ISBN 978-3-86345-356-5
Verlag: Deutsche Veterinärmedizinische Gesellschaft Service GmbH35392 Gießen · Friedrichstraße 17 · Tel. 0641 / 24466 · Fax: 0641 / 25375
E-Mail: [email protected] · Internet: www.dvg.de
Mar
ia M
arga
reth
e L
eurs
Han
nov
er 2
016
.
Bibliografische Informationen der Deutschen Bibliothek
Die Deutsche Bibliothek verzeichnet diese Publikation in der
Deutschen Nationalbibliografie;
Detaillierte bibliografische Daten sind im Internet über http://dnb.ddb.de abrufbar.
1. Auflage 2016
© 2016 by Verlag: Deutsche Veterinärmedizinische Gesellschaft Service GmbH,
Gießen
Printed in Germany
ISBN 978-3-86345-356-5
Verlag: DVG Service GmbH
Friedrichstraße 17
35392 Gießen
0641/24466
www.dvg.de
Tierärztliche Hochschule Hannover
Einfluss unterschiedlicher Fütterungskonzepte
im peripartalen Zeitraum und der Laktation
auf die Gesundheit und die Körpermassenentwicklung
von Sauen und Ferkeln
INAUGURAL – DISSERTATION
zur Erlangung des Grades einer
Doktorin der Veterinärmedizin
- Doctor medicinae veterinariae -
(Dr. med. vet.)
vorgelegt von
Maria Margarethe Leurs
Geldern
Hannover 2016
Wissenschaftliche Betreuung: Jun. Prof. Dr. C. Visscher
Institut für Tierernährung
Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover
1. Gutachter: Jun. Prof. Dr. C. Visscher
2. Gutachter: Prof. Dr. M. Wendt
Tag der mündlichen Prüfung: 10.11.2016
Meiner Familie
Teile der vorliegenden Dissertation wurden bereits auf folgenden Tagungen präsentiert:
Tierernährung für Tierärzte – Im Fokus: Die Fütterung von Schweinen
Hannover, 06. April 2016
RATERT, C., LEURS, M., DERKING, S., VISSCHER, C., TENHÜNDFELD, J. UND J. KAMPHUES
(2016)
Sauen: Leistungen und Konsequenzen
Tagungsband S. 59-64
LEURS, M., SÜRIE, C. UND C. VISSCHER (2016)
Ferkel: Startchancen und Einflüsse
Tagungsband S. 65-71
LEURS, M., SÜRIE, C. SCHMICKE, M., KELLER, B. UND C. VISSCHER (2016)
Peripartal – Rohfaser ad libitum?
Tagungsband S. 135-145
24th International Pig Veterinary Society Congress / 8th
European Symposium of
Porcine Health Management
Dublin, Ireland, 07-10. Juni 2016
LEURS, M., SÜRIE, C. UND C. VISSCHER (2016)
Effects of a high fibre diet around parturition in combination with an ad libitum feeding
regime on the performance of sows and piglets
Congress Proceedings, S. 147
20th Congress of the European Society of Veterinary and Comparative Nutrition
Berlin, 15.-17. September 2016
LEURS, M., SÜRIE,C., SCHMICKE, M. UND C. VISSCHER (2016)
Does a high fibre diet supplement around parturition in addition to a standard lactation feed
influence the performance of sows and piglets?
