HETEROPTERON · 2020. 11. 3. · Der HETEROPTERON ist als deutsch-sprachiges Mitteilungsblatt konzipiert worden. Daher sollten möglichst viele (alte und) neue Mitteilungen gemeldet

HETEROPTERON Mitteilungsblatt der

Arbeitsgruppe Mitteleuropäischer Heteropterologen

INHALT Einleitende Bemerkungen des Herausgebers. ................................................................................................................... 1 Liste der Teilnehmer am 46. Treffen der „Arbeitsgruppe mitteleuropäischer Heteropterologen“ in Mallnitz. ................ 2 KLAUS VOIGT: 46. Tagung der "Arbeitsgruppe Mitteleuropäischer Heteropterologen" in Mallnitz (Kärnten,

Österreich). .................................................................................................................................................................. 3 MICHAEL J. RAUPACH: DNA Barcoding enthüllt neue Arten und mögliche Hybride in der Wasserwanzenwelt

Deutschlands (Heteroptera: Nepomorpha et Gerromorpha). ....................................................................................... 6 PETER GÖRICKE: Untersuchungen zu Wanzenzönosen im Deichrückverlegungsgebiet Elbaue bei Lödderitz

(Sachsen-Anhalt). ...................................................................................................................................................... 10 ANDREAS HILPOLD: Überblick über die Geschichte und aktuellen Stand der Erforschung der Südtiroler Wanzenfauna. (Teil 1 des Vortrags bei der Wanzentagung in Mallnitz (A)). .................................................................................... 15 ANDREAS HILPOLD: Wanzenerhebungen im Rahmen des Biodiversitätsmonitorings Südtirol (Teil 2 des Vortrags bei der Wanzentagung in Mallnitz (A)) . ................................................................................... 18 KLAUS REINHARDT: Parasiten in Zuchten von Heteropteren, speziell von Bettwanzen (Cimicidae). ............................. 21 PETER KOTT: Rhyparochromus vulgaris (SCHILLING, 1829) – die Gemeine Lauf- oder Bodenwanze in Nordrhein-Westfalen (NRW) (Heteroptera, Lygaeoidea, Rhyparochromidae). ........................................................ 25 MICHAEL DREES: Zur Wanzenfauna zweier Wacholderheiden im Märkischen Kreis (Sauerland, NRW). .................... 28 HANS-JÜRGEN HOFFMANN: Ergänzungen zum Beitrag „Ein Neuzugang … das Journal of the Heteroptera of Turkey"

(HETEROPTERON 59, 38-39). ................................................................................................................................ 30 HANS-JÜRGEN HOFFMANN: Fossile Wanzen aus dem Oberoligozän von Rott bei Bonn. ............................................... 31 Wanzenliteratur: Neuerscheinungen. .............................................................................................................................. 36 [Inhaltsverzeichnisse früherer Hefte und Allgemeines s. www.heteropteron.de]

Einleitende Bemerkungen des Herausgebers

Wieder einmal ein kleines Jubiläum: 60 Hefte geschafft – dank Mitarbeit vieler Heteropterologen.

Trotzdem noch einmal die Bitte:

Der HETEROPTERON ist als deutsch-sprachiges Mitteilungsblatt konzipiert worden. Daher

sollten möglichst viele (alte und) neue Mitteilungen gemeldet werden, ebenso wie einzelne eigene

Veröffentlichungen. Nur so bleibt eine gewisse Übersicht über das weite Feld der Heteropteren gewahrt.

Eigentlich sollte es doch im Interesse jedes Heteropterologen liegen, sein Wissen oder seine Kenntnisse

einzubringen und weiter zu verbreiten – auch im Zeitalter des Internets findet man immer noch

genügend Unbekanntes. Die Zeiten, wo man sein persönliches Wissen im Zettelkasten mit

Literaturangaben, in Tagebucheintragungen und mit in der eigenen Sammlung versteckten Tieren

möglichst für sich behielt, sind im Zeitalter des Internets doch eigentlich Vergangenheit!

Heft Nr. 60 - Köln, Oktober 2020 ISSN 1432-3761 print

ISSN 2105-1586 online

2 HETEROPTERON Heft 60 / 2020

Trotz CORONA-Pandemie hat das Treffen der „Arbeitsgruppe Mitteleuropäischer

Heteropterologen“ auch dieses Jahr geklappt, wenn auch leider mit deutlich geringerer Beteiligung. Das

vorliegende Heft bringt neben der allgemeinen Information zum 46. Treffen den Inhalt der vier dort

gehaltenen Vorträge.

Vier weitere interessante Beiträge zu sehr verschiedenen Themen füllen wieder das Heft, inkl.

einer Ergänzung zu HETEROPTERON 59, 38-39.

H.J. Hoffmann

Liste der Teilnehmer am 46. Treffen der „Arbeitsgruppe mitteleuropäischer Heteropterologen“ in Mallnitz

BRANDNER, JONNY 9 & MELANIE

2

BRÄU, MARKUS 14

& ♀

DOROW, WOLFGANG 1

FARACI, FRANCO 15

FRIESS, THOMAS 7

GÖRICKE, PETER 13

& MARION

HECKMANN, RALF 10

HEISS, ERNST 12

& INGRID

HILPOLD, ANDREAS 5

HOLZSCHUH, CAROLUS 8

HUBER, ELISABETH 6

KOMPOSCH, CHRISTIAN (FOTOGRAF)

MÜNCH, MICHAEL 11

& DORIS+ KINDER

NAWRATIL, JOSEF 4

RABITSCH, WOLFGANG 17

&

PEYTON, JODEY

RAUPACH, MICHAEL 16

VOIGT, KLAUS 3 & FRIEDLINDE

Die Teilnehmer am Treffen vor dem Tagungsgebäude (ohne einige ♀♀ u. Kinder) (Foto CH. KOMPOSCH)

9 10 11 12 13 14 15 16 17

2

1 3 4 5 6 7 8

HETEROPTERON Heft 60 / 2020 3

46. Tagung der "Arbeitsgruppe Mitteleuropäischer Heteropterologen"

in Mallnitz (Kärnten, Österreich)

KLAUS VOIGT

Das 46. Treffen der AG mitteleuropäischer Heteropterologen fand vom 21. bis 23. August

2020 im österreichischen Luftkurort Mallnitz, der im alpinen Teil Kärntens liegt, statt. Rund 20

Teilnehmer aus Deutschland, Italien und Österreich hatten die Einladung von WOLFGANG

RABITSCH und THOMAS FRIESS angenommen und waren trotz CORONAzeit und großen

Entfernungen vom Heimatort mit Bahn oder PKW zum Nationalpark Hohe Tauern angereist. Sie

mussten es nicht bereuen, denn THOMAS FRIESS und WOLFGANG RABITSCH hatten die Tagung

ausgezeichnet vorbereitet und im CORONA-freien Kärntner Alpendorf Mallnitz ein ansprechendes

Tagungsquartier ausgesucht.

Manche Teilnehmer waren schon Tage vorher angereist und konnten daher vor der offiziellen

Eröffnung bei einer Exkursion ins Tauerntal auf 1800 m die alpine Bergwelt mit ihren

ökologischen Besonderheiten an Flora und Fauna kennen lernen. Bei sonnigem Wetter zeigten sich

die Almweiden und schütteren Lärchenwälder von ihrer besten Seite. Allerdings merkte man beim

Sammeln die Auswirkungen der lange andauernden Trockenheit sehr. Viele Kräuter, Laub- und

Nadelbäume zeigten Trockenstress, was sich auf die Vielfalt und Anzahl der nachgewiesenen Arten

auswirkte. Dennoch konnten alpine Vertreter der Miriden z.B. Calocoris alpestris gefunden

werden, während Lygaeiden, Coreiden und Pentatomiden selten waren. Auf den beweideten

Almwiesen fiel die Vielfalt der zahlreichen Kleinzikaden besonders auf.

Am Freitagabend wurde die Tagung offiziell im Vortragssaal des BIOS Nationalparkzentrum

Hohe Tauern, Mallnitz, nach einem kurzen Grußwort von KLAUS VOIGT, von WOLFGANG

RABITSCH feierlich eröffnet. Nach der Begrüßung der angereisten Teilnehmer stellte er kurz das

geplante Programm vor und bedankte sich bei der Verwaltung des Nationalparks Hohe Tauern im

Hinblick auf Vorbereitung und Durchführung dieser Tagung. Er äußerte auch die Hoffnung, dass

durch die vorgesehenen Exkursionen ein wertvoller Beitrag zur Erforschung der Insektenfauna des

Nationalparks und von Kärnten erfolgt. Außerdem wies er darauf hin, dass bei allen

Veranstaltungen in den Räumen des Nationalparkzentrums die strikten CORONA-19-

Verhaltensmaßregeln zu beachten sind.

KATHARINA AICHHORN, die Mitarbeiterin im Nationalpark Hohe Tauern, stellte in Wort und

Bild die einzigartige Vielfalt der Bergwelt und ihrer Tallandschaften des Nationalparks vor. Die

alpinen Landschaften charakterisieren das Gebiet, das sich von fast 4000 m hohen Gletscherbergen

bis zu Tälern um 1100 m sich erstreckt. Es darf keine Landwirtschaft und keine Jagd betrieben

werden; nur die herkömmliche Almwirtschaft und Holznutzung ist erlaubt. Der Naturschutz hat

oberste Priorität, was man auch an der Wiederansiedlung des Bartgeiers erkennen kann. Der

Nationalpark Hohe Tauern ist touristisch gut erschlossen und Wanderern und Sportlern frei

zugänglich.

THOMAS FRIESS ergänzte mit seinem speziellen Beitrag: „Kenntnisstand der Wanzenfauna

des Nationalpark Hohe Tauern“ den vorhergehenden fundamentalen Vortrag vorzüglich. Seit den

historischen Sammlungen von GREDLER (1870), STROBL (1899), FRANZ (1940) wurde der heutige

Nationalpark von Heteropterologen nur spärlich besucht, worauf die geringe Anzahl von 84

bekannten Wanzenarten aus 81 Fundorten hinweist. Doch beherbergt das Gebiet auch einige

Besonderheiten, die im Bild vorgestellt wurden. Dies sind Eurydema fieberi, Calocoris alpestris,

Horwathia lineolata, Stenodema algoviensis, Deraeocoris annulipes, Globiceps juniperi, Nithecus


jacobeae, Salda litoralis u.a. Die Artenzahl bekannter Wanzenarten kann durch die anwesenden

Spezialisten sicher noch erhöht werden.

Bedingt durch drohende Gewitter wurde die für den Nachmittag geplante Exkursion ins

Dösental auf den Vormittag vorverlegt. Steil ging es durch einen Schluchtwald bergan, an einer

historischen venezianischen Sägemühle vorbei, bis zur Hochebene bei der Dösener-Alm auf 1.450

m. An einem verpilzten Baumstumpf am Waldrand wurden zur großen Freude Aradus crenaticollis

entdeckt. Von dem Weideland führte der Weg nochmals steil bergan bis zur Konradshütte und der

Konradslacke, einem kleinen periodisch austrocknenden See (1.610 m). Am sandigen Seeufer gab

es verschiedene Saldula-Arten, im und auf dem See aber kaum Wasserwanzen. Doch talwärts

konnten auf dem Dösenbach an einigen Stillwasserbereichen Gerris und Velia gefunden werden.

Während die meisten Tagungsteilnehmer sich dem Sammeln und Dokumentieren der

Wanzenfauna widmeten, hatte FRIEDLINDE VOIGT ein Frauenprogramm organisiert. Es führte an

diesem Tag mit dem kostenlosen Wanderbus nach Flattach, wo sie das eindrucksvolle

Naturdenkmal Raggaschlucht mit ihren spektakulären Wasserfällen durchwanderten.

Pünktlich, bei beginnendem Regen, kam man wieder zum Besucherzentrum Mallnitz im NP

Hohe Tauern zurück, wo die Vortragsveranstaltung stattfand.

Den Reigen der Vorträge eröffnete MICHAEL RAUPACH, der neue Leiter der

Entomologischen Sektion der Zoologischen Staatssammlungen München, mit dem Thema: Ab ins

Wasser: Die neuen Forschungsschwerpunkte der Sektion Hemiptera an den Zoologischen

Staatssammluingen München. Nach seiner kurzen persönlichen Vorstellung zeigte er Beispiele

von durch Barcoding gewonnene systematische Ergebnisse seiner Untersuchungen an Sigara

distincta, S. falleni und S. iactans auf. Die Bearbeitung der mitteleuropäischen Wasserwanzen ist

schon sehr weit fortgeschritten (95 %). Ein weiteres Projekt ist australischen Wasserwanzen

gewidmet mit dem Ziel, sie mit Barcodices eindeutig bestimmen zu können. Man rechnet pro Tier

mit einer Woche Bearbeitung.

Danach sprach PETER GÖRICKE über: Untersuchungen zu Wanzenzönosen im

Deichrückverlegungsgebiet Elbaue bei Lödderitz (Sachsen-Anhalt). Durch die Deichrück-

verlegungen wurden neue Überflutungsgebiete geschaffen. Der Vortragende hat darin 24 spezielle

Untersuchungsflächen ausgewertet und dabei 175 Wanzenarten festgestellt. Ihre Verteilung auf

Grünland, Waldrand, Feuchtgebiete u.a.m. hat er ausgewertet und in Diagrammen und Tabellen

vorgestellt. Er ging auch auf die Probleme ein, die durch das Ausbleiben der Überflutung verursacht

wurden, wie z. B. dass die invasive Mittelmeerwanze Oxycarenus lavaterae sich dort fast

flächendeckend angesiedelt hat. Erfreulich war die Mitteilung, dass das bedrohte Biotop Aken vom

Land Sachsen-Anhalt als NSG anerkannt wurde. Außerdem wurden die gesamten Untersuchungen

vom Land Sachsen-Anhalt anerkennend gewürdigt und mit einer neuen Stelle für einen amtlichen

Betreuer ‚belohnt’ worden.

Einen erfrischenden Dialog boten THOMAS FRIESS & CAROLUS HOLZSCHUH an zum Thema:

12 Jahre entomologische Forschung im Hausgarten. Wanzendiversität auf 1.080 m2. Seit 2006

hat der pensionierte Förster und Forstschutzexperte C. HOLZSCHUH in seinem Villacher Hausgarten

intensiv die eindringenden Insekten beobachtet, gefangen und bestimmt. Die Vielfalt seiner

Gartenpflanzen, sowie eine variantenreiche Anwendung seiner Fanggeräte, Techniken und Plätze

brachten eine unglaubliche Artenzahl von Käfern, Fliegen, Wespen und Wanzen in seinem relativ

kleinen Biotop am Rande einer Stadt zusammen. 336 Wanzenarten, darunter viele Neunachweise,

konnte er für die Kärntner Fauna belegen, das sind 55 % der Landesfauna. Diese Erfolgsstory hat

das Duo mit launigen Episoden gewürzt und mit Bildern und Sammlungskästen demonstriert


anschaulich vorgetragen, was mit lang andauerndem Beifall bedankt wurde.

MARKUS BRÄU sprach über: Probleme zur Wanzenfauna Bayerns. Bei der Überarbeitung

der neuen Roten Liste Bayerns stellte sich heraus, dass der Mangel an Spezialisten bedeutsam ist

und zahlreiche Flächen des großen Bundeslandes unbearbeitet sind, weil sie abgelegen oder

anscheinend unattraktiv sind. Trotz seiner 60.000 Datensätze aus Privatsammlungen und Museen

können viele Lücken nicht beseitigt werden. Darum bittet er die Kollegen um Hilfestellung, in dem

sie ihm zur Vervollständigung einer flächendeckenden Karte Bayerns Daten aus ihren bayerischen

Fundorten zur Verfügung stellen.

WOLFGANG RABITSCH informierte über: Neues zu Wanzen in Österreich. Im Jahre 2005

waren 906 Wanzenarten aus Österreich bekannt. Bis 2016 kamen 13 Neunachweise dazu, z. B.

Beosus quadripunctata, Spilostethus pandurus, Corytucha arcuata, u. a. Durch Zuwanderer

vorwiegend aus Süden und Osten hat sich die Anzahl nachgewiesener Arten inzwischen auf 924

erhöht. Dies ist ein Rekord für Mitteleuropa.

ANDREAS HILPOLD, Forscher am Institut für Alpine Umwelt in Bozen/IT, gab einen

Überblick über die Wanzenfauna Südtirols und Einblick in die Erhebungen im Rahmen des

Biodiversitätsmonitoring Südtirols. Einleitend sprach er über die Geschichte der

WANZENFORSCHUNG in Südtirol seit dem 19. Jahrhundert und schloss mit dem heutigen Stand der

Erarbeitung. Alle dokumentierten und bekannten Arten, sowie ihre Fundorte und ökologischen

Daten wurden in einer Datenbank erfasst. Dabei wurden zahlreiche Lücken offenbar. Das Institut

für Alpine Umwelt/Eurac Research leitet u. a, das Biodiversitätsmonitoring Südtirol in

Zusammenarbeit mit dem Naturmuseum Südtirol und der Abteilung Natur, Landschaft und

Raumentwicklung der autonomen Provinz Bozen-Südtirol. Ein eigenes Projekt widmet sich der

Marmorierten Baumwanze (Halyomorpha halys) und einem möglichen Gegenspieler, der

parasitoiden Samurai-Wespe.

Am Ende seines interessanten Vortrags lud ANDREAS HILPOLD die "Arbeitsgruppe

Mitteleuropäischer Heteropterologen" zu ihrer nächsten Tagung 2021 nach Bozen ein. Das genaue

Datum steht noch nicht fest. Es wird voraussichtlich im Januar 2021 in dieser Zeitschrift

„HETEROPTERON“ bekannt gegeben.

