisches und kritisches Denkvermögen; • Präsentation eines selbst vorbereiteten fortgeschrittenen wissenschaftlichen • Themas im Vortrag, Vortrags- und Vermittlungstechniken, Diskussionsfähigkeit.

Literatur

• P. W. Atkins, J. de Paula, Physikalische Chemie, Wiley/VCH, Weinheim, • G. Wedler, Lehrbuch der Physikalischen Chemie, Wiley/VCH, Weinheim,



• P. W. Atkins, J. de Paula, Physical Chemistry, Freeman, New York, • Vorlesungsskripten, • Versuchsanleitungen.



Pflicht -




Vom Molekül zum Material chem1004A


Prof. Dr. Wolfgang Bensch

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester






Lehrsprache Deutsch



Vorlesung Fortgeschrittene Methoden in der Koordinations- und Metallorganischen Chemie

Pflicht

Vorlesung Moderne molekülbasierte Materialsynthesen Pflicht

Laborpraktikum Praktikum Vom Molekül zum Material Pflicht

Seminar Seminar zum Praktikum Vom Molekül zum Material Pflicht

Weitere Bemerkungen zu den Lehrveranstaltungen



Das Praktikum kann auch in der vorlesungsfreien Zeit absolviert werden.

Prüfung(en)


Praktikumsaufgaben / Vortrag / Kolloquium: Vom Molekül zum Material

Sonstiges Benotet Pflicht 100


Prüfungsleistungen: • Praktikumsaufgaben und Protokolle (20 % der Modulnote), • Seminarvortrag (30 % der Modulnote), • Abschlusskolloquium (50 % der Modulnote).

Abschlusskolloquium: Zu Ende der Vorlesungszeit, 1. Wiederholungstermin: Vor Beginn der Vorlesungszeit des folgenden Semesters, 2. Wiederholungstermin: Nach Ende der Vorlesungszeit des folgenden Semesters. Lehrinhalte

• Vorlesung über Molekulare Hauptgruppen- und Organometallchemie: Symmetrie von Molekülen, Punktgruppen, Chiralität, Stereochemie, dynamische Prozesse in Molekülen, Elektronenüberschuss und Unterschussverbindungen, Supersäuren, relativistische Effekte, homogene Katalyse und Organometallchemie.

• Vorlesung Moderne molekülbasierte Materialsynthesen: Feststoffbasierte Anorganische Funktionsmaterialien, Struktur und Eigenschaften wichtiger Feststoffe und ihre Anwendung in Materialwissenschaft und Technik.

• Praktikum: Im Praktikum werden parallel zur Vorlesung typische Moleküle und Festkörperverbindungen synthetisiert und hinsichtlich ihrer Eigenschaften charakterisiert. Dazu werden teilweise Hochdurchsatz-Methoden eingesetzt.

Lernziele

Die Absolventen des Moduls sind in der Lage, sich in moderne ausgewählte Forschungsgebiete der Anorganischen Chemie selbstständig einzuarbeiten. Die Studierenden erwerben vertiefte Kenntnisse in der Chemie der Haupt- und Nebengruppenelemente. Sie lernen moderne Syntheseverfahren wichtiger Verbindungen kennen und erkennen die Wichtigkeit dieser Methoden zur gezielten Steuerung von Struktur und Eigenschaften als Schlüssel zum Aufbau von Funktionsmaterialien. Sie besitzen die Fähigkeit und Kompetenz zum selbständigen wissenschaftlichen Arbeiten. Die Studierenden können die Ergebnisse ihrer praktischen Arbeit in Form einer forschungsorientierten wissenschaftlichen Arbeit darstellen und im Rahmen eines Vortrages präsentieren.

Literatur

• Übersichtsartikel und Einzelpublikationen nach Angabe der Dozenten, • Cotton/Wilkinson, Advanced Inorganic Chemistry, Wiley, • Huheey/Keiter/Keiter, Inorganic Chemistry, de Gruyter, • Cotton, Chemical Applications of Group Theory, Wiley, • West, Solid State Chemistry and its Applications, Wiley, • Müller, Anorganische Strukturchemie, Teubner, • R. Tilley, Understanding Solids, Wiley VCH.





Wahl -

Master, 1-Fach, Chemie, (Version 2007) Wahl -

Master, 1-Fach, Wirtschaftschemie, (Version 2014) Wahl -





Moderne Synthesemethoden der Organischen Chemie chem1004B


Prof. Dr. Thisbe Lindhorst Prof. Dr. Ulrich Lüning

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester






Lehrsprache Deutsch


Vertiefte spektroskopische Kenntnisse (MNF-chem1002).



Vorlesung Vorlesung 1 Moderne Synthesemethoden der Organischen Chemie

Pflicht

Vorlesung Vorlesung 2 Moderne Synthesemethoden der Organischen Chemie

Pflicht



Seminar Seminar Moderne Synthesemethoden der Organischen Chemie

Pflicht

Laborpraktikum Praktikum Moderne Synthesemethoden der Organischen Chemie

Pflicht

Prüfung(en)


Praktikumsaufgaben / Vortrag: Moderne Synthesemethoden der Organischen Chemie



Der erfolgreiche Abschluss aller Teile ist Voraussetzung für das Bestehen des Moduls: • Erfüllung der Praktikumsaufgaben, Protokolle (50 % der Modulnote), • Posterpräsentation in einem Abschlusssymposium am Ende der Vorlesungszeit (50 % der

Modulnote), • Wiederholungsmöglichkeit nach Absprache.

Lehrinhalte

• Moderne Synthesemethoden (stereoselektive CC-Verknüpfungen, Umwandlung funktioneller Gruppen, Heterocyclen, Katalyse, Metallorganik, Umlagerungen),

• Mehrstufige Synthesen in Anlehnung an Literaturvorschriften, • Umgang mit luft- und feuchtigkeitsempfindlichen Substanzen,

• spezielle Arbeitstechniken (Ultraschall, Pyrolyse, Deuterierung, Mikrowelle). Lernziele

Absolventen des Moduls können sich in moderne ausgewählte Forschungsgebiete der Organischen Chemie selbstständig einarbeiten. Die Studierenden besitzen vertiefte Kenntnisse über moderne Syntheseverfahren organischer Verbindungen und erkennen die Wichtigkeit dieser Methoden zur gezielten Steuerung von Struktur und Eigenschaften als Schlüssel zur Synthese von komplizierteren organischen Verbindungen. Sie haben die Fähigkeit und Kompetenz zum selbständigen wissenschaftlichen Arbeiten. Die Studierenden sind in der Lage, die Ergebnisse ihrer praktischen Arbeit zu protokollieren und im Rahmen einer Posterpräsentation verständlich darzulegen.

Literatur

• Monographien, Review-Artikel und Einzelpublikationen nach Angabe der Dozenten,

• Vorlesungsskripte und Versuchsanleitungen. Weitere Angaben

Aus Planungsgründen muss sich jeder Teilnehmende unbedingt vor Beginn des Praktikums rechtzeitig in eine im Geschäftszimmer ausliegende Liste eintragen. Der Anmeldetermin steht im Vorlesungsverzeichnis oder er wird per Aushang bekannt gemacht. Nicht rechtzeitiges Anmelden kann zur Studienzeitverlängerung führen.