Congress Proceedings, S. 55
KELLER, B, LEURS, M, GALVEZ, E, STROWIG, E., KELLER, C., SÜRIE, C. UND C. VISSCHER
(2016)
Effects of two different high fibre supplements fed around parturition on the microbiome in
faeces of sows
Congress Proceedings S. 56
Inhaltsverzeichnis
Einleitung ..................................................................................................................1 1
Schrifttum ..................................................................................................................3 2
Energie- und Nährstoffbedarf von Sauen in der Hochträchtigkeit und in 2.1
der Laktation .......................................................................................................3
Die Transitphase ............................................................................................4 2.1.1
Die Laktationsphase ......................................................................................5 2.1.2
Einflussfaktoren auf die Futteraufnahme bei Schweinen ................................8 2.1.3
Fütterungskonzepte für laktierende Sauen .......................................................... 11 2.2
Störungen der Geburt und des Puerperiums ....................................................... 13 2.3
Chemische Struktur und Terminologie der Rohfaser .......................................... 17 2.4
Einfluss einer faserreichen Fütterung auf das Wohlbefinden von Sauen ............. 21 2.5
Einfluss einer faserreichen Fütterung auf die Geburt und das Puerperium .......... 22 2.6
Einfluss auf die Geburtslänge ...................................................................... 22 2.6.1
Einfluss auf die Kolostrumversorgung der Saugferkel ................................. 24 2.6.2
Einfluss auf das Auftreten von MMA .......................................................... 26 2.6.3
Einfluss auf die Laktation ............................................................................ 27 2.6.4
Einfluss einer faserreichen Fütterung auf die Darmgesundheit ........................... 28 2.7
Einfluss auf die Darmbarriere ...................................................................... 29 2.7.1
Einfluss auf das intestinale Mikrobiom ........................................................ 29 2.7.2
Ableitung der Aufgabenstellung ........................................................................ 33 2.8
Material und Methoden ............................................................................................ 37 3
Tiere und Gesundheitsvorsorge .......................................................................... 38 3.1
Haltung der Tiere ............................................................................................... 40 3.2
Ausschlusskriterien ............................................................................................ 42 3.3
Futtermittel und Fütterung ................................................................................. 42 3.4
Fütterung der Sauen ..................................................................................... 42 3.4.1
Fütterung der Saugferkel ............................................................................. 44 3.4.2
Erhobene Parameter und Probengewinnung im Stall .......................................... 45 3.5
Futteraufnahme ........................................................................................... 45 3.5.1
Wasseraufnahme ......................................................................................... 46 3.5.2
Allgemeinbefinden der Tiere ....................................................................... 47 3.5.3
Geburtsparameter und Leistungsdaten der Sauen ......................................... 47 3.5.4
Kotscore ...................................................................................................... 48 3.5.5
Verschmutzung von Tier und Stand ............................................................. 48 3.5.6
Körpermasse der Sauen und Ferkel .............................................................. 49 3.5.7
Rückenspeckdicke der Sauen ....................................................................... 50 3.5.8
Body Condition Score (BCS) ....................................................................... 52 3.5.9
Schulterscore ............................................................................................... 53 3.5.10
Analyse der Futtermittel .................................................................................... 53 3.6
Rohnährstoffe .............................................................................................. 54 3.6.1
Kohlenhydrate ............................................................................................. 56 3.6.2
Energie ........................................................................................................ 59 3.6.3
Mengen- und Spurenelemente ..................................................................... 60 3.6.4
Aminosäuren ............................................................................................... 61 3.6.5
Neutrale-Detergenz-Faser (NDF, Neutral Detergent Fiber) .......................... 62 3.6.6
Säure-Detergenz-Faser (ADF, Acid Detergent Fiber)................................... 63 3.6.7
Analyse der Futterstruktur ........................................................................... 63 3.6.8
Analyse der Kotzusammensetzung ..................................................................... 64 3.7
Analyse der Milchleistung- und Milchzusammensetzung ................................... 64 3.8
Kalkulation der Milchleistung ..................................................................... 64 3.8.1
Chemische Analyse der Sauenmilch ............................................................ 65 3.8.2
Analyse des Cortisolgehaltes im Speichel der Sauen .......................................... 66 3.9
Serologische Untersuchungen ............................................................................ 67 3.10
