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NÄHRMEDIEN • Fertignährmedien (Abklatschagars & Eintauchmedien, Compact Dry) S. 4 • Hygienekontrolle S. 5 • Trockennährmedien & -agars für die Mikrobiologie S. 6 & 7 • Chromogene Trockennährmedien S. 8 & 9 • Mikrobiologische Trockennährmedien S. 10-18 • Agars & Carregeene S. 19 • Nährmedienzusätze S. 20-21 • Nährmediengrundstoffe S. 22 & 23 Ein Auszug aus unserem Produktsortiment für die Mikrobiologie Mikrobiologische und molekularbiologische Nährmedien, Medienzusätze und Grundstoffe MA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEM

DE Naehrmedien 2015 oPr - International | Carl Roth · Rotitest®-Coliform • Leicht und sicher zu handhaben - auch für Laien • Einfache Auswertung durch Farbverschiebung •

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NÄHRMEDIEN

• Fertignährmedien (Abklatschagars & Eintauchmedien, Compact Dry) S. 4

• Hygienekontrolle S. 5

• Trockennährmedien & -agars für die Mikrobiologie S. 6 & 7

• Chromogene Trockennährmedien S. 8 & 9

• Mikrobiologische Trockennährmedien S. 10-18

• Agars & Carregeene S. 19

• Nährmedienzusätze S. 20-21

• Nährmediengrundstoffe S. 22 & 23

Ein Auszug aus unserem Produktsortiment für dieMikrobiologie

Mikrobiologische und molekularbiologischeNährmedien, Medienzusätze

und Grundstoffe

MA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEMA | THEM

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Fertignährmedien

Roti®-DipSlidesSterile Fertig-Nährbodenträger zur einfachen mikrobiologischen Untersuchung von Lösungen und Flächen.

• Aus flexiblem Plastikträger, steril • Beidseitig mit Nähragar beschichtet• Die Analysefläche beträgt 8 cm2 pro Seite• Nach dem Eintauchen in die zu untersuchende Lösung oder dem

Abdrücken der Oberfläche werden die Träger wieder in die sterilen Röhrchen eingesetzt und inkubiert

• Lagertemp. +4 bis +15 °C

Merkmale

• 2 in 1: Eintauchnährboden und Abklatschagar• Ohne Vorbereitung direkt anwendbar• Einfache Anwendung• Sicherer Nachweis und leichte Auswertung• Geeignet für mikrobiologische Labore, Kliniken und

für Hygienekontrollen im Lebensmittelbereich• Mit ausführlicher Gebrauchsanweisung

Vorteile

Lagertemp. +4 bis 15 °CTransporttemp.: gekühlt

Kostenpflichtiger Kühltransport!Ausführliche Informationen im aktuellen Katalog und unter www.carlroth.de / www.carlroth.at

Roti®-DipSlides (20 Röhrchen/Packung)

Sterile Nährbodenträger zur einfachen mikrobiologischen Untersuchung von Lösungen und Flächen.

Best.-Nr. Agar 1 Agar 2 Nachweis von Preis €

2924.1 Plate-Count-Agar (PC) Kristallviolett-Galle-Glucose-Agar (VRBD) Gesamtkeime + Enterobakterien

2925.1 Plate-Count-Agar (PC) Kristallviolett-Galle-Lactose-Agar (VRB) Gesamtkeime + Coliforme

2926.1 Plate-Count-Agar (PC) Bengalrot-Agar (mit Chloramphenicol) (RBC) Gesamtkeime + Hefen/Schimmelpilze

3934.1 CASO mit TTC Bengalrot-Agar (mit Antibiotika) (RBC) Gesamtkeime + Hefen/Schimmelpilze

2927.1 Plate-Count-Agar (PC) Plate-Count-Agar (PC) Gesamtkeime

2837.1 Nähragar Nähragar mit TTC Gesamtkeime

2954.1 Kristallviolett-Galle-Glucose-Agar (VRBD) Kristallviolett-Galle-Glucose-Agar (VRBD) Enterobakterien

2955.1 Kristallviolett-Galle-Lactose-Agar (VRB) Kristallviolett-Galle-Lactose-Agar (VRB) Coliforme/E. coli

2956.1 Sabouraud 4 % Glucose-Agar (mit Chloramph.) Sabouraud 4 % Glucose-Agar (mit Chloramph.) Hefen/Schimmelpilze

2957.1 CLED-Agar MacConkey-Agar Harnwegsbakterien + Enterobakt./Coliforme

Viele Informationen und eine ausführliche Gebrauchsanweisung der Produkte finden Sie online unter www.carlroth.de / www.carlroth.at Life Science Mikrobiologie Fertignährmedien

Geeignet für:• Mikrobiologische Labore• Kliniken• Hygienekontrollen im

Lebensmittel- und Sportbereich• Lehre und Ausbildung• Routinekontrollen• Überprüfung von Klimaanlagen

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S

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• Träger aus sterilem Röhrchen entnehmen. Der Schraubdeckel dient automatisch als Halter

• Agar leicht auf Fläche drücken oder in Flüssigkeit eintauchen• Träger wieder in Röhrchen einführen und verschrauben• Röhrchen mit Träger bei für die Bakterien geeigneter

Temperatur inkubieren• Auswerten

Anwendung:

VRB PC TTC-Agar

Zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl in Lösungen oder auf Oberflächen. Seite 1 (Nutrient): Nähragar zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl undSeite 2 (Nutrient-TTC): Nähragar mit TTC zur sicheren Detektion aller lebenden Mikroorganismen durch Formazan-Rotfärbung der Kolonien.

Zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl in Lösungen oder auf Oberflächen. Beide Seiten (PCA): Plate-Count-Agar (nach APHA, ISO 4833:2003) (X930) zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl.

Zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl und zur Detektion von Hefen und Schimmelpilzen in Lösungen oder auf Oberflächen. Geeignet für die Untersuchung von wassermischbaren Kühlschmiermitteln, Klimaanlagen, wasserlöslichen Farben und Kosmetika. Seite 1 (CASO-TTC): CASO-Agar (Ph. Eur.) (X937) mit Zusatz von TTC zur sicheren Bestimmung der Gesamtkeimzahl. Seite 2 (RBCenr): angereicherter Bengalrot-Agar (mit Antibiotika) zur Detektion von Hefen und Schimmelpilzen.

Zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl und zur Detektion von Hefen und Schimmelpilzen in Lösungen oder auf Oberflächen. Seite 1 (PCA): Plate-Count-Agar (nach APHA, ISO 4833:2003) (X930) zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl. Seite 2 (RBCplus): Bengalrot-Agar (mit Chloramphenicol) (AE24) zur Detektion von Hefen und Schimmelpilzen.

Zur Detektion von Hefen und Schimmelpilzen in Lösungen oder auf Oberflächen. Beide Seiten (Sab4plus): Sabouraud 4 % Glucose-Agar (mit Chloram-phenicol) (X933) zur Detektion von Hefen und Schimmelpilzen.

Zur Detektion von Harnwegsbakterien und Enterobakterien/Coliformen in Lösungen oder auf Oberflächen, speziell zur Urinuntersuchung. Seite 1 (CLED): CLED Agar (2835) zur Detektion von Harnwegsbakterien.Seite 2 (MacCon): MacConkey-Agar (Ph. Eur.) (X922) zur Detektion von Enterobakterien/Coliformen.

Zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl und zur Detektion von Enterobakterien in Lösungen oder auf Oberflächen Seite 1 (PCA): Plate-Count-Agar (nach APHA, ISO 4833:2003) (X930) zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl. Seite 2 (VRBD): Kristallviolett-Galle-Glucose-Agar (Ph. Eur.) (X939) zur Detektion von Enterobakterien.

Zur Detektion von Enterobakterien in Lösungen oder auf Oberflächen. Beide Seiten (VRBD): Kristallviolett-Galle-Glucose-Agar (Ph. Eur.) (X939) zur Detektion von Enterobakterien.

Zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl und zur Detektion von Coliformen in Lösungen oder auf Oberflächen. Seite 1 (PCA): Plate-Count-Agar (nach APHA, ISO 4833:2003) (X930) zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl.Seite 2 (VRB): Kristallviolett-Galle-Lactose-Agar (X940) zur Detektion von Coliformen.

Zur Detektion von Coliformen in Lösungen oder auf Oberflächen. Beide Seiten (VRB): Kristallviolett-Galle-Lactose-Agar (X940) zur Detektion von Coliformen.

Roti®-DipSlide Nutrient-TTC

2837.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide PCA

2927.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide CASO-TTC/RBCenr

3934.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide PCA/RBCplus

2926.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide Sab4plus

2956.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide CLED/MacCon

2957.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide PCA/VRBD

2924.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide VRBD

2954.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide PCA/VRB

2925.1 20 Stück Box €

Roti®-DipSlide VRB

2955.1 20 Stück Box €

Hinweise zum KühltransportDie so gekennzeichneten, besonders temperaturempfindlichen Produkte werden in speziellen Kühlboxen auf Kühlakkus oder in Trockeneis verschickt. Hierdurch entstehende Mehrkosten werden zusätzlich in Rechnung gestellt (Deutschland: 10,65 Euro, Österreich: 21,30 Euro).

Bitte beachten:Um eine optimale Produktqualität zu gewährleisten, erfolgt der Versand von Kühltransportprodukten innerhalb Deutschlands nur von Mo. bis Mi. und außerhalb Deutschlands nur Mo. und Di.!Dadurch kann es zu geringen Lieferverzögerungen kommen.

Fertignährmedien

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Fertignährmedien

TC SL YM EC CF ETB

Produkt Zum Nachweis von ... Zertifikate Best.-Nr. VE €

Compact Dry TC Gesamtkeimen AOAC, MicroVal, NordVal4816.1 40 Stück4816.2 240 Stück

Compact Dry SL Salmonellen -4817.1 40 Stück4817.2 240 Stück

Compact Dry YM Hefen/Schimmelpilzen AOAC, MicroVal, NordVal4818.1 40 Stück4818.2 240 Stück

Compact Dry EC Coliformen/E. coli AOAC, MicroVal, NordVal4826.1 40 Stück4826.2 240 Stück

Compact Dry CF Coliformen AOAC, MicroVal, NordVal4827.1 40 Stück4827.2 240 Stück

Compact Dry ETB Enterobakterien MicroVal, NordVal4828.1 40 Stück4828.2 240 Stück

Compact Dry Platten sind leicht und sicher zu handhaben. Durch die Lagerung bei Raumtemperatur können Sie auch vor Ort eingesetzt werden. Ein Milliliter der zu untersuchenden Probe wird auf die sterile Platte aufgebracht und verteilt sich selbst gleichmäßig über die Fläche, während das Nährmedium rehydriert. Feste Proben werden vor dem Auftragen homogenisiert und im Compact Dry Verdünnungs-Set in Lösung gebracht. Wachstumsfläche 20 cm2. Lagertemp. 20 °C.

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COMPACT DRYVon NISSUI

System aus Abstrichtupfer und Nährmedium zur mikrobiologischen Probennahme von Oberflächen. Lagertemp. 20 °CSteriles Komplett-System zur Probennahme im mikrobiologischen Arbeitsbereich. Geeignet für die Lebens- und Futtermittelanalyse, im pharmazeutisch und medizinischen Bereich, sowie bei der Hygienekontrolle und zum Kontaminationsausschluss.Compact Dry Tupfer von NISSUI sind äußerst einfach zu bedienen und können auch von Laien gut angewendet werden.

Compact Dry Tupfer sind besonders geeignet zur Probennahme an schwer zugänglichen Stellen oder bei Untersuchungen vor Ort.

Zur Erstellung von Verdünnungsreihen mikrobiologischer Proben. Lagertemp. 20 °CSterile Pufferlösung in Racks zum einfachen Erstellen von Verdünnungsreihen für mikrobiologische Ansätze.

Jedes Rack besteht aus 4 Kammern mit je 9 ml phosphatgepufferter Salzlösung, so dass durch Transferieren von je 1 ml sehr einfach 10fach Verdünnungsreihen erstellt werden können. 128 Kammern in 32 Racks zu je 4 abtrennbaren Kammern.

Compact Dry Tupfer

4809.1 40 Stück Box €

4809.2 240 Stück Box €

Compact Dry Verdünnungs-Set

4823.1 128 Kammern Box €

Compact Dry ÖffnerVon NISSUI. Metallstift zum einfachen Durchstoßen der Aluminiumfolie der Compact Dry Verdünnungs-Sets. 4825.1 1 Stück €

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Hygienekontrolle

Rotitest®-Listeria

Rotitest®-Coliform

• Leicht und sicher zu handhaben - auch für Laien• Einfache Auswertung durch Farbverschiebung• Lagerung und Transport bei Raumtemperatur• Geeignet für die Hygieneüberwachung und Kontaminationskontrolle in allen Bereichen, für Ausbildung und Praktikum

Rotitest® Bio Analysis Protein-Detektionssystem zur schnellen Kontrolle von Oberflächen nach der Reinigung. Proteinschnelltest Lagertemp. +20 °Cl Achtung H226

Schnelles und einfaches Testsystem zum Nachweis von Proteinverun-reinigungen auf Oberflächen. Optimal geeignet zur Hygienekontrolle und Kontrolle der Reinigungseffizienz bei Tischen, Ladentheken, Klinken etc.Der Rotitest® Protein ist sehr einfach anzuwenden: mit dem integrierten Wat-testäbchen wird die Oberfläche abgestrichen, durch Pressen des Deckels wird die Detektionslösung automatisch auf das Wattestäbchen getropft. Ein deutlicher Farbumschlag von gelb-orange nach dunkelgrün-blau ermöglicht eine klare und eindeutige Auswertung innerhalb von maximal 2 Minuten.Eine einfach zu befolgende Gebrauchsanweisung liegt bei.