Wahl -







Molekülstruktur und Moleküldynamik chem1004C


Prof. Dr. Friedrich Temps

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester









Vorlesung Grundlagen und Methoden der Laserspektroskopie Pflicht

Vorlesung Moderne Methoden der Massenspektrometrie Pflicht

Vorlesung Moderne Konzepte der Reaktionsdynamik Pflicht

Laborpraktikum Praktikum für Laserspektroskopie und Massenspektrometrie

Pflicht

Seminar Seminar über moderne Methoden der Laserspektroskopie und Massenspektrometrie

Pflicht




Das Praktikum kann begonnen werden, wenn das Modul chem1003 (Molekülspektroskopie) abgeschlossen wurde oder zwei Vorlesungen aus chem1004C belegt worden sind.

Prüfung(en)


Praktikumstestate / Kolloquium: Molekülstruktur und Moleküldynamik



• Praktikumstestate (Versuchskolloquien, Ausführung der Praktikumsaufgaben, Versuchsprotokolle; (30 % der Modulnote),

• Mündliche Prüfung (Kolloquium) zum Inhalt des Praktikums und einer Zwei-SWS-Vorlesung des Moduls (70 % der Modulnote).

Termin des Kolloquiums: Zu Ende der Lehrveranstaltung, 1. Wiederholungstermin: Vor Beginn der Vorlesungszeit des folgenden Semesters, 2. Wiederholungstermin: Nach Ende der Vorlesungszeit des folgenden Semesters. •Prüfungssprache: Deutsch oder Englisch (nach Wahl der Studierenden).

Lehrinhalte

• Laserspektroskopie: Licht und die Wechselwirkung von Licht mir Materie, Funktionsprinzip des Lasers, der Laser als spektroskopische Lichtquelle, nichtlineare Optik, Doppler-begrenzte Absorptions- und Fluoreszenzspektrokopie, nichtlineare und Multiphotonenspektroskopie, Ramanspektroskopie und Vierwellenmischung, Laserspektroskopie in Molekularstrahlen, Doppelresonanzspektroskopie, zeitaufgelöste und ultraschnelle Laserspektroskopie, kohärente Prozesse, Spektroskopie von Stoßprozessen, Einzelmolekülspektroskopie, neue Methoden und Anwendungen der Laserspektroskopie,

• Massenspektrometrie: Historische Entwicklung der Massenspektrometrie bis zu modernen Geräten und Ionisierungsmethoden (EI, CI, FAB, ESI, MALDI), physikalische Prinzipien der wichtigsten Typen von Massenspektrometern (Sektorfeld-, Quadrupol-, TOF-, Ionenfallen-, ICR-MS), Anwendungsbeispiele aus unterschiedlichen Bereichen der Chemie und Biochemie, insbesondere aus dem Gebiet der Biomoleküle (Peptid- und Proteinanalytik), Zerfallsreaktionen organischer und anorganischer Verbindungen in Massenspektrometern, Auswertung von Massenspektren, Einsatz von MALDI-PSD (PSD, post-source decay) und Tandem-Massenspektren (ESIMS/MS) zur Aufklärung von Peptidsequenzen und zur Identifizierung posttranslationaler Modifikationen (z.B. Phosphorylierung), massenspektrometrische Techniken zur Strukturidentifizierung (CID, SID und Photodissoziation),

• Reaktionsdynamik: Elektronenzustände und Potentialhyperflächen mehratomiger Molekülen, photophysikalische und photochemische Primärprozesse, Zusammenbruch der Born-Oppenheimer-Näherung, vibronische Kopplungen und nicht-adiabatische Übergänge; Femtochemie; Dynamik von Energieübertragungsprozessen; moderne Konzepte der Theorie unimolekularer Reaktionen, Normal- und Lokalschwingungen, intramolekulare Energieumverteilung, nicht-statistisches Verhalten; Verbrennungschemie, moderne Konzepte der heterogenen Katalyse, Dynamik von Oberflächenreaktionen,

• Die genaue Stoffauswahl erfolgt durch die zuständigen DozentInnen, • Praktikum: Ausgewählte Experimente zur Spektroskopie (inbesondere Laserspektroskopie) und

Massenspektrometrie (MB-FTMW-Spektrum von van-der-Waals Molekülen, FTIR-Spektroskopie mehratomiger Moleküle, Laser-Induzierte Fluoreszenz (LIF), Ion Imaging, MALDI, Ramanspektroskopie, Femtosekundenspektroskopie, Rastertunnelmikroskopie),

• Seminar: Vertiefung ausgewählter moderner Themen der Laserspektroskopie, Massenspektrometrie und Reaktionsdynamik, Hinführung zu aktuellen Forschungsthemen.



Lernziele

Die Studierenden lernen moderne Methoden und aktuelle Themen der Forschung in der Physikalischen Chemie kennen, werden an den Stand der Forschung herangeführt und erwerben die Fähigkeit, aktuelle Fragen zu formulieren und zu diskutieren. Sie sind in der Lage fortgeschrittene Experimente und Messungen zu planen, durchzuführen, auszuwerten und kritisch zu diskutieren. Sie erlangen die Fähigkeit und Kompetenz zum selbständigen wissenschaftlichen Arbeiten.

Literatur

• W. Demtröder, Laserspektroskopie – Grundlagen und Techniken; Springer • D. Meschede, Optics, Light and Lasers, Wiley-VCH • J. M. Hollas, Moderne Methoden in der Spektroskopie, Vieweg, • K. L. Busch, G. L. Glish, S. A. McLuckey, Mass Spectrometry, • J. A. Splitter, F. Turecek, Applications of Mass Spectrometry to Organic Stereochemistry, • F. W. McLafferty, Interpretation of Mass Spectra, • P. L. Houston, Chemical Kinetics and Reaction Dynamics, McGraw-Hill, • R. D. Levine, Molecular Reaction Dynamics, Cambridge University Press, • W. Demtröder, Molekülphysik - Theoretische Grundlagen und experimentelle Methoden,

Oldenbourg, • W. Forst, Unimolecular Reactions, Cambridge University Press, • T. Baer, W. L. Hase, Unimolecular Reactions, Oxford, • Review-Artikel und Einzelpublikationen nach Angabe der Dozenten, • Vorlesungsskripte der Dozenten, • Versuchsanleitungen.