Blutparameter der Sauen.............................................................................. 67 3.10.1
Blutparameter der Ferkel ............................................................................. 68 3.10.2
Mikrobiologische Untersuchungen .................................................................... 70 3.11
Molekularbiologische Untersuchungen .............................................................. 73 3.12
Bestimmung der Toxintypen von Clostridium perfringens im Kot 3.12.1
p.p. .............................................................................................................. 73
Bestimmung des Mikrobioms ...................................................................... 74 3.12.2
Leistungsdaten der Sauen im Folgewurf ............................................................ 75 3.13
Statistische Auswertung ..................................................................................... 76 3.14
Ergebnisse ............................................................................................................... 77 4
Ergebnisse der Futtermitteluntersuchungen ........................................................ 77 4.1
Chemische Zusammensetzung der eingesetzten Futtermittel ........................ 77 4.1.1
Futterstruktur ............................................................................................... 81 4.1.2
Ergebnisse des ad-libitum-Angebotes von zwei verschiedenen 4.2
Rohfaserpellets zu einem restriktiv gefütterten Laktationsfutter im
peripartalen Zeitraum (Tag 7 a.p. bis Tag 2 p.p.) ................................................ 81
Von der Auswertung ausgenommene Sauen ................................................ 81 4.2.1
Umgebungstemperatur................................................................................. 81 4.2.2
Allgemeine Daten zu den Sauen .................................................................. 82 4.2.3
Futteraufnahme ........................................................................................... 83 4.2.4
Wasserverbrauch ......................................................................................... 89 4.2.5
Körpertemperatur ........................................................................................ 91 4.2.6
Geburtsparameter ........................................................................................ 93 4.2.7
Kotscore ...................................................................................................... 99 4.2.8
Verschmutzungsgrad von Tier und Stand................................................... 101 4.2.9
Kotzusammensetzung ................................................................................ 103 4.2.10
Ergebnisse der Speicheluntersuchungenn................................................... 107 4.2.11
Ergebnisse der serologischen Untersuchungen ........................................... 109 4.2.12
Ergebnisse der mikrobiologischen Untersuchung des Sauenkotes .............. 121 4.2.13
Ergebnisse der molekularbiologischen Untersuchungen des 4.2.14
Sauenkotes ................................................................................................ 123
Ergebnisse der ad-libitum-Fütterung in der Laktation (ab Tag 3 p.p.) ....... 139 4.3
Von der Auswertung ausgenommene Sauen .............................................. 139 4.3.1
Allgemeine Daten zu den Sauen ................................................................ 139 4.3.2
Futteraufnahme ......................................................................................... 140 4.3.3
Wasserverbrauch ....................................................................................... 141 4.3.4
Körpertemperatur ...................................................................................... 142 4.3.5
Zusammensetzung der Sauenmilch ............................................................ 142 4.3.6
Leistungsparameter der Sauen ................................................................... 142 4.3.7
Beifutteraufnahme der Ferkel .................................................................... 145 4.3.8
Körpermasseentwicklung der Ferkel .......................................................... 146 4.3.9
Körpermasseentwicklung der Sauen .......................................................... 148 4.3.10
Leistungsdaten der Sauen im Folgewurf .................................................... 150 4.3.11
Diskussion ............................................................................................................. 152 5
Kritik der Methode .......................................................................................... 152 5.1
Tiere und Haltung ...................................................................................... 152 5.1.1
Futtermittel und Fütterung ......................................................................... 154 5.1.2
Wasserversorgung ..................................................................................... 157 5.1.3
Untersuchungsmethoden............................................................................ 158 5.1.4
Einfluss eines ad–libitum-Angebotes eines rohfaserreichen Mischfutters 5.2
bei restriktiver Gabe eines Alleinfutters für laktierende Sauen im
peripartalen Zeitraum auf die Sauen- und Ferkelgesundheit ............................. 162
Futteraufnahme ......................................................................................... 162 5.2.1
Wasserverbrauch ....................................................................................... 164 5.2.2
Körpertemperatur ...................................................................................... 166 5.2.3
Geburtsparameter ...................................................................................... 166 5.2.4
Kotkonsistenz und Kotzusammensetzung .................................................. 171 5.2.5
Cortisolkonzentration im Speichel der Sauen ............................................. 174 5.2.6