Abbildung:Farbumschlag nach dunkelgrün-blau durch Anwesenheit von Proteinen.

Rotitest® Bio Analysis Detektionssystem zum Ausschluss oder zur Bestätigung einer Kontamination durch Coliforme. Lagertemp. +20 °C

Einfaches Testsystem zum Nachweis bzw. Ausschluss von Colifor-menkontaminationen auf Oberflächen. Optimal geeignet zu Hygiene-kontrolle und zur Minimierung des Kontaminationsrisikos durch Coliforme im Allgemeinen, speziell E. coli. Der Rotitest® Coliform ist sehr einfach anzuwenden: mit dem integrierten Wattestäbchen wird die Oberfläche abgestrichen und das Wattestäbchen dann in das sterile Nährmedium eingedrückt. Nach einer Inkubationszeit von 18-24 Stunden (37 °C) zeigt eine deutliche Farbveränderung des Mediums von purpur nach gelb die Anwesenheit von Coliformen, und damit die Kontamination der getesteten Oberfläche, an. Eine einfach zu befolgende Gebrauchsanweisung liegt bei.

Rotitest® Bio Analysis Detektionssystem zum Ausschluss oder zur Bestätigung einer Kontamination durch Listerien. Lagertemp. +20 °C

Einfaches Testsystem zum Nachweis bzw. Ausschluss von Listerien-kontaminationen auf Oberflächen. Optimal geeignet zu Kontrolle und Minimierung des Kontaminationsrisikos durch Listeria ssp., speziell L. monocytogenes. Der Rotitest® Listeria ist sehr einfach anzuwenden: mit dem integrierten Wattestäbchen wird die Oberfläche abgestrichen und das Wattestäbchen dann in das sterile Nährmedium eingedrückt. Nach einer Inkubationszeit von 24-48 Stunden (37 °C) zeigt eine deutliche Schwärzfärbung die Anwesenheit von Listerien, und damit die Kontamination der getesteten Oberfläche, an.

Eine einfach zu befolgende Gebrauchsanweisung liegt bei.

Rotitest®-Protein

4803.1 20 Stück €

Bitte beachten Sie:Die Rotitest®-Systeme ermöglichen keine quantitative Aussage über die Stärke der Kontamination.

Rotitest®-Coliform

4806.1 25 Stück €

Rotitest®-Listeria

4805.1 25 Stück €

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Nährmedien für die Molekularbiologie

LB-Medium nach Luria/Miller: Trypton (10 g/l), Hefeextrakt (5 g/l), NaCI (10 g/l)

LB-Medium nach Lennox: Trypton (10 g/l), Hefeextrakt (5 g/l), NaCI (5 g/l)

Das Medium dient der Vermehrung von E. coli. Aufgrund des hohen Salzgehalts ist die klassische Formulierung nach Luria und Bertani besonders geeignet, wenn Plasmidpräparationen durchgeführt werden sollen.Verwendungshinweis: 25 g auf 1 l Medium ansetzen.

Verwendungshinweis: 40 g auf 1 l Agar ansetzen.

Standard-Medium zur Anzucht und Vermehrung von E. coli. Die Salzmenge ist zur Gewinnung von Plasmiden geeignet, erlaubt aber auch die Zugabe von Magnesiumchlorid bei Phagenamplifikationen.Verwendungshinweis: 20 g auf 1 l Medium ansetzen.

Verwendungshinweis: 35 g auf 1 l Agar ansetzen.

TB-Medium ist ein reichhaltiges Medium zur Anzucht und Vermehrung von E. coli. Terrific Broth erlaubt im Vergleich zu LB-Medium eine höhere Zelldichte. Es ist besonders geeignet, um die Ausbeute bei Plasmid- und Proteinpräparationen zu erhöhen.Verwendungshinweis: 50,8 g auf 1 l Medium ansetzen. Vor Autoklavieren Zusatz von 4 ml Glycerin pro Liter Medium.

Reichhaltiges Medium zur Proliferation und Anzucht von E. coli. Terrific Broth bildet eine gute Basis für eine hohe Zelldichte und wird empfohlen für die Kultivierung von Bakterien zur Plasmidiso-lation oder in vitro Proteinexpression. Bei der Formulierung des modifizierten Terrific Broth wurde der Phosphatgehalt reduziert, um ein Ausfallen unlöslicher Salze während des Autoklavierens zu verhindern. Verwendungshinweis: 47,6 g auf 1 l Medium ansetzen. Vor Autoklavieren Zusatz von 4 ml Glycerin pro Liter Medium.

Reichhaltiges Medium zur Vermehrung von E. coli, v. a. zur Proliferation kompetenter Zellen nach der Transformation.Kann mit 20 mM Glucose zu SOC-Medium erweitert werden.Verwendungshinweis: 26,64 g auf 1 l Medium ansetzen.

Für die Blau/Weiß-Selektion

≥99 %, dioxanfrei, animal free Isopropyl-β-D-thiogalactopyranosid

≥99 %, für die Biochemie 5-Brom-4-chlor-3-indoxyl-β-D-Galactosid

LB-Medium (Luria/Miller)

X968.1 500 g Kunst. €

X968.2 1 kg Kunst. €

X968.3 2,5 kg Kunst. €

X968.4 5 kg Kunst. €

LB-Agar (Luria/Miller)

X969.1 500 g Kunst. €

X969.2 1 kg Kunst. €

X969.3 2,5 kg Kunst. €

LB-Medium (Lennox)

X964.1 500 g Kunst. €

X964.2 1 kg Kunst. €

X964.3 2,5 kg Kunst. €

X964.4 5 kg Kunst. €

LB-Agar (Lennox)

X965.1 500 g Kunst. €

X965.2 1 kg Kunst. €

X965.3 2,5 kg Kunst. €

LB-MediumLB-Medium ist ein Standard-Medium zur Anzucht und Vermehrung von E.coli. Die Medienserie LB (Luria und Bertani) umfasst verschiedene Rezepturen, die sich hauptsächlich im Salzgehalt unterscheiden: Luria, Luria-Bertani, LennoxL, LennoxLB, Luria/Miller. Zur Herstellung von Plasmiden eignen sich am besten Medien mit mittlerem bis hohem Salzgehalt (5-10 g/l).

Terrific-Broth-Medium

X972.1 500 g Kunst. €

X972.2 1 kg Kunst. €

X972.3 2,5 kg Kunst. €

Terrific-Broth modifiziert

HP61.1 500 g Kunst. €

HP61.2 1 kg Kunst. €

Terrific BrothBeim Terrific Broth handelt es sich um ein phosphatgepuffertes, sehr reichhaltiges Medium, das vor allem zur Proliferation vor Plasmidisolierung verwendet wird, um die Ausbeute zu erhöhen. Die zum LB-Medium fast 5fach erhöhte Hefeextraktkonzentration stellt die benötigte große Menge Wachstumsfaktoren, Vitamine und Nukleotide bereit; der Phosphatpuffer hält den pH-Wert konstant. Bakterien proliferieren somit zu einer hohen Dichte und lysieren langsamer. Der hohe Phosphatgehalt kann zum Ausfallen von unlöslichen Magnesium- und Calciumphosphaten führen. Nach Autoklavieren können Antibiotika, Glycerin, Glucose etc. zugegeben werden, um das Medium weiter anzureichern.

SOB-Medium

AE27.1 500 g Kunst. €

SOB-MediumDas Super Optimal Broth (SOB) ist ein komplexes, reichhaltiges Nährmedium, das vor bzw. nach der Transformation von E. coli Bakterien Verwendung findet. Durch Zugabe von 20 mM Glucose wird es zu SOC-Medium angereichert (Super Optimal Broth mit Catabolit-Unterdrückung), das eingesetzt wird, um frisch transformierte Bakterien aufzupäppeln. SOC steigert hierdurch die Transformationseffizienz. Um Karamellisierung zu vermeiden darf die Glucose erst nach dem Autoklavieren zugesetzt werden. Nach D. Hanahan (1983) J. Mol. Biol. 166/4:557-580

IPTG

2316.1 250 mg Glas €

2316.2 1 g Glas €

2316.3 5 g Glas €

2316.4 25 g Kunst. €

2316.5 100 g Kunst. €

X-β-Gal

2315.1 100 mg Glas €

2315.2 500 mg Glas €

2315.3 1 g Glas €

2315.4 5 g Glas €

BIGBIGPACKPACKBIGPACK

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Gentechnik-Qualität

for genetic engeneering

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Nährmedien für die Molekularbiologie

Alle molekularbiologischen Trockenmedien entsprechen in der Formulierung den Angaben in Sambrook und Russell, Cold Spring HarbourLaboratory Press, Cold Spring Harbour, New York, 2001.

Für Lambda-Phagen

Spezielle Rezeptur zur Vermehrung von Lambda-Phagen.Verwendungshinweis: 21 g auf 1 l Medium ansetzen.

Besonders reichhaltige Rezeptur zur Vermehrung von Lambda-Phagen.Verwendungshinweis: 22 g auf 1 l Medium ansetzen.

Für M13-Phagen und Bakterien

Reichhaltiges Medium zur Anzucht und Vermehrung von E. coli. 2xYT-Medium wurde optimiert, um M13 Phagen und andere filamentöse ssDNA-Bakteriophagen zu vermehren.Verwendungshinweis: 31 g auf 1 l Medium ansetzen.

Verwendungshinweis: 46 g auf 1 l Agar ansetzen.

Für Hefen

Zur Anzucht und Vermehrung von S. cerevisiae.Verwendungshinweis: 50 g auf 1 l Medium ansetzen.

Verwendungshinweis: 70 g auf 1 l Agar ansetzen.

Zur Klassifizierung von Hefen auf Basis der benötigten Aminosäuren und Carbohydrate. Verwendungshinweis: 10x Stocklösung: 6,7 g auf 100 ml Medium ansetzen. Gewünschten Zucker/Aminosäure zugeben. Nicht kochen und nicht überhitzen! Steril filtrieren!

Für die Selektion rekombinanter Klone

≥99 %, β-Lactam Antibiotikum, halbsynthetisches Penicillin. D-α-Aminobenzylpenicillin Natriumsalz n Gefahr H334-H317 Hemmt die Zellwandbiosynthese in wachsenden Bakterien.Stammlösung: 50 mg/ml in H2O. Achtung: Gelöstes Ampicillin verliert nach 7 Tagen bei 4 °C ca. 65 % der Aktivität.

≥750 I.U./mg, Bakteriostatisches Antibiotikum Kanamycin n Gefahr H360D Kanamycin hemmt die Proteinbiosynthese und ist gegen gram-negative und -positive Bakterien wirksam. Gut wasserlösliches, stabiles Pulver. Hauptkomponente: Kanamycin A

≥95 %, Bakteriostatisches Antibiotikum Achromycin-Hydrochlorid n g Achtung H361-H319 Wirksam gegen gram-positive und -negative Bakterien. Inhibiert die bakterielle Proteinbio-synthese durch Bindung an die Aminoacyl-tRNA.Moderne Anwendung: Genexpressions-Aktivierung oder -Inhibition an Tetracyclin-kontrollierten Promotorsystemen in vitro und in vivo.Lichtempfindlich.

NZYM-Medium

X973.1 500 g Kunst. €

NZCYM-Medium

X974.1 500 g Kunst. €

NZYM- und NZCYM-MedienDiese Medien wurden speziell zur Vermehrung von Lambda-Phagen entwickelt. Um eine optimale Bindung der Lambda-Phagen an Zellen zu ermöglichen, muss dem Medium Maltose zugesetzt werden (0,2 %). Dies induziert die Expression des Lambda-Rezeptors LamB in den Wirtszellen.Maltose sollte nicht zugesetzt werden, wenn Phagenstocks hergestellt werden, da die verstärkte Expression des Lambda-Rezeptors zum Binden der Phagen an Membranfragmente führt.

2xYT-Medium

X966.1 500 g Kunst. €

X966.2 1 kg Kunst. €

X966.3 2,5 kg Kunst. €

2xYT-Agar

X967.1 500 g Kunst. €

YPD-Medium

X970.1 500 g Kunst. €

YPD-Agar

X971.1 500 g Kunst. €

YPD-MediumYPD ist ein reichhaltiges Medium zur Anzucht und Vermehrung von S. cerevisiae. Es ist ein ideales Medium, wenn keine Selektion auf Auxotrophien für bestimmte Aminosäuren durchgeführt werden soll.YPD enthält Glucose als Kohlenstoffquelle.Die Verdopplungszeit beträgt für Wildtypstämme in YPD etwa 90 min.