Wahl -







Theoretische Chemie / Computerchemie chem1004D


Prof. Dr. Bernd Hartke Prof. Dr. Dassia Egorova

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester






Lehrsprache Deutsch und/oder Englisch


Grundlagen der klassischen und Quantenmechanik, MNF-chem0304 und MNF-chem0407 oder gleichwertige Module



Vorlesung Theoretische Chemie Pflicht

Vorlesung Quantenmechanik und Quantendynamik in der Theoretischen Chemie

Pflicht

Vorlesung Molecular Modelling Pflicht



Laborpraktikum Praktikum Prof. Hartke Pflicht

Laborpraktikum Praktikum Quantendynamik mit MCTDH, Prof. Egorova Pflicht

Laborpraktikum Praktikum Prof. Herges Pflicht

Prüfung(en)


Praktikumsaufgaben / Klausur / Vortrag: Theoretische Chemie / Computerchemie



Prüfungsleistungen: • schriftliche oder mündliche Prüfung zur Vorlesung (Egorova), • selbständige Bearbeitung der Aufgaben des Praktikums (Hartke, Herges), • schriftlicher Bericht zum Praktikum (Egorova), • Seminarvortrag (Hartke).

Prüfungstermin: Zu Ende der Vorlesungszeit des Semesters, 1. Wiederholungstermin: Vor Beginn der Vorlesungszeit des folgenden Semesters, 2. Wiederholungstermin: Nach Ende der Vorlesungszeit des folgenden Semesters.

• Prüfungssprache: Deutsch oder Englisch (nach Wahl der Studierenden), • Modulnote ergibt sich aus 1/3 Prüfungsnote + 1/3 Praktikumsnote + 1/3

Vortragsnote.

Lehrinhalte

• klassische Methoden der Molekülmechanik und Moleküldynamik (Kraftfelder, MD und Thermodynamik, Monte Carlo),

• Quantenmechanik: Formalismus und exakt lösbare Probleme; Nährungsverfahren (Störungstheorie, Variationsprinzip); Mehrelektronensysteme; einfachste zweiatomige Systeme; Grundlagen der Quantenchemie (Hartree-Fock),

• Quantenchemie: SCF, DFT, Elektronenkorrelation (CI, CC, MP2, MCSCF/CASSCF), • Quantendynamik: Born-Oppenheimer, Potentialflächen, Wellenpakete, Dichtematrix-Methoden,

MCTDH, • Praktikum: selbständiger Umgang mit Kraftfeldsimulationen, Entwicklung eigener Programme zur MD-

Simulation und zur Berechnung stationärer Zustände, eigene Rechnungen mit fertigen Programmen zur Wellenpaketdynamik, MCTDH,

• Vorträge der Studenten zu ausgewählten aktuellen und erweiternden Themen.

Lernziele

Aufbauend auf den in MNF-chem0304 und MNF-chem0407 gelegten Grundlagen haben die Studierenden ihre Kenntnisse erweitert und die wesentlichen mathematischen Methoden der Molekülmechanik, Quantenchemie und Quantendynamik kennen gelernt. Sie verfügen über ein solides Verständnis der theoretischen Grundlagen der Kraftfeld-, ab-initio- und Quantendynamikmethoden. Sie besitzen die Kompetenz zur systematischen Herangehensweise bei der Anwendung dieser Methoden auf konkrete Probleme, vor allem bei der Auswahl der Methoden und der kritischen Interpretation der Ergebnisse. Sie sind in der Lage, in der Masterarbeit sowie im Promotionsstudium die vorhandenen modernen Rechenmethoden selbstständig anzuwenden.

Literatur



• Szabo/Ostlund, Modern Quantum Chemistry, McGraw-Hill, • Simons/Nichols, Quantum Mechanics in Chemistry, Oxford, • F. Jensen, Introduction to Computational Chemistry, Wiley, • D. J. Tannor, An Introduction to Quantum Mechanics – a Time-dependent Perspective, University

Science Books, • A. R. Leach, Molecular Modelling, Prentice Hall, • P.W. Atkins, Molecular Quantum Mechanics, • I.N. Levine, Quantum Chemistry, • A.S. Davydov, Quantum Mechanics (Quantenmechanik), • G.C. Schatz, M.A. Rantner, Quantum Mechanics in Chemistry, • H.-D. Meyer, F. Gatti, and G. A. Worth (ed.), Multidimensional Quantum Dynamics: MCTDH Theory

and Applications, • Review-Artikel und Einzelpublikationen nach Angabe der Dozenten, • Vorlesungs- und Praktikumsskripte der Dozenten.

Weitere Angaben

Das Praktikum setzt sich aus 3 Teilen zusammen, die den beteiligten Dozenten zugeordnet sind. Es kann im Sommer- oder Wintersemester oder als Ferien-Blockkurs stattfinden. Der Praktikumsteil Hartke ist vom Vorlesungsteil Hartke weitestgehend unabhängig, daher können diese beiden Teile in beliebiger Reihenfolge gehört werden. In den anderen Fällen sollte der jeweilige Vorlesungsteil zeitlich vor dem jeweiligen Praktikumsteil liegen. Die einzelnen Praktikumsteile können im zeitlichen Zusammenhang oder aber auch isoliert voneinander liegen.



Wahl -







Kolloidchemie und Nanomaterialien chem2004A


Prof. Dr. Norbert Stock

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester






Lehrsprache Deutsch



Vorlesung Poröse Materialien Pflicht

Vorlesung Einführung in die Kolloidchemie Pflicht

Laborpraktikum Praktikum Kolloidchemie und Nanomaterialien Pflicht

Seminar Seminar zum Praktikum Kolloidchemie und Nanomaterialien

Pflicht

Prüfung(en)




Praktikumstestate / Kolloquium: Kolloidchemie und Nanomaterialien



Prüfungsleistungen: Praktische Laborarbeit (Testate, Vortrag, 50% der Modulnote), Kolloquium am Ende der Vorlesungszeit (50 % der Modulnote).

Lehrinhalte

• Top-down Methode: Zerkleinerung von Partikeln bis in den nm-Bereich durch Einsatz eines Ultraturrax sowie eines Ultraschallbads. Stabilisierung der Partikel über Zusatzstoffe,

• Bottom-up Methode: Über chemische Reaktionen werden Strukturen im Bereich weniger Nanometer gezielt aufgebaut. Synthese anorganischer und organischer Nanopartikel, Darstellung von KernSchale-Teilchen, Tenside,

• Polymere und intelligente Hydrogele, • Synthese und Charakterisierung mikro-, meso-, und makroporöser Verbindungen sowie

Modifizierung und Anwendung poröser Materialien. Synthese von Wirtssystemen mit definierten Porenradien zur Darstellung von Nanoteilchen (Reaktionen in eingeschränkten Reaktionsräumen). Variation der Strukturdirektoren zur Darstellung von Wirtssystemen mit Poren im Bereich von 1-30 nm,

• Bestimmung der spezifischen Oberflächen, Porengrößen und -volumina mit BET,. Auswertung der Isothermen mit der BJH-Methode. Spektroskopische Charakterisierung der Nanoteilchen/Kolloide mit spektroskopischen Methoden (Quantisierungseffekt). Bestimmung der Oberflächenladung (PCD) sowie des Zeta-Potentials. Bestimmung von Teilchengrößenverteilungen mit Lichtstreumethoden.