Zum Abschluss der Tagung dankte KLAUS VOIGT für die vorzügliche Organisation und

Durchführung der Tagung WOLFGANG RABITSCH, sowie THOMAS FRIESS für die Auswahl und

Begleitung zu den interessanten Exkursionsgebieten. Allen, die schon am Sonntagmorgen sich auf

den weiten Heimweg machen müssten, wünschte er eine gesunde Heimfahrt mit dem Wunsch auf

ein Wiedersehen in Bozen 2021. Zum Schluss bat er noch, dass die Vorträge publiziert und die

Sammelergebnisse an W. RABITSCH weitergegeben werden. Die Zeitschriften „HETEROPTERON“

und „CARINTHIA“ drucken diese. Das Gruppenbild von CHRISTIAN KOMPOSCH erinnert an die

Tagung 2020 in dem beeindruckenden Besucherzentrum des Nationalparks Hohe Tauern.

Am Sonntag führte eine ganztägige Exkursion in das Seebachtal. Vom Parkplatz bei der

Ankogelbahn führte der Weg zum Stappitzer See (1.260 m), wo Feucht- und Nasswiesen, sowie

moorige Verlandungsstellen eine typische Wanzenfauna versprachen. Teratocoris paludum und

Gerris costae bestätigten dies. Im See waren leider kaum Corixiden zu finden, die Gerris und

Notonecta Arten waren noch im Larvenstadium. Der Wanderweg zur Schwussnerhütte entlang der

Südseite des Tales bot abwechslungsreiche Biotope zur genaueren Untersuchung an: Bergwald mit

Totholz, Gebüschsäume, Heidelbeersträucher und Farnplätze, Felsen, Tümpel und

Verlandungszonen am Seebachufer (Macrosaldula scotica), sowie ein ‚Eisloch’ nahe der

Schwussnerhütte. In der bewirtschafteten urigen Hütte auf 1.338 m konnte man sich von der


dreistündigen Wanderung bei einem Imbiss und kühlen Getränken erholen und neue Kräfte für den

Rückweg auf der anderen Seite des romantischen Seebachtales sammeln. Bergab führte die Straße

an den Trombachwasserfällen, steilen Wiesenhängen und Geröllhalden vorbei wieder zum

Ausgangspunkt am Fußpunkt der Ankogelbahn, wo die Autos parkten.

Eine kleine Gruppe der Teilnehmer nützte den Montag bei bedecktem Himmel noch zu einer

kleinen Nachexkursion ins Tauerntal nahe der Stockerhütte (1.280 m). Der Bergwald und sein

Unterwuchs, sowie die große Schotterfläche eines Bergbachs konnten beprobt werden. An den

bepilzten Bäumen waren keine Aradiden zu entdecken. Doch auf den Schotterflächen mit ihren

zahlreichen Disteln wurden Tingis cardui und in der schütteren Bodenflora Halticus apterus und

Strongylocoris leucocephalus nachgewiesen. Leider verhinderte aufkommender Regen die weitere

Suche, so dass die Exkursion vorzeitig abgebrochen werden musste.

Die beiden zurückgebliebenen Frauen hatten den Tag zu einem Besuch in Spittal an der

Drau mit dem Zug genützt, wo sie einen interessanten Stadtrundgang machten und das Schloss

Porcia mit seinem berühmten Arkadenhof besuchten.

Am Dienstagmorgen reisten die letzten Teilnehmer wieder ab. Sie waren voll des Lobes über

die gelungene Tagung unter CORONA-19-Auflagen, mit informativen Vorträgen, Gesprächen und

Exkursionen in einer bezaubernden Berglandschaft und einer angenehmen Unterkunft.

Für wertvolle Ergänzungen und Hinweise sei W. RABITSCH gedankt. Anschrift des Autors:

Klaus Voigt, Forellenweg 4, D 76275 ETTLINGEN. e-mail: [email protected]

Zum folgenden Beitrag:

Abb.1: Neighbour-Joining-Topologie aller analysierten Exemplare der Gattung Notonecta LINNAEUS, 1758 (6 Arten, 94

Individuen) basierend auf K2P-Distanzen. Die Ziffern an den Knoten sind Bootstrap-Werte (1000 Replikate).

Als Außengruppe fungiert Anisops sardeus HERRICH-SCHAEFFER, 1849.


DNA Barcoding enthüllt neue Arten und mögliche Hybride in der Wasserwanzenwelt Deutschlands (Heteroptera: Nepomorpha et Gerromorpha)

MICHAEL J. RAUPACH

Zusammenfassung:

Innerhalb der letzten Jahre hat sich das DNA Barcoding als populäre Methode zur molekularen Identifizierung von Arten etabliert. Obwohl zwingend notwendig, sind Barcoding-Studien über die artenreichen und ökologisch diversen Heteropteren leider immer noch selten. In diesem Zusammenhang wurde für die semiaquatischen und aquatischen Wasserwanzen Deutschlands eine umfangreiche DNA Barcode-Bibliothek erstellt. Insgesamt wurden DNA Barcodes von 63 Arten und 686 Individuen generiert und analysiert. Die Ergebnisse dokumentierten identische Sequenzen für einige nah verwandte Arten, die möglicherweise immer noch hybridisieren, als auch eine überraschend hohe molekulare Variabilität innerhalb Cymathia coleoptrata (FABRICIUS, 1777) und dem Wasserzwerg Plea minutissima LEACH, 1817. Weiterführende morphologische und molekulare Untersuchungen finden aktuell statt. Abstract:

During the last years DNA barcoding has become a popular method for molecular species identification. Although demanding, comprehensive barcoding studies of the species and ecological diverse Heteroptera are unfortunately still scarce. In this context a comprehensive DNA barcode library of the semi-aquatic and aquatic true bugs of Germany has been established. In total, DNA barcodes for 686 specimens of 63 species were generated and analyzed. The results document identical sequences for a number of closely related species that may still hybridize, as well as a surprisingly high molecular variability within Cymathia coleoptrata (FABRICIUS, 1777) and pygmy backswimmer Plea minutissima LEACH, 1817. Additional morphological and molecular analyses are in progress.

Einleitung

Wenn wir in einem Supermarkt ein Produkt kaufen, wird dessen Identität sowie Preis mittels

eines Strichcodes („Barcode“) an der Kasse erfasst. Dieses Verfahren spart uns an der Kasse

mitunter viel Zeit und dem Kassierer/der Kassiererin viel Arbeit. Basierend auf diesen Eindrücken

kam vor etwas mehr als 15 Jahren PAUL HEBERT aus Guelph (Kanada) auf die Idee, ein ähnliches,

molekularbasiertes Verfahren zur Identifizierung von Organsimen zu entwickeln (HEBERT et al.

2004). Die von ihm entwickelte Methode, das sogenannte „DNA Barcoding“, verwendet die

Basenabfolge eines bestimmten, standardisierten Genabschnittes zur Art-Identifizierung. Bei den

Tieren fiel die Wahl auf einen Bereich des mitochondrialen Cytochrom-c-Oxidase Untereinheit I-

Gens mit einer Länge von rund 660 Basenpaaren. Eine Grundlage des DNA Barcodings ist die

Annahme, dass die innerartliche Variation dieses Genabschnittes geringer ist als die

zwischenartliche Variabilität und somit eine eindeutige Zuordnung eines Individuums ermöglicht.

In den letzten Jahren hat sich das DNA Barcoding als zuverlässige, schnelle und kostengünstige

Methode zur Artdetermination in der nationalen wie internationalen Forschungslandschaft fest

etabliert (u.a. WÄGELE 2016, GEIGER et al. 2016). In Kombination mit modernen Hochdurchsatz-

Sequenzierverfahren, die Zehntausende von Proben parallel analysieren, kann so ein effizientes

Biodiversitätsmonitoring durchgeführt werden (z.B. JI et al. 2013, BUSH et al. 2019, HAUSMANN et

al. 2020). Dies gilt insbesondere für die hyperdiversen Insekten, deren Bestimmung in vielen Fällen

aufwendig und die notwendige Expertise häufig nicht (mehr) vorhanden ist. Innerhalb Deutschlands

wurden im Rahmen des Barcoding Fauna Bavarica-Projekts (http://barcoding-zsm.de/bfb) sowie

des nachfolgenden German Barcode of Life-Projekts (https://www.bolgermany.de/wp/) erste

umfassende Sequenz-Bibliotheken für verschiedene Insektengruppen wie Schmetterlinge

(HAUSMANN et al. 2011), Käfer (HENDRICH et al. 2014), Heuschrecken (HAWLITSCHEK et al. 2017)

und Hautflügler (SCHMIDT et al. 2015) erstellt. Eine erste Studie, die rund 460 Arten und damit rund

51% der heimischen Wanzen abdeckte, demonstrierte das große Potenzial der Methodik auch für

diese Insektengruppe (RAUPACH et al. 2014). Auf Grundlage dieser Arbeit erfolgte der Aufbau einer

umfassenden DNA Barcode-Bibliothek der Wasserwanzen Deutschlands.


Warum gerade Wasserwanzen? Zum einen gibt es kaum ein stehendes oder fließendes

Gewässer, das nicht von Wanzen in oft hohen Arten- und Individuenzahlen besiedelt wird. Hier

nehmen Wasserwanzen mitunter eine zentrale ökologische Rolle ein. In Deutschland kommen 22

Arten der Unterordnung Gerromorpha und 47 Arten der Unterordnung Nepomorpha vor (STRAUSS

& NIEDRINGHAUS 2014, DECKERT & WACHMANN 2020). Zum anderen wurde die

Wasserwanzenfauna Deutschlands in der Vergangenheit gut erfasst, so dass eigentlich keine

Überraschungen zu erwarten waren. Allerdings gelten Wasserwanzen im Allgemeinen als recht

schwierig zu bestimmende Insektengruppe, was insbesondere auf die artenreiche Familie der

Corixidae zutrifft. Ferner ist bei manchen Arten, zum Beispiel bei Vertretern der Gattung Sigara

FABRICIUS, 1775, eine sichere Bestimmung nur bei Männchen möglich (JANSSON 1986).

Methoden

Informationen wie Fundort oder Sequenzchromatogramme der untersuchten Wasserwanzen

sind in dem öffentlich zugängigen Datensatz DS-BAHCE „Barcoding Aquatic Heteroptera of

Central Europe“ im Barcode of Life Datasystem (BOLD; http://www.boldsystems.org) hinterlegt

(RATNASINGHAM & HERBERT 2007). Näheres zur molekularen Aufarbeitung der Tiere sowie der

Datenanalyse findet sich in RAUPACH et al. (2014) und HAVEMANN et al. (2018).

Ergebnisse und Diskussion

Im Rahmen der Untersuchung wurden DNA Barcodes von 254 Individuen von 20 Arten der

Gerromorpha und 445 Individuen von 43 Arten der Nepomorpha analysiert (HAVEMANN et al.

2018). Somit beinhaltet die Studie 91 % der deutschen Fauna der Gerromorpha und 92 % der in

Deutschland dokumentierten Vertreter der Nepomorpha. Für 18 Arten (90 %) der analysierten

Gerromorpha war eine eindeutige Zuordnung von einer „Barcode Index Number“ (BIN) pro Art

möglich. Innerhalb der Nepomorpha gelang dies für 29 Arten (67 %). Abbildung 1 illustriert

exemplarisch die Auftrennung der verschiedenen Vertreter der Familie der Notonectidae in einer

Neighbor Joining-Topologie. Die Datenanalyse erbrachte allerdings auch einige überraschende

Ergebnisse, welche in HAVEMANN et al. (2018) detailliert beschrieben und diskutiert werden.

Hierunter fällt unter anderem das Auftreten von identischen Sequenzen bei den nah verwandten

Arten Sigara iactans JANSSON, 1983 und Sigara falleni (FIEBER, 1848), was eine eindeutige

Differenzierung beider Arten – sofern es sich um solche tatsächlich handelt – mittels DNA

Barcodes verhindert. Vergleichbare geringe zwischenartliche Distanzen treten unter anderem bei

Arctocorisa carinata (C. R. SAHLBERG, 1819) und Arctocorisa germari (FIEBER, 1848) sowie

Callicorixa praeusta (FIEBER, 1848) und Callicorixa producta (REUTER, 1880) auf. Ob es sich bei

diesen Artenpaaren um nahverwandte, aber distinkte Arten handelt oder zwischen den Arten noch

Genfluss stattfindet und es zu Hybridisierungen kommt, kann aktuell nicht geklärt werden und steht

im Fokus weiterer eingehender Studien. Im Gegensatz zu diesen geringen zwischenartlichen

Distanzen treten bei zwei Arten ungewöhnlich hohe innerartliche Werte auf. Bei Cymatia

coleoptrata (FABRICIUS, 1777) finden sich zwei Gruppen, die sich in bis zu 9,4 % voneinander

unterscheiden. Interessanterweise wird eine Gruppe durch das Fehlen von 16 (!) Aminosäuren

charakterisiert. Sehr hohe molekulare Distanzen wurden ferner bei Plea minutissima LEACH, 1817

gefunden, welche sich ebenfalls auf zwei Gruppen verteilen. Weiterführende morphologische als

auch molekulare Untersuchungen finden aktuell statt. Erste Resultate aber deuten an, dass hier in

beiden Fällen bislang jeweils eine Art übersehen wurde.

Unsere aktuellen Ergebnisse unterstreichen eindrucksvoll den Nutzen vom DNA Barcoding

als molekulare Methode zur Artidentifizierung als auch als taxonomisches Hilfsmittel. Es bleibt

abzuwarten, ob die angestrebte Erstellung einer gesamteuropäischen DNA Barcode-Bibliothek für

die Gerromorpha und Nepomorpha ähnlich überraschende Ergebnisse hervorbringen wird.


Literaturverzeichnis: BUSH, A., COMPSON, Z.G., MONK, W.A., PORTER, T.M., STEEVES, R., EMILSON, E., GAGNE, N., HAJIBABAEI, M., ROY,

M. & BAIRD, D.J. (2019): Studying ecosystems with DNA metabarcoding: Lessons from biomonitoring of aquatic macroinvertebrates. - Frontiers in Ecology and Evolution 7, 434.

DECKERT, J. & WACHMANN, E. (2020): Die Wanzen Deutschlands. Entdecken – Beobachten – Bestimmen. - Quelle & Meyer Verlag. Wiebelsheim, 715 S.

GEIGER, M.F., MORINIÈRE, J., HAUSMANN, A., HASZPRUNAR, G., WÄGELE, W., HEBERT, P.D.N. & RULIK, B. (2016): Testing the Global Malaise Trap Program - How well does the current barcode reference library identify flying insects in Germany? - Biodiversity Data Journal 4, e10671.

HAUSMANN, A., HASZPRUNAR, G. & HEBERT, P.D.N. (2011): DNA barcoding the geometrid fauna of Bavaria (Lepidoptera): successes, surprises, and questions. - Public Library of Science ONE 6, e17134.

HAUSMANN, A., SEGERER, A.H., GREIFENSTEIN, T., KNUBBEN, J., MORINIÈRE, J., BOZICEVIC, V., DOCZKAL, D., GÜNTER, A., ULRICH, W. & HABEL, J.C. (2020): Toward a standardized quantitative and qualitative insect monitoring scheme. - Ecology and Evolution 10, 4009-4020.

HAVEMANN, N., GOSSNER, M.M., HENDRICH, L., MORINIÈRE, J., NIEDRINGHAUS, R., SCHÄFER, P. & RAUPACH, M.J. (2018): From water striders to water bugs: the molecular diversity of aquatic Heteroptera (Gerromorpha, Nepomorpha) of Germany based on DNA barcodes. – PeerJ 6, e4577.

HAWLITSCHEK, O., MORINIÈRE, J., LEHMANN, G.U.C., LEHMANN, A.W., KROPF, M., DUNZ, A., GLAW, F., DETCHAROEN, M., SCHMIDT, S., HAUSMANN, A., SZUCSICH, N.U., CAETANO-WYLER, S.A. & HASZPRUNAR, G. (2017): DNA barcoding of crickets, katydids and grasshoppers (Orthoptera) from Central Europe with focus on Austria, Germany and Switzerland. - Molecular Ecology Resources 17, 1037-1053.

HEBERT, P.D.N., CYWINSKA, A., BALL, S.L. & DEWAARD, J.R. (2003): Biological identifications through DNA barcodes. - Proceedings of the Royal Society of London Series B: Biological Sciences 270, 313-321.

HENDRICH, L., MORINIÈRE, J., HASZPRUNAR, G., HEBERT, P.D., HAUSMANN, A., KÖHLER, F. & BALKE, M. (2015): A comprehensive DNA barcode database for Central European beetles with a focus on Germany: adding more than 3500 identified species to BOLD. - Molecular Ecology Resources 15,795-781.

JANSSON, A. (1986): The Corixidae (Heteroptera) of Europe and some adjacent regions. - Acta Entomologica Fennica 47, 1-94.

JI, Y., ASHTON, L., PEDLEY, S.M., EDWARDS, D.P., TANG, Y., NAKAMURA, A., KITCHING, R., DOLMAN, P.M., WOODCOCK, P., EDWARDS, F.A., LARSEN, T.H., HSU, W.W., BENEDICK, S., HAMER, K.C., WILCOVE, D.S., BRUCE, C., WANG, X., LEVI, T., LOTT, M., EMERSON, B.C. & YU, D.W. (2013): Reliable, verifiable and efficient monitoring of biodiversity via metabarcoding. - Ecology Letters 16, 1245-1257.

RATNASINGHAM, S. & HEBERT, P.D.N. (2007): BOLD: The Barcode of Life Data Systems. - Molecular Ecology Notes 7, 355-364.

RAUPACH, M.J., HENDRICH, L., KÜCHLER, S.M., DEISTER, F., MORINIÈRE, J. & GOSSNER, M.M. (2014): Building-up of a DNA barcode library for true bugs (Insecta: Hemiptera: Heteroptera) of Germany reveals taxonomic uncertainties and surprises. - Public Library of Science ONE 9, e106940.

SCHMIDT, S., SCHMID-EGGER, C., MORINIÈRE, J., HASZPRUNAR, G. & HEBERT, P.D.N. (2015): DNA barcoding largely supports 250 years of classical taxonomy: identifications for Central European bees (Hymenoptera, Apoidea partim). - Molecular Ecology Resources 15, 985-1000.