Hefe-Stickstoff-Basismedium (ohne Aminosäuren)

HP26.1 500 g Kunst. €

Das Hefe-Stickstoff-Basismedium (ohne Aminosäuren) enthält Ammoniumsulfat und alle Vitamine und anorganischen Salze, die für die Kultivierung von Hefezellen notwendig sind, außer Aminosäuren und einer Carbohydratquelle. Durch die gezielte Zugabe von Zuckern und Aminosäuren wird die Fähigkeit der Hefezellen zur Zuckeraufnahme und die Abhängigkeit von speziellen Aminosäuren getestet und hierdurch eine Klassifizierung ermöglicht.

Ampicillin Natriumsalz

K029.1 10 g Kunst. €

K029.2 100 g Kunst. €

K029.3 250 g Kunst. €

Kanamycinsulfat

T832.1 5 g Kunst. €

T832.2 25 g Glas €

T832.3 50 g Kunst. €

T832.4 100 g Kunst. €

Tetracyclin-Hydrochlorid

0237.1 25 g Glas €

0237.2 50 g Glas €

0237.3 100 g Glas €

Viele weitere Antibiotika im aktuellen Katalog und online unter www.carlroth.de / www.carlroth.at!

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für die MikrobiologieSelektivmedium zur Isolierung und schnellen Identifizierung von klinisch relevanten Candida-Arten.Lagertemp. +4°Cn Gefahr H340-H350

Farbdarstellung der Spezies: ➀ Candida albicans türkis-grün➁ Candida krusei purpur-pink➂ Candida tropicalis blauCandida parasilosis und C. glabrata hell-purpur bis weißlichVerwendungshinweis: 45,9 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die MikrobiologieZur selektiven Anreicherung und gemeinsamen Detektion von E. coli und anderen Coliformen in Wasser- und Lebensmittelproben.Lagertemp. +4°C

Farbdarstellung der Spezies:E. coli blau (durch Reaktion der ß-D-Glucuronidase) andere Coliforme lachsfarben (durch Reaktion der ß-D-Galactosidase). Verwendungshinweis: 26,4 g auf 1 l Agar ansetzen.

ISO 22964:2006, für die MikrobiologieSelektivmedium zur Detektion von Cronobacter (früher Enterobacter sakazakii) in Milchpulver und Kinder-Trockenmilchpulver.Lagertemp. +4°CFarbdarstellung der Spezies: Cronobacter (Enterobacter sakazakii) grün bis türkis (durch Reaktion der α-D-Glucosidase)E. coli transparent bis rot/violettStaphylococcus inhibiertVerwendungshinweis: 30,7 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die MikrobiologieAnreicherungsmedium zur gleichzeitigen, einfachen Detektion von Coliformen und E. coli in Wassern, Lebensmitteln und Milchprodukten.Lagertemp. +4°C

A) Farbdarstellung der Spezies: E. coli grünlich-blau (1,2), schwarz-rot nach Indolreaktion (3)Enterobacter, Klebsiella, Citrobacter grünlich-blau (1,2)Shigella, Salmonella kein Farbwechsel (4,5)B) Fluoreszenznachweis (365 nm): E. coli Fluoreszenz-positiv (1,3)Enterobacter, Klebsiella, Citrobacter, Shigella, Salmonella keine Fluoreszenz (2,4)Verwendungshinweis: 17 g auf 1 l Medium ansetzen.

ISO 11290:2004, für die MikrobiologieSelektivmedium zur Detektion und Zählung von Listeria monocytogenes.Lagertemp. +4°Cg Achtung H315-H319

Farbdarstellung der Spezies:A: Listeria monocytogenes cyan-blau bis türkis (durch Reaktion der β-D-Glucosidase) mit HofB: Listeria innocua grün bis helles grün-blauEnterococcus und E. coli inhibiertVerwendungshinweis: 70,55 g auf 1 l Agar ansetzen. Nach dem Abkühlen 2 Röhrchen (10 ml) rekonstituierten Listeria Chromo-Selektiv-Zusatz (2947.1) und 2 Röhrchen (10 ml) rekonstituierten Listeria Chromo-Lipase C-Zusatz (2948.1) zugeben.

Candida chromogener Agar

2922.2 100 g Kunst. €

2922.1 500 g Kunst. €

Coliforme chromogener Agar

CL45.2 100 g Kunst. €

CL45.1 525 g Kunst. €

Cronobacter chromogener Agar

2997.1 100 g Kunst. €

Coli Fluoro-Medium

2923.2 100 g Kunst. €

2923.1 500 g Kunst. €

Listeria chromogener Agar (Basis)

3008.1 100 g Kunst. €

Candida Coliforme ListeriaCronobacter

Chromogene Nährmedien

Mechanismus

1.) Spaltung der in der Agarmischung enthaltenen chromo-genen Substrate durch bakterienspezifische Enzyme gezielte Färbung der Kolonien

2.) Gleichzeitig: Inhibition der Begleitflora durch entsprechende Zusätze (z.B. Antibiotika) spezifische Darstellung der Zielorganismen

Nährmedienzusätze siehe S. 20!

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m-EI MRSA TBX Salmonella

Chromogene Nährmedien

für die MikrobiologieZur Detektion und Zählung von Enterococcus in Wasser durch Einschritt-Membranfiltration.Lagertemp. +4°Cg Achtung H302

Farbdarstellung der Spezies: Enterococcus blau (durch Reaktion der β-D-Glucosidase) E. coli inhibiertVerwendungshinweis: 71,95 g auf 1 l Agar ansetzen. Nach dem Autoklavieren 0,24 g in Wasser gelöste Nalidixinsäure (CN32.1) zugeben.

für die MikrobiologieZur Detektion von methicillinresistenten Staphylokokken in klinischen Proben.Lagertemp. +4°C

Farbdarstellung der Spezies:Staphylococcus aureus ATCC 43300 blau (durch Reaktion der α-D-Glucosidase) Staphylococcus aureus ATCC 25923 und E. coli inhibiertVerwendungshinweis: 103,4 g auf 1 l Agar ansetzen. Nicht überhitzen! Nach dem Abkühlen 2 Röhrchen (10 ml) rekonstituierten MRSA-Cefoxitin-Zusatz (2975.1) zugeben.

für die Mikrobiologie Zur Detektion und Isolation von Pseudomonas. Lagertemp. +4 °C

Farbdarstellung der Spezies:Pseudomonas aeruginosa magenta auf grün-blauem MediumE.coli, Enterococcus, Salmonella und Staphylococcus inhibiert oder farblosVerwendungshinweis: 37 g auf 1 l Agar ansetzten. Nicht überhitzen!

ISO 16649-2:2000, für die MikrobiologieSelektivagar zur Detektion und Zählung von E. coli in Lebensmittelproben.Lagertemp. +4°CFarbdarstellung der Spezies: E. coli türkis (durch Reaktion der ß-D-Glucuronidase)andere Enterobakteriaceen (Salmonella, Streptococcus, Klebsiella) klar oder inhibiertVerwendungshinweis: 36,6 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die MikrobiologieZur Isolierung von Salmonella aus klinischen Proben, Lebensmitteln und Wasser.Lagertemp. +4°CFarbdarstellung der Spezies: Salmonella magenta (durch Reaktion der ß-D-Galactosidase)E. coli türkis (durch Reaktion der ß-D-Glucuronidase) andere Enterobakteriaceen klar oder inhibiert.Verwendungshinweis: 37,1 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die MikrobiologieZur Detektion und Differenzierung von Harnwegsinfektion-verursachenden Mikroorganismen.Harnwegsinfektions-Chromo-AgarLagertemp. +4°C

Farbdarstellung der Spezies: E. coli pink (durch Reaktion der β-D-Galactosidase)Enterobacter, Klebsiella dunkelblau bis violett (durch Reaktion der β-D-Galactosidase und β-D-Glucosidase)Proteus hellbraun (durch Reaktion der Tryptophandeaminase)Enterococcus hell- bis mittelblau (durch Reaktion der β-D-Glucosidase)Staphylococcus hellbeige (natürliche Koloniefarbe)Verwendungshinweis: 47,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

m-EI chromogener Agar (Basis)

3014.1 100 g Kunst. €

MRSA chromogener Agar (Basis)

3026.1 100 g Kunst. €

Pseudomonas chromogener Agar

3075.1 100 g Kunst. €

TBX chromogener Agar

CL47.2 100 g Kunst. €

CL47.1 500 g Kunst. €

Salmonella chromogener Agar

CL46.2 100 g Kunst. €

CL46.1 575 g Kunst. €

UTI chromogener Agar

3089.1 100 g Kunst. €

E. faecalisATCC 19433

E. aerogenesATCC 13048K. pneumoniaeATCC 13883

S. aureusATCC 25923

E. coliATCC 25922

P. mirabilisATCC 13315

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Mikrobiologische Trockennährmedien

• Standardisierte Mischungen • Einfachste Anwendung• Entsprechen höchsten Reinheits-

und Qualitätsanforderungen• Zur Lebensmittel- und Wasseranalyse,

für pharmazeutische und klinische Tests

DEV, EN ISO 12780:2002, für die Mikrobiologie Zur Bestätigung der Anwesenheit von Pseudomonas aeruginosa in Wasserproben. n Achtung H351 Verwendungshinweis: 3,4 g auf 900 ml Medium ansetzen. Frisch angesetzte Lösung B aus Nat-riummolybdat (Best.-Nr. 0274.1) und Eisensulfat (Best.-Nr. P015.1) zusetzen und auf 1 l auffüllen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Standardagarmedium zum Nachweis und zur Untersuchung der Wirkung von Antibiotika. Verwendungshinweis: 30,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Agarmedium zum Nachweis und zur Untersuchung der Wirkung von Antibiotika.

Abbildung: Antibiotika-Hemmhöfe (Monensin, Salinomycin) und Leerkontrollen.Links: herkömmliche MedienmischungRechts: Roth-Antibiotikamedium Nr. 23Mit freundlicher Genehmigung von Dr. Wagner, LTZ-Augustenberg, Karlsruhe

Verwendungshinweis: 27,1 g auf 1 l Agar ansetzen. Direkt vor dem Gießen 14,3 g Ammo-niumchlorid in 10 ml sterilem Wasser zugeben.

für die Mikrobiologie Zur Anreicherung und Detektion von Enterokokken. g Achtung H302-H412 Verwendungshinweis: 35 g (1x) oder 70 g (2x) auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Für die Isolierung und Bestimmung der Anzahl von Staphylokokken. Agarmedium O (Ph.Eur. 6.0)

Abbildung: A: Staphylococcus aureus B: Die Ausschnittvergrößerung aus A zeigt die klare Zone um die Kolonien (Lecithinase-Verdau).Verwendungshinweis: 63 g auf 1 l Agar ansetzen. Eigelb-Tellurit-Emulsion (Best.-Nr. 2978.1) ad 5 % Endkonzentration zusetzen.

für die Mikrobiologie Standard-Selektivagar zur Zählung von Hefen und Lebensmittelschimmelpilzen. n Gefahr H340-H350 Der Zusatz von Chloramphenicol hemmt das Bakterienwachstum. Das Bengalrot beschränkt die Größe und Ausbreitung von Schimmelpilzkolo-nien, sodass langsamer wachsende Arten nicht von schnell wachsenden überwuchert werden.

Abbildung: Aspergillus nigerVerwendungshinweis: 31,6 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Zur Isolierung, Kultivierung und zum Nachweis von hämolytischen Reaktionen anspruchsvoller Mikroorganismen.

Abbildung: A: Streptococcus pyogenesB: Die Ausschnittvergrößerung aus A zeigt die β-Hämolyse durch S. pyogenesVerwendungshinweis: 40 g auf 1 l Agar ansetzen, bei Bedarf 50-110 ml defibr. Blut zusetzen.

DIN 10172, für die Mikrobiologie Zur selektiven Anreicherung und Zählung von Colibakterien in Milch, Wasser, Stuhlproben und anderem Material.

Abbildung: Escherichia coli (Trübung und Gasbildung (Pfeil)) Enterobacter aerogenes (Trübung) Uninokuliertes Medium

Verwendungshinweis: 40 g auf 1 l Medium ansetzen.