Lernziele

Die Studierenden erwerben vertiefte Kenntnisse in dem Bereich der Kolloidchemie, insbesondere in der Synthese und Charakterisierung und erkennen die industrielle Relevanz kolloidaler Systeme. Sie besitzen die Fähigkeit zum Erkennen und Lösen komplexer fachübergreifender Probleme.

Literatur

• Vorlesungsfolien, • Praktikumsskript, • Ausgewählte Übersichtsartikel zu den Themenkomplexen.



Wahl -







Supramolekulare Chemie chem2004B


Prof. Dr. Rainer Herges Prof. Dr. Ulrich Lüning

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester






Lehrsprache Deutsch



Vorlesung Grundlagen der Supramolekularen Chemie Pflicht

Vorlesung Ausgewählte Kapitel der Supramolekularen Chemie Pflicht

Laborpraktikum Praktikum Supramolekulare Chemie Pflicht

Seminar Seminar über Supramolekulare Chemie Pflicht

Prüfung(en)




Praktikumsaufgaben / Vortrag / Kolloquium: Supramolekulare Chemie



Der erfolgreiche Abschluss aller Teile ist Voraussetzung für das Bestehen des Moduls: • Praktikumsaufgaben und –protokolle (20 % der Modulnote), • Seminarvortrag (30 % der Modulnote), • Abschlusskolloquium am Ende des Moduls (50 % der Modulnote).

1. Wiederholungstermin: Vor Beginn der Vorlesungszeit des folgenden Semesters, 2. Wiederholungstermin: Nach Ende der Vorlesungszeit des folgenden Semesters.

Lehrinhalte

Supramolekulare Chemie ist die Chemie jenseits des Moleküls: Sie behandelt: • Nicht-kovalente Wechselwirkungen, • Wirtklassen, • Bindung von Ionen und Neutralteilchen, • Transport, • Katalyse, • Sensorik, • Flüssigkristalle, • molekulare Maschinen, • Photoschaltung, • Topologie, • Selbstorganisation, • Selbstreplikation • Synthese einer Wirtverbindung, • Bestimmung der Stärke von Wirt-Gast-Komplexen (NMR-Titration, ITC), • Extraktion.

Lernziele

Die Studierenden erhalten ein Verständnis nicht-kovalenter Wechselwirkungen und Kenntnisse über Wirt/Gast-Chemie bzw. Molekulare Erkennung. Sie sind in der Lage, das erlernte Wissen auf praktische Fragestellungen, wie z.B. der Design Synthese supramolekularer Systeme im Bereich der Sensorik, der Funktionsmaterialien und der molekularen Elektronik anzuwenden.

Literatur

• Steed/Atwood, Supramolecular Chemistry, • Vögtle, Supramolekulare Chemie, eine Einführung, • Review-Artikel und Einzelpublikationen nach Angabe der Dozenten, • Vorlesungsskripte und Versuchsanleitungen.

Weitere Angaben

Aus Planungsgründen muss sich jeder Teilnehmende unbedingt zu Beginn der Wintersemestervorlesung für das Praktikum anmelden. Nicht rechtzeitiges Anmelden kann zu Studienzeitverlängerung führen.





Wahl -







Biologische Chemie chem2004D


Prof. Dr. Thisbe Lindhorst

Veranstalter

Sektion Chemie

Fakultät


Prüfungsamt

Prüfungsamt Chemie

Leistungspunkte 15

Bewertung Benotet

Dauer zwei Semester









Vorlesung Bioanorganische Chemie Pflicht

Vorlesung Bioorganische Chemie Pflicht

Vorlesung Molekulare Strukturbiologie Pflicht

Laborpraktikum Praktikum Biologische Chemie Pflicht

Seminar Seminar für Biologische Chemie Pflicht



Prüfung(en)

Prüfungstitel Prüfungsform Bewertung Pflicht/Wahl

Gewicht

Kolloquium: Biologische Chemie Kolloquium Benotet Pflicht 70

Praktikumsaufgaben: Bioorganische Chemie Praktikumsaufgaben Benotet Pflicht 10

Praktikumsaufgaben: Bioanorganische Chemie

Praktikumsaufgaben Benotet Pflicht 10

Praktikum: Molekulare Strukturbiologie Praktikumsaufgaben Benotet Pflicht 10


• Praktikumsaufgaben und –protokolle (30 % der Modulnote), • Abschlusskolloquium im zweiwöchigen Prüfungszeitraum am Ende des Moduls (70 % der

Modulnote).

Lehrinhalte

• Vorlesung Bioanorganische Chemie: Biochemie des Sauerstoffs (Sauerstofftransport, Oxidasen, Oxygenasen, Superoxid- und Peroxid-Dismutasen); ein-, zwei- und dreikerniger Kupferenzyme, Hämenzyme, ein- und zweikernige Nichthäm-Eisen-Enzyme, Oxotransfer, Elektronentransfer, Hydrogenasen, Nitrogenasen, Photosynthese, Zinkenzyme.

• Vorlesung Bioorganische Chemie: Molekulare Diversität, molekulare Struktur und biologische Funktion; Biologie und Chemie von Biomakromolekülen, molekulare Grundlagen von Zellorganellfunktionen, Mechanismen, Methoden und Konzepte der Biologischen Chemie und der Glycowissenschaften.

• Vorlesung Molekulare Strukturbiologie: Proteinexpression und Reinigung, moderne Synthesetechniken für Proteine, fluoreszierende Proteine, Einbau nicht-natürlicher Aminosäuren, kinetische und zeitaufgelöste Proteinkristallographie.

• Praktikum: Im Praktikumsteil Bioanorganische Chemie sollen Modellverbindungen zu den Themen Sauerstofftransport, metallvermittelte Hydroxylierungsreaktionen und Stickstoff-Fixierung hergestellt und charakterisiert werden. In der bioorganischen Chemie sollen Experimente und Methoden zur Untersuchung bakterieller Adhäsion (u. a. ELISA) behandelt werden. In der Molekular- und Strukturbiologie sollen Experimente zu den Themen Röntgenstrukturaufklärung von Proteinen und Molecular Modelling durchgeführt werden. Das Praktikum schließt mit einer Abschlussarbeit ab.

Lernziele

Die Studierenden erlangen einen Überblick über die Grundlagen der Biologischen Chemie, Glycowissenschaften sowie der Strukturchemie und können diese auf aktuelle und wichtige Beispiele anwenden. Durch die interdisziplinäre Qualifikation in ausgewählten Bereichen der Biologie und Medizin erhalten die Studierenden die Fähigkeit zum Erkennen und Lösen komplexer fachübergreifender Probleme.

Literatur

• Kaim, Schwederski: Bioanorganische Chemie, Teubner Verlag, • Lindhorst: Essentials of Carbohydrate Chemistry and Biochemistry, Wiley-VCH, • Lottspeich: Bioanalytik, Spektrum.

Weitere Angaben



Anmeldung erforderlich! Aus Sicherheitsgründen ist für die Teilnahme am Praktikum die Anwesenheit in mindestens 80% der Vorlesung erforderlich.