STRAUSS, G. & NIEDRINGHAUS, R. (2014): Die Wasserwanzen Deutschlands - Bestimmungsschlüssel für alle Nepo- und Gerromorpha. - WABV. Scheeßel, 66 S.

WEIGAND, H., BEERMANN, A.J., ČIAMPOR, F., COSTA, F.O., CSABAI, Z., DUARTE, S., GEIGER, M.F., GRABOWSKI, M., RIMET, F., RULIK, B., STRAND, M., SZUCSICH, N., WEIGAND, A.M., WILLASSEN, E., WYLER, S.A., BOUCHEZ, A., BORJA, A., ČIAMPOROVÁ-ZATOVIČOVÁ, Z., FERREIRA, S., DIJKSTRA, S.-D.B., EISENDLE, U., FREYHOF, J., GADAWSKI, P., GRAF, W., HAEGERBAEUMER, A., VAN DER HOORN, B.B., JAPOSHVILI, B., KERESZTES, L., KESKIN, E., LEESE, F., MACHER, J.N., MAMOS, T., PAZ, G., PEŠIC, V., PFANNKUCHEN, D.M., PFANNKUCHEN, M.A., PRICE, B.W., RINKEVICH, B., TEIXEIRA, M.A.L., VÁRBÍRÓ, G. & EKREM, T. (2019): DNA barcode reference libraries for the monitoring of aquatic biota in Europe: Gap-analysis and recommendations for future work. - Science of the Total Environment 678, 499-524.

WÄGELE, J.W. (2016): DNA-Barcoding ermöglicht den universellen und effizienten Zugang zu Artenwissen. - Biologie in unserer Zeit 46, 267.

Anschrift des Autors:

PD Dr. Michael J. Raupach, Staatliche Naturwissenschaftliche Sammlungen Bayerns,

Zoologische Staatssammlung München, Münchhausenstraße 21, D-81247 MÜNCHEN.

e-mail: [email protected]


Untersuchungen zu Wanzenzönosen im Deichrückverlegungsgebiet Elbaue bei Lödderitz (Sachsen-Anhalt) *)

PETER GÖRICKE

*) nach einem Vortrag beim 46. Treffen der „Arbeitsgruppe Mitteleuropäischer Heteropterologen“ vom 21. bis 23. August 2020 im Nationalpark Hohe Tauern in Österreich

Im Rahmen des Naturschutzprojektes „Mittlere Elbe“ wurde ca. 15 km elbabwärts von

Dessau bei Lödderitz eine Deichrückverlegung in einer Länge von ca. 5 km und einer Breite von ca.

2,5 km vorgenommen und in diesem Bereich ein neuer Deich errichtet (LANDESAMT FÜR

UMWELTSCHUTZ SACHSEN-ANHALT 2018). Im Jahr 2017 wurde der alte Deich geschlitzt bzw. ganz

entfernt sowie Flutrinnen geschaffen und eine Fläche von ca. 600 Hektar wurde damit nach ca. 180

Jahren wieder der natürlichen Hochwasserdynamik der Elbe zugeführt. In den Jahren 2017 und

2018 wurden 26 Kontrollflächen im Gebiet zur Erfassung der Ausgangssituation sowie zur

Erfolgskontrolle der Renaturierungsmaßnahmen vornehmlich nach pflanzensoziologischen

Gesichtspunkten durch die BIOSPHÄRENRESERVATSVERWALTUNG MITTELELBE festgelegt. Eine

Erfassung der Wanzenfauna als Indikator für die verschiedenen Lebensräume und die den

dynamischen Prozessen unterworfenen Habitate im Deichrückverlegungsgebiet Lödderitz erfolgte

im Jahr 2019 durch P. GÖRICKE. Dazu wurden die faunistischen Untersuchungen in mehreren

Wiederholzyklen im Jahr 2019 als Ersterfassung zur Dokumentation der Ausgangslage

durchgeführt. Dabei kam den Untersuchungen die Tatsache zu Gute, dass seit der Deichöffnung im

Jahr 2017 keine Hochwassersituation herrschte und somit der faunistische Ursprungszustand der

aktiven, fossilen (d.h. nach Eindeichung nicht mehr den Hochwasserereignissen ausgesetzte

Flächen / Gelände hinter dem Deich auch nach der Deichrückverlegung) und reaktivierten Altaue

im Deichrückverlegungsgebiet bestimmt werden konnte. Zur Erfassung der Wanzenfauna auf 15

Wald-Dauer-Beobachtungsflächen (Abb. 1), 6 Grünlandflächen (Abb. 2) und 5 Gewässerhabitaten

wurden standardisierte und für die einzelnen Lebensräume differenzierte Methoden eingesetzt. Als

faunistische Erfassungsmethoden wurden vorrangig definierte Bodenkescher- und Motorsaugfänge

(jeweils 100x/UF) und Klopffänge (á 15'/UF) an 3 Terminen und Gelb-, Blau- und Weiß-

Farbschalenfänge über ca. 6 Monate und 4-wöchigem Wechsel sowie an den Stillgewässer-UF

Wasserkescherfänge (á 30'/UF) eingesetzt. Im Vortrag wurde u.a. daran erinnert, dass Saugfänge im

Gelände keine neue Fangmethode darstellt, sondern nur gegenwärtig öfter praktiziert wird. Bereits

REINHARD REMANE (1958) hat in den Jahren 1954 und 1955 Wanzen und Zikaden auf

Grünlandflächen im Weser-Ems-Gebiet quantitativ mit einem von den BLASATOR-Werken in

Leer/Ostfriesland entwickelten Prototyp eines benzingetriebenen Motorsaugers erfasst. Im Laufe

der Untersuchungen erwies es sich als zweckmäßig drei zusätzliche Flächen im Bereich des

Elbufers bei Obselau und eine zusätzliche Stillwasserfläche in die faunistischen Untersuchungen

einzubeziehen. Durch einzelne faunistische Methoden erzielte Beifänge anderer Insektengruppen

wurden sortiert nach den Taxa Carabidae, sonstige Coleoptera, Auchenorrhyncha, Hymenoptera

und Arachnida dem BIOSPHÄRENRESERVAT MITTELELBE als Alkoholpräparate in einer

Individuenzahl von ca. 20 Tausend Exemplaren zur Auswertung durch Artgruppenspezialisten

übergeben.

Bei den Untersuchungen zur Wanzenfauna im Gebiet wurden über 4.500 Individuen

ausgewertet und 175 Wanzenarten nachgewiesen. GÖRICKE & KLEINSTEUBER (2020) verzeichnen

insgesamt 706 Wanzenarten im Land, durch zwei Erstfunde im Jahr 2019 (GÖRICKE 2019) beträgt

der dokumentierte aktuelle Bestand in Sachsen-Anhalt jetzt 708 Heteropterenarten. Die 175

festgestellten Arten im Rahmen des Projektes „Deichrückverlegung Lödderitz“ repräsentieren dabei

24,7 % der Fauna des Landes. Von SIMON et al. (im Druck) werden für Deutschland 911

Wanzenarten angegeben. Die im Untersuchungsgebiet festgestellten Arten entsprechen damit einem

Anteil von 19,2 % der Deutschlandfauna. Von den insgesamt im Untersuchungsgebiet bei Lödderitz

festgestellten 175 Wanzenspezies sind 44 Arten in der bis vor kurzem bestehenden Rote-Liste der


Fauna Sachsen-Anhalts (BARTELS et al. 2004) und 29 Arten in der aktuellen sachsen-anhaltischen

Roten Liste (GÖRICKE & KLEINSTEUBER 2020) vertreten. 5 Arten besitzen einen Rote-Liste-Status

in Deutschland nach der Fassung des Jahres 1998 (GÜNTHER et al. 1998). In der sich im Druck

befindlichen Roten Liste Deutschlands (SIMON et al. im Druck) sind von den im

Deichrückverlegungsgebiet Lödderitz belegten Arten aktuell 15 Arten als gefährdete Rote-Liste

Arten der deutschen Fauna klassifiziert.

Bei den faunistischen Erhebungen im Jahr 2019 wurden auf den Grünland-Untersuchungs-

Flächen 124 Wanzenarten (hier u.a. Peritrechus nubilus an jeweils 2 UF der reaktivierten und

fossilen Aue) und hierbei 72 Arten auf den zwei (hier u.a. Sciocoris homalonotus) und drei Zusatz-

Fundorten in Elbnähe (hier u.a. Spathocera laticornis, Saldula arenicola und S. palustris) in der

aktiven Aue bei Obselau, 68 Arten auf den zwei Untersuchungsflächen in der reaktivierten Aue am

Försterfriedhof (hier u.a. Berytinus minor) sowie 79 Arten auf den zwei Flächen der fossilen Aue

am Klosterholz (hier u.a. in einer Blauschale 3 Exemplare von Oxycarenus lavaterae als damals

bekanntem Erstfund in Sachsen-Anhalt – siehe GÖRICKE 2019, 2020; BÄSE & DECKERT 2020)

festgestellt. Auf den 15 Wald-Dauer-Beobachtungsflächen im Gebiet wurden insgesamt 106 Arten

(hier u.a. Halticus luteicollis und Loricula exilis auf jeweils 6 UF, Plagiognathus fulvipennis von 4

UF) und davon 63 Arten auf den zwei Untersuchungsflächen in der aktiven Aue, 87 Arten auf den

zehn untersuchten Flächen in der reaktivierten Aue (hier u.a. Aneurus avenius von 3 UF, Tingis

ampliata auf 2 UF und Thyttus pygmaeus von einem Fundort) sowie 53 Arten auf den drei Dauer-

Beobachtungsflächen in der fossilen Aue (hier u.a. Campylosteira verna von 2 UF und einer Wald-

UF der reaktivierten Aue) belegt. Auf und in den fünf Gewässer-Untersuchungsflächen wurden 15

weitgehend kommune Heteropterenarten, darunter Aquarius paludum, Gerris argentatus,

Micronecta scholtzi, Sigara falleni und S. striata festgestellt. Außerhalb der untersuchten

Stillgewässer wurden vornehmlich in Elbnähe drei Saldidenarten (Saldula arenicola, S. palustris, S.

saltatoria) festgestellt. Insbesondere die faunistischen Untersuchungen an den Stillgewässern litten

an dem wiederum über dem langjährigen Mittel liegendem sehr warmen Sommer 2019 und

andauernder Trockenheit (Austrocknung einzelner Gewässer und hohe Wassertemperaturen).

Die drei Heteropterenarten Arocatus melanocephalus (FABRICIUS, 1798), Familie Lygaeidae

(Abb. 3), Mermitelocerus schmidtii (FIEBER, 1836) und Orthonotus rufifrons (FALLÉN, 1807),

jeweils aus der Familie Miridae (Abb. 4, 5), werden im Ergebnis der Untersuchungen als

kennzeichnende Arten des Lebensraumtyps LRT 91 FO (LANDESAMT FÜR UMWELTSCHUTZ

SACHSEN-ANHALT 2002) Hartholzauenwälder mit Quercus robur, Ulmus laevis, Ulmus minor,

Fraxinus excelsior oder Fraxinus angustifolia (Ulmenion minoris) sowie insgesamt als typische

Auwaldarten eingestuft.

Die ökologische Einordnung der festgestellten 175 Arten erfolgte auf Grundlage von Angaben

bei WACHMANN, MELBER & DECKERT (2004, 2006, 2007, 2008, 2012) unter Berücksichtigung von

FRIESS & RABITSCH (2009), MORKEL (2019) und spezifischer Beobachtungen des Verfassers in

Sachsen-Anhalt. Es ist festzustellen, dass im Untersuchungsgebiet neben den direkten

Gewässerarten weitere 5,7 % (10 Arten) hygrophil sind, der größte Anteil der im Gebiet

festgestellten Wanzenarten mit 57,7 % (101 Arten) mesophil sind und 25,1 % (44 Arten)

xerothermophil sind. Die bei den Untersuchungen im Jahr 2019 im Deichrückverlegungsgebiet

Lödderitz festgestellten Heteropterenarten teilen sich auf folgende ökologische Typgruppen und -

klassen auf: 9,2 % mit 16 Arten Gewässer Typ SG Stillgewässerarten; 53,1 % mit 93 Arten

Offenland, davon 31,4 % mit 55 Arten Typ MO mesophile Offenlandarten, 17,7 % mit 31 Arten

Typ XO xerothermophile Offenlandarten und 4,0 % mit 7 Arten Typ HO hygrophile

Offenlandarten; 19,4 % mit 34 Arten in Saumhabitaten, davon 13,7 % mit 24 Arten Typ MS

mesophile Saumarten und 5,7 % mit 10 Arten Typ XS xerothermophile Saumarten; 2,3 % mit 4

Arten Typ UK Ubiquisten; 16,0 % mit 28 Arten Wald, davon 12,6 % mit 22 Arten Typ MW

mesophile Waldarten, 1,7 % mit 3 Arten Typ HW hygrophile Waldarten und 1,7 % mit 3 Arten Typ

XW xerothermophile Waldarten.


Abb. 1: Habitat der Wald-Untersuchungsfläche DBF1 in der reaktivierten Aue bei Obselau

im Mai 2019 (Foto P. GÖRICKE).

Abb. 2: Grünland-Untersuchungsfläche GLF2 in der fossilen Aue am Klosterholz bei Lödderitz

im Juni 2019 (Foto P. GÖRICKE).


Abb. 3: Die im Gebiet an Ulme lebende Bodenwanzenart Arocatus melanocephalus ist eine typische

Auwaldart und wurde im Jahr 2019 im Deichrückverlegungsgebiet Lödderitz in Farbschalen am

Waldsaum von zwei Grünland-UF in der aktiven Aue bei Obselau und zwei Wald-UF der

reaktivierten Aue durch Klopffang an Ulmus festgestellt (Foto E. WACHMANN).

Abb. 4: Mermitelocerus schmidtii ist gleichfalls typisch in Auwäldern und wurde im Untersuchungsgebiet an

insgesamt 11 Fundorten, davon 9 Wald-UF und in Farbschalen am Waldrand von 2 Grünland-UF

aufgefunden (Foto E. WACHMANN).

Abb. 5: Die vornehmlich in der Krautschicht von Auwäldern lebende Miride Orthonothus rufifrons wurde

2019 im Deichrückverlegungsgebiet Lödderitz auf insgesamt 16 Untersuchungsflächen und davon auf

10 Wald-UF und allen 6 Grünland-UF festgestellt (Foto E. WACHMANN).


Danksagung:

ANNETT SCHUMACHER, HENDRIK PANNACH und LOTHAR HÄNDLER vom BIOSPHÄRENRESERVAT MITTELELBE und BIRGIT KRUMMHAAR vom FÖRDER- UND LANDSCHAFTSPFLEGEVEREIN BIOSPHÄRENRESERVAT MITTELELBE werden für ihre vielfältige Unterstützung der Untersuchungen gedankt. Für die Mitwirkung bei den Gewässeruntersuchungen wird WOLFGANG KLEINSTEUBER / Taucha gedankt. ANDREAS SCHÖNE / Dessau-Roßlau danke ich für Hilfe bei der Bearbeitung der Datenbankformate der faunistischen Datensätze und der Artentabellen. Dr. CHRISTIAN RIEGER / Nürtingen danke für die Determination und Nachprüfung einzelner Arten und Dr. HANNES GÜNTHER / Ingelheim für die Beschaffung von Literatur. Für die Zurverfügungstellung von Fotos wird Prof. Dr. EKKEHARD WACHMANN gedankt. Literatur: BÄSE, K. & DECKERT, J. (2020): Nachweise von Oxycarenus lavaterae (FABRICIUS, 1787) aus den ostdeutschen

Bundesländern (Heteroptera: Oxycarenidae) zwischen 2017 und Anfang 2020. – Heteropteron, Mitteilungsblatt der Arbeitsgruppe Mitteleuropäischer Heteropterologen (Köln) 58, 27-32.

BARTELS, R.; GRUSCHWITZ, W. & KLEINSTEUBER, W. (2004): Rote Liste der Wanzen (Heteroptera) des Landes Sachsen-Anhalt. – Berichte des Landesamtes für Umweltschutz Sachsen-Anhalt (Halle) 39, 237–248.

FRIESS, TH. & RABITSCH, W. (2009): Checkliste und Rote Liste der Wanzen Kärntens (Insecta: Heteroptera). – Carinthia II (Klagenfurt) 199/119. Jahrgang, 335-392.

GÖRICKE, P. (2019): Zwei erstmals in Sachsen-Anhalt festgestellte Wanzenarten (Heteroptera: Coreidae, Lygaeidae) – Funde in den Biosphärenreservaten Mittelelbe und Karstlandschaft Südharz. – Entomologische Nachrichten und Berichte (Dresden) 63, 305-306.

GÖRICKE, P. (2020): Zur Ausbreitung der Lindenwanze Oxycarenus lavaterae (FABRICIUS, 1787) (Heteroptera, Lygaeidae) in Sachsen-Anhalt. – Entomologische Nachrichten und Berichte (Dresden) 64, 59-60.

GÖRICKE, P. & KLEINSTEUBER, W. (2020): Rote Liste der Wanzen (Heteroptera) des Landes Sachsen-Anhalt (3. Fassung, Stand August 2019). – Berichte des Landesamtes für Umweltschutz Sachsen-Anhalt (Halle) Heft 1/2020, 525-546.

LANDESAMT FÜR UMWELTSCHUTZ SACHSEN-ANHALT (Hrsg.) (2002): Die Lebensraumtypen nach Anhang I der Fauna-Flora-Habitatrichtlinie im Land Sachsen-Anhalt. - Naturschutz im Land Sachsen-Anhalt (Halle) 39, Sonderheft, 1-368.

LANDESAMT FÜR UMWELTSCHUTZ SACHSEN-ANHALT (Hrsg.) (2018): Deichrückverlegung im Naturschutzgroßprojekt "Mittlere Elbe". – Naturschutz im Land Sachsen-Anhalt (Halle) 55, Sonderheft, 1-129.

MORKEL, C. (2019): Bestandsaufnahme der Wanzenfauna (Insecta: Heteroptera) einer Agrarlandschaft im Naturraum Westhessische Senke. – Philippia (Kassel) 174, 289-347.