Acetamid-Nährlösung (Lösung A)

CP61.1 500 g Kunst. €

Antibiotikamedium Nr. 1

CL53.1 500 g Kunst. €

Antibiotikamedium Nr. 23

CL54.1 500 g Kunst. €

Azid-Glucose-Bouillon

CL79.1 500 g Kunst. €

Baird-Parker-Agar (Basis)

X913.1 500 g Kunst. €

Bengalrot-Agar (mit Chloramphenicol) (RBC)

AE24.1 500 g Kunst. €

Blutagar (Basis)

X914.1 500 g Kunst. €

Brillantgrün-Galle-Medium

CL06.1 500 g Kunst. €

Eine Sortierung unserer Trockennährmedien nach nachzuweisenden Organismen finden Sie in unserem speziellen Themenflyer "Mikrobiologie" oder in unserer Technischen Informationsbroschüre "Trockennährmedien" im Internet unter www.carlroth.de / www.carlroth.at

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Bengalrot (RBC) CLEDDesoxycholat-CitratCetrimid

Mikrobiologische Trockennährmedien

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur selektiven Anreicherung von Salmonellen in Lebensmitteln und Kot. Flüssiges Medium I (Ph.Eur. 6.0) Verwendungshinweis: 63 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur hochselektiven Isolation von Salmonellen aus pathologischen Proben und Lebensmitteln. Agarmedium L (Ph.Eur. 6.0) Verwendungshinweis: 58,1 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Zur Kultivierung von Brucella und anderen anspruchsvollen Mikroorganismen in klinischen und anderen Proben. Verwendungshinweis: 28,1 g auf 1 l Medium ansetzen.

Zur Kultivierung von Brucella und anderen anspruchsvollen Mikroorganismen in Lebensmitteln, klinischen und anderen Proben. Kann durch Zugabe von Nystatin, Bacitracin, Poly-myxin B, Cycloheximid, Vancomycin und Nali-dixinsäure zum Selektivmedium erweitert werden.Verwendungshinweis: 43,1 g auf 1 l Agar anset-zen, 50 ml defibr. Schafsblut zusetzen.

Zur Isolierung von Campylobacter jejuni, Campylobacter coli und Campylobacter laridis in Lebensmitteln, klinischen und anderen Proben. Campy-Selektiv-Blutfreies-Medium, CCDA Modifizierte Zusammensetzung nach Bolton (Bolton et al., (1984) Clin. Microbiol. 19:169-171), in der Blut durch Kohle, Natriumpyruvat und Eisensulfat ersetzt wird.Verwendungshinweis: 45,5 g auf 1 l Agar ansetzen. Nach dem Abkühlen 2 Röhrchen (2x5 ml) rekonstitu-ierten Campylobacter-Zusatz (4857.1) zugeben.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Für die Kultivierung von anspruchsvollen und anspruchslosen Mikroorganismen. Flüssiges Medium A (Ph.Eur. 6.0), Flüssiges Medium mit Casein- und Sojapepton (Ph.Eur. 6.3 und 7.0), Soja-Pepton-Medium, TSB-Medium, Tryptic Soy Broth Verwendungshinweis: 30 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Isolierung und Kultivierung von anspruchslosen Mikroorganismen. Agarmedium B (Ph.Eur. 6.0), Agarmedium mit Casein- und Sojapepton (Ph.Eur. 6.3 und 7.0), Soja-Pepton-Agar, TSB-Agar, Tryptic Soy Agar Verwendungshinweis: 40 g auf 1 l Agar ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Isolierung und Identifizierung von Pseudomonas aeruginosa. Agarmedium N (Ph.Eur. 6.0), Agarmedium mit Cetrimid (Ph.Eur. 6.3 und 7.0) j H411 Empfohlen nach der Harmonisierten Methode (Ph. Eur. 6.0, 2.6.13.B) für die Proliferation von Pseudomonas aeruginosa. Verwendungshinweis: 45,3 g auf 1 l Agar ansetzen, 10 ml Glycerin zusetzen.

für die Mikrobiologie Zur Kultivierung, Differenzierung und Zählung von allen gram-positiven und gram-negativen Harnwegsbakterien. Inhibierend für das Ausschwärmen von Proteus.Verwendungshinweis: 36 g auf 1 l Agar ansetzen.

Zur Kultivierung, einfachen Farb-Differenzierung und Zählung von allen gram-positiven und gram-negativen Harnwegsbakterien. Inhibierend für das Ausschwärmen von Proteus. Mit Andrade-Indikator.Verwendungshinweis: 36,2 g auf 1 l Agar ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Anreicherung und Zählung von Clostridien und anderen anaeroben Bakterien aus Lebens-mitteln und klinischen Proben. RCM, Medium P (Ph.Eur. 6.0), Anreicherungs-medium für Clostridien (Ph.Eur. 6.3 und 7.0) Verwendungshinweis: 38 g auf 1 l Medium ansetzen.

Zur Anreicherung und Zählung von Clostridien aus Lebensmitteln und anderen Proben. DRCM Verwendungshinweis: 27,5 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Kultivierung von anspruchsvollen und anspruchslosen Mikroorganismen, auch Mykoplasmen. Medium Q (Ph.Eur. 6.0), Columbia Agar (Ph.Eur. 6.3) Verwendungshinweis: 42,5 g auf 1 l Agar anset-zen, bei Bedarf 50-110 ml defibr. Blut zusetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur hochselektiven Isolation von enterischen Pathogenen, speziell Salmonella und Shigella. Agarmedium J (Ph.Eur. 6.0) Verwendungshinweis: 70 g auf 1 l Agar ansetzen.

ISO 21527-1, für die Mikrobiologie Selektivagar zur Zählung von Hefen und Lebensmittelschimmelpilzen, speziell für stark hyphenbildende Pilze. n Gefahr H340-H350 Der Zusatz von Dichloran hemmt speziell die Aus-breitung hyphenbildender Pilze und verbessert so die Zählung. Chloramphenicol und ein niedriger pH-Wert hemmen das Wachstum von Bakterien.Verwendungshinweis: 31,6 g auf 1 l Agar ansetzen.

Brillantgrün-Galle-Thionat-Bouillon

AE42.2 100 g Kunst. €

AE42.1 500 g Kunst. €

Brillantgrün-Lactose-Saccharose-Agar

AE43.1 500 g Kunst. €

Brucella-Bouillon

5754.1 500 g Kunst. €

Brucella-Agar

5752.1 500 g Kunst. €

Campylobacter-Agar, blutfrei (Basis)

5756.1 500 g Kunst. €

CASO-Bouillon

X938.1 500 g Kunst. €

X938.2 1 kg Kunst. €

CASO-Agar

X937.1 500 g Kunst. €

X937.2 1 kg Kunst. €

Cetrimid-Agar (Basis)

X918.1 500 g Kunst. €

CLED-Agar

2835.1 500 g Kunst. €

CLED-Agar plus

2836.1 500 g Kunst. €

Clostridien-Anreicherungsmedium

AE66.1 500 g Kunst. €

Clostridien-Differenzial-Bouillon

CL78.1 500 g Kunst. €

Columbia-Agar (Basis)

X919.1 500 g Kunst. €

X919.2 1 kg Kunst. €

Desoxycholat-Citrat-Agar

AE44.1 500 g Kunst. €

Dichloran-Bengalrot-Agar (mit Chloramphenicol) (DRBC)

AE25.1 500 g Kunst. €

Nährmedienzusätze siehe S. 20!

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DRBC DG18Galle-Esculin-AzidEndo

Mikrobiologische Trockennährmedien

ISO 21527-2, für die Mikrobiologie Selektivagar zur Zählung von Hefen und Lebens-mittelschimmelpilzen, speziell aus halbtrockenen und trockenen Lebensmitteln. n Gefahr H340-H350 Verwendungshinweis: 31,6 g auf 1 l Agar ansetzen. Zugabe von 18 Vol. % Glycerin ist erforderlich.

für die Mikrobiologie Zur Isolierung von enterischen gram-negativen Bakterien, insbesondere Coliformen, aus Wasser, Milchprodukten und Lebensmitteln. Verwendungshinweis: 36 g auf 1 l Agar ansetzen, 5 ml Basisfuchsinlösung zugeben.

ISO 11290-1, für die Mikrobiologie Anreicherungsmedium zur Detektion und Isolierung von Listerien in Lebensmitteln und Umweltproben. Frasermedium mit Esculin sowie reduziertem Gehalt an Acriflavin und Nalidixinsäure. Verwendungshinweis: 57,3 g auf 1 l Medium ansetzen. Leichte Präzipitate können nach dem Autoklavieren auftreten. Vor Verwendung steril filtrierte Ammoniumeisen(III)-Citrat-Lösung ad 0,5 g/l Medium zugeben (Best.-Nr. 3130.1).

ISO 11290-1, für die Mikrobiologie Anreicherungsmedium zur Detektion und Iso-lierung von Listerien in Lebensmitteln und Umweltproben. Volles Frasermedium mit Esculin, Acriflavin und Nalidixinsäure. Verwendungshinweis: 57,3 g auf 1 l Medium ansetzen. Leichte Präzipitate können nach dem Autoklavieren auftreten. Vor Verwendung steril filtrierte Ammoniumeisen(III)-Citrat-Lösung ad 0,5 g/l Medium zugeben (Best.-Nr. 3130.1).

DEV, ISO 7899-2:2000, für die Mikrobiologie Zur Isolierung und Identifikation von intestinalen Enterokokken aus Wasserproben. g Achtung H412-H302 Verwendungshinweis: 56,6 g auf 1 l Medium ansetzen.

DEV, für die Mikrobiologie Zur Zählung der Gesamt-Bakterienpopulation und zur Detektion von Gelatine-verflüssigenden Bakterien in Wasserproben. Verwendungshinweis: 50 g auf 1 l Agar ansetzen.

DEV, EN ISO 6222:1999, für die Mikrobiologie Zur Isolierung und Zählung von Mikroorganismen wie Bakterien, Hefen und Schimmelpilzen aus Wasserproben. Verwendungshinweis: 24 g auf 1 l Medium ansetzen.

für die Mikrobiologie Selektionsmedium zur Zählung von Hefen und Schimmelpilzen in Milch und Milchprodukten. YGC-Agar n Gefahr H340-H350 Verwendungshinweis: 40,2 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Für die Kultivierung von anspruchsvollen Mikroorganismen. Brain Heart Infusion Broth Verwendungshinweis: 37 g auf 1 l Medium ansetzen.

für die Mikrobiologie Für die Kultivierung von anspruchsvollen Mikroorganismen. Brain-Heart-Infusion Agar Verwendungshinweis: 52 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Zur Identifizierung, Kultivierung und Zählung von Hefen und Schimmelpilzen. Verwendungshinweis: 26,5 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Kultivierung und Identifizierung von Hefen und Schimmelpilzen. Agarmedium mit Glucose und Kartoffeln (Ph.Eur. 6.3 und 7.0) Empfohlen nach der Harmonisierten Methode (Ph.Eur. 6.0, 2.6.12.B) für die Vorbereitung der Teststämme von Aspergillus brasiliensis.Verwendungshinweis: 39 g auf 1 l Agar ansetzen.

DEV, EN ISO 12780:2002, für die Mikrobiologie Zur Bestätigung der Anwesenheit von Pseudomonas aeruginosa in Wasserproben. Verwendungshinweis: 38 g auf 990 ml Medium ansetzen. 10 ml Glycerin zugeben.

Zur Differenzierung Gram-negativer Enterobakterien. Zweizucker-Eisen-Agar, KIA Verwendungshinweis: 52 g auf 1 l Agar ansetzen.

Dichloran-Glycerin-Agar (DG18) (Basis)

AE26.1 500 g Kunst. €

Endo-Agar (Basis)

X920.1 500 g Kunst. €

Fraser-Halb-Medium (Basis)

HP18.1 500 g Kunst. €

HP18.2 1 kg Kunst. €

Fraser-Medium (Basis)

HP17.1 500 g Kunst. €

Galle-Esculin-Azid-Agar

CP62.1 500 g Kunst. €

Gelatine-Agar (DEV)

HP07.1 500 g Kunst. €

Hefeextrakt-Agar

CP63.1 500 g Kunst. €

Hefe-Glucose-Agar (mit Chloramphenicol)

CL00.1 500 g Kunst. €

CL00.2 1 kg Kunst. €

Hirn-Herz-Glucose-Bouillon

X916.1 500 g Kunst. €

Hirn-Herz-Glucose-Agar

X915.1 500 g Kunst. €

Kartoffelextrakt-Glucose-Bouillon

CP74.1 500 g Kunst. €

CP74.2 1 kg Kunst. €

Kartoffelextrakt-Glucose-Agar

X931.1 500 g Kunst. €

X931.2 1 kg Kunst. €

King's B Medium (Basis)

CP64.1 500 g Kunst. €

Kligler-Eisen-Agar

5758.1 500 g Kunst. €

Gebrauchsanweisungenfinden Sie im Internet bei der jeweiligen Produktbeschreibung.

Nährmedienzusätze siehe S. 20!