Wahl -






Wahlmodule aus dem Fachbereich Biologie


Immunobiology of Invertebrates biol215


Prof. Dr. Matthias Leippe

Veranstalter

Sektion Biologie Allgemein

Zoologisches Institut und Museum

Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer zwei Wochen



Arbeitsaufwand insgesamt 115,5 Stunden





Basic knowledge of statistics and experimental design



Seminar Immunobiology of Invertebrates Pflicht

Übung Immunobiology of Invertebrates Pflicht




Seminar and research internship. The latter preferably in the Wadden Sea Station of the Alfred-Wegener-Institute, List/Sylt


Active participation in both seminar and practical

Prüfung(en)


Seminarleistung: Immunobiology of Invertebrates Seminarleistung Benotet Pflicht 100

Kurzzusammenfassung

The students know about the basic molecular and cellular mechanisms of the immune system of invertebrates. Based on relatively simple experiments they have performed, they know in principal how to design experiments, to interprete results and to present the data.

Lehrinhalte

Laboratory modul with seminar and field course including a boat trip. The experiments in the laboratory and the seminar are dealing with the immune systeme of (marine) invertebrates. The topic of the course is situated inbetween the broader fields of molecular animal physiology, cell biology and microbiology.

Lernziele

Skills to search for and extract scientific articles about a specific topic, to distribute the information in an oral presentation and to discuss the topic with the audience. Practical course work in which basic experiments are independently performed in a small group of 2-3 after having received instructions and by using a protocol.

Literatur

Protocols for experiments, specific original articles from scientific journals, a short guide for an oral presentation



Wahl -

Master, 1-Fach, Biologie, (Version 2015) Wahl -



Master, 1-Fach, Molecular Biology and Evolution, (Version 2015) Wahl -

↑




Biochemie der Mikroorganismen I biol217


Prof. Dr. Peter Schönheit

Veranstalter


Institut für Allgemeine Mikrobiologie

Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer zwei Wochen (Blockveranstaltung)






Lehrsprache Deutsch


Grundlagenkenntnisse in der Mikrobiologie und Biochemie



Vorlesung Biochemie der Mikroorganismen Pflicht

Seminar Biochemie der Mikroorganismen Pflicht



Übung Biochemie der Mikroorganismen Pflicht


Aktive Teilnahme an der Übung.

Prüfung(en)


Klausur: Biochemie der Mikroorganismen Klausur Benotet Pflicht 100

Kurzzusammenfassung

Anreicherung und biochemische Charakterisierung, sowie der Transkriptnachweis, eines Schlüsselenzyms der alkoholischen Gärung, der Alkohol Dehydrogenase aus dem Bacterium Zymomonas mobilis

Lehrinhalte

Vorstellung ausgewählter mikrobieller Gärungen insbesondere der alkoholischen Gärung sowie deren biotechnologische Nutzung. Partielle Anreicherung (Anionenaustausch-, Größenausschluss-Chromatographie) eines Schlüsselenzyms (Alkohol Dehydrogenase). Bestimmung von molekularen und kinetischen Parametern (KM- und Vmax-Werte). Transkriptnachweis der Alkohol Dehydrogenase mittels Reverser Transkriptase (RT)-PCR. Anleitung zum guten wissenschaftlichen Arbeiten und kritischen Umgang mit Versuchsergebnissen.

Lernziele

Die Studierenden haben ein vertieftes Verständnis zur Physiologie, Biochemie, Enzymologie und Biotechnologie mikrobieller Gärungsprozesse. Die Studierenden haben die Kompetenz erworben, die Ergebnisse ihrer experimentellen Arbeiten zu analysieren und schriftlich sowie mündlich darzustellen. Außerdem haben sie die Kompetenz erworben, Originalpublikationen zu präsentieren.

Literatur

Fuchs, Allgemeine Mikrobiologie (Thieme); Antranikian, Angewandte Mikrobiologie (Springer); Brock, Mikrobiologie (Pearson); Munk, Mikrobiologie (Thieme); Lehninger (Springer) bzw. Stryer (Spektrum), Biochemie; Praktikumsskript und ausgewählte Originalpublikationen



Wahl -







Molecular Genetics and Cell Biology of Plants and Fungi biol218


Prof. Dr. Frank Kempken

Veranstalter


Botanisches Institut und Botanischer Garten

Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer two weeks


Arbeitsaufwand pro Leistungspunkt 26 hours

Arbeitsaufwand insgesamt 135 hours

Präsenzstudium 42 hours

Selbststudium 63 hours



Basic knowledge in molecular genetics and cellular biology



Vorlesung Molekulargenetik und Zellbiologie von Pflanzen und Pilzen

Pflicht

Übung Molekulargenetik und Zellbiologie von Pflanzen und Pilzen

Pflicht




Active participation in practical; participation in lecture is recommended

Prüfung(en)


Klausur: Molekulargenetik und Zellbiologie von Pflanzen und Pilzen


Protokoll: Molekulargenetik und Zellbiologie von Pflanzen und Pilzen


Kurzzusammenfassung

The course focuses on principles and recent achievements in molecular genetics and cellular biology. Important theoretical background, methodology and applications are addressed in the lecture and the practical part. The major focus is on fungal and plant model systems. Experiments in the practical part include aspects of bioinformatics.

Lehrinhalte

Introduction into the current concepts in molecular geneticas and cellular biology of plants and fungi. Important principles and new achievements are presented and discussed. The practical will help students to understand the rational of experimental strategies and the specifics of plant and fungal experimental systems.

Lernziele

Students are aquainted with the most important methods in cellular biology and molecular genetics, have a good theoretical background and and can use this knowledge to address scientific problems. Students are able to write protocols in a scientific writing stile. Students will be critical towards their own results and are able to use scientific literature to discuss their own work.

Literatur

textbooks on molecular genetics and cell biology as well as primary literature; e-learning material



Wahl -




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Molekulare Biotechnologie mit Pflanzen und Pilzen biol220


Prof. Dr. Frank Kempken

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet







Lehrsprache Deutsch


Erfolgreiche Teilnahme an biol218 oder einem vergleichbaren Modul



Vorlesung Molekulare Biotechnologie mit Pflanzen und Pilzen Pflicht

Seminar Molekulare Biotechnologie mit Pflanzen und Pilzen Pflicht



Übung Molekulare Biotechnologie mit Pflanzen und Pilzen Pflicht


Aktive Teilnahme an der Übung.

Prüfung(en)


Klausur: Molekulare Biotechnologie mit Pflanzen und Pilzen


Protokoll: Molekulare Biotechnologie mit Pflanzen und Pilzen


Kurzzusammenfassung

Das Modul gibt eine Übersicht über Methoden und Anwendungen der Molekularen Biotechnologie von Pflanzen und Pilzen, da diesen Organsimengruppen eine immer größere Rolle in der Biotechnologie zukommt. Hier warden auch moderne Verfahren wie das Next Generation Sequencing oder Genome Editing vorgestellt.