REMANE, R. (1958): Die Besiedlung von Grünlandflächen verschiedener Herkunft durch Wanzen und Zikaden im Weser-Ems-Gebiet. – Zeitung angewandte Entomologie (Hamburg) 42, 353 400.

SIMON, H., ACHTZIGER, R., BRÄU, M., DOROW, W.H.O., GOSSNER, M., GÖRICKE, P., GRUSCHWITZ, W., HECKMANN, R., HOFFMANN, H.-J., KALLENBORN, H., KLEINSTEUBER, W., MARTSCHEI, T., MELBER, A, MORKEL, C., MÜNCH, M.L, NAWRATIL, J., REMANE, R., VOIGT, K. & WINKELMANN, H., unter Mitarbeit von ARNOLD, K., KOTT, P., SCHMOLKE, F., SCHUSTER, G., STRAUSS, G., WACHMANN, E., WERNER, D. J. & ZIMMERMANN, G. (im Druck): Rote Liste und Gesamtartenliste der Wanzen (Heteroptera) Deutschlands. – In: Bundesamt für Naturschutz (Hrsg.): Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands Band 3 Wirbellose Tiere. Bonn.

WACHMANN, E.; MELBER, A. & DECKERT, J. (2006): Wanzen 1. Dipsocoromorpha, Nepomorpha, Gerromorpha, Leptopodomorpha, Cimicomorpha (Teil 1). – In: DAHL, F.: Die Tierwelt Deutschlands, Bd. 77. – Keltern, 264 S.

WACHMANN, E.; MELBER, A. & DECKERT, J. (2007): Wanzen 3. Pentatomomorpha I. – In: DAHL, F.: Die Tierwelt Deutschlands, Bd. 78. – Keltern, 272 S.

WACHMANN, E.; MELBER, A. & DECKERT, J. (2008): Wanzen 4. Pentatomomorpha II. – In: DAHL, F.: Die Tierwelt Deutschlands, Bd. 81. – Keltern, 230 S.

WACHMANN, E., MELBER, A. & DECKERT, J. (2004): Wanzen 2. Cimicomorpha. – In: DAHL, F.: Die Tierwelt Deutschlands, Bd. 75. – Keltern, 288 S.

WACHMANN, E.; MELBER, A. & DECKERT, J. (2012): Wanzen 5. Supplementband). Dipsocoromorpha, Nepomorpha, Gerromorpha, Leptopodomorpha, Cimicomorpha und Pentatomomorpha. – In: DAHL, F.: Die Tierwelt Deutschlands, Bd. 82. – Keltern, 256 S.

Anschrift des Verfassers:

Peter Göricke, Fasanengasse 6, D-39179 EBENDORF; e-mail: [email protected]


Überblick über die Geschichte und aktuellen Stand der Erforschung der Südtiroler Wanzenfauna.

(Teil 1 des Vortrags bei der Wanzentagung in Mallnitz (A))

ANDREAS HILPOLD

Wanzenforschung von den Anfängen bis zur Gegenwart Im Vortrag wurde ein kurzer Überblick über die Erforschungsgeschichte der Heteroptera

Südtirols gegeben. Die Erforschung der Wanzen Südtirols begann mit den Arbeiten von GREDLER

(1870 und 1874) und DALLA TORRE (1882). Für lange Zeit waren dies die einzigen umfassenden

Abhandlungen.

Bis in die Mitte des 20. Jahrhunderts gab es nur punktuelle Erhebungen und vorwiegend von

Experten anderer Insektengruppen, etwa vom Orthopteren-Spezialisten RAMME (1911) und dem

Formiciden-Experten MENOZZI (1931). Dies änderte sich mit dem Erscheinen des Trentiner

Wanzenexperten LIVIO TAMANINI grundlegend. Über mehrere Jahrzehnte hinweg behandelte er in

zahlreichen kleineren Arbeiten die Wanzenfauna der gesamten Region. Im Jahr 1982 schließlich

publizierte er eine umfassende Abhandlung mit Checklisten-Charakter über die Wanzenfauna

Südtirols.

Auf diese Grundlage aufbauend verfasste Ernst Heiss zusammen mit Klaus Hellrigl im Jahre

1996 eine Checkliste der Wanzen Südtirols in der „Tierwelt Südtirols“ (HELLRIGL 1996). HEISS

arbeitete bereits in den vorhergehenden Jahrzehnten aktiv an der Erforschung der Heteropteren

Südtirols mit und befasste sich ausführlich mit der Wanzensammlung des Käfer-Experten VON PEEZ

(Daten z.T. bereits in TAMANINI 1982 publiziert).

In den folgenden zwei Jahrzehnten folgten weitere kleinere Publikationen verschiedener

Autoren mit Wanzenangaben: einerseits in faunistischen Bearbeitungen kleinerer Gebiete oder

Lebensräume (z.B. HEISS 2001; HELLRIGL 2006; HILPOLD et al. 2017; FRIEß & HILPOLD 2017) zum

anderen auch mit Neu- oder Wiederfunden einzelner Arten (z.B. HEISS 2002; HILPOLD 2005;

HILPOLD & DEMETZ 2017). Schließlich erforderte auch das Auftauchen der Marmorierten

Baumwanze (Halyomorpha halys) und weiterer, für den Pflanzenschutz im Obstbau bedeutsamer

Wanzenarten eine intensivere Beschäftigung mit der Tiergruppe (z.B. BRADLWARTER 2003;

UNTERTHURNER 2016).

FloraFaunaSüdtirol Ein bahnbrechendes Ereignis für die Faunistik und Floristik Südtirols war das Jahr 2014. In

diesem Jahr wurde das Online-Portal FloraFaunaSüdtirol online gestellt (WILHALM et al. 2014).

Darin wird die Verbreitung einer Reihe von Tier- und Pflanzenarten sowohl in Rasterform als auch

in punktgenauer Auflösung dargestellt. Grundvoraussetzung für die Darstellung einer Gruppe ist,

dass alle publizierten Daten einer Gruppe sowie die Belegsammlung des Naturmuseums vollständig

aufgearbeitet sind. Zudem werden die Angaben auf Plausibilität geprüft. FloraFaunaSüdtirol erfüllt

daher auch eine Checklisten-Funktion für die jeweilige Gruppe. Seit dem Jahr 2018 wird auch die

Gruppe der Wanzen vollständig angezeigt (Betreuung Andreas HILPOLD). Es ist neben den Fang-

und Heuschrecken, Libellen und Tagfaltern die fünfte Insektengruppe, die im Portal einsehbar ist.

Daneben werden auch Webspinnen, Weberknechte, Skorpione, Amphibien, Reptilien, verschiedene

Kleinsäugergruppen, Vögel, Zehnfußkrebse und Rückenschaler, Regenwürmer und Nesseltiere

vollständig angezeigt. Bei den Pflanzen hingegen werden derzeit Gefäßpflanzen, Moose und

Kieselalgen dargestellt.

Die Darstellung der Wanzen beruht auf insgesamt 6.200 Einzelbeobachtungen. Davon

stammen etwa 4.200 aus 72 verschiedenen Literaturquellen. Zusätzlich werden 2.000 unpublizierte

Angaben angezeigt, wovon etwa 1.200 belegt sind. 800 Angaben beziehen sich auf im Feld leicht


bestimmbare Arten. Der derzeitige Erfassungsgrad für die einzelnen Wanzenarten ist sehr

unterschiedlich. So sind die Verbreitungskarten einiger bereits im Feld leicht ansprechbaren Arten,

etwa der Beerenwanze (Dolycoris baccarum, Abbildung 1) oder der Feuerwanze (Pyrrhocoris

apterus; Abbildung 2) bereits sehr aussagekräftig und lassen die tatsächliche Verbreitung dieser

Arten schon gut erahnen. Die Verbreitungskarten von Arten, die im Feld nur schwer anzusprechen

sind, oder die nur selten gekeschert werden (z.B. Polymerus unifasciatus oder Gastrodes grossipes,

Abbildung 3 und 4), sind hingegen noch sehr lückenhaft und wenig aussagekräftig.

Insgesamt werden im Portal im Moment 585 Arten angezeigt. Diese gehören den folgenden

Gruppen an:

Cimicomorpha (7 Familien, 281 Arten): Anthocoridae (28 Arten), Cimicidae (4), Microphysidae (5),

Miridae (191), Nabidae (9), Reduviidae (12) und Tingidae (34)

Dipsocoromorpha (2 Familien, 3 Arten): Ceratocombidae (1) und Dipsocoridae (2)

Gerromorpha (4 Familien, 17 Arten): Gerridae (10), Hebridae (2), Hydrometridae (2), Veliidae (3)

Leptopodomorpha (2 Familien, 16 Arten): Leptopodidae (1) und Saldidae (15)

Nepomorpha (5 Familien, 21 Arten): Corixidae (14), Naucoridae (1), Nepidae (2), Notonectidae (3),

Pleidae (1)

Pentatomomorpha (15 Familien, 247 Arten; die Familie der Lygaeidae wird derzeit noch als s.lat.

behandelt): Acanthosomatidae (7), Alydidae (3), Aradidae (15), Berytidae (12), Coreidae (11),

Cydnidae (13), Lygaeidae s.lat. (99), Pentatomidae (52), Piesmatidae (4), Plataspididae (1),

Pyrrhocoridae (2), Rhopalidae (13), Scutelleridae (12), Stenocephalidae (2), Thyreocoridae (1)

Es bleibt viel zu tun Die Erforschung der Wanzen Südtirols ist keineswegs abgeschlossen. Einerseits liegen in der

Belegsammlung des Naturmuseums eine Reihe von Belegen, die einen Neufund für die Provinz

darstellen, die aber noch auf eine Veröffentlichung warten. Andererseits sind zahlreiche

Lebensräume und Gebiete Südtirols noch ungenügend erforscht. Eine intensivere Erforschung der

Wanzen Südtirols hätte somit mit Sicherheit einen deutlichen Anstieg der Artenzahlen zur Folge.

Für eine detailliertere Charakterisierung der Wanzenfauna Südtirols blieb im Vortrag zu

wenig Zeit. In einem Satz ausgedrückt liegt der besondere Reiz der Südtiroler Wanzenfauna in der

Kombination aus verschiedenen biogeographischen Gruppen, die von (sub-)mediterranen Arten im

Süden Südtirols, über Steppenarten in den inneralpinen Trockentälern (v.a. Vinschgau) und den

Elementen der kühl-gemäßigten (nemoralen) Zone Mitteleuropas bis hin zu den Gebirgselementen

der Alpen reichen. Einen genaueren Einblick werden hoffentlich die Wanzentage 2021 in Südtirol

geben, welche vom Naturmuseum Südtirol in Zusammenarbeit mit dem Forschungszentrum Eurac

Research organisiert werden.

Wanzendaten gesucht: Für das Internetportal FloraFaunaSüdtirol suchen wir Wanzendaten aus Südtirol.

Willkommen sind alle verlässlichen Daten, sei es Daten aus Feldbüchern,

Exkursionsberichten, oder Sammlungsdaten aus privaten Sammlungen.

Folgende Daten sind unbedingt erforderlich:

Artname; Sammler/Sammlerin; Bestimmer/Bestimmerin; Fundort; Datum des Fundes.

Optimal wäre es, wenn auch Koordinaten für die einzelnen Funde vorliegen


Abb. 1-4, von links nach rechts: oben: Verbreitungskarte der Beerenwanze (Dolycoris baccarum) in Rasteransicht und

der Feuerwanze (Pyrrhocoris apterus) in Punktansicht; unten: Verbreitungskarte von Gastrodes grossipes in Rasterdarstellung und von Polymerus unifasciatus in Punktansicht. Farben: gelb: Angaben vor 1920, hellorange: 1920 bis 1979, dunkelorange: 1980-1999, rot: 2000 bis heute.

Literatur: BRADLWARTER, M. (2003): Fruchtschädigende Wanzenarten. - Obstbau Weinbau 3/2003, 72-74. DALLA TORRE, K.W.V. (1882): Beiträge zur Arthropodenfauna Tirols. - Ber. nat.-med. Verein, Innsbruck 12, 34-41. FRIEß; T. & HILPOLD, A. (2017): Wanzen (Insecta: Heteroptera) ausgewählter Untersuchungsflächen der Science Wee in

der Umgebung von Matsch (Südtirol, Italien). - Gredleriana 17, 191-204. GREDLER, V.M. (1870): Rhynchota Tirolensia, I. Hemiptera heteroptera (Wanzen). - Verh. zool.-bot. Ges. Wien 20: 19-

108. GREDLER, V M. (1874): Nachlese zu den Wanzen Tirols. - Verh. zool.-bot. Ges. Wien 24, 553-558. HEISS, E. (2001): Untersuchungen der Heteropterenfauna (Heteroptera) and an Dauerbeobachtungsflächen IT01 Ritten,

IT02 Montiggl, IT03 Lavazè, IT04 Pomarolo; Untersuchungsjahr 2000. Abteilung 32 Forstwirtschaft, Autonome Provinz Bozen Südtirol, Bozen.

HEISS, E. (2002): Neue Fundnachweise von Wanzen (Insecta: Heteroptera) aus den Provinzen Bozen und Trient. - Gredleriana 2, 7-10.

HEISS, E. & HELLRIGL, K. (1996): Wanzen - Heteroptera (= Hemiptera s.str.). - In: HELLRIGL, Die Tierwelt Südtirols. Veröffentlichungen des Naturmuseums Band 1, Bozen.

HELLRIGL, K. (2006): Untersuchungen über Insekten der Misteln in Südtirol (Viscum album: Loranthaceae). - Forest observer 2/3, 43-68.

HILPOLD, A. (2005): Streiflichter: Faunistische Notizen. Neu für Südtirol: Leptoglossus occidentalis HEIDEMANN, 1910 (Heteroptera, Coreidae). - Gredleriana 5, 358.

HILPOLD, A. & DEMETZ, T. (2017): Lygaeus creticus (LUCAS, 1854) neu für Südtirol und den Alpenraum und Wiederbestätigung von Ischnodemus sabuleti (FALLÉN, 1826) für Südtirol (Insecta, Heteroptera, Lygaeoidea). - Gredleriana 17, 245-247.

HILPOLD, A., GASSER, S., BALLINI, S., CERESA, F., HOFER, D., KAHLEN, M., KIEBACHER, T., LADURNER, E., MÖRL, G.V. & PRAMOHLER, M. (2017): Floristische und faunistische Beobachtungen im Naturdenkmal Trumbichl (Feldthurns, Südtirol, Italien). - Gredleriana 17, 39-53.

MENOZZI, C. (1931): Contributo alla corologia degli Emitteri Eterotteri della Venezia Tridentina. - Studi trentini Sc. nat., Trento 12, 199-209.

RAMME, W. (1911): Entomologische Ergebnisse einer Reise nach Oberitalien und Südtirol. - Berliner Entomologische Zeitschrift 56, 11-32.

TAMANINI, L. (1982): Gli Eterotteri dell'Alto Adige (Insecta: Heteroptera). - Studi Trentini di Scienze Naturali, Acta Biol. 59, 63-194.

UNTERTHURNER, M. (2016): Die Marmorierte Baumwanze schmuggelt sich ein. - Obstbau Weinbau 4/2016; 21-24. WILHALM, T., KRANEBITTER, P. & HILPOLD, A. (2014): FLORAFAUNASÜDTIROL (WWW.FLORAFAUNA.IT). Das

Portal zur Verbreitung von Pflanzen- und Tierarten in Südtirol. Anschrift des Autors: Andreas Hilpold, Institut für Alpine Umwelt, Eurac Research; Drususallee 1, IT-39100 BOZEN


mailto:[email protected]


Wanzenerhebungen im Rahmen des Biodiversitätsmonitorings Südtirol. (Teil 2 des Vortrags bei der Wanzentagung in Mallnitz (A) )

ANDREAS HILPOLD

Das Projekt Auf Initiative der Südtiroler Landesregierung und unter der Leitung von Eurac Research

wurde im Jahr 2019 ein dauerhaftes Biodiversitätsmonitoring für Südtirol eingerichtet. Das

Monitoring dient nicht nur der Grundlagenforschung, sondern soll auch die wissenschaftliche

Grundlage für politische Entscheidungen, insbesondere im Zusammenhang mit Raumplanung,

Landwirtschaft und Naturschutz, liefern. Ziel des Biodiversitätsmonitorings ist die Erfassung von

Artengruppen, die sensibel auf Umwelt- und Landnutzungsänderungen reagieren. Die

Untersuchungsgebiete sind gleichmäßig über das Land verteilt und umfassen eine repräsentative

Auswahl von Lebensräumen (Abbildung 1). Besonderes Augenmerk wird dabei auf die

Lebensraumtypen der Kulturlandschaft wie etwa Weinberge, Apfelanlagen und Mähwiesen gelegt.

Im Jahr 2019 wurden erste umfassende Erhebungen von Gefäßpflanzen, Moosen, Flechten, Vögeln,

Fledermäusen und verschiedenen Insektengruppen wie Heuschrecken und Schmetterlinge

durchgeführt. Innerhalb eines Zeitraums von fünf Jahren werden insgesamt 320 Standorte

untersucht.

Wanzenerhebungen im Biodiversitätsmonitoring Wanzen sind zwar keine Fokusgruppe im Biodiversitätsmonitoring, allerdings kommen

verschiedene Fangtechniken zur Anwendung, bei denen Wanzen als Beifänge miterfasst werden. So

wird die krautige Vegetation eines jeden Standortes nach einem Standardprotokoll abgekeschert. In

Strauch- und Baumvegetation verwenden wir außerdem einen Klopfschirm, um Äste und Zweige

abzuklopfen. Auch dabei folgen wir einem Standardprotokoll. Um die oberflächenaktive wirbellose

Tierwelt zu besammeln, installieren wir zweimal jährlich Barberfallen: einmal im späten Frühling

oder frühen Sommer und einmal im Spätsommer/Frühherbst. In Hochgebirgslagen führen wir nur

eine Besammlung pro Jahr durch (d.h. in den Sommermonaten). Um die Bodenfauna zu erfassen,

werden Bodenziegel entnommen. Die Proben werden anschließend durch Hitzeeinwirkung

extrahiert.