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Kligler-EisenKartoffelextrakt-Glucose VRB

Lactose-Bouillon

Mikrobiologische Trockennährmedien

ISO 21528, Ph.Eur., für die Mikrobiologie Für die Kultivierung und die Bestimmung der Anzahl von Enterobakterien in Wasser, Nahrungsmitteln und anderen Stoffen. Agarmedium violett-rot mit Galle und Glucose (Ph.Eur. 6.3 und 7.0), VRBD-Agar Empfohlen nach der Harmonisierten Methode (Ph.Eur. 6.0, 2.6.13.B) für Proliferation und Identifikation von Escherichia coli und Pseudomo-nas aeruginosa zum Test auf Galle-tolerante Gram-negative Bakterien.Verwendungshinweis: 41,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

ISO 4832, für die Mikrobiologie Für den Nachweis und die Bestimmung der Anzahl von Coliformen in Milch, Nahrungsmitteln und anderen Stoffen. VRB-Agar Verwendungshinweis: 41,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Detektion und Zählung von Enterobakterien. Agarmedium F (Ph.Eur. 6.0) Verwendungshinweis: 51,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zum Nachweis und zur Zählung von coliformen Bakterien und zur Anreicherung von Salmonellen. Flüssiges Medium D (Ph.Eur. 6.0) Verwendungshinweis: 13 g auf 1 l Medium ansetzen.

DEV, für die Mikrobiologie Zur Bestätigung der Anwesenheit von Escherichia coli in Wasserproben durch Lactose-Abbau. Verwendungshinweis: 28 g auf 1 l Medium ansetzen.

DEV, für die Mikrobiologie Zur Anreicherung und Zählung coliformer Bakterien in Wasserproben. Verwendungshinweis: 35 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur selektiven Detektion und Zählung von C. perfringens. Medium R (Ph.Eur. 6.0) Verwendungshinweis: 20,3 g auf 1 l Medium ansetzen. Vor Gebrauch Natriumdisulfitlösung und Ammoniumeisen(lll)citratlösung zugeben (Best.-Nr. 3130.1).

ISO 4831:2006, für die Mikrobiologie Zur Anreicherung und Detektion von coliformen Bakterien in Wasser. Flu-Bouillon Verwendungshinweis: 35,6 g auf 1 l Medium ansetzen.

DEV, EN ISO 9308-1:2000, für die Mikrobiologie Zur Identifizierung und Zählung coliformer Bakterien aus Wasserproben. TTC-Chapman-Agar, Chapman-Lactose-Agar

Abbildung: A: E. coli ATCC 25922 (gelbe Kolonien mit orange-farbenem Zentrum)B: Klebsiella spp. (orange-farbene Kolonien)C: nicht Lactose-fermentierende SpeziesD: uninduzierter AgarVerwendungshinweis: 56,2 g auf 1 l Medium anset-zen. Enthält Tergitol. Nach dem Autoklavieren TTC-Lösung (CP72.1) auf 0,0025 % zugeben.

ISO 11731-2, für die Mikrobiologie Zur selektiven Kultivierung von Legionella. Verwendungshinweis: 2,5 g auf 90 ml Agar ansetzen. Nach dem Autoklavieren Zugabe von 1 Röhrchen (10 ml) rekonstituiertem Legionella Wachstumszusatz (Best.-Nr. CL49.1). Bei Bedarf 1 ml rekonstituierten Legionella GVCP-Zusatz (Best.-Nr. CL50.1) zugeben.

für die Mikrobiologie Zur mikrobiologischen Analyse von Kosmetika und desinfektionsmittel- oder konservierungsmittelhaltigen Proben. Basierend auf der Zusammensetzung aus FDA (Food and Drug Administration, USA), Bacteriolo-gical Analytical Manual (1995), Microbiological Methods for Cosmetics.Verwendungshinweis: 59,1 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Zur mikrobiologischen Analyse von Kosmetika und desinfektionsmittel- oder konservierungsmittelhaltigen Proben. Basierend auf der Zusammensetzung aus FDA (Food and Drug Administration, USA), Bacteriolo-gical Analytical Manual (1995), Microbiological Methods for Cosmetics.Verwendungshinweis: 43,8 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Detektion von coliformen Bakterien in Wasser, Milch und anderen Flüssigkeiten. Flüssiges Medium G (Ph.Eur. 6.0), Flüssiges Medium nach MacConkey (Ph.Eur. 6.3 und 7.0) Verwendungshinweis: 35 g auf 1 l Medium ansetzen.

Kristallviolett-Galle-Glucose-Agar

X939.1 500 g Kunst. €

X939.2 1 kg Kunst. €

Kristallviolett-Galle-Lactose-Agar

X940.1 500 g Kunst. €

Kristallviolett-Galle-Agar mit Glucose und Lactose

AE45.1 500 g Kunst. €

Lactose-Bouillon

X921.1 500 g Kunst. €

Lactose-Bouillon (DEV)

CL76.1 500 g Kunst. €

Lactose-Pepton-Bouillon (DEV)

CL77.1 500 g Kunst. €

Lactose-Sulfit-Medium (Basis)

AE46.1 500 g Kunst. €

Laurylsulfat-Bouillon

CL80.1 500 g Kunst. €

Lactose-TTC-Agar (mit Natriumheptadecylsulfat) (Basis)

CP65.1 500 g Kunst. €

Legionella-Agar (Basis)

CL48.1 500 g Kunst. €

Letheen-Agar modifiziert

5759.1 500 g Kunst. €

Letheen-Bouillon modifiziert

5761.1 500 g Kunst. €

MacConkey-Bouillon

AE47.1 500 g Kunst. €

Kurzprotokoll zum Ansatz

auf jeder Flasche!

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Mannitol-Eigelb-PolymyxinMacConkeyLegionella Mannit-Kochsalz

Mikrobiologische Trockennährmedien

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Für die selektive Isolierung und Identifizierung von Enterobakterien aus Kot, Urin, Abwasser und Lebensmitteln. Agarmedium H (Ph.Eur. 6.0), Agarmedium nach MacConkey (Ph.Eur. 6.3) Verwendungshinweis: 50 g auf 1 l Agar ansetzen.

Zur Isolierung und Zählung von Hefen und Schimmelpilzen, sowie für Sterilitätstests. Verwendungshinweis: 19 g auf 1 l Medium ansetzen.

Zur Kultivierung von Hefen und Pilzen. Verwendungshinweis: 33,6 g auf 1 l Agar ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Isolierung pathogener Staphylokokken. Chapman-Agar, Agarmedium mit Mannitol und Salz (Ph.Eur. 6.3 und 7.0) Verwendungshinweis: 111 g auf 1 l Agar ansetzen. Optional: Eigelb-Emulsion (Best.-Nr. 2977.1) ad 5 % zusetzen.

Zur Zählung und Isolation von Bacillus cereus in Lebensmitteln, nach Mossel. Bacillus cereus-Selektivagar, MYP-Agar Verwendungshinweis: 43 g auf 1 l Agar ansetzen. Nach dem Abkühlen 100 ml Eigelb-Emulsion (2977.1) und 2 Röhrchen (2x5 ml) rekonstituierten Bacillus cereus-Zusatz (4856.1) zugeben.

Zur Isolierung und Zählung heterotroper mariner Bakterien. Verwendungshinweis: 40,1 g auf 1 l Medium ansetzen. Häufig leicht opaleszent. Präzipitate können auftreten.

DIN 10162, LMBG, DIN EN ISO 6887-1 Zur Homogenisierung und Verdünnung mikrobiologischer Proben. Maximum Recovery Lösung Verwendungshinweis: 9,5 g auf 1 l Medium ansetzen.

nach TWVO 2001, für die Mikrobiologie Zur Isolierung und Zählung von Clostridium perfringens. Verwendungshinweis: 71,1 g auf 1 l Agar anset-zen. Nach dem Autoklavieren 2 Röhrchen (4 ml) rekonstituierten Clostridium perfringens Zusatz (CL52.1) und weitere Zusätze zugeben.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur selektiven Anreicherung von Enterobakterien in Nahrungsmitteln, speziell Salmonellen und Coliforme. Anreicherungsmedium E (Ph.Eur. 6.0), Anreicherungsmedium für Enterobakterien nach Mossel (Ph.Eur. 6.3 und 7.0), Mossel-EE Verwendungshinweis: 45 g auf 1 l Medium ansetzen.

Zur Kultivierung von Lactobazillen. Nach deMan, Rogosa und Sharpe. Lagertemp. +4 °CVerwendungshinweis: 52 g auf 1 l Medium ansetzen.

ISO 15214, für die Mikrobiologie Zur Kultivierung von pH-sensitiven Lactobazillen aus Lebens- und Futtermitteln. Nach deMan, Rogosa und Sharpe. Lagertemp. +4 °CMRS-Bouillon mit niedrigem pH-Wert. Zur Kulti-vierung von Lactobazillen-Stämmen, die bei höhe-ren pH-Werten vermindertes Wachstum zeigen oder zur effizienten Proteinexpression vieler Lactobacillus-Proteine. Verwendungshinweis: 54 g auf 1 l Medium ansetzen.

Zur Kultivierung von Lactobazillen. Nach deMan, Rogosa und Sharpe. Lagertemp. +4 °CVerwendungshinweis: 62 g auf 1 l Agar ansetzen.

ISO 15214, für die Mikrobiologie Zur Kultivierung von pH-sensitiven Lactobazillen aus Lebens- und Futtermitteln. Nach deMan, Rogosa und Sharpe. Lagertemp. +4 °CMRS-Agar mit niedrigem pH-Wert. Zur Kulti-vierung von Lactobazillen-Stämmen, die bei höhe-ren pH-Werten vermindertes Wachstum zeigen oder zur effizienten Proteinexpression vieler Lactobacillus-Proteine.Verwendungshinweis: 64 g auf 1 l Agar ansetzen.

Zur Kultivierung von Mikroorganismen und für Antibiotika-Sensitivitätstests. Verwendungshinweis: 21 g auf 1 l Medium ansetzen.

Für Sensitivitätstestung von Mikroorganismen auf Antibiotika und für die primäre Isolierung von Neisseria. Verwendungshinweis: 38 g auf 1 l Agar ansetzen.

MacConkey-Agar

X922.1 500 g Kunst. €

X922.2 1 kg Kunst. €

Malzextrakt-Bouillon

CP75.1 500 g Kunst. €

Malzextrakt-Agar

X923.1 500 g Kunst. €

X923.2 1 kg Kunst. €

Mannit-Kochsalz-Agar

CL81.1 500 g Kunst. €

Mannitol-Eigelb-Polymyxin-Agar (Basis)

5765.1 500 g Kunst. €

Marine-Bouillon

CP73.1 500 g Kunst. €

Maximal-Wiederbelebungslösung

5766.1 500 g Kunst. €

m-CP-Agar

CL55.1 500 g Kunst. €

Mossel-Anreicherungsmedium

AE65.1 500 g Kunst. €

MRS-Bouillon

X925.1 500 g Kunst. €

X925.2 1 kg Kunst. €

MRS-Bouillon pH 5,7

HP64.1 500 g Kunst. €

MRS-Agar

X924.1 500 g Kunst. €

X924.2 1 kg Kunst. €

MRS-Agar pH 5,7

HP65.1 500 g Kunst. €

Mueller-Hinton-Bouillon

X927.1 500 g Kunst. €

Mueller-Hinton-Agar

X926.1 500 g Kunst. €

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Mossel-Anreicherungsmedium Oxford-Listeria

Mikrobiologische Trockennährmedien

Für die allgemeine Kultivierung anspruchsloser Mikroorganismen. Verwendungshinweis: 8 g auf 1 l Medium ansetzen.

EN ISO 6579, ISO 10273, für die Mikrobiologie Zur Kultivierung von anspruchslosen Mikroorganismen. Verwendungshinweis: 23 g auf 1 l Agar ansetzen.

DEV, DIN 38 411, für die Mikrobiologie Zur Bestimmung der Gesamtkeimzahl in Wasser, Stuhlproben und anderem Probenmaterial. Verwendungshinweis: 43 g auf 1 l Agar ansetzen.

DEV, EN ISO 12780:2002, für die Mikrobiologie Zur Bestätigung der Anwesenheit von Pseudomonas aeruginosa in Wasserproben. Verwendungshinweis: 28 g auf 1 l Medium ansetzen.

für die Mikrobiologie Zur Isolierung, Detektion und Zählung von säure-toleranten pathogenen Keimen in Fruchtsäften und Fruchtsaftkonzentrat, v.a. aus Citrusfrüchten. g j Achtung H315-H317-H411 Verwendungshinweis: 40 g auf 1 l Agar ansetzen.

ISO 11290-1, für die Mikrobiologie Selektivmedium zur Detektion von Listeria monocytogenes. Oxford-Agar g Achtung H302-H315-H319 Basierend auf Columbia-Agar (Basis) (X919). Verwendungshinweis: 55,5 g auf 1 l Agar anset-zen. Nach dem Abkühlen 2 Röhrchen (2x2 ml) rekonstituierten Listeria-Oxford-Zusatz (5801.1) zugeben.

ISO 11290-1, für die Mikrobiologie Differentialmedium zur Detektion von Listeria ssp., speziell L. monocytogenes. Palcam-Agar g Achtung H315-H319 Basierend auf Columbia-Agar (Basis) (X919). Verwendungshinweis: 68,8 g auf 1 l Agar anset-zen. Nach dem Abkühlen 2 Röhrchen (2x2 ml) rekonstituierten Listeria-Palcam-Zusatz (5803.1) zugeben.