Lehrinhalte

Vorstellung von Fragestellungen der molekularen Biotechnologie und deren Lösung mithilfe spezieller Arbeitsmethoden; z.B. Expression von heterologen Genen; Identifizierung und Klonierung von Promotoren; Nachweis gentechnisch veränderter Nahrungsmittel. Bioinforamtik und Next Generation Sequencing als Methoden der Molekularen Biotechnologie; Genome Editing, Anleitung zum kritischen Umgang mit Versuchsergebnissen;.

Lernziele

Studierende wissen, wie molekularbiologische und molekulargenetische Methoden in der Biotechnologie eingesetzt werden. Sie können dabei pflanzliche und pilzliche Modellsysteme eingesetzen. Außerdem werden Methoden der Bioinformatik angewendet. Studierende wissen, wie man wissenschaftliche Schriften erstellt und eigene Arbeiten selbstkritisch hinterfragt.

Literatur

Ausführliches gegliedertes Stichwortverzeichnis; Vorlesungsunterlagen und Übungsskript (Internet bzw. OLAT) Wink M (2011) An Introduction to Molecular Biotechnology: Fundamentals, Methods and Applications, 2nd Edition, Whiley



Wahl -






Master, 2-Fächer, Profil Lehramt an Gymnasien, Biologie, (Version 2011)

Wahl -


Wahl -

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Molecular Fundamentals of Ethology and Neurobiology biol222


Prof. Dr. Thomas Roeder

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet











Basic knowledge of experimental work.



Seminar Neurobiology Pflicht

Übung Behaviour and neurobiology Pflicht



Prüfung(en)


Seminarleistung: Neurobiology Seminarleistung Benotet Pflicht 50

Protocol: Behavior and Neurobiology Protokoll Benotet Pflicht 50

Kurzzusammenfassung

Introduction to basic concepts and methods in behavioural sciences and neurobiology. The course provides an overview of the structure of the nervous system and the mechanisms underlying simple behaviours. Moreover, it provides information about basic experimental strategies that are used in behavioural sciences and neurobiology.

Lehrinhalte

Formulation of research questions and hypotheses in the field of behavioural sciences and neurobiology (e.g., cellular substrate to execute complex behaviours, hormonal regulation of behaviours). Application of molecular, computational and microscopic methods to test hypotheses. Evaluation of primary research literature. Presentation of research findings.

Lernziele

The students will acquire practical knowledge on basic concepts in behavioral sciences and neurobiology. Moreover, they will have knowledge about various experimental and molecular genetic research methods, including their statistical analysis. They will be able to present their data. During the seminar, students will get to know the current literature on the topic.

Literatur

Neuroscience Online - http://neuroscience.uth.tmc.edu Primary research literature, as distributed during the course



Wahl -








Wahl -

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Biostatistics biol226


Prof. Dr. Hinrich Schulenburg

Veranstalter




Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer zwei Wochen










Basic knowledge of statistics and experimental design



Vorlesung Biostatistics Pflicht

Praktikum Biostatistics Pflicht


Active participation in both lecture and practical

Prüfung(en)


Klausur: Biostatistics Klausur Benotet Pflicht 100

Kurzzusammenfassung

Any work in science relies on the application of statistical tests in order to evaluate the significance of the obtained data. The course provides an in-depth introduction into the basics of statistics with a particular focus on biological data.

Lehrinhalte

Basic background information on scientific research approaches, including understanding of falsification principle, precise formulation of hypothesis, and development of experimental design. Application of various statistical approaches, including explorative statistics, t tests, analysis of variance, correlation, regression analysis, etc. Usage of R package.

Lernziele

The students acquire an understanding of the basic concepts of statistical analysis. The students possess competence in experimental design, hypothesis-driven research, data types, data exploration, data presentation in figures and table, and common statistical tests. The students are able to apply statistical methods and test procedures on real biological data. The students possess competences in the critical evaluation of statistical results. The students are able to use the program R for statistical analysis.

Literatur

Peter Dalgaard: Introductory Statistics with R. Calvin Dytham: Choosing and Using Statistics: A Biologist's Guide. Steve McKillup: Statistics explained. An introductory guide for life scientists.





Wahl -






Wahl -


Wahl -

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Biologie des menschlichen Alterns biol232


Prof. Dr. Manuela Dittmar

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer zwei Wochen








Lehrsprache Deutsch



Vorlesung Biologie des menschlichen Alterns Pflicht

Seminar Biologie des menschlichen Alterns Pflicht

Übung Biologie des menschlichen Alterns Pflicht


Regelmäßige und aktive Teilnahme an Seminar und Übung

Prüfung(en)


Seminarleistung: Biologie des menschlichen Alterns


Protokoll: Biologie des menschlichen Alterns Protokoll Benotet Pflicht 80

Kurzzusammenfassung

In der Vorlesung werden biologische Vorgänge, Theorien und Konzepte des menschlichen Alterns vorgestellt. In der Übung werden spezielle Methoden zur Untersuchung menschlicher Alternsvorgänge praktisch angewendet. Im Seminar wird aktuelle Fachliteratur aus dem Gebiet der Alternsforschung behandelt.

Lehrinhalte

Vorgänge des Alterns, Ursachen des Alterns (Alternstheorien), Untersuchungsmethoden menschlicher Alternsprozesse, Konzept des biologischen Alters, Biomarker des Alterns, Phänomene beschleunigten und verzögerten Alterns. Physiologische und/oder molekulare Versuche aus dem Bereich der humanen Alternsforschung. Bearbeitung wissenschaftlicher Fachliteratur zum menschlischen Altern.

Lernziele

Die Studierenden erwerben ein umfassendes Fachwissen über die Biologie des menschlichen Alterns. Sie verstehen komplexe phänomenologische Vorgänge des menschlichen Alterns, Theorien und Konzepte. Sie besitzen die Kompetenz Fragestellungen zum menschlichen Altern mit adäquaten Methoden zu untersuchen und die Befunde zu bewerten. Sie sind in der Lage, wissenschaftliche Forschungsergebnisse zu präsentieren, in der Gruppe zu diskutieren und schriftlich zu formulieren. Sie besitzen die Kompetenz zur kritischen Beurteilung aktueller Fachliteratur aus der humanen Alternsforschung.



Literatur

Spirduso WW, Francis KL, MacRae PL (2005) Physical dimensions of aging. Champaign, IL: Human Kinetics.

Weitere Angaben

Studienhilfsmittel: Vorlesungs- und Übungsskripte, Fachartikel als pdf-Dateien



Wahl -




Master, 1-Fach mit Nebenfach, Prähistorische und Historische Archäologie, (Version 2007)

Wahl -


Wahl -


Wahl -

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Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet






Selbststudium 31,5 + 21 = 52,5 Stunden

Modultitel Modulcode Evolution and Development (EvoDevo) biol233


Prof. Dr. Thomas Bosch

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt






Elementary Zoology, Developmental Biology, and Molecular Biology



Übung Evolution and Development (EvoDevo) Pflicht

Seminar Evolution and Development (EvoDevo) Pflicht


Block course in the free period

Prüfung(en)


Klausur: Evolution and Development (EvoDevo) Klausur Benotet Pflicht 100

Kurzzusammenfassung

The module will allow students to explore and present one research topic in molecular developmental biology based on primary English literature. They will learn to use the appropriate methodology and their application potential to eventually resolve a given subject/topic.