Tabelle 1: Anzahl der untersuchten Standorte insgesamt und pro Jahr aufgeteilt nach den verschiedenen

Lebensraumkategorien

Lebensräume 5 Jahre pro Jahr

Wiesen 60 12

Weiden 30 6

alpine Standorte 60 12

Weinberge 20 4

Obstanlagen 20 4

Äcker 20 4

Wälder 60 12

Feuchtlebensräume 20 4

Siedlungsbereich 30 6

Summe 320 64


Abbildung 1: Verteilung und Lebensraumzuordnung der 320 Untersuchungspunkte des Biodiversitätsmonitorings in

Südtirol. Die Kategorie Landwirtschaft beinhaltet Wiesen, Weiden, Apfelplantagen, Weinberge, Mais- und

Getreideäcker.

Die Proben aus dem Jahr 2019 wurden bereits größtenteils sortiert. Ein Teil der Wanzen

wurde bereits bestimmt. Für die Zukunft sollen alle gesammelten Wanzenbelege bestimmt werden,

wobei nur ein Teil davon intern bestimmt werden kann. Für einen weiteren Teil ist die

Zusammenarbeit mit externen Experten notwendig. Alle Daten werden anschließend in die

Datenbank des Naturmuseums eingespielt und sind somit auch über das Internetportal

FLORAFAUNASÜDTIROL einsehbar. Die anfallenden Belege werden in die Nasssammlung des

Museums integriert. Auch eine kontinuierliche Publikation von Daten, allen voran von Neufunden,

aber auch von weitergehenden ökologischen Analysen wird angestrebt.

Spezialprojekte Zusätzlich zum jährlich durchgeführten Standardprogramm ist im Projekt die Untersuchung

spezieller Fragestellungen in Form von Spezialprojekten vorgesehen. Spezialprojekte können

vertiefende Studien innerhalb des Standardprogramms sein, z.B. die Erhebung einer zusätzlichen

Organismengruppe. Andererseits kann es sich dabei auch um Projekte handeln, die völlig

unabhängig vom Standardprogramm sind. Dabei können spezifische Forschungsfragen behandelt

werden, etwa die Auswirkungen einer landwirtschaftlichen Praxis auf die Biodiversität in einem

bestimmten Agrar-Lebensraum. Von den im Jahr 2020 durchgeführten Spezialprojekten betreffen

zwei ganz wesentlich auch die Gruppe der Wanzen.

Spezialprojekt 1: Biodiversität in den Windwurfflächen am Latemar Im Herbst 2018 wurden Teile der Südtiroler Wälder von einer Unwetterfront, dem Sturmtief

Vaia, stark in Mitleidenschaft gezogen. Insgesamt fielen 6.000 Hektar Wald in 86 Südtiroler

Gemeinden dem orkanartigen Sturm zum Opfer. Besonders beeinträchtigt wurde die Umgebung des

Latemars, also die Gemeinden Deutschnofen und Welschnofen. Dieses Projekt untersucht die

Biodiversität in den Windwurfflächen westlich des Karer Passes. Dabei vergleichen wir Flächen mit

verschiedenem Totholzanteil: solche, in denen alle toten Bäume entfernt wurden mit solchen, in

denen noch tote Stämme verblieben sind. Außerdem untersuchen wir Waldbereiche, die vom

Windwurf weitgehend verschont blieben. Ziel des Projekts ist es zu verstehen, wie verschiedene

Tier- und Pflanzenarten auf ein Windwurfereignis reagieren und wie sich verschiedene

Managementmaßnahmen auswirken.

Pro Kategorie (nicht betroffene Waldflächen, geräumte und nicht geräumte Windwurfflächen)


haben wir fünf Untersuchungsstandorte ausgewählt, welche einen Mindestabstand von 400 m

haben. Bei der Auswahl der untersuchten Organismengruppen haben wir vor allem solche

bevorzugt, die besonders auf Totholz reagieren (holzbewohnende Käfer, Rindenwanzen). Die

Artengruppen erfassen wir repräsentativ über standardisierte Methoden (Kreuzfensterfallen,

zeitstandardisierter Handfang). Außerdem führen wir Teile des Biodiversitätsmonitoring-

Standardprogramms durch (Erhebung von Vögeln, Fledermäusen, Bodentieren). Daneben

untersuchen wir auch Mäuse und weitere Kleinsäuger.

Das Projekt findet in Zusammenarbeit mit den Umweltbüros Ökoteam Graz und dem Instititut

für Angewandte Entomologie in Beverungen sowie mit dem Amt für Forstplanung (Aut. Prov.

Bozen-Südtirol) und der Landesdomäne statt.

Spezialprojekt 2: Verbreitung der Marmorierten Baumwanze und ihre Parasitierung:

Vergleich von Obstbaustandorten und naturnahen Standorten Seit einigen Jahren finden wir die aus Asien stammende Marmorierte Baumwanze

(Halyomorpha halys) auch in Südtirol, wo sie große Schäden im Apfelanbau verursacht: bei ihrer

Nahrungsaufnahme saugt die Wanze unter anderem an Äpfeln und beeinträchtigt dadurch die

Qualität der Früchte. Eine mögliche Bekämpfungsstrategie ist die Einfuhr von Gegenspielern,

welche die Eier der Marmorierten Baumwanze parasitieren. Besonders geeignet dafür sind

verschiedene parasitoide Schlupfwespenarten, v.a. die nicht-heimische Samurai-Wespe (Trissolcus

japonicus), aber auch die einheimische Art Anastatus bifasciatus. Diese Arten legen ihre eigenen

Eier in die Eigelege der Wanzen. Die heranwachsenden Wespenlarven fressen dann die Wanzeneier

von innen auf. Die Ausbringung von nicht-heimischen parasitoiden Wespen könnte jedoch einen

Einfluss auf die einheimische Wanzen- und Wespenfauna haben. Ziel dieses Projekts ist es

einerseits zu verstehen, welche Arten in den unterschiedlichen Standorten vorkommen und

andererseits die Auswirkungen der Freisetzung exotischer Gegenspieler zu erforschen.

Die Forscherinnen und Forscher untersuchen drei Obstanlagen aus dem

Biodiversitätsmonitoring. Dabei wurden ausschließlich biologisch bewirtschaftete Flächen

ausgewählt, um den Einfluss von Bekämpfungsmaßnahmen gering zu halten. In der Nähe der drei

Obstanlagen wurde jeweils ein weiterer naturnaher Standort ausgewählt, in dessen direkter

Umgebung keine Äpfel angebaut werden. Diese naturnahen Standorte besitzen ähnliche

Standortbedingungen wie die untersuchten Apfelanlagen (Meereshöhe, Ausrichtung usw.). An allen

Untersuchungspunkten wenden wir verschiedene Methoden zur Erfassung von Baumwanzen und

ihrer Parasitoiden an. So führen wir visuelle Kontrollen durch, wobei Wanzen-Eigelege und

Wanzen erfasst werden. Außerdem entnehmen wir Klopfproben mit einem Klopftrichter, um das

Vorkommen der Wanzen und ihrer Gegenspieler zu überprüfen. Daneben installieren wir Malaise-

Fallen und Farbschalen, mit denen sowohl Wanzen als auch verschiedene Hautflügler erfasst

werden können. Das Projekt findet in Zusammenarbeit mit dem Versuchszentrum Laimburg statt.

Eine Präsentation der Ergebnisse der zwei Spezialprojekte ist für die Wanzentage 2021 in

Bozen geplant.

Anschrift des Autors: Andreas Hilpold, Institut für Alpine Umwelt, Eurac Research; Drususallee 1, IT-39100 BOZEN


Weitergehende Informationen über das Projekt Biodiversitätsmonitoring Südtirol gibt es unter der

Internetadresse http://biodiversity.eurac.edu/

Wir freuen uns auch über Anfragen!

Ansprechpartner Wanzen: Andreas Hilpold [email protected]


http://biodiversity.eurac.edu/



Parasiten in Zuchten von Heteropteren, speziell von Bettwanzen (Cimicidae)

KLAUS REINHARDT Zusammenfassung:

In 17 Jahren Zucht von mehreren Millionen Bettwanzen Cimex lectularius wurden etwa 5 Befälle mit Serratia marcescens, 5 mit Viren(?) und einer durch einen unbekannten Pilz festgestellt, der hier dargestellt wird. Eins von etwa 1000 Individuen von Afrocimex constrictus war mit einem Wurm unbekannter Art befallen. Die bekannten Parasiten von Bettwanzen werden aufgelistet.

Abstract:

Parasites in bedbug cultures (Cimicidae). During 17 years of culturing bedbugs Cimex lectularius, approximately five infections each were observed by the entomopathogenic bacterium Serratia marcescens, a possible virus, as well as one infection by an unknown fungus, which is depicted here. One out of 1000 collected Afrocimex constrictus was infested with a worm parasite. The known cases of cimicid parasites are listed.

Einleitung

Studiert man den Parasitenteil in WEBERs Grundlagenwerk Biologie der Hemipteren (WEBER

1930), fällt auf, dass sich dort viele Beobachtungen auf Parasiten von Blatt- und Schildläusen oder

Zikaden beziehen, viel seltener auf Heteropteren selbst. Es scheint, als ob Heteropteren im

Gegensatz zu Sternorrhyncha gut gegen Parasiten verteidigt sind. Unter jenen Parasiten, die

Heteropteren befallen, wurden vor und seit WEBER (1930) vor allem solche erforscht, die in den

landwirtschaftlich auch schädlich auftretenden Lygaeiden und Pentatomiden vorkommen, allen

voran Nezara viridula. So sind Eiparasiten bekannt aus den Wespengruppen der Trichogrammatidae

und der Scelionidae (WEBER 1930), Adulte und Larven werden von Raupenfliegen (Tachinidae),

z.B. der Gattung Trichopoda befallen (BROWN 1962, DAVIS 1964), in einheimischen Gefilden zum

Beispiel durch die schöne Phasia hemiptera. Außerdem befallen auch einige der

"Allerweltsparasiten" anderer Insektenarten Heteropteren: Brackwespen (Braconidae), Milben (z.B.

LEWANDOWSKI & SZAFRANEK 2005), Fadenwürmer (Nematoden) (z.B. TARLA et al. 2015) und die

entomopathogenen Pilze Entomophtora, Beauveria und Isaria (zuletzt z.B. AHMED et al. 2020).

Die womöglich gute Verteidigung von Heteropteren ließ es nicht seltsam erscheinen, dass ich

in 17 Jahren Zucht von Bettwanzen (Cimicidae) kaum Parasiten festgestellt habe. Seltsam ist

dagegen, dass aufgetretene Parasiten und deren Wirkung nicht immer sofort und detailliert

protokolliert und für Sterblichkeits-Experimente genutzt wurden (wie von COCKBAIN & HASTIE

1961). Vermutlich stand die Rettung der Kulturen im Vordergrund, und das Auftreten war zu

plötzlich, um abgetrennte Bereiche für Befallsversuche einzurichten.

Cimex lectularius wurde von mir in verschiedenen Laboren gezüchtet, meist bei 25 bis 27°C

und 40-70% relativer Luftfeuchte. Je nach Zuchtmöglichkeit und Forschungsfrage wurden sie

wöchentlich bis dreiwöchentlich gefüttert, je nach Karriere- und Wohnsituation des Autors

manchmal aber auch nur alle 8 bis 12 Wochen, zur bloßen Erhaltung der Zucht. Nachfolgend sollen

die wenigen Beispiele des Auftretens von Parasiten in meinen Cimiciden-Kulturen erwähnt und mit

anderen Bettwanzenparasiten verglichen werden. Ein endoparasitischer Wurm bei Afrocimex constrictus

Afrocimex constrictus wurde 2004 und 2005 am Mt. Elgon in Kenia gesammelt (REINHARDT

et al. 2007a). Um eine Zucht zu erreichen, wurden Maus, Mensch und Zebrafink angeboten, doch

selbst frisch aus mitgebrachten Eiern geschlüpfte Larven, deren Konditionierung auf neues Futter

im allgemeinen leichter ist, nahmen keine dieser Angebote an. Die letztendlich verendeten

Individuen wurden in Alkohol konserviert und in einer erwachsenen Wanze befand sich im Inneren

ein längerer, mehrfach (wasserschlauchartig) aufgewickelter Wurm. Bei dieser Wanzenart gibt es


eine merkwürdige Genital-Mimikry (REINHARDT et al. 2007b), so dass das ursprünglich notierte

Geschlecht Weibchen möglicherweise nicht korrekt ist. Leider wurde in Umzugswirren das

Röhrchen mit der konservierten Wanze zunächst vernachlässigt, es trocknete ein und Herr Prof.

Schmidt-Rhaesa konnte nichts mehr ausrichten, was die Bestimmung betrifft. Schade, es wäre der

erste Wurmparasiten-Nachweis bei Cimiciden gewesen. Herr SCHMIDT-RHAESA bemerkte dann

aber die interessanten Augen mit den Chitinbrücken und hat so von der Wanze wenigstens die

Augen in seinem Buch The evolution of organ systems (SCHMIDT-RHAESA 2007) abbilden können.

Parasiten bei Cimex lectularius

Von Cimex lectularius wurden mehrere Populationen getrennt gehalten, bisher etwa 20

verschiedene Populationen, die ihrerseits auf 5 bis zu >1.000 Gründerindividuen (zB REINHARDT et

al. 2010) beruhten. Die Dauerkulturen laufen immer in mehreren Hundert Individuen. Im Verlauf

der Zuchten habe ich größenordnungsmäßig mindestens 100.000 C. lectularius so betrachtet oder

präpariert, dass mir größere Parasiten aufgefallen wären, auch größere Endoparasiten (innere

Organe scheinen bei Cimiciden durch die Kutikula). In den 17 Jahren der Dauerzucht traten

Infektionen mit Serratia marcescens seltener als einmal in drei-vier Jahren auf. Serratia-Infektionen

sind daran zu erkennen, dass die Wanzen hellrot gefärbt sind und schnell sterben. Ebenso selten,

aber aus der Erinnerung heraus nicht zwangsläufig gleichzeitig mit Serratia (exakte Notizen dazu

fehlen aber leider!) trat eine Schwarzfärbung auf, die wohl einer Virusinfektion zuzuordnen ist.

Beide Infektionen, vor allem letztere führen zu sehr hohen Verlusten bis hin zum Totalausfall in

dem jeweiligen Zuchtgefäß.

Am 02.07.2019 bemerkte ich an einer einzeln gehaltenen, toten Wanze einen Pilzbefall. Der

Pilz wurde zunächst behelfsmäßig fotografiert. Auffallend waren hellgelbe bis gelborange, gestielte

Sporenbehälter, die vor allem an Intersegmentalhäuten im Kopf- und Brustbereich, zwischen den

Antennengliedern sowie am Anus hervortraten (Abb. 1). Derart gestielte Sporenbehälter sind

typisch für Aspergillus, jedoch auch für eine Reihe anderer Pilze. Die Wanze war nicht länger als

eine Woche tot, so dass ich davon ausgehe, dass es kein sekundärer Pilzbefall der toten Wanze,

sondern ein pathogener Pilz war. Obwohl tote Individuen in unseren Zuchten nur sehr selten

beseitigt werden, habe ich auch einen Pilzbefall toter Individuen noch nie bemerkt.

Nach Verschluss des Röhrchen wurde der Pilz noch wachsen gelassen. Bei erneuter

Fotodokumentation einen Monat später wurden kaum Veränderungen bemerkt. Die Vermehrung

des Pilzes auf der Platte hat leider ebenso wenig funktioniert wie die Sequenzierung nach erfolgter

DNA-Isolation. Somit muss die Identität des Pilzes offen bleiben, und es kann nur der seltene Fakt

des Pilzbefalls einer Bettwanze konstatiert werden.

Diskussion

Nach Tabelle 1 waren ein Virus(?)- und Wurmbefall sowie Fälle von Serratia marcescens bei

Cimiciden bisher noch nicht bekannt. Interessant sind in den genannten Fällen die Herkunft der

Parasiten. In unserem Labor hat sich Afrocimex constrictus leider nicht fortgepflanzt bzw.

entwickelt - hier ist klar, dass der Parasit im Freiland erworben sein muss. Bisherige Berichte von

Nematoden in Wanzen betreffen die Gruppe Mermithidae (z.B. TARLA et al. 2015).

Der Pilzbefall in REEVES' (2001) Laborkolonie stammt ebenfalls aus dem Freiland, wo die

Verpilzungen auch beobachtet wurden. Demgegenüber ist bei dem spontanen Auftreten von

Aspergillus flavus von COCKBAIN & HASTIE (1961), unseren Serratia-, Virus(?)- und Pilzauftreten

eher mit Laborquellen zu rechnen - Aspergillus und Serratia sind weitverbreitete Insektenpathogene

und könnten somit auch aus anderen Quellen stammen. In unserem Labor kämen dafür Grillen und

Taufliegen in Frage. Diese Krankheiten sind jedoch auch für diese Insekten tödlich und dies wurde

nicht bemerkt, so dass diese zumindest nicht sehr häufig auftreten.


Bei unserer Beobachtung ist merkwürdig, dass nur ein einzelnes befallenes Individuum

bemerkt wurde. Sowohl COCKBAIN & HASTIE (1961) wie auch REEVES (2001) schreiben, dass

jeweils ihre gesamte Kolonie betroffen war und dadurch ausgerottet wurde, auch die Formulierung

in USINGER (1966) deutet darauf hin. Das Absterben passierte bei COCKBAIN & HASTIE (1961)

innerhalb von 18 Tagen. Allerdings hielten COCKBAIN & HASTIE (1961) die Wanzen bei 30°C,

zweifellos nicht mehr im Optimum, was zugleich überraschend war, da längere Hälterung bei 30°C

zu Sterilität durch den Tod der Endosymbionten führt (CHANG 1974). Auch bei COCKBAIN &

HASTIE (1961) zeigten sich nur überraschend kurze Lebensdauern. KEMPER (1936) berichtet von

einer Parasitierung durch Milben, die ebenfalls die Kolonie von C. lectularius zerstörten.