EN ISO 6887, EN ISO 6579, ISO 22964, für die Mikrobiologie Für die Homogenisierung von Lebensmitteln und zur Probenvorbereitung für mikrobiologische Analysen. Verwendungshinweis: 20 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Verdünnung und Homogenisierung von Proben zur mikrobiologischen Analyse von Nahrungsmitteln.Natrium-Pepton-Pufferlösung (Ph.Eur. 6.0), Natriumchlorid-Pepton-Pufferlösung pH 7,0 (Ph.Eur. 6.3 und 7.0). Verwendungshinweis: 16,1 g auf 1 l Medium ansetzen.

APHA, ISO 4833:2003, für die Mikrobiologie Für die Bestimmung der Anzahl von aeroben Mikroorganismen in Milch, Nahrungsmitteln und anderen Substanzen. Verwendungshinweis: 23,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

APHA, DIN 10192, LMBG, IDF, für die Mikrobiologie Zur Bestimmung der Anzahl von Mikroorganismen aus Milch und Milchprodukten (nach APHA). Verwendungshinweis: 24,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

DEV, EN ISO 12780, EN ISO 16266, für die Mikrobiologie Zur Bestimmung und Zählung von Pseudomonas aeruginosa aus Wasserproben durch die Membranfiltermethode. H412 Verwendungshinweis: 50,6 g auf 990 ml Medium ansetzen. 10 ml Glycerin zugeben.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Zählung heterotropher Bakterien aus Wasserproben. Agarmedium S (Ph.Eur. 6.0), Reasoner’s 2A Agar Nährstoff-reduziertes Agarmedium. Bei der Inkubation von Wasserproben auf R2A Agar wird häufig eine höhere Bakterien-Koloniezahl als bei nährstoffreichen Agarmedien erzielt, vor allem nach Inkubation bei tieferen Temperaturen.Ursprünglich wurde das Medium entwickelt von Reasoner und Geldreich zur Ermittlung der Gesamtkeimzahl in Trinkwasser (Reasoner und Geldreich, 1985, Appl. Environ. Microbiol. 49:1).Verwendungshinweis: 18,1 g auf 1 l Agar ansetzen.

Nährbouillon

X929.1 500 g Kunst. €

X929.2 1 kg Kunst. €

Nähragar

X928.1 500 g Kunst. €

X928.2 1 kg Kunst. €

Nähragar (DEV)

CL02.1 500 g Kunst. €

CL02.2 1 kg Kunst. €

Nähragar (DEV/ISO)

CP66.1 500 g Kunst. €

Orangenserumagar

HP09.1 500 g Kunst. €

Oxford-Listeria-Agar (Basis)

5767.1 500 g Kunst. €

Palcam-Listeria-Agar (Basis)

5768.1 500 g Kunst. €

Peptonwasser, gepuffert

X917.1 500 g Kunst. €

X917.2 1 kg Kunst. €

Peptonwasser, gepuffert

AE67.1 500 g Kunst. €

Plate-Count-Agar

X930.1 500 g Kunst. €

X930.2 1 kg Kunst. €

Plate-Count-Agar mit Magermilch

HP08.1 500 g Kunst. €

Pseudomonas Selektivagar (CN-Agar) (Basis)

CP67.1 500 g Kunst. €

R2A-Agar

CL01.1 500 g Kunst. €

Nährmedienzusätze siehe S. 20!

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Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur selektiven Anreicherung von Salmonellen aus Nahrungsmitteln, Stuhl und Wasserproben. R10 Medium, Anreicherungsmedium für Salmonellen nach Rappaport-Vassiliadis (Ph.Eur. 6.3 und 7.0), RVS-Bouillon Empfohlen nach der Harmonisierten Methode (Ph.Eur. 6.0, 2.6.13.B) für die Proliferation von Salmonellen. Die vorliegende Formulierung ist eine leichte Modifikation des ursprünglich von Rappaport entwickelten Mediums (Rappaport et al., 1956, J. Clin. Pathol. 9: 261-6).Verwendungshinweis: 27,1 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Selektivmedium zur taxonomischen Untersuchung von pathogenen Pilzen. Flüssiges Sabouraud-Glucose-Medium (Ph.Eur. 6.3) Empfohlen nach der Harmonisierten Methode (Ph.Eur. 6.0, 2.6.13.B) für die Proliferation von Candida albicans. Der geringere Glucose-Anteil fördert die Aktivierung des Sekundärstoff-wechsels und damit die Pigmentbildung.Verwendungshinweis: 30 g auf 1 l Medium ansetzen.

für die Mikrobiologie Selektivagar zur taxonomischen Untersuchung von pathogenen Pilzen. Der geringere Glucose-Anteil fördert die Akti-vierung des Sekundärstoffwechsels und damit die Pigmentbildung.Verwendungshinweis: 47 g auf 1 l Agar ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Für die Isolierung, Differenzierung und Erhaltung von Hefe und Pilzen. Agarmedium C (Ph.Eur. 6.0), Sabouraud-Glucose-Agarmedium (Ph.Eur. 6.3 und 7.0) Empfohlen nach der Harmonisierten Methode (Ph.Eur. 6.0, 2.6.13.B) für Proliferation undIdentifikation von Candida albicans.Verwendungshinweis: 65 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Für die selektive Isolierung von Hefen und pathogenen Pilzen. n Gefahr H340-H350 Verwendungshinweis: 65,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Selektivagar zur Kultivierung und Isolation von Hefen und pathogenen Pilzen. Agarmedium C mit Chloramphenicol (Ph.Eur. 6.0) Verwendungshinweis: 65 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Für die Isolierung von pathogenen Enterobakte-rien, speziell Salmonellen und Shigellen. Verwendungshinweis: 60 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Zur Wiederbelebung und Kultivierung von Anaerobiern. Basierend auf CASO-Bouillon / Trypticasein-Soja-Bouillon (X938). Verwendungshinweis: 41,9 g auf 1 l Agar ansetzen.

Zur Anreicherung und Kultivierung von Anaerobiern. g Achtung H315-H319 Basierend auf CASO-Bouillon / Trypticasein Soja Bouillon (X938). Verwendungshinweis: 28,4 g auf 1 l Medium ansetzen.

ISO 10273, für die Mikrobiologie Zur Differenzierung von Mikroorganismen auf Basis der Citratverwertung. Koser-Citrat-Agar (modifiziert) Verwendungshinweis: 24,3 g auf 1 l Agar ansetzen.

DEV, ISO 7899-2:2000, für die Mikrobiologie Zur Isolierung und Zählung von intestinalen Enterokokken aus Wasserproben. g Achtung H302-H412 Verwendungshinweis: 41,5 g auf 1 l Medium ansetzen. Steril filtrieren, nicht autoklavieren.

für die Mikrobiologie Zum Nachweis und zur Bestimmung der Anzahl von fäkalen Streptokokken durch Membran-filtration oder direkte Plattengießmethode. g Achtung H302-H412 Verwendungshinweis: 41,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

Rappaport-Vassiliadis-Bouillon (RVS)

CL03.1 500 g Kunst. €

Sabouraud 2 % Glucose-Bouillon

AE23.1 500 g Kunst. €

Sabouraud 2 % Glucose-Agar

AE22.1 500 g Kunst. €

Sabouraud 4 % Glucose-Agar

X932.1 500 g Kunst. €

X932.2 1 kg Kunst. €

Sabouraud 4 % Glucose-Agar (mit Chloramphenicol)

X933.1 500 g Kunst. €

Sabouraud 4 % Glucose-Agar (mit Chloramphenicol)

AE48.1 500 g Kunst. €

Salmonella-Shigella-Agar

X934.1 500 g Kunst. €

Schaedler-Agar

5771.1 500 g Kunst. €

Schaedler-Bouillon

5772.1 500 g Kunst. €

Simmons-Citrat-Agar

5774.1 500 g Kunst. €

Slanetz-Bartley-Medium (mit Tetrazoliumchlorid)

CP68.1 500 g Kunst. €

Slanetz-Bartley-Agar

X935.1 500 g Kunst. €

Palcam-ListeriaSabouraud 4 % Glucose

Salmonella-Shigella

Mikrobiologische Trockennährmedien

Kurzprotokoll zum Ansatz

auf jeder Flasche!

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Slanetz-Bartley

Mikrobiologische Trockennährmedien

für die Mikrobiologie Selektiv- und Differenzierungsmedium zur Detektion von sorbitolfermentierenden E. coli O157:H7. MacConkey-Agar mit Sorbitol, SMAC-Agar

Abbildung:A: Escherichia coli ATCC 25922B: Escherichia coli O157:H7Verwendungshinweis: 51,5 g auf 1 l Agar ansetzen.

für die Mikrobiologie Zur Bestimmung der Keimzahl aerober Bakterien in Milch, Wasser und Abwasser. Verwendungshinweis: 25 g auf 1 l Agar ansetzen.

Zur Kultivierung und Zählung anspruchsvoller Bakterien. Auch Basis für Spezialmedien. Verwendungshinweis: 25 g auf 1 l Medium ansetzen.

Zur Kultivierung und Zählung anspruchsvoller Bakterien. Auch Basis für Spezialnährböden.

Abbildung:A: Escherichia coliB: Pseudomonas aeruginosaC: Staphylococcus aureusD: Streptococcus agalactiaeMit freundlicher Genehmigung von Nils Niederstebruch, GLOBOLAB e.V., Assling

Verwendungshinweis: 37 g auf 1 l Agar ansetzen.

USP, für die Mikrobiologie Für die Anzucht und Regeneration von Mikroorganismen aus verschiedensten Materialien, u.a. aus Kosmetika und Materialien, die mit antibakteriellen Reagenzien belastet sind. Verwendungshinweis: 25 g auf 1 l Medium anset-zen. Zugabe von 40 ml Tween 20 (Polysorbat) nach dem Autoklavieren.

Zur Kultivierung von β-hämolytischen Streptokokken für serologisches Typing. Verwendungshinweis: 30 g auf 1 l Medium ansetzen.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Identifizierung und Unterscheidung von Enterobakterien und zur Bestätigung von Salmonellen. Agarmedium M (Ph.Eur. 6.0) Verwendungshinweis: 64,6 g auf 1 l Agar ansetzen.

DEV, EN ISO 9308-1:2000 Zur Detektion und Zählung von E. coli in Lebensmitteln und Wasserproben. Verwendungshinweis: 36,5 g auf 1 l Medium ansetzen.

DEV, EN ISO 9308-1:2000 Zur Detektion und Zählung von E. coli und anderen coliformen Bakterien in Lebensmitteln und Wasserproben. Verwendungshinweis: 40 g auf 1 l Medium ansetzen.

Sorbitol-MacConkey-Agar

5778.1 500 g Kunst. €

Standard-Keimzahlagar

AE91.1 500 g Kunst. €

Standard-Nährmedium I

AE92.1 500 g Kunst. €

AE92.2 1 kg Kunst. €

Standard-Nähragar I

AE93.1 500 g Kunst. €

AE93.2 1 kg Kunst. €

TAT-Bouillon (Basis)

3935.1 500 g Kunst. €

3935.2 1 kg Kunst. €

Bitte beachten Sie auch unsere Technische Informationsbroschüre im Internet (Life Science-Hauptseite):

TrockennährmedienSortierung der Roth Trockennährmedien und -Agars nach Anwendung

Todd-Hewitt-Bouillon

X936.1 500 g Kunst. €

Tripel-Zucker-Eisen-Agar

AE49.1 500 g Kunst. €

Trypton-Galle-Agar (TBA)

CP69.1 500 g Kunst. €

Trypton-Soja-Agar (TSA)

CP70.1 500 g Kunst. €

Nährmedienzusätze siehe S. 20!

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Mikrobiologische Trockennährmedien

Yersinia-Selektiv XLD

DEV, EN ISO 9308-1:2000 Zur Detektion von E. coli in Lebensmitteln und Wasserproben durch Indolproduktion. Verwendungshinweis: 16 g auf 1 l Medium ansetzen.

DEV, EN ISO 7937:2004, für die Mikrobiologie Zur Detektion und Zählung von Clostridium perfringens in Lebensmitteln und Tierfutter. Verwendungshinweis: 42 g auf 1 l Medium anset-zen. Nach dem Autoklavieren 2 Röhrchen (4 ml) rekonstituierten Clostridium perfringens Zusatz (CL52.1) zugeben. 50 ml Eigelb-Emulsion (Best.-Nr. 2977.1) zugeben.

Zur Kultivierung und Zählung von Pilzen, speziell von Hefe. Verwendungshinweis: 33 g auf 1 l Medium ansetzen.

für die Mikrobiologie Zur Kultivierung und Zählung von Hefen. Verwendungshinweis: 48,25 g auf 1 l Agar ansetzen. 2,35 g (1,9 ml) Glycerin zugeben.

Ph.Eur., für die Mikrobiologie Zur Isolierung von enteropathogenen Bakterien, insbesondere von Shigellen und Salmonellen. Agarmedium K (Ph.Eur. 6.0), Agarmedium mit Xylose, Lysin und Desoxycholat (Ph.Eur. 6.3), Xylose-Lysin-Desoxycholat-Agar Verwendungshinweis: 55,2 g auf 1 l Agar ansetzen.