Lehrinhalte

With the help of cell biology and molecular biology methods students are investigating developmental biology related question in early branching metazoan Hydra (Cnidaria).

Lernziele

Students will: acquire social competencies while working in groups; learn to present talks with PowerPoint or similar programs, train free speech, gain subject specific competence/knowledge in zoology, developmental biology, and in appropriate methodology, learn to approach certain research questions on the molecular, cellular and/or organismic level.

Literatur

Scripts provided during the class, recommended literature: Developmental Biology, 10th Edition, by Scott F. Gilbert, primary literature for seminar



Wahl -








Wahl -


Wahl -

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Developmental Biology of Marine Invertebrates biol235


Prof. Dr. Thomas Bosch

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer fünf Tage







Selbststudium 31,5 + 21 = 52,5 Stunden



Elementary Zoology, Developmental Biology, and Molecular Biology



Übung Developmental Biology of Marine Invertebrates Pflicht

Seminar Developmental Biology of Marine Invertebrates Pflicht


Takes place in the marine station of the Alfred-Wegener Institute (AWI) at Helgoland

Prüfung(en)


Seminarleistung: Developmental Biology of Marine Invertebrates


Kurzzusammenfassung

The module will allow students to explore and present one research topic in molecular developmental biology based on primary English literature. They will learn to use the appropriate methodology and their application potential to eventually resolve a given subject/topic.

Lehrinhalte

With the help of cell biology and molecular biology methods students are investigating sexual reproduction and developmental biology mechanisms in marine invertebrates around Helgoland island.

Lernziele

Students will: acquire social competencies while working in groups; learn to present talks with PowerPoint or similar programs, train free speech, gain subject specific competence/knowledge in zoology, developmental biology, and in appropriate methodology, learn to approach certain research questions on the molecular, cellular and/or organismic level

Literatur

Scripts provided during the class, recommended literature: Developmental Biology, 10th Edition, by Scott F. Gilbert, primary literature for seminar

Weitere Angaben

An der biologischen Anstalt Helgoland.





Wahl -






Wahl -


Wahl -

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Vielfalt der Biotechnologie biol236


Prof. Dr. Rüdiger Schulz

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet









Lehrsprache Deutsch



Seminar Vielfalt der Biotechnologie Pflicht

Übung Vielfalt der Biotechnologie Pflicht

Prüfung(en)


Seminarleistung: Vielfalt der Biotechnologie Seminarleistung Benotet Pflicht 50

Protokoll: Vielfalt der Biotechnologie Protokoll Benotet Pflicht 50

Kurzzusammenfassung

Theoretischen Grundlagen und praktische Kenntnisse zur Vielfalt der Biotechnologie.

Lehrinhalte

Erarbeitung theoretischer Grundlagen der Vielfalt und „Farbenlehre“ der Biotechnologie und Kennenlernen von unterschiedlichsten praktischen Aspekten der Biotechnologie durch Versuche vor Ort und durch Besuche von Biotechnologie-Firmen, -Forschungsgruppen und -Institutionen in Norddeutschland. Mögliche zu bearbeitende Themen:

Geschichte der Biotechnologie, Klassische biotechnologische Verfahren Bedeutung der Molekularbiologie und Gentechnik für die Biotechnologie Rote Biotechnologie(Definition, Verfahren, Tiere, Pharmazie, Medizin, Forensik, Gentherapie) Grüne Biotechnologie (Definition, Verfahren, Pflanzen, Lebensmittel, Bioenergie) Weiße Biotechnologie (Definition, Verfahren, Mikroorganismen, Wirkstoffproduktion) Blaue Biotechnologie (Definition, Aquatische Biotechnologie, Wirkstoffe, Aquakultur) Gelbe Biotechnology (Definition, Insekten, Verfahren, Anwendungen) Fermenter- und Messtechnik, Analytik in der Biotechnologie Mikroalgen-Biotechnologie, fermentativer und solarer Biowasserstoff Nano-Biotechnologie Umwelt-Biotechnologie (u.a. Abfall- und Abwasserbehandlung, GVO-Nachweis) Biologische Kriegsführung und Bioterrorismus Biogas: Geschichte, Biologie, Prozess, Praxis, rechtliche Grundlagen Recht, Ethik, Akzeptanz, Genehmigungs- und Zulassungsverfahren, Patente Produktionsstandards in der Biotechnologie (z.B. „Reinraumverfahren“) Lernziele



Die Studierenden können unter fachlicher Anleitung und durch außer universitäre Beispiele die Vielfalt der Biotechnologie kennenlernen. Theoretische Inhalte zum Thema werden anhand von aktueller Fachliteratur bearbeitet und im Seminar vorgestellt. Entwicklung von Fach-, Vermittlungs- und Methodenkompetenzen.

Literatur

Während des Moduls bereitgestellte Übungs-Skripte, Fachbücher und Fachliteratur.



Wahl -





Wahl -


Wahl -

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Molecular microbiology: (Transposon)mutagenesis Approaches and Biotechnology

biol237


Prof. Dr. Ruth Anne Schmitz-Streit

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt




Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet

Dauer two weeks


Arbeitsaufwand pro Leistungspunkt 26

Arbeitsaufwand insgesamt 135 hours

Präsenzstudium 42 h

Selbststudium 31,5 + 31,5 = 63 h



Depend knowledge of molecular biology methods and practical experience of experimental work in the laboratory (e.g. microbiology tools), master module biol216



Vorlesung Molekulare Biotechnologie Pflicht

Übung Molekulare Biotechnologie Pflicht

Seminar Ausgewählte Beispiele der molekularen Biotechnologie Pflicht


Max. 10 participants (BOTH Masters!)


Active participation in both seminar and practical; submitted protocol

Prüfung(en)


Protokoll: Molecular Microbiology: (Transposon) Mutagenesis Approaches and Biotechnology

Protokoll Unbenotet Pflicht -

Klausur: Molecular Microbiology: (Transposon) Mutagenesis Approaches and Biotechnology


Kurzzusammenfassung



Transposons are genetic elements (insertion elements), which are able to change their localization in the genome by a process called transposition; this property can be used for genetic analyses especially functional description of genes. In practical two different transposon types will be used for generation of Raoutella. terrigena mutants, (general mutation). Mutants, which show a nitrogen phenoptype (defect in N-metabolism), will be characterized by determine the insertion localization of the transposon by rescue cloning and sequencing.

Lehrinhalte

Introduction into (i) transposons, (ii) key questions in molecular biotechnology and the respective experimental realization, as well as (iii) possibly occurring problems (e.g. during heterologous enzyme production due to insolubility) and potential approaches to address these problems. Selected examples for gene expression will be worked out. The respective gene products will be further purified and analysed by modern tools. Further, selected general and specific mutational approaches will be performed self-contained (e.g. transposon mutagenesis, site specific mutagenesis); and the respective mutants will be further characterized with modern techniques (e.g. by quantitative RT-PCR analysis). Furthermore the students will be instructed for good scientific practice, critical handling and presenting of scientific results.