Neben Zuchten zur Erforschung von wirtschaftlich wichtigen Aspekten der Biologie von

Wanzen - in denen aber auch kaum über Krankheitserreger berichtet wird - wird man auch unter

Heteropterologinnen und Heteropterologen Personen finden, für die Wanzenzucht eine plausible

Beschäftigung darstellt. Der Zweck dieser Notiz wäre erfüllt, wenn auch in Zuchten anderer Arten

bzw. anderweitigem Massenauftreten bestimmter Arten auf die Parasitenfauna geachtet werden

würde. Um in der biologischen Schädlingsbekämpfung wirtschaftlich zu sein, müsste außerdem

geklärt werden, wie spezifisch diese Parasiten für die jeweilige Wanzenart sind. So wären Serratia

und Aspergillus nicht einsetzbar, da sie andere Wanzen und andere Insekten befallen, und

Aspergillus sogar für Warmblüter gefährlich ist.

Andererseits können beim Studium von Wanzenparasiten interessante Entdeckungen gemacht

werden. So wurden verschiedene Parasiten an Wanzen überhaupt erst in den letzten Jahren

entdeckt: als Ausnahme bei Wanzen (nicht jedoch bei Zikaden) parasitische Fächerflügler

(Strepsiptera) (MELBER & POHL 1997) oder auch Microsporidien (hier wäre ein Mikroskop

erforderlich!) (HAJEK et al. 2018). Neben der durch viele Befunde nunmehr normal zu nennenden

Bakterienflora von Wanzen, die in Darm, Hämolymphe oder Geschlechtsorganen zu finden ist (z.B.

BELLINVIA et al. 2019, 2020) steht für verschiedene Parasiten noch immer im Raum, ob diese

überhaupt parasitisch sind oder als Vektoren in Wanzen gar keine Nachteile bewirken, so für viele

Vektoren von Pflanzenparasiten oder im Falle der Cimiciden Trypanosomen (PATERSON & WOO

1984) oder Arboviren (BROWN et al. 2001), die dann eher die Endwirte schädigen. Speziell bei

Bettwanzen ist ja sogar zu bedenken, dass Parasiten sich evolutionär hin zu Symbiose-Partner

entwickeln können, wie im Falle des intrazellulären Parasiten Wolbachia, der bei Bettwanzen nun

das Vitamin B bereitstellt (BALVIN et al. 2018). Alles in allem: ein weites Feld für Forschung an

Wanzenparasiten!

Literatur:

AHMED, K., FREED, S., SHOUKAT, R. F. & AHMAD, K. W. (2020): Efficacy of entomopathogenic fungi with insecticides mixtures against Oxycarenus hyalinipennis (COSTA) (Lygaeidae: Hemiptera). - Pakistan Journal of Zoology 52, 573-583.

BELLINVIA, S., JOHNSTON, P. R., REINHARDT, K. & OTTI, O. (2019): Bacterial communities of the reproductive organs of virgin and mated common bedbugs, Cimex lectularius. - Ecological Entomology 45, 142-154.

BELLINVIA, S., JOHNSTON, P. R., MBEDI, S, & OTTI, O. (2020): Mating changes the genital microbiome in both sexes of the common bedbug Cimex lectularius across populations. - Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences 287, https://doi.org/10.1098/rspb.2020.0302.

BALVIN, O., ROTH, S., TALBOT, B. & REINHARDT, K. (2018): Co-speciation in bedbug Wolbachia parallel the pattern in nematode hosts. - Scientific Reports 8: 8797.

BROWN, C. R., KOMAR, N., QUICK S. B., SETHI, R. A., PANELLA, N. A., BROWN BOMBERGER, M. & PFEFFER, M. (2001): Arbovirus infection increases with group size. - Proceedings Royal Society of London Series B Biological Sciences: 268, 1833-1840.

CHANG, K. P. (1974): Effects of elevated temperature on the mycetome and symbiotes of the bed bug Cimex lectularius (Heteroptera). - Journal of Invertebrate Pathology 23, 333-340.

COCKBAIN A.J. & HASTIE, A.C. (1961): Susceptibility of the bedbug, Cimex lectularius Linnaeus, to Aspergillus flavus Link. - Journal of Insect Pathology 3, 95–97.

https://doi.org/10.1098/rspb.2020.0302


DAVIS, C. J. (1964): The introduction, propagation, liberation and establishment of parasites to control Nezara viridula variety smaragdula (FABRICIUS) in Hawaii (Heteroptera: Pentatomidae). - Proceedings of the Hawaiian Entomological Society 18, 369-376.

HAJEK, A. E., SOLTER, L.F, MADDOX, J. V., HUANG, W.-F., ESTEP, A. S., KRAWCZYK, G., WEBER, D. C., HOELMER, K. A., SANSCRAINTE, N. D. & BECNEL, J. J. (2018): Nosema maddoxi sp. Nov. (Microsporidia, Nosematidae), a Widespread Pathogen of the Green Stink Bug Chinavia hilaris (SAY) and the Brown Marmorated Stink Bug Halyomorpha halys (STÅL). - Journal of Eukaryotic Microbiology 65, 315-330.

KEMPER, H. (1936): Die Bettwanze und ihre Bekämpfung. - Zeitschrift für Kleintierkunde und Pelztierkunde 12, Hygienische Zoologie 4, 1-107.

LEWANDOWSKI, M. & SZAFRANEK, P. (2005): Ectoparasitic mite Hemiopteroseius adleri (Acari: Otopheidomenidae) on red firebug Pyrrhocoris apterus (Heteroptera: Pyrrhocoricdae). - Experimental and Applied Acarology 35, 251-257.

MELBER, A. & POHL, H. (1997): Erster Nachweis einer Strepsipterenparasitierung bei Wanzen in Mitteleuropa (Insecta, Strepsiptera et Heteroptera). - Bonner zoologische Beiträge 47, 69-76.

PATERSON, W. B. & WOO, P. T. K. (1984): The development of the culture and bloodstream forms of three Trypanosoma (Schizoztypanum) sp.. (Protista: Zoomastigophorea) from bats in Cimex lectularius (Hemiptera: Cimicidae). - Canadian Journal of Zoology 62, 1581-1587.

REEVES, W. K. (2001): Bionomics of Cimex adjunctus (Heteroptera: Cimicidae) in a maternity cave of Myotis austroriparius (Chiroptera: Vespertillionidae) (South Carolina, USA). - Journal of Entomological Science 36, 74–77.

REINHARDT, K., HARNEY, E., NAYLOR, R., GORB, S. & SIVA-JOTHY, M.T. (2007b): Female-limited polymorphism in the copulatory organ of a traumatically inseminating insect. - The American Naturalist 170, 931-935.

REINHARDT, K, ISAAC, D. & NAYLOR, R.A. (2010): Estimating the feeding rate of the bedbug Cimex lectularius in an infested room: an inexpensive method and a case study. - Medical and Veterinary Entomology 24, 46-54.

REINHARDT, K., NAYLOR, R.A. & SIVA-JOTHY, M. T. (2007a): Estimating the mean abundance and feeding rate of a temporal ectoparasite in the wild: Afrocimex constrictus (Heteroptera: Cimicidae). - International International Journal for Parasitology 37, 937–942.

SCHAEFFER, C. W. & PANIZZI, A. R. (2000): Heteroptera of economic importance. - Boca Raton.

SCHMIDT-RHAESA, A. (2007): The evolution of organ systems. - Oxford (UK).

TARLA, G., TARLA, S. & İSLAMOĞLU, M. (2015): First report of Hexamermis sp. (Nematoda: Mermithidae) parasitizing Eurygaster maura (Heteroptera: Scutelleridae) in an overwintering area. - The Florida Entomologist 98, 974-978.

USINGER, R. L. (1966): Monograph of the Cimicidae. - The THOMAS SAY Foundation, The Entomological Society of America.

WEBER, H. (1930): Biologie der Hemipteren. Eine Naturgeschichte der Schnabelkerfe. - Berlin, 534 S.


Klaus Reinhardt, Angewandte Zoologie, TU Dresden, D-01069 DRESDEN.


Abb. 1. Pilzbefall einer Bettwanze, Cimex lectularius, an den Rändern bzw. Intersegmentalbereichen an Kopf,

Pronotum und Beinen (links) und am Anus (rechts).


Rhyparochromus vulgaris (SCHILLING, 1829) – die Gemeine Lauf- oder Bodenwanze in Nordrhein-Westfalen (NRW)

(Heteroptera, Lygaeoidea, Rhyparochromidae)

PETER KOTT

Rh. vulgaris wird zwischen 6,9 und 8,1 mm lang (WACHMANN et al. 2007). Sie lebt in

unterschiedlichen offenen bis halbschattigen Habitaten, z. B. am Boden trockener Wiesen, unter

trockenen Bodenblättern von Königskerzen, an Wegrändern unter Steinen und Kräutern, unter

lockerer Rinde von Bäumen und Zäunen. Sie kommt oft in Laubwaldsäumen oder halboffenen,

verbuschtem Gelände, und an Lagerstätten feuchten Holzes vor. Sie lebt auch auf Kulturland

(WACHMANN et al. 2007).

Die Tiere kommen in meinem Garten in Pulheim-Sinnersdorf zu mehreren in einem

Wildbienenhaus vor (Überwinterer!). Sie laufen zwischen den hohlen Stängeln und auf den

Holzflächen herum, kriechen aber auch in die Bohrlöcher und Stängel hinein (Abb. 1).

Eigene Messungen an Sammlungsmaterial aus NRW ergaben für die Männchen Körperlängen

von 6,8 – 7,4 mm (Ø bei 16 Messungen: 7,05 mm) und für die Weibchen von 7,6 – 8,3 mm (Ø bei

15 Messungen: 7,97 mm). Die Männchen sind also im Durchschnitt rund 0,9 mm kleiner.

Als deutscher Name bietet sich „Gemeine Bodenwanze“ an, obwohl der Name

Rhyparochromus aus dem Griechischen kommt und etwa „schmutzig Gefärbter“ (ρυπαρός -

unsauber, schmutzig, χρώμα n. - Farbe) bedeutet. Der deutsche Name "Gemeine Bodenwanze" ist

einfach zu verstehen und wird auch schon in verschiedenen Internetauftritten benutzt, so z. B. bei

http://www.schaedlingskunde.de oder https://www.deutschlands-natur.de/tierarten/wanzen/

rhyparochromus-vulgaris. Daneben findet sich als zweiter Vorschlag „Gemeine Laufwanze“. So

wurde für die Art von STICHEL (1955-1962) „Gewöhnliche Laufwanze“ vorgeschlagen und in dem

kürzlich erschienen Band „Die Wanzen Deutschlands“ (NIEDRINGHAUS et al. 2020) werden die

Rhyparochromidae als „Laufwanzen“ (S. 42) bezeichnet.

In NRW ist Rh. vulgaris für die Zeit vor 1950 und für die Zeit danach ausgewiesen

(HOFFMANN et al. 2011). Allerdings liegen für die Zeit vor 1950 nur Fundmeldungen von

WESTHOFF (1883) aus den Jahren 1876 und 1877 vor. Es folgt eine Fundlücke von mehr als 100

Jahren. Für diese Zeit gibt es eine Anmerkung bei REICHENSPERGER (1920/22), in der er die Art als

Aphanus vulgaris Schill. bezeichnet und feststellt, dass sie erst südlich vom heutigen NRW

vorkommt und ausgesprochen selten ist. Auch bei RADERMACHER (1913) wird die Art für das

Gebiet des heutigen NRW nicht genannt. Erst für 1994 gibt es die nächsten Fundmeldungen bei

HOFFMANN (1996) für Köln und dann für 1997 und 1999 bei DREES (2001) für den Raum Hagen. In

meinen eigenen Fängen finden sich Belegtiere oder Belegfotos für Köln-Roggendorf (2004),

Dormagen (2007), Köln-Esch/Volkhoven (2014) und für Pulheim in jedem Jahr seit 2014 (in

meinem Garten ist sie seit 2019 vorhanden). Am 18.03.2020 fand ich die Art zahlreich auch auf

dem Wildbienenhaus „Puppenstube“ in der Parkanlage von Schloss Dyck bei Jüchen am

Niederrhein.

Die Art ist in Deutschland insbesondere im Süden häufiger und wird nach Norden zunehmend

seltener. Vor allem im Westen gehen nur wenige Funde über die Mittelgebirgsgrenze hinaus.

(WACHMANN et al. 2007). Sie nutzt die Samen zahlreicher Pflanzen wie Erdbeeren, Brennnesseln,

Salbei und die auf die Erde gefallenen Früchte von Ulme, Birke usw., indem sie sie mit dem

Stechrüssel ansticht und aussaugt. Zur Überwinterung finden sich die Imagines ab August und

spätestens bis Ende September an geschützten Stellen ein, z. B. unter loser Rinde von

Baumstümpfen, in Holzstapeln oder in Spalten von Baumstämmen.

Häufig trifft man sie in größeren Aggregationen an (PÉRICART 1998). Sie überwintern nicht

selten auch in Brennholzstapeln und kommen dadurch oft in Wohnungen, wo man sie dann den


ganzen Winter über aktiv finden kann (eigene Beobachtung in Dormagen-Zons). Dort sind sie als

Lästlinge einzuschätzen. Menschen werden nicht gestochen. Meistens sterben sie im Haus wegen

der geringen Luftfeuchtigkeit auch ohne irgendwelche Maßnahmen ab.

Auch H.J. HOFFMANN / Brühl berichtete von Massenüberwinterung von Rhyparochromus vulgaris

bei Schloß Falkenlust / Brühl am 15.02.2020 (bei der Suche nach Oxycarenus lavaterae) unter der

losen Rinde eines abgestorbenen Ahorns(?); die Tiere rieselten bei Ablösung der Rinde nur so in

den Kescher. Ein Dutzend der extrem großen Tiere wurde für seine Sammlung präpariert. In seinem

Garten wurden seit Jahren regelmäßig Einzeltiere gesehen, letzte Präparate liegen vom 20.03.2020

vor. Bei einem seiner Nachbarn kamen vor vielen Jahren schon einmal Tiere in sehr großer Anzahl

ins Haus.

Literatur: DREES, M. (2001): Zur Faunistik der Boden-, Stelzen- und Feuerwanzen des Raumes Hagen (Heteroptera: Lygaeidae,

Berytidae, Pyrrhocoridae). – Dortmunder Beitr. Landeskde., naturwiss. Mitt. 35, 37-56.

HOFFMANN, H.-J. (1996): Zur Wanzenfauna der Großstadt Köln (Hemiptera-Heteroptera) – 1. Nachtrag. - Decheniana-Beihefte 35, 127-162. Bonn.

HOFFMANN, H.-J., KOTT, P. & SCHÄFER, P. (2011): Kommentiertes Artenverzeichnis der Wanzen – Heteroptera – in Nordrhein-Westfalen. Stand Januar 2011. – In: LANUV (Hrsg.): Rote Liste der gefährdeten Pflanzen, Pilze und Tiere in Nordrhein-Westfalen. 4. Fassung. 2011 – LANUV-Fachbericht 36, Band 2, S.453 – 485.

NIEDRINGHAUS, R., STÖCKMANN, M. & WACHMANN, E. (2020): : Die Wanzen Deutschlands - Bestimmungsschlüssel für alle Familien und Gattungen. - Scheeßel. 202 S.

PERICART, J. (1998): Hémiptères Lygaeidae euro-méditerranéens. Volume 3. – Faune de France 84 C. 487 S. + 2 Farbtafeln, Paris.

RADERMACHER, P. (1913): Beitrag zur Kenntnis der Hemipterenfauna Rheinlands (Hemipt.). - Deutsch. Ent. Zeitschr. 1913, 457 - 461.

REICHENSPERGER, A. (1920/22): Rheinlands Hemiptera heteroptera. - Verhandlungen des Naturhistorischen Vereins der Preußischen Rheinlande und Westfalens 77, 35-77 (Bonn 1922).

STICHEL, W. (1955 - 1962): Illustrierte Bestimmungstabellen der Wanzen. II. Europa. (Hemiptera-Heteroptera Europae). – Verlag naturwissenschaftlicher Publikationen Dr. W. Stichel, Berlin-Hermsdorf. Bd. 1–4: 168 + 907 + 428 + 838 S. + 110 S. General-Index.

WACHMANN, E., MELBER, A. & DECKERT, J. (2007): Wanzen Band 3. – In: Dahl, F.: Die Tierwelt Deutschlands, 78. Keltern, 272 S.

WESTHOFF, F. (1883): Verzeichnis bisher in Westfalen aufgefundener Arten der Gruppe: Hemiptera heteroptera. - Jahresbericht der Zoologischen Section des Westfälischen Provincial-Vereins für Wissenschaft und Kunst 12, 33 - 46. Münster.


Peter Kott, Am Theuspfad 38 , D-50 259 PULHEIM. e-mail: [email protected]



Abb. 1: Rhyparochromus vulgaris (Garten in Pulheim-Sinnersdorf)


Zur Wanzenfauna zweier Wacholderheiden im Märkischen Kreis (Sauerland, NRW)

MICHAEL DREES

Bezugspunkt ist eine Arbeit von WERNER (2004) über vier am Wacholder (Juniperus

communis) lebende Wanzenarten, die zum Teil auf exotische, bei uns angepflanzte

Zypressengewächse übergegangen sind. Von diesen konnte ich Chlorochroa juniperina in meinem

Untersuchungsgebiet nirgends nachweisen. Die drei anderen behandelten Arten kommen heute aber

dort vor.

Die beiden einzigen mir im untersuchten Gebiet bekannten, wild wachsenden, allgemein rück-

läufigen Bestände des Wacholders liegen im MTB 4611 (Hagen-Hohenlimburg).