ISO 10273, für die Mikrobiologie Selektivmedium zur Isolierung von Yersinia, speziell Y. enterocolitica, aus klinischen und anderen Proben. CIN-Agar, Yersinia-Agar nach Schiemann Verwendungshinweis: 58 g auf 1 l Agar ansetzen. Nach dem Abkühlen 2 Röhrchen (2x5 ml) rekons-tituierten Yersinia-Zusatz (4880.1) zugeben.

Tryptophan-Bouillon

CP71.1 500 g Kunst. €

TSC-Agar (Basis)

CL51.1 500 g Kunst. €

Würzebouillon

5779.1 500 g Kunst. €

Würzeagar (Basis)

CL04.1 500 g Kunst. €

XLD-Agar

X941.1 500 g Kunst. €

X941.2 1 kg Kunst. €

Yersinia-Selektiv-Agar (Basis)

5780.1 500 g Kunst. €

Kurzprotokoll zum Ansatz

auf jeder Flasche!

Gebräuchliche KurznamenAbkürzung Medium/Agar Best.-Nr.BP Baird-Parker-Agar X913BPLS Brillantgrün-Lactose-Saccharose Agar AE43Brila Brillantgrün-Galle-Medium CL06CASO CASO-Agar oder Bouillon X937, X938CCDA Campylobacter-Agar 5756CIN Yersinia-Selektiv-Agar 5780CLED CLED-Agar 2835CN Pseudomonas-Selektiv-Agar CP67CPLP TAT-Bouillon 3935DG18 Dichloran-Glycerin-Agar AE26DRBC Dichloran-Bengalrot-Agar AE25DRCM Clostridien-Differential-Bouillon CL78mCP m-CP-Agar CL55MRS MRS-Agar oder Bouillon X924, X925MYP Mannitol-Eigelb-Polymyxin-Agar 5765PC Plate-Count-Agar X930

R2A R2A-Agar CL01RBC Bengalrot-Agar AE24RCM Clostridien-Anreicherungsmedium AE66RVS Rappaport-Vassiliadis-Bouillon CL03SMAC Sorbitol-MacConkey-Agar 5778TAT TAT-Bouillon 3935TBA Trypton-Galle-Agar CP69TBX TBX chromogener Agar CL47TSA Trypton-Soja-Agar CP70TSB CASO-Bouillon X938TSB-Agar CASO-Agar X937TSC TSC-Agar CL51VRBD Kristallviolett-Galle-Glucose-Agar X939VRB Kristallviolett-Galle-Lactose-Agar X940XLD XLD-Agar X941YGC Hefe-Glucose-Agar CL00YNB Hefe-Stickstoff-Basismedium HP26

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Kobe I, pulv. Standard-Agar zur Verwendung in Kulturmedien für Molekularbiologie (z.B. LB-Medium) und Mikrobiologie.

hochreine Qualität, für die Bakteriologie Für Immundiffusion und Elektrophorese, Nährböden für Gewebekulturen, Bakteriologie und Mykologie, Gewebs- und Zellkultur. Qualitativ hochwertiger Agar mit sehr hoher Reinheit. Bildet sehr klare Gele.

Gentechnikqualität, für Pflanzen Für die Pflanzenzucht und Pflanzenzellkultur. Hochreiner Agar, empfohlen für die Vermehrung von Zier- und Nutzpflanzen, sowie für die in vitro Zucht gentechnisch veränderter Pflanzen in Forschung und gewerblicher Nutzung.

Standardisierte Carrageenmischung, zuckerhaltig, pulv. Mischung hochgereinigter Carrageen-Extrakte zur Gelierung von Flüssigkeiten wie z.B. Medien für die Pflanzenzucht und für spezielle Anwendungen in der Mikrobiologie. Zuckerhaltig. Enthält KCI.

Gelbildner für mikrobiologische Nährmedien GELRITE® ist ein hochgereinigtes, natürliches Heteropolysaccharid, das in Gegenwart löslicher Salze stabile, agarähnliche Gele bildet. Im Vergleich zu Agar wird nur die Hälfte des Gelbildners benötigt.Viele weitere Infos in der Produktbeschreibung unterwww.carlroth.de / www. carlroth.at

nach FAO/WHO, EEC, FCC, hochrein Stark gelierendes Carrageen vom kappa-Typ, für feste Gele. Zur Gelierung von wässrigen Lösungen wie z.B. Pflanzen- oder Tierzuchtmedien. Aus kontrollierten Zuchtalgen. Enthält KCI.Carrageen E407

nach FAO/WHO, EEC, FCC, hochrein Schwach gelierendes Carrageen vom iota-Typ, für weiche Gele. Zur Gelierung von wässrigen Lösungen im Allgemeinen, wie z.B. Pflanzen- oder Tierzuchtmedien, und von milchhaltigen Lösungen im Speziellen. Aus kontrollierten Zuchtalgen. Carrageen E407

Da es sich bei den Agars und Carrageenen um Extrakte eines Naturproduktes handelt, können die Eigenschaften (z.B. Geliereigenschaften, Salzgehalt) zwischen den Chargen leicht variieren.

Agar-Agar, Kobe I

5210.1 250 g Kunst. €

5210.3 500 g Kunst. €

5210.2 1 kg Kunst. €

5210.4 2,5 kg Kunst. €

5210.5 5 kg Kunst. €

Agar-Agar, bakteriologisch

2266.1 250 g Kunst. €

2266.3 500 g Kunst. €

2266.2 1 kg Kunst. €

2266.4 2,5 kg Kunst. €

Agar-Agar, plant

4807.1 250 g Kunst. €

4807.2 500 g Kunst. €

4807.3 1 kg Kunst. €

4807.4 2,5 kg Kunst. €

AgarsortenDie Bezeichnung Agar Kobe I entstand aus der geographischen Angabe der Herkunft und stammt von der japanischen Stadt Kobe auf der 2. Hauptinsel Honshu. Zu früheren Zeiten, als Agar noch in Streifen, Fäden oder Quadraten im Handel war, wurde er in drei Qualitäts-Hauptgruppen eingeteilt: Kobe I Korea I China

- beste Qualität, rein weiß - etwas minderer, leicht gelblich bis hellbeige - mindere Qualität, gelb-beige

Diese Begriffe und die damit verbunden Qualitätsunterschiede sind überholt, längst ist Agar aus allen Teilen Asiens in gleicher Qualität erhältlich. Die Bezeichnung Kobe I hat sich allerdings aus unbekannten Gründen für gemahlenen Agar sehr guter Qualität erhalten, der als mikrobiologischer Standardagar eingesetzt wird. Zusätzlich hat sich die Bezeichnung Bakteriologischer Agar eingebürgert für Ware höchstreiner Qualität, der eine Vorstufe der aufgereinigten Agarose darstellt und für spezielle mikrobiologische Anwendungen hergestellt wird.Agar, dänisch, auch Furcelleran, ist ein aus der Rotalge Furcellaria fastgiata gewonnenes Carrageen, das mit Sacchariden angereichert wurde.

Agar-Agar, dänisch

4508.1 1 kg Kunst. €

4508.2 5 kg Kunst. €

GELRITE®

0039.1 500 g Kunst. €

0039.2 1 kg Kunst. €

Carrageen, kappa

3059.1 25 g Kunst. €

3059.2 100 g Kunst. €

3059.3 500 g Kunst. €

Carrageen, iota

3675.1 25 g Kunst. €

3675.2 100 g Kunst. €

3675.3 500 g Kunst. €

Bei Carrageenen handelt es sich um Agar-verwandte Hydrocolloide aus Estern von Galactose- und Anhydrogalactose-Polysacchariden, die sehr klare Gele bilden. Carrageene benötigen zur Polimerisation Kationen, die Gelierstärke kann durch Zugabe von MgCl2 oder KCI verändert werden.

Agars / Carrageene

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12,5 %, steril, ready-to-use Medienzusatz zur Detektion von Listeria monocytogenes. Eine Box mit 10 Röhrchen Ammoniumeisen(III)citratlösung reicht für 10 x 500 ml Fraser-Medium.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Bacillus cereus. Antibiotikum Lagertemp. +4 °CEine Box mit 10 Röhrchen Bacillus cereus-Zusatz reicht für 10 x 500 ml Mannitol-Eigelb-Polymyxin-Agar.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Campylobacter jejuni, C. coli und C. laridis. CCDA-Zusatz (Antibiotikamischung) Lagertemp. +4 °C

n g Gefahr H334-H317 Eine Box mit 10 Röhrchen Campylobacter-Zusatz reicht für 10 x 500 ml Campylobacter-Agar, blutfrei.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Clostridium perfringens. Lagertemp. +4 °CEine Box mit 10 Röhrchen Clostridium perfringens Zusatz reicht für 10 x 500 ml TSC-Agar.

steril, stabilisiert, für die Mikrobiologie Medienzusatz zur Herstellung von Eigelb-Agar zum Nachweis mikrobieller Lecithinase-Aktivität in Bacillus cereus, Clostridium perfringens, oder auch Staphylococcus aureus. Lagertemp. +4 °C100 ml Eigelb-Emulsion reichen für 2 l Agarmedium.

steril, stabilisiert, für die Mikrobiologie Medienzusatz zur Herstellung von Eigelb-Tellurit-Agar zum Nachweis von Staphylococcus aureus. Lagertemp. +4 °C100 ml Eigelb-Tellurit-Emulsion reichen für 2 l Agarmedium.

für die Mikrobiologie, Indol-Reagenz Medienzusatz zum Nachweis von mikrobiellem Indol in Tryptophanase-positive Mikroorganismen (z.B. E. coli, S. faecalis, Proteus sp.) Lagertemp. +4 °C

h l g Gefahr H226-H290-H302-H314-H335+H336 100 ml Kovacs-Reagenz reichen für ca. 2 l Medium.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Legionellen. Glycin-Antibiotikamischung. Lagertemp. +4 °C

i n Gefahr H301-H360D-H341-H412-EUH208 Eine Box mit 10 Röhrchen Legionella GVPC-Zusatz reicht für 10 x 500 ml Legionella-Agar.

lyophilisiert Wachstumszusatz zur Isolation von Legionellen. BCYE-Zusatz. Lagertemp. +4 °C

h g Gefahr H314-H302 Eine Box mit 10 Röhrchen Legionella Wachstumszusatz reicht für 10 x 100 ml Legionella-Agar.

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Ammoniumeisen(III)citratlösung

3130.1 10 x 2 ml Kunst. €

Bacillus cereus-Zusatz

4856.1 10 Röhrchen Glas €

Campylobacter-Zusatz

4857.1 10 Röhrchen Glas €

Clostridium perfringens Zusatz

CL52.1 10 Röhrchen Glas €

Eigelb-Emulsion

2977.1 100 ml Glas €

Eigelb-Tellurit-Emulsion

2978.1 100 ml Glas €

Kovacs-Reagenz

2950.1 100 ml Glas €

Legionella GVPC-Zusatz

CL50.1 10 Röhrchen Glas €

Legionella Wachstumszusatz

CL49.1 10 Röhrchen Glas €

Nährmedienzusätze

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lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Listeria. Phospho-Lipase C Substrat. Lagertemp. +4 °CEine Box mit 10 Röhrchen Listeria-Chromo-Lipase C-Zusatz reicht für 10 x 500 ml Listeria-Chromo-Agar.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Listeria. Antibiotikamischung Lagertemp. +4 °C

i n j Gefahr H300-H334-H317-H341-H360D-H411 Eine Box mit 10 Röhrchen Listeria-Chromo-Selektiv-Zusatz reicht für 10 x 500 ml Listeria-Chromo-Agar.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Listeria monocytogenes. Oxford-Zusatz (Antibiotikamischung) Lagertemp. +4 °C

i n j Gefahr H300-H341-H360D-H411 Eine Box mit 10 Röhrchen Listeria-Oxford-Zusatz reicht für 10 x 500 ml Oxford-Listeria-Agar.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Listeria monocytogenes. Palcam-Zusatz (Antibiotikamischung) Lagertemp. +4 °C

n g Gefahr H334-H317 Eine Box mit 10 Röhrchen Listeria-Palcam-Zusatz reicht für 10 x 500 ml Palcam-Listeria-Agar.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Detektion von methicillinresistentem Staphylococcus aureus. Lagertemp. +4 °CEine Box mit 10 Röhrchen MRSA-Cefoxitin-Zusatz reicht für 10 x 500 ml MRSA-Chromo-Agar.

lyophilisiert Medienzusatz zur Identifikation und Zählung von Staphylococcus aureus. Rabbit Plasma Fibrinogen-Zusatz mit Trypsininhibitor und Kaliumtellurit Lagertemp. +4 °C

g Achtung H302+H312+H332 Eine Box mit 10 Röhrchen RPF-Zusatz reicht für 10 x 100 ml Baird-Parker-Agar.

lyophilisiert Medienzusatz zur Identifikation von coliformen Enterobakterien. 2,3,5-Triphenyl-Tetrazoliumchlorid, Tetrazoliumrot Lagertemp. +4 °C

g Achtung H315-H319-H335 Eine Box mit 10 x 50 mg TTC-Zusatz reicht für 20 l Lactose-TTC-Agar.

lyophilisiert Medienzusatz zur selektiven Isolation von Yersinia enterocolitica CIN-Zusatz (Cefsulodin, Irgasan, Novobiocin) Lagertemp. +4 °C

g n j Gefahr H315-H317-H319-H334-H400-H410 Eine Box mit 10 Röhrchen Yersinia-Zusatz reicht für 10 x 500 ml Yersinia-Selektiv-Agar.