Lernziele

The students understand and know the application of molecular biological methods and tools in biotechnology by means of prokaryotic model systems. Selected examples will be worked out by acting independently. The students will acquire competence to critically analyze and present scientific original publications as well as their own scientific results based on accompanying seminars.

Literatur

Lecture: Schlegel/Fuchs Allgemeine Mikrobiologie (Thieme Verlag, 8. Auflage), Munk Mikrobiologie (Spektrum Verlag), Brock Mikrobiologie (Spektrum Verlag), Molecular Genetics of Bacteria (ASM Press), Angewandte Mikrobiologie (Springer Verlag), 'Molecular Genetics of bacteria' L. Snyder, J E. Peters, T M. Henkin, W.Champness, 4th edition 2013, ASM Press Practical/Seminar: Script and Primary research literature, as distributed during the course



Wahl -



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Biochemie der Mikroorganismen II biol239


Prof. Dr. Peter Schönheit



Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet







Lehrsprache Deutsch


Vertiefte Kenntnisse in der Mikrobiologie und Biochemie



Vorlesung Biochemie der Mikroorganismen Pflicht

Übung Biochemie der Mikroorganismen Pflicht

Seminar Biochemie der Mikroorganismen Pflicht


Testiertes Protokoll

Prüfung(en)




Klausur: Biochemie der Mikroorganismen Klausur Benotet Pflicht 100

Protokoll: Biochemie der Mikroorganismen Protokoll Unbenotet Pflicht -

Kurzzusammenfassung

Heterologe Expression und Charakterisierung eines thermoaktiven Enzyms, der Glucose-6-phosphat Dehydrogenase, aus dem hyperthermophilen Bacterium Thermotoga maritima. Ortspezifische Mutagenese der Glucose-6-phosphat Dehydrogenase und Charakterisierung des Mutantenproteins.

Lehrinhalte

Vorlesung: Stoffwechsel und Enzymologie der Mikroorganismen Übung und Seminar:

Heterologe Expression in (E. coli) eines Gens des Zuckerstoffwechsels aus einem hyperthermophilenMikroorganismus

Reinigung des rekombinanten (his-tagged) Proteins (Hitze-Schritt, Affinitätschromatographie an Ni-NTA) Charakterisierung des rekombinanten Enzyms (kinetische Konstanten, Temperaturabhängigkeit) Generierung eines Mutantenproteins durch ortspezifische Mutagenese und Charakterisierung

Lernziele

Die Studierenden haben ein vertieftes Verständnis des Stoffwechsels und der Enzymologie von Mikroorganismen, insbesondere von extremophilen Archaea und Bacteria. Sie haben ein hyperthermophiles Enzym nach heterologer Expression gereinigt und charakterisiert und durch Analyse eines Mutantenproteins Untersuchungen zum Katalysemechanismus durchgeführt. Durch begleitende Seminare haben die Studierenden die Kompetenz erworben, die eigenen Ergebnisse oder wissenschaftliche Originalartikel zu präsentieren.

Literatur

Fuchs, Allgemeines Mikrobiologie (Thieme); Antranikian, Angewandte Mikrobiologie (Springer); Brock, Mikrobiologie kompakt (Pearson); Stryer (Spektrum) bzw. Lehninger (Springer), Biochemie; Fachspezifische Übersichts-Artikel und Originalpublikationen über extremophile Archaea und Bacteria; Praktikums-Skript



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Wahl -




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Molekulare Hormonsteuerung von Entwicklungsprozessen in Pflanzen biol246


Prof. Dr. Margareta Sauter

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet









Basic knowledge of plant biology, plant physiology, molecular biology, and experimental basics.





Übung Hormone signaling Pflicht

Seminar Signaling Pflicht



Prüfung(en)


Protokolle: Hormonsteuerung von Entwicklungsprozessen in Pflanzen


Seminarleistung: Hormonsteuerung von Entwicklungsprozessen in Pflanzen


Kurzzusammenfassung

Plant cells communicate with each other and with other organisms via hormones that are perceived by receptor proteins. Hormones control plant growth and development as well as the interaction of plants with their environment. Hormones are perceived by receptor proteins that are activated upon hormone binding. A signal transfer chain is initiated that triggers a response. The student will learn how to study hormone signal transduction by employing genetic, molecular, cell biological and biochemical methods. This course teaches experminental approaches to analyze hormonal pathways.

Lehrinhalte

Introduction into hypothesis-driven experimental research and in experiment planning. Use of cytological, biochemical and molecular-genetic methods to study signal molecules, signaling genes and physiological responses. Setup of laboratory experiments, their statistical analyis, and critical evaluation. Presentation of research findings. Study, presentation, and discussion of primary research literature.

Lernziele

The students will acquire knowledge on the study of signaling. They will have knowledge how to set up an experiment, the application of appropriate research methods, and the evaluation of experimental results. They will be able to summarize their data in a protocol. The seminar will introduce students to the current literature on the topic and to the presentation of primary literature. The students will acquire the competence to perform a Master project.

Literatur

Primary research literature, as distributed during the course

Weitere Angaben

Limited to 10 participants.





Wahl -





Wahl -


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Simple Animal Models for Human Disease biol256


Prof. Dr. Thomas Roeder

Veranstalter



Fakultät


Prüfungsamt


Leistungspunkte 5

Bewertung Benotet











Basic knowledge of experimental work.



Seminar Drosophila und C. elegans als Modellorganismen Pflicht

Übung Working with Drosophila and C. elegans Pflicht

Prüfung(en)


Seminarleistung: Simple Animal Models for Human Disease


Protokolle: Simple Animal Models for Human Disease


Kurzzusammenfassung

Introduction to simple model organisms. The course provides an overview of types of genetic interventions in simple, invertebrate organisms and provides examples of using transgenic animals in biomedical research. Moreover, it provides information about basic experimental strategies that are used to model human diseases in simple, genetically amenable organisms.

Lehrinhalte

Formulation of research questions and hypotheses in the field of biomedical research (e.g., models that mimic human diseases, molecular alterations that are associated with specific diseases etc.). Application of molecular, computational and microscopic methods to test hypotheses. Evaluation of primary research literature. Presentation of research findings.

Lernziele

The students will acquire practical knowledge on basic concepts in the field of genetic intervention to produce tailored organisms. Moreover, they will have knowledge about various experimental and molecular genetic research methods, including their statistical analysis. They will be able to present their data. During the seminar, students will get to know the current literature on the topic.

Literatur

Neuroscience Online - http://neuroscience.uth.tmc.edu Primary research literature, as distributed during the course





Wahl -





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Documents

Modulhandbuch - bimo.uni-kiel.de · Biochemie und Molekularbiologie, Master, 1-Fach, Version 2016. Stand: 01. September 2018 Christian-Albrechts-Universität zu Kiel Seite 1 von 170