1. Iserlohn-Pillingsen

Westhanglage, 250-270 m NN; Lage auf der Grenze vom zweiten (NO) zum vierten (SO)

Quadranten des MTB

Zwischen den Juniperus-Sträuchern wächst vorwiegend Calluna vulgaris, durchsetzt mit

einer weiß blühenden Galium-Art, dazu stellenweise etwas Vaccinium.

Untersucht wurde am 17. Juni 2020 mit dem Klopfschirm.

Beim Abklopfen der Wacholdersträucher wurde Cyphostethus tristriatus in großer Anzahl

gefunden; deutlich spärlicher, aber nicht gerade selten, kamen Gonocerus juniperi und Orsillus

depressus vor. Von diesen drei Arten, die sich auf die beerentragenden (weiblichen) Sträucher

konzentrierten, wurden auch Larven in Mehrzahl gefunden. In kleiner Anzahl trat Dichrooscytus

gustavi auf (ein Pärchen als Beleg).

Cyphostethus war dort bereits am 28. April 2018 gefunden worden; für die anderen genannten

Arten lag dieser Termin vielleicht jahreszeitlich zu früh.

2. Lohhagen bei Wiblingwerde

Gipfellage, ca. 490 m NN; Lage im 4. Quadranten (SO) des MTB

Zwischen den Wacholdersträuchern wächst überwiegend Gras, durchsetzt mit weiß

blühendem Labkraut (Galium), dazu stellenweise ein wenig Farn, heute aber kaum noch Calluna.

Zuletzt wurde die Fläche am 27. Juni 2020 von mir untersucht.

Auch hier wurde Cyphostethus in Anzahl und auch mit Larven gefunden, jedoch weniger

zahlreich als bei Pillingsen. Von Gonocerus und Orsillus fand ich nur je zwei Imagines, dazu von

letzterer Art eine Larve. Von Dichrooscytus wurde nur ein einzelnes Weibchen abgeklopft.

Die Befunde sind in der folgenden Tabelle zusammengefasst.

Fundort Pillingsen Lohhagen

Jahr 2020 2020 früher

Cyphostethus tristriatus +++ ++ 1994-2019

Gonocerus juniperi ++ + -

Orsillus depressus ++ + -

Dichrooscytus gustavi + + 1999

Myrmedobia coleoptrata - - 1999 und 2019


Demnach scheint der höher gelegene Wacholderbestand für die genannten Wanzen deutlich

ungünstiger zu sein. Bei früheren Besuchen, zuletzt noch am 6. Juli 2019, waren Gonocerus

juniperi und Orsillus depressus dort noch nicht zu finden gewesen, wohingegen Cyphostethus

tristriatus schon 1994 dort vorkam und seitdem mehrmals bestätigt wurde. Dichrooscytus gustavi

wurde dort erstmals 1999 gefangen und hat seitdem eher ab- als zugenommen.

Diese hoch gelegene kleine Wacholderheide ist aber der einzige mir bekannte Fundort von

Myrmedobia distinguenda, die dort am 21. Juli 1999 in mehreren weiblichen Exemplaren geklopft

und 2019 (zusammen mit Temnostethus gracilis) bestätigt wurde. Diese Microphyside ist jedoch

eher an Flechten und nicht an Wacholder gebunden.

Da Gonocerus juniperi unübersehbare Expansionstendenzen zeigt (s. auch AKKERMANS 2019,

WERNER 2011, 2016, 2017), wird man auf eine „Ver´rot´listung“ dieser Art wohl verzichten können

(vgl. WERNER 2004: 125).

Literatur: AKKERMANS, R. (2019): Wantsenstudiegroep Limburg: Was eine regionale Wanzen-Arbeitsgruppe leisten kann. -

Heteropteron H. 56, 21-24.

WERNER, D. J. (2004): Verbreitung, Wirtspflanzenwechsel und Naturschutzaspekte bei Wanzen (Heteroptera) an Zypressengewächsen (Cupressaceae) in Deutschland. - Entomologie heute 16, 117-240.

WERNER, D. J. (2011): Wiederfund von Gonocerus juniperi HERRICH-SCHAEFFER, 1839, in Nordrhein-Westfalen. - Heteropteron H. 35, 20.

WERNER, D. J. (2016): Gonocerus juniperi (Heteroptera: Coreidae) breitet sich auch in Norddeutschland aus! - Heteropteron H. 47, 44.

WERNER, D. J. (2017): Rezente Ausbreitung von Gonocerus juniperi HERRICH-SCHAEFFER, 1839, in Berlin. - Hetero pteron H. 48, 44.


Michael Drees, Freiligrathstr. 15, 58099 HAGEN, e-mail: [email protected]

Anschauenswert ! Von ROLAND GÜNTER (Text & Fotos) finden sich unter: "Staunen, genießen und verstehen - Tiergeschichten, die berühren! Wissenschaftliche Bildreportagen, BLOG Fotoreportagen" vier heteropterologisch sehr interessante Präsentationen:

Der Irrwisch "Alydus calcaratus" (2014) Der Irrtum der Grauen Dicknase "Macrotylus herrichi" (2014) Mathilda, die Ameisenwanze – Himacerus mirmicoides (2013) Dinetus - Die Wespe mit dem Gummifaden-Effekt (2015)

(Man muss sich kostenfrei anmelden, um sie komplett zu sehen.) Link: www.naturbildarchiv-guenter.de/fotoreportagen

http://www.naturbildarchiv-guenter.de/index.php?id=4513


Ergänzungen zum Beitrag „Ein Neuzugang … das Journal of the Heteroptera of Turkey" (HETEROPTERON 59, 38-39)

HANS-JÜRGEN HOFFMANN

Nach der Vorstellung des neuen türkischen-HETEROPTEREN-Journals im letzten Heft des

HETEROPTERON freue ich mich über zwei Ergänzungen:

K. ARNOLD als Herausgeber informierte mich, dass von EDESSANA mittlerweile Band 7 im

Jahr 2017 erschienen ist. Der Inhalt aller bisherigen Bände mit bisher ca. 65 Publikationen

(überwiegend tropische Arten, aber auch einige die Sachsen-Fauna betreffend) soll in einem der

nächsten HETEROPTERON-Hefte aufgelistet werden.

Viel wichtiger erscheint mir der Hinweis auf das Polnische Journal

"HETEROPTERA POLONIAE - ACTA FAUNISTICA" ,

das bereits seit 2009 erscheint.

Hoffentlich bin ich nicht der einzige, dem seit Jahren das Erscheinen verborgen geblieben ist. (Zumindest hat es

keiner der Kollegen für nötig gehalten, mich darauf hinzuweisen. – Hoffentlich gibt es nicht noch weitere Unter-

lassungssünden! )

Es handelt sich um eine im Internet erscheinende Zeitschrift, überwiegend auf polnisch und

damit für deutsche Heteropterologen schwierig zu lesen, soweit das englisch-sprachige Abstract

nebst Summary nicht ausreicht. [Es sei an dieser Stelle aber darauf hingewiesen, dass es mit

GOOGLEs Translator möglicht ist, Teile ins Deutsche übersetzt zu bekommen, wenn man die Teile

der pdf-Dateien eingibt.] Die Bände sind unter www.hetpol.wpt.uni.opole.pl/en/journal-home/ im

Internet einzusehen, die einzelnen Beiträge als pdf-Dateien herunterladbar. Herausgeber ist Prof. dr

hab. JERZY A. LIS, Opole University. Bisher sind über 110 Arbeiten verfügbar, die leider hier wegen

des Umfangs nicht aufgelistet werden können.

Das Journal stellt sich folgendermaßen vor:

Heteroptera Poloniae – Acta Faunistica,

published since 2009, is an open access, peer-reviewed journal that publishes original research articles as well

as review articles and opinions in all areas of heteropterology (Hemiptera: Heteroptera), except the taxonomic

descriptions of new taxa.

Contributions are published in Polish with English abstract and summary, or in English. There are no page

charges and no limits for page numbers of the published papers.

The journal passed the evaluation process succesfully and has been indexed on ICI Journals Master List

2018. The evaluation result for 2018 year is: ICV (Index Copernicus Value) 2018 = 73.85.

Heteroptera Poloniae – Acta Faunistica is archived in: Index Copernicus, POL-index, Zenodo and indexed in:

Google Scholar, ICI Journal Master List, OpenAIRE, Publons. ISSN 2083-201X.

Adres: Heteroptera Poloniae - Acta Faunistica, ul. Oleska 22, 45-052 Opole, Poland, tel. +48 77 452 60 12, e-

mail: [email protected]

Man kann sich für die Benachrichtigung bei Neuerscheinungen vormerken lassen.

Anschrift des Autors: Dr. H.J. Hoffmann, c/o Zoologisches Institut, Biozentrum der Universität zu Köln,

Zülpicher Str. 47 b, D-50674 KÖLN, e-mail: [email protected]

http://www.hetpol.wpt.uni.opole.pl/en/journal-home/

https://journals.indexcopernicus.com/search/details?id=46916

https://pbn.nauka.gov.pl/polindex-webapp/browse/journal/journal-05b20dd1-dbf8-48ca-8c23-7e3f88232d41

https://zenodo.org/search?page=1&size=20&q=Heteroptera%20Poloniae

https://scholar.google.com/scholar?hl=pl&as_sdt=0%2C5&q=Heteroptera+Poloniae&oq=Hetero

https://journals.indexcopernicus.com/search/details?id=46916

https://explore.openaire.eu/search/find?keyword=Heteroptera%20Poloniae

https://publons.com/journal/223945/heteroptera-poloniae-acta-faunistica

mailto:%[email protected]



Fossile Wanzen aus dem Oberoligozän von Rott bei Bonn

HANS-JÜRGEN HOFFMANN

Heteropterologen haben mit den rezenten Wanzen schon so viel Arbeit, dass fossile Wanzen

nur relativ wenig bearbeitet wurden und werden. (Eine Ausnahme bilden z.B. die Arbeiten von

ERNST HEISS betr. Bernstein-Inklusen vor allem aus der Familie der Rindenwanzen.)

In der in jüngster Zeit erschienenen 2. Auflage der „True bugs of the world“ von SCHUH &

WEIRAUCH (2020) gibt es ein umfangreiches Kapitel zu den fossilen Arten mit einer fast 50-seitigen

Tabelle aller bisher beschriebenen Wanzen-Spezies. Da schaut man natürlich als erstes auf

„lokalpatriotisch“ interessante Objekte. Es finden sich zwar div. fossile Landwanzen aus dem

Oberoligozän von Rott, ca. 30 km südöstlich von Köln, Wasserwanzen von dort fehlen allerdings.

Da aber gerade von den Wasserwanzen extrem viel Material von dort bekannt ist (einiges befindet

sich sogar in meiner Sammlung), sollte die entsprechende Arbeit von G. STATZ (1950) vielleicht bei

einer 3. Neu-Auflage des vorgenannten Werkes ergänzt werden. Im Folgenden soll zugleich an den

Autor erinnert werden.

Bei Rott handelt es sich um einen kleinen Ort bei Siegburg, 12 km östlich von Bonn (50,6°N,

7,5°E). Dort wurde seit 1751 bis ungefähr 1920 eine Grube zur Gewinnung von Blätterkohle oder

Polierschiefer betrieben. Das Material (man vergleiche Grube Messel) wurde erhitzt zwecks

Gewinnung von Schweröl und ähnlichen Substanzen wie dem pharmazeutisch genutzten Ichthyol.

Dabei gingen natürlich evtl. vorhandene Fossilien verloren. Diese fanden sich aber bis zu den 70er

Jahren noch auf den Halden im Ort. Nach 1920 wurde die Grube stillgelegt, die Halden

verbuschten. Ein wissenschaftlich begründeter Wiederaufschluß zwecks Gewinnung von neuem

Fossilmaterial wurde zwar einmal andiskutiert, aber nicht verwirklicht. Sehr viele Details mit

zahlreichen farbigen Abbildungen finden sich in der anläßlich des Jubiläums „BONN 2000“ (s.

Vorwort des Herausgebers in der Ausgabe von 1989(!), letztere vielleicht als 2. Erweiterte Auflage

von 1996?) herausgegebenen Schrift von v. KOENIGSWALD „Fossillagerstätte Rott bei Honnef am

Siebengebirge. Das Leben in einem subtropischen See vor 25 Millionen Jahren.“ von 1989. Zur

Bedeutung schreibt WIKIPEDIA: „Die Fossillagerstätte Rott ist eine wegen des Reichtums und der

außergewöhnlich guten Erhaltung von fossilen Pflanzen und Tieren in der Paläontologie

weltbekannte limnische Lagerstätte von Fossilien aus dem Oligozän beim Ortsteil Rott der Stadt

Hennef (Sieg).“ Die Schichten stammen aus dem Spät- oder Oberoligozän (25 Mio. Jahre).

Im Folgenden soll im Hinblick auf die fossilen Insektenfunde der Schwerpunkt bei den

Heteropteren liegen: Es tauchen bei den Wanzenfossilien vor allem zwei Namen auf: A.

KASTENHOLZ und G. STATZ.

Zu G. STATZ habe ich einen persönlichen Bezug: Er hatte sich in Siegburg als Lehrer

engagiert, sich dort auch naturwissenschaftlich interessiert und war dabei auch auf die Grube Rott

mit den zahllosen Fossilien gestoßen. Er beschloss daher nebenberuflich 10 Semester in Köln im

Zoologischen Institut von 1925 bis 1930 Biologie zu studieren. Nach Abschluß blieb er aber

Volksschullehrer. Er sammelte sehr intensiv auf den Halden, z.T. mit Familie und Hilfsarbeitern,

brachte vor allem aber größere Plattenstapel mit nach Hause, wo er sie über Winter im Garten

auslegte um sie danach aufzuspalten. Zwei Abbildungen (leider in schlechter Qualität)

veranschaulichen dies sehr eindrucksvoll (Abb. 1 + 2).

Er fand riesige Mengen vor allem an Insekten-Abdrücken, die er auswertete und in mehreren

Arbeiten (z.B. über die hier interessierenden Wasser- und Landwanzen) publizierte. Er war aber

offensichtlich nicht nur Student in Köln, sondern galt danach auch als Gastforscher am Kölner

Zoologischen Institut und erhielt 1940 den Ehrendoktor der Philosophischen Fakultät der

Universität zu Köln.

https://de.wikipedia.org/wiki/Fossil

https://de.wikipedia.org/wiki/Pal%C3%A4ontologie

https://de.wikipedia.org/wiki/Stillgew%C3%A4sser

https://de.wikipedia.org/wiki/Oligoz%C3%A4n

https://de.wikipedia.org/wiki/Rott_(Hennef)

https://de.wikipedia.org/wiki/Hennef_(Sieg)


Abb 1: Arbeit auf der Halde Abb. 2: Im Garten ausgelegte Platten (Quelle: Internet)

Als Doktorand am Zoologischen Institut der Universität zu Köln entdeckte ich auf dem

Speicher des alten Institutsbaues verstaubte, großformatige Sonderdrucke über fossile Insekten aus

dem Oligozän von Rott. Vor allem die Wasser- und Landwanzen-Bearbeitungen von G. STATZ bzw.

G. STATZ & E. Wagner wechselten sofort in meine Sonderdrucksammlung. Mein Mentor, der

Carabidologe H.U. THIELE, Assistent am Institut, erklärte mir später die Bedeutung von Rott, wies

aber auch darauf hin, dass er selbst schon Anfang der 60er Jahre auf den Halden in Rott praktisch

keine Fossilien mehr gefunden hätte. Alles sei völlig durchwurzelt. Zeitweilig brannten die Halden

auch. Heute sind das Grubengelände und die alten Halden als Naturdenkmal geschützt; eine ins

Gespräch gebrachte erneute wissenschaftliche Grabung fand wie schon angedeutet nie statt.

Stattdessen findet sich heutzutage darüber eine Golfanlage!

Bei der Bombardierung von Köln im Jahr 1944 wurde das Haus von G. STATZ durch einen

Volltreffer zerstört. Die Familie verschlug es kriegsbedingt für einige Zeit nach Bayern, konnte die

Sammlung jedoch noch erfolgreich in den Kellern des Geologischen Institutes in Köln gesichert

zwischenlagern. Angeblich „geschwächt“ durch die kriegsbedingten Entbehrungen starb G. STATZ

3 Monate nach Kriegsende. Seine umfangreiche Fossiliensammlung konnte aus finanziellen

Gründen leider nicht in Köln gehalten werden. 3.500 Insekten- und 2.300 Pflanzen-Fossilien kamen

über Nordafrika nach langen Verhandlungen mit der Tochter von G. STATZ im Jahr 1955 in die

USA an das Natural History Museum in Los Angeles. Im Jahr 2003 überließ das Museum wegen

der Schließung der paläobotanischen Sektion die Pflanzen-Fossilsammlung von G. STATZ

unentgeltlich dem GOLDFUß-Museum an der Rheinischen Friedrich-Wilhelms Universität, Bonn. G.

STATZ veröffentlichte zwischen 1936 und 1944 div. Arbeiten betr. Hymenopteren, Neuropteren,

Trichopteren, Coleopteren und Dipteren, posthum noch zu Zikaden und 2 Käfergruppen (Details s.

Literaturverzeichnis).

Daneben gibt es noch eine umfangreichere Sammlung von A. KASTENHOLZ (mit u.a.

zahlreichen Wanzen-Abdrücken unter den 978 Fossilien, davon 283 Pflanzen-Fossilien). Diese

Sammlung in einem kleinen Schränckchen, das ursprünglich für Nähgarn-Sortimente gedient hatte,

wurde vom Bonner Mineralien-Kontor KRANTZ erworben. Dort konnte ich in den 80er Jahren bei

der Suche nach fossilen Wanzen einige Stücke käuflich bei der Firmen-Inhaberin erwerben. Damals

hatte man offensichtlich die Bedeutung der Sammlung noch nicht erkannt. Jahre später hat sich das

geändert, die Sammlung wurde nämlich dem Paläontologischen Institut der Uni Bonn „zu einem

vertretbaren Preis“ (wie mir die Schwester der damaligen Firmeninhaberin schrieb) überlassen.

https://de.wikipedia.org/w/index.php?title=Natural_History_Museum_of_Los_Angeles_County&action=edit&redlink=1

https://de.wikipedia.org/wiki/Los_Angeles

https://de.wikipedia.org/wiki/Goldfu%C3%9F-Museum


G. STATZ kannte offensichtlich die Sammlung von Herrn A. KASTENHOLZ sehr gut und

übernahm bei seinen Untersuchungen auch Material daraus. Die Wasserwanzen von Rott

bearbeitete G. STATZ sehr gründlich, die Ergebnisse und sein Manuskript wurden aber erst 1950

posthum publiziert (STATZ 1950). Das Landwanzen-Manuskript bearbeitete und vervollständigte

EDUARD WAGNER und publizierte die Ergebnisse im gleichen Jahr (STATZ & E. WAGNER 1950).