Listeria-Chromo-Lipase C-Zusatz

2948.1 10 Röhrchen Glas €

Listeria-Chromo-Selektiv-Zusatz

2947.1 10 Röhrchen Glas €

Listeria-Oxford-Zusatz

5801.1 10 Röhrchen Glas €

Listeria-Palcam-Zusatz

5803.1 10 Röhrchen Glas €

MRSA-Cefoxitin-Zusatz

2975.1 10 Röhrchen Glas €

RPF-Zusatz

6064.1 10 Röhrchen Glas €

TTC-Zusatz

CP72.1 10 Röhrchen Glas €

Yersinia-Zusatz

4880.1 10 Röhrchen Glas €

Nährmedienzusätze

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für die Biochemie, säurehydrolysiert Enthält kein Tryptophan. Säurehydrolysat aus Casein, welches durch den besonderen Her-stellungsprozess für die Produktion bakterieller Toxine und Vakzine geeignet ist. Es handelt sich um ein besonders hochwertiges Caseinhydrolysat mit sehr hohem Amino-Stickstoff/Gesamt-stickstoff-Verhältnis (AN/TN) für sensible Anwendungen und höchste Ausbeuten.Gesamtstickstoff. ........................................... 9,5-12,0 %Verhältnis AN/TN. ................................................. ~69 %

für die Molekularbiologie, säurehydrolysiert Zusatz von molekular- und mikrobiologischen Nährmedien, vitaminfrei. Saures Hydrolysat von Casein mit geringem Cystein- und Tryptophangehalt, vitaminfrei. Besonders geeignet für die Produktion bakterieller Toxine und Vakzine. Mit normalem Amino-Stickstoff/Gesamtstick-stoff-Verhältnis (AN/TN).Gesamtstickstoff. ................................................. ≥5,0 %Aminostickstoff..................................................... ≥3,5 %

pulv., für Nährböden Lagertemp. +20 °CHochwertiger Nährmedienzusatz, unter anderem zur Verwendung in Medien für Fermentationsstudien.Gesamtstickstoff (als N). ....................................... ≥10 %

Paste, für Nährböden Hochwertige Paste aus leicht proteolysiertem Fleisch.Gesamtstickstoff (als N). ...................................... ≥8,5 %

pulv., für die Bakteriologie Wasserlöslich. Gewonnen durch wässrige Extraktion von autolysierter Bierhefe. Hoher Gehalt an Vitaminen. Dient daher in vielen Nährböden (z.B. LB-Medium) als Vitamin, Kohlenstoff- und Aminosäurequelle.Gesamtstickstoff. .................................................... ≥8 %

granuliert, für die Bakteriologie Mikro-granulierter, wasserlöslicher Extrakt aus selektierten, autolysierten Hefezellen. Leicht zu handhaben und staubarm. Hefeextrakt dient in vielen Nährböden als Vitamin-, Kohlenstoff- und Aminosäurequelle. Reich an B-Vitaminen und Wachstumsfaktoren.Gesamtstickstoff. .................................................. ≥10 %Aminostickstoff. .................................................... ≥4,5 %

pulv., für die Mikrobiologie Trockenmedienzusatz für Malz-enthaltende Kulturmedien und Agars. Hochwertiger Medienzusatz mit hohem Maltosegehalt. Durch den niedrigen pH-Wert besonders gut geeignet für bakteriologische Anwendungen. Nitritfrei. Nicht überhitzen.Maltose. ................................................................ ~70 %

pulv., für Nährböden Pulverisierter Malzextrakt für Standardan-wendungen. Malzextrakt besitzt einen sehr hohen Anteil an Carbohydraten. Bei Überhitzung färbt sich das Medium daher sehr schnell dunkelbraun.Gesamtzuckergehalt. ......................................... 71-75 %

für die Molekularbiologie Zusatz von molekularbiologischen Nährmedien, v. a. LB-Medien. Hochwertiges Caseinpepton, hergestellt durch speziellen pankreatischen Verdau von Casein. Bester Stickstoff- und Aminosäurelieferant in molekularbiologischen Nährmedien, v. a. Medien nach Luria/Bertani (LB).Gesamtstickstoff....................................................≥10 %Aminostickstoff. ....................................................≥3,9 %

pankreatisch verdaut, für die Mikrobiologie NZamin-ähnlich Reich an Peptonen und Aminosäuren, einschließ-lich Tryptophan. Dient als Bestandteil vieler Nähr-böden und Medien wie LB, 2YT. Trypton wird durch pankreatische Verdauung aus Casein gewonnen. Es findet Verwendung als Nährboden-zusatz in der Produktion von Toxinen, Impfstoffen, Enzymen und anderen biologischen Produkten.Gesamtstickstoff....................................................≥10 %Aminostickstoff. ....................................................≥3,9 %

tryptisch verdaut, für die Mikrobiologie Hergestellt durch proteolytischen Abbau von Casein mit trypsinreichem Pankreasextrakt. Preis-günstiges Pepton, das Verwendung findet als Nährbodenzusatz in der Produktion von Toxinen, Impfstoffen, Enzymen und anderen biologischen Produkten.Gesamtstickstoff.................................................≥12,5 %Aminostickstoff. ....................................................≥3,0 %

Caseinhydrolysat/Casaminosäuren, bakteriologisch

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Caseinhydrolysat/Casaminosäuren, standard

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Fleischextrakt

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Fleischextrakt-Paste

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Hefeextrakt

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Hefeextrakt, granuliert

2904.1 250 g Kunst. €

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Malzextrakt, bakteriologisch

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Malzextrakt, standard

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NZamin

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Trypton/Pepton aus Casein

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Pepton aus Casein

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8986.3 2,5 kg Kunst. €

8986.4 5 kg Kunst. €

Nährmediengrundstoffe

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Nährmediengrundstoffe

durch Neutrase verdaut, für die Mikrobiologie Pepton, das durch Neutraseverdau und Sprühtrocknung aus Fischextrakt hergestellt wird. Fischpepton wird zur Stabilisierung mit Kartoffel-Maltodextrin versetzt und wird v.a. in Kultur-medien für marine Mikroorganismen, aber auch für die Kultivierung von Baktierien wie Lactoba-zillen oder Escherichien eingesetzt. Es kann allgemein an Stelle von Fleischpepton in der Fermentation eingesetzt werden und ver-mindert hier die Entstehung von unerwünschten Sekundärmetaboliten.Proteingehalt. ...................................................... 63 ±6%Fette...................................................................... 2 ±1%Asche.................................................................. 37 ±5%Salz (NaCl).......................................................... 22 ±4%

peptisch verdaut, für die Mikrobiologie Sehr hochwertiges Pepton, besonders nährstoffreich.Pepton aus Fleisch wird durch peptische Verdaung aus tierischem Gewebe gewonnen. Es wird verwendet als biologischer Nährstoff für Gewebekulturen, Fermentationen und in der Impfstoffproduktion.Gesamtstickstoff. ............................................... ≥12,0 %Aminostickstoff................................................. 2,0-3,1 %

pankreatisch verdaut, für die Mikrobiologie Pepton, das durch Verdau mittels Pankreasextrakt aus Schweinehaut hergestellt wird. Gelatinepep-ton besitzt einen niedrigen Gehalt an fermentier-baren Kohlehydraten und wird v.a. in Kultur-medien für nicht-anspruchsvolle Mikroorganismen und für Fermentationsstudien verwendet.Gesamtstickstoff. .................................................. ≥10 %Aminostickstoff..................................................... ≥2,7 %

löslich, oxidierte Maisstärke Wichtiger Bestandteil vieler Nährmedien zur Kultivierung von anspruchsvollen Mikroorganis-men im allgemeinen und Clostridien im Speziellen.

papainisch verdaut, für die Mikrobiologie Besonders breites Nährstoffspektrum und hoher Gehalt an Kohlenhydraten und Vitaminen. Pepton aus Soja wird durch papainische Verdauung aus Sojabohnenmehl gewonnen und in Nährböden, zur Fermentation und zur Impfstoffherstellung verwendet.Gesamtstickstoff. ................................................. ≥9,0 %Aminostickstoff. .................................................... ≥2,5 %

tierfrei und GVO-frei, papainisch verdaut, für die Mikrobiologie Pepton aus Soja (tierfrei/GVO-frei) wird durch papainischen Verdau aus Sojabohnenmehl von nicht-gentechnisch veränderten Pflanzen gewon-nen. Strenge Produktionsrichtlinien garantieren außerdem die Freiheit von jedem tierischen Material sowie von TSE/BSE. Entsprechende Zertifikate sind selbstverständlich auf Anfrage erhältlich.Pepton aus Soja zeichnet sich vor allem durch das breite Nährstoffspektrum und den hohen Vitamingehalt aus. Es ist für die Verwendung in der Mikrobiologie, Gewebezucht und Fermentation geeignet.Gesamtstickstoff. .................................................... ≥7 %Aminostickstoff. .................................................... ≥2,2 %

für die Mikrobiologie Speziell abgestimmtes Gemisch aus Casein- und Fleischpepton. Polypepton kann in vielen mikro-biologischen Nährböden als Vitamin-, Kohlen-stoff- und Aminosäurequelle eingesetzt werden und fördert bei vielen Mikroorganismen besser die Proliferation als Einzelpeptone.Gesamtstickstoff....................................................≥10 %Aminostickstoff. ....................................................≥3,7 %

für die Mikrobiologie Aus enzymatischem Verdau von tierischem Gewebe. Nährstoffreicher Grundstoff für das Wachstum einer großen Bandbreite anspruchsvoller Mikroorganismen oder für Fälle, in denen Bakterien reichhaltig gefüttert werden müssen. Bestens geeignet für die Produktion von Toxinen, Vakzinen, Antibiotika und anderen Substanzen wie z.B. Enzymen, ideal für Starterkulturen und gut geeignet für Bakterienstocks. Proteosepepton wird z.B. verwendet für die Produktion von Diphteriatoxin, Pneumococcus -Toxin und die Toxine von Clostridium botulinum und Cl. perfringens, sowie für Kulturen von Neisseria, Haemophilus, Salmonella, Corynebacterium und Staphylococcus.Gesamtstickstoff....................................................≥10 %Aminostickstoff. ....................................................≥3,4 %

Pepton aus Fisch

2809.1 250 g Kunst. €

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Pepton aus Fleisch

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2366.4 2,5 kg Kunst. €

Pepton aus Gelatine

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Stärke

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4701.2 5 kg Kunst. €

Pepton aus Soja

2365.1 250 g Kunst. €

2365.3 500 g Kunst. €

2365.2 1 kg Kunst. €

2365.4 2,5 kg Kunst. €

Pepton aus Soja (tierfrei/GVO-frei)

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2832.2 500 g Kunst. €

2832.3 1 kg Kunst. €

Polypepton

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2903.2 500 g Kunst. €

2903.3 1 kg Kunst. €

Proteosepepton

HP32.1 500 g Kunst. €

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Mit dem Überbegriff Pepton werden alle durch Säure oder Enzyme verdauten Proteine bezeichnet, dabei wird zusätzlich der Ausgangsstoff (z.B. 8986: Pepton aus Casein) und häufig die Art des Verdaus angegeben (z.B. „tryptisch“). Stickstoff- und Aminosäurelieferant.

Trypton entsteht durch Verdau von Casein mit Pankreasextrakt (pankreatischer Verdau). Trypton ist tryptophanreicher Stickstoff- und Aminosäurelieferant in vielen mikrobiologischen Nährmedien (Best.-Nr. 8952).

NZamin entsteht ebenfalls durch pankreatischen Verdau von Casein, ist dem Trypton sehr ähnlich und wird häufig als Stickstoff- und Aminosäurelieferant als Bestandteil molekularbiologischer Nährmedien verwendet (Best.-Nr. CP76).

Proteosepepton wird gewonnen durch hydrolytische Spaltung von Proteinen aus tierischem Gewebe, wobei der Spaltungsgrad stärker ist als bei Peptonen, aber nicht so stark, dass einzelne Aminosäuren entstehen. Proteosepepton enthält recht viele hochmolekulare Anteile und ist ein hochwertiger Bestandteil mikrobiologischer Nährmedien.

Casaminosäuren entstehen durch vollständige Säurehydrolyse von Casein. Dieses Präparat wird als Stickstoff- und Aminosäurelieferant v. a. dann eingesetzt, wenn vollständig hydrolysiertes Protein erforderlich ist, z.B. bei Proliferations-untersuchungen oder bei der Vakzin-/Toxinproduktion (Best.-Nr. AE41 und A157).

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