G. STATZ schreibt, dass Landwanzen insgesamt nicht häufig vorkamen, dass er 48 zur

Beschreibung geeignete eigene Fossilien vorliegen hatte und 5 weitere aus der Sammlung A.

KASTENHOLZ. Daraus beschrieb er 45 neue Arten, davon 28 ohne Artnamen oder mit "?" aus 9

Familien und 25 Gattungen. Zwei Arten waren schon beschrieben, je eine von VON

HEYDEN/MEUNIER und von MEUNIER, hinzu kamen jetzt zwei von E. WAGNER, die übrigen von

STATZ. 2/3 des Manuskripts und die 8 Tafeln stellte STATZ noch selbst zusammen, den Rest

übernahm E. WAGNER als Koautor.

G. STATZ führt im Wasserwanzen-Manuskript 10 (+1) Arten auf, die er auf 12 Tafeln

abbildet. Er schreibt, dass sich einige Arten in größerer Anzahl fanden: Notonecta heydeni 188 Ex.,

Soevenia heydeni 476 Ex. mit 188 Larven und 288 Imagines. Insgesamt finden sich in der Arbeit

mit Corixa rhenana und Corixa vidua zwei von G. STATZ neu beschriebene Arten, div.

Larvenstadien und 4 neue, bisher unbenannte Corixa-Arten (♂, ohne Artnamen). Vier Arten,

Naucoris rottensis v. SCHLECHTENDAHL, Notonecta primaeva V. HEYDEN und Soevenia heydeni

DEICHMÜLLER (Larven von G. STATZ beschrieben) und Corixa elegans VON SCHLECHTENDAHL

waren schon vorher beschrieben worden.. Bei der von GERMAR in der Reihe „Fauna insectorum

Europae“ abgebildeten Belostoma goldfussi (Heft 19, Abb. 17 von 1837: „Belostoma GOLDFFUSSII

GERM.“, FO „Rheinland nahe Bonn“) (Abb. 3) handelt es sich nach Auffassung von WILCKENS

(1926) wohl um Material aus einer Grube bei Orsberg bei Erpel/Neuwied. Er schreibt: „Auch die

von GERMAR beschriebenen Insekten stammen zum Teil sicher von Orsberg“. G. STATZ kannte die

Arbeit wohl nicht. Die noch immer in der PALAEOBIOLOGY DATABASE zu findende Angabe

„Fundort Rott“ für das in der Sammlung GOLDFUSS (dessen Funde alle von Orsberg) in Bonn

aufbewahrte Fossil ist somit fragwürdig, da in Rott zumindest unter den sehr zahlreichen Fossilien

kein weiterer Fund der Art auftauchte.

Abb. 3: Belostoma Goldffussii GERM. (Quelle: http://dl.ub.uni-freiburg.de/diglit/germar1837/

0042+43, © Universitätsbibliothek Freiburg)

Fossile Wanzen sind, außer aus div. älteren erdgeschichtlichen Perioden wie Jura (s.

Solnhofen) oder Kreide oder aus jüngeren Perioden wie Obereozän (35 Mio. Jahre, s. Bernstein)

von der alttertiären Lagerstätte Messel (Mitteleozän, 50 Mio Jahre alt) bekannt. Dort herrschen –

außer den berühmten Wirbeltierfossilien – bei den im Vergleich zu Rott selteneren Insektenfossilien

die Landwanzen vor. Es dürfte sich hier nicht um ein zumindest nur zeitweilig existierendes

Süßwasser-Biotop mit Tümpeln u.ä. gehandelt haben. Ähnliches gilt für die ähnlich alten Schichten

im Eckfelder Maar, wo allerdings fossile Landwanzen häufiger gefunden werden. Die Grube

Messel wird weiterhin ausgebeutet und wissenschaftlich bearbeitet. Allerdings liegt hier der


Schwerpunkt auf den Wirbeltierfunden, während über Insekten extrem wenig veröffentlicht wurde.

Die Fossillagerstätte Rott ist eine zwar unter Fachleuten weltbekannte Lagerstätte für fossile

Pflanzen und Tiere. Da es aber seit über 50 Jahren keinerlei neues Material gibt, geriet die

Fundstelle weitestgehend in Vergessenheit. So erwähnen WAPPLER et al. (2007) in „Die

Fossilgeschichte der Heteroptera – ein Überblick“ leider Rott mit keiner Zeile, und bei SCHUH &

WEIRAUCH (2020) fehlen zumindest die Wasserwanzen.

Das Besondere an den ca. 25 Mio Jahre alten Fossilien von Rott ist einmal die ungeheure

Anzahl von Insekten-Funden. Bei den Wanzen ist besonders der ungewöhnlich große Anteil an

Wasserwanzen bemerkenswert. Es ist angeblich kein anderer Fundort mit solch einer Anhäufung

von fossilisierten Wasserwanzen bekannt. Normalerweise stehen die Landwanzen im Vordergrund

und Wasserwanzen treten nur in geringer Zahl auf. Man deutete das zunächst so, das von einem

Oberlauf eines kleineren Gewässers Tiere in die spätere Grube gespült wurden und dort unter

Luftabschluß fossil erhalten blieben. Neuere Untersuchungen lassen aber eher den Schluß zu, dass

sich in und an der Grube selbst kleinere Tümpel oder ein See befunden haben, in denen die Wanzen

lebten und z.B. bei evtl. Austrocknen fossilisierten, zusammen mit Blättern, kleineren Wirbeltieren

und anderem organischen Material, das dann zum Öl-Gehalt umgewandelt wurde.

Ich konnte seinerzeit 18 Fossilien von 4 Wasserwanzen-Arten (mit entsprechenden

Larvenstadien) und 2 Landwanzen-Arten käuflich für meine Sammlung erwerben, wobei die Fa.

KRANTZ/Bonn sich durchaus des Wertes bewußt war: Das Typusexemplar von Rhinocoris michalki

kostete mein damals knappes Budget immerhin 160 DM bzw. 80 €. Die Typus-Platte (Abb. 4 a-d)

soll hier erstmalig in Farbe vorgestellt werden. [Die weniger aussagekräftige Gegenplatte befindet

sich wohl in der Slg. G. STATZ (im Text schreibt E. WAGNER „Slg. des Verfassers“) in Los

Angeles.]

Literatur: (Schwerpunkt betr. G. STATZ, A. KASTENHOLZ publizierte wohl nichts) SCHUH, R.T. & WEIRAUCH, CH. (2020): True Bugs of the World (Hemiptera: Heteroptera): Classification and Natural

History. - Monograph Series Volume 8, Second Edition, 768 S., Manchester/UK.

STATZ, G. (1936): Ueber alte und neue fossile Hymenopterenfunde aus den Tertiären Ablagerungen von Rott am Siebengebirge. - Decheniana 93, 256-312.

STATZ, G. (1936): Ueber neue Funde von Neuropteren, Panaporten und Trichopteren aus den Tertiären Schiefern von Rott am Siebengebirge. - Decheniana 93, 208-255.

STATZ, G. & HORION, A. (1937): Ein fossiler Ptiliidenfund aus den mitteloligocänen Ablagerungen von Rott am Siebengebirge. - Entomologische Blätter 33, 8-10.

STATZ, G. (1938): Neue Funde parasitischer Hymenopteren aus dem Tertiär von Rott am Siebengebirge. - Decheniana 98 A, 71-144.

STATZ, G. (1939): Geradflügler und Wasserkäfer der oligocänen Ablagerungen von Rott. – Decheniana 99 A, 1-102.

STATZ, G. (1940): Neue Dipteren (Brachycera et Cyclorhapha) aus dem Oberoligozän von Rott. - Palaeontographica 91 A, 120-174.

STATZ, G. (1941): Wirbeltiere aus den Rotter Braunkohlensümpfen. - Rheinische Heimatpflege 13, 113-129.

STATZ, G. (1941): Bienen, Blätter und Blüten aus dem rheinischen Braunkohlenwalde. - Rheinische Heimatpflege 13, 100-112.

STATZ, G. (1943): Neue Dipteren (Nematocera) aus dem Oberoligocän von Rott. 1. Familie Bibionidae (Haarmucken). - Palaeontographica 95 A, 1-65.

STATZ, G. (1944): Neue Dipteren (Nematocera) aus dem Oberoligocän von Rott. 2. Familie Fungivoridae (Pilzmuchen). - Palaeontographica 95 A, 67-92.

STATZ, G. (1944): Neue Dipteren (Nematocera) aus dem Oberoligocän von Rott. 1. Teil 6. Familie: Tendipedidae (Zuck- oder Schwarmmücken). 2. Teil 7. Familie: Heleidae (Gnitzen) 3. Teil 8. Familie: Lycoriidae (Trauermücken). - Palaeontographica 95 A, 122-187.

STATZ, G. (1944): Neue Dipteren (Nematocera) aus dem Oberoligocän von Rott. III. Familie Limnobiidae (Stelzmücken). IV. Familie Tipulidae (Schnaken). V. Familie Culicidae (Stechmücken). - Palaeontographica 95 A, 93-120.

STATZ, G. (1950): Cicadariae (Zikaden) aus den Oberoligocanen Ablagerungen von Rott. - Palaeontographica 98 A, 1-46.

STATZ, G. (1950): Alte und neue Hydrocorisae (Wasserwanzen) aus dem Oberoligocän von Rott. - Palaeontographica 98 A, 7-96 + 12 Tafeln, Stuttgart.


STATZ, G. & WAGNER, E. (1950): Geocorisae (Landwanzen) aus den oberoligicänen Ablagerungen von Rott. - Palaeontographica 98 A, 97-136 + 8 Tafeln, Stuttgart.

STATZ, G. (1952): Fossile Mordellidae und Lamellicornia (Coleoptera) aus dem Oberoligozän von Rott. -

Palaeontographica 102 A, 1-17.

V. KOENIGSWALD, W. (Hrsg.)(1989): Fossillagerstätte Rott bei Hennef am Siebengebirge. - 82 S., Siegburg.

WAPPLER, T., WEDMANN, S. & RUST, J. (2007): Die Fossilgeschichte der Heteroptera – ein Überblick. - Mainzer naturwiss. Archiv, Beiheft 31 47-61.

WILCKENS, O. (1926): Materialien und Beiträge zur Geologie und Paläontologie der Umgebung von Bonn. –

Sitzungsber. Naturwiss. Abt. Niederrhein. Ges. Natur- und Heilkunde Bonn 1925, 9-47.

Abb. 4 a-c: Rhinocoris michalki STATZ aus der Sammlung A. KASTENHOLZ

Abb. 4d: Rhinocoris michalki STATZ, Typus-Exemplar, Slg. H.J. HOFFMANN

Anschrift des Autors: Dr. H.J. Hoffmann, c/o Zoologisches Institut, Biozentrum der Universität zu Köln,

Zülpicher Str. 47 b, D-50674 KÖLN, e-mail: [email protected]



Wanzenliteratur: Neuerscheinungen AUKEMA, B. & HERMES, D.J. (2020): Verspreidingsatlas Nederlandse wantsen (Hemiptera: Heteroptera) - Deel V:

Pentatomorpha II (Coreoidea en Pentatomoidea). - EIS Kenniscentrum Insecten en andere ongewervelden, Leiden, 160 S.

BURY, J. & OBSZARNY, M. (2020): Pierwsze stwierdzenie Spilostethus saxatilis (SCOPOLI, 1763) (Hemiptera: Heteroptera: Lygaeidae) w Beskidzie Wschodnim [First records of Spilostethus saxatilis (SCOPOLI, 1763) (Heteroptera: Heteroptera: Lygaeidae) in the Eastern Beskids]. - Heteroptera Poloniae – Acta Faunistica 14, 171-174.

DREES, M. (2020): Beobachtungen zur Flüchtigkeit einiger Insektenarten (Coleoptera, Heteroptera). - Entomologische Nachrichten und Berichte 64, 113-114. (Notiz betr. Leptopus m.)

ENDRESTØL, A. & ROTH, ST. (2020): The firebug Pyrrhocoris apterus (LINNAEUS, 1758) (Hemiptera, Heteroptera) new to the Norwegian fauna – with an explosive expansion in Northern Europe. - Norwegian Journal of Entomology 67, 81-90.

GROSSO-SILVA, J. M., FRIAS, I. & VAN DER HEYDEN, T. (2020): Stephanitis takeyai DRAKE & MAA, 1955 (Hemiptera: Tingidae), new species for Portugal. – Arquivos Entomolóxicos 22, 371-372.

HECKMANN, R. & RIEGER, CH. (2020): Wanzen aus Baden-Württemberg II – Ein Beitrag zur Faunistik und Ökologie der Wanzen in Baden-Württemberg (Heteroptera). - Entomologische Zeitschrift,·Schwanfeld 130, 29-41.

KIM, J., DAMKEN, C., AHMAD SAH, H.H. & JUNG, S. (2020): Notes on the genus Kosmiomiris KIRKALDY (Hemiptera: Miridae: Hyalopeplini) with description of a new species. - Zootaxa 4657 (2), 377–384.

PÉTREMAND, G. & HOLLIER, J. (2020): Tritomegas rotundipennis (DOHRN, 1862) (Hemiptera, Cydnidae) une nouvelle punaise pour la suisse. - Entomo Helvetica 13, 159-162.

TASZAKOWSKI, A., KIM, J., DAMKEN, C., WAHAB R.A., HERCZEK, A. & JUNG, S. (2020): Two new genera and species of the Gigantometopini (Hemiptera, Heteroptera, Miridae, Isometopinae) from Borneo with remarks on the distribution of the tribe. - ZooKeys 941, 71–89.

VAN DER HEYDEN, T. (2020): Confirmation of the presence of Spilostethus furcula (HERRICH-SCHÄFFER, 1850) (Heteroptera: Lygaeidae) on the Balearic Islands (Spain). – Revista gaditana de Entomología XI, 133-135.

VAN DER HEYDEN, T. (2020): First record of Leptoglossus cartagoensis BRAILOVSKY & BARRERA, 1998 (Hemiptera: Heteroptera: Coreidae) for Panama. – Boletín del Museo Nacional de Historia Natural del Paraguay 24, 55-56.

VAN DER HEYDEN, T. (2020): Records of Solenosthedium bilunatum (LEFÈBVRE, 1827) on the Italian island of Ustica and the Spanish island of Ibiza (Hemiptera: Heteroptera: Scutelleridae). – Arquivos Entomolóxicos 22, 289-291.

VAN DER HEYDEN, T. & GROSSO-SILVA, J. M. (2020): First record of Zelus renardii KOLENATI, 1856 in Portugal (Heteroptera: Reduviidae: Harpactorinae). – Arquivos Entomolóxicos 22, 347-349.

ZIELIŃSKA, A. & LIS, B. (2020): Ocena możliwości potencjalnej ekspansji prześwietlika dębowego Corythucha arcuata (SAY, 1832), inwazyjnego gatunku z rodziny Tingidae (Hemiptera: Heteroptera), na tereny Polski [Evaluation of the possibilities of potential expansion of the oak lace bug Corythucha arcuata (SAY, 1832), an invasive species of Tingidae (Hemiptera: Heteroptera), into the territory of Poland]. - Heteroptera Poloniae – Acta Faunistica 14, 175-180.

In HETEROPTERON H. 59: HOFFMANN, H.J. (2020): Buchbesprechung: AUKEMA, B. & HERMES, D.J. (2020): Verspreidingsatlas Nederlandse

wantsen (Hemiptera: Heteroptera) - Deel V: Pentatomorpha II (Coreoidea en Pentatomoidea). - Heteropteron H. 59, 36-37.

HOFFMANN, H.J. (2020): Die Lindenwanze Oxycarenus lavaterae (FABRICIUS, 1787): Allgemeines zur Art und

Spezielles als Neueinwanderer in Deutschland und in Nordrhein-Westfalen, nebst Bibliographie. - Heteropteron H.

59, 8-29. HOFFMANN, H.J. (2020): Ein Neuzugang bei den Heteropterologischen Zeitschriften: das "Journal of the Heteroptera of

the Turkey". - Heteropteron H. 59, 38-39.

HOFFMANN, H.J. & HERR, K. (2020): Ein weiterer Nachweis von Holcogaster fibulata (GERMAR, 1831) in Deutschland.

- Heteropteron H. 59, 35.

KAMBECK, C., MESSEMER, J., SANDERS, CH., SCHMIDT, L., TEMPELHAGEN, L., VOLZ, T., BRAUN, M., BRAUN, U. &

WAGNER, TH. (2020): Wasser- und Uferwanzen neu angelegter Tümpel im Rhein-Hunsrück-Kreis (Heteroptera:

Nepo- und Gerromorpha, Saldidae). - Heteropteron H. 59, 30-34. KOTT, P. (2020): Oxycarenus lavaterae (FABRICIUS, 1787): weitere Funde aus Nordrhein-Westfalen. - Heteropteron H.

59, 5-7. TROCH, H.P. & HUSEMANN, M. (2020): Erstfund der Lindenwanze Oxycarenus lavaterae (FABRICIUS, 1787) aus

Hamburg. - Heteropteron H. 59, 3-4.

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HETEROPTERON · 2020. 11. 3. · Der HETEROPTERON ist als deutsch-sprachiges Mitteilungsblatt konzipiert worden. Daher sollten möglichst viele (alte und) neue Mitteilungen gemeldet