Blutparameter der Sauen............................................................................ 176 5.2.7
Blutparameter der Ferkel ........................................................................... 180 5.2.8
Gehalt an Clostridium perfringens ssp. im Kot post partum ....................... 183 5.2.9
Zusammensetzung des Mikrobioms ........................................................... 185 5.2.10
Einfluss einer ad-libitum-Fütterung in der Laktation auf die Sauen- und 5.3
Ferkelentwicklung ........................................................................................... 195
Futteraufnahme ......................................................................................... 195 5.3.1
Wasserverbrauch ....................................................................................... 198 5.3.2
Körpertemperatur ...................................................................................... 199 5.3.3
Leistungsparameter der Sauen ................................................................... 199 5.3.4
Körpermasseentwicklung der Sauen .......................................................... 207 5.3.5
Leistungsdaten der Sauen im Folgewurf .................................................... 210 5.3.6
Schlussfolgerungen .......................................................................................... 211 5.4
Zusammenfassung ................................................................................................. 215 6
Summary ............................................................................................................... 219 7
Literatur ................................................................................................................. 223 8
Anhang .................................................................................................................. 261 9
Futteraufnahme ................................................................................................ 261 9.1
Wasserverbrauch ............................................................................................. 264 9.2
Körpertemperatur ............................................................................................ 265 9.3
Geburtsparameter ............................................................................................ 267 9.4
Leistungsparameter der Sauen ......................................................................... 272 9.5
Beifutteraufnahme ........................................................................................... 274 9.6
Körpermasseentwicklung der Sauen ................................................................ 275 9.7
Kotparameter ................................................................................................... 277 9.8
Speicheluntersuchung ...................................................................................... 290 9.9
Blutparameter der Sauen .................................................................................. 291 9.10
Blutparameter der Ferkel ................................................................................. 292 9.11
Leistungsdaten im Folgewurf ........................................................................... 300 9.12
Tabellenverzeichnis ......................................................................................... 301 9.13
Abbildungsverzeichnis..................................................................................... 310 9.14
Symbol-und Abkürzungsverzeichnis
Symbol Bezeichnung
α Signifikanzniveau
Δ Differenz
® registrierte Warenmarke
±s Standardabweichung
™ unregistrierte Warenmarke
� arithmetisches Mittel
Kürzel Bezeichnung
a.p. ante partum
ADF Saure-Detergens-Faser
ADL Saures-Detergens-Lignin
Aqua dest. destilliertes Wasser
BCS Body Condition Score
C Control group
C. perfringens Clostridium perfringens
CRP C-reaktives Protein
Cys Cystein
DDGS Dried Destillers Grains
Solubles (Trockenschlempe)
DM Dry Matter
(Trockensubstanz)
E. coli Escherichia coli
et al. et alii = und andere
GALT Darm-assoziiertes
lymphatisches Gewebe
GnRH Gonadotropin-Releasing
Hormon
HFG High fibre group
IDF Insoluble Dietary Fiber
IgG Immunglobulin G
IKT Immunokrit
IL-1 Interleukin 1
IL-6 Interleukin 6
ISO International Organization for
Standardization
KbE koloniebildende Einheit
LFGB Lebensmittel- und
Futtermittelgesetzbuch
LH Luteinisierendes Hormon
Lys Lysin
ME umsetzbare Energie
MMA Mastitis-Metritis-Agalaktie
NDF Neutrale-Detergenz-Faser
NfE stickstofffreie Extraktstoffe
NSP Nicht-Stärke-Polysaccharide
p Irrtumswahrscheinlichkeit
p.n. post natum
p.p. post partum
PBS Phosphate Buffered Saline
qPCR quantitative Polymerase-
Kettenreaktion
Ra Rohasche
Rfa Rohfaser
Rfe Rohfett
Rp Rohprotein
rRNA ribosomale RNA
RSD Rückenspeckdicke
SAS Statistics Analysis Systems
SCFA Short-Chain-Fatty-Acids
SES Sojaextraktionsschrot
SDF Soluble Dietary Fiber
spp. Spezies (Plural)
TDF Total Dietary Fiber
TNFα Tumor-Nekrose-Faktor α
TS Trockensubstanz
uS ursprüngliche Substanz
VDLUFA Verband Deutscher
landwirtschaftlicher
Untersuchungs- und
Forschungsanstalten
WHO Weltgesundheitsorganisation
XF crude fat (Rohfett)
XP crude protein (Rohprotein)
Chemische Elemente und Maßeinheiten wurden entsprechend der offiziellen Nomenklatur
(IUPAC) abgekürzt.
Einleitung
1
Einleitung 1
In den letzten Jahren sind die Fruchtbarkeitsleistungen „moderner“ Sauenlinien
kontinuierlich gestiegen. So stieg die Anzahl der lebend geborenen Ferkel pro Wurf
beispielweise in Schleswig Holstein im Zeitraum von 2008 bis 2015 von 12,75 auf 14,89
Ferkel (KNEES u. REINECKE 2016). Steigende Wurfgrößen erfordern jedoch höhere
Milchleistungen der Sauen, was wiederrum zu einem negativen Einfluss auf die
Entwicklung der Körpermasse der Sauen und zu Einbußen der Reproduktionsleistung im
Folgewurf führen kann (CLOWES et al. 2003; THAKER u. BILKEI 2005; REMPEL et al.
2015). Eine adäquate Ernährung dieser hochleistenden Sauen mit Energie und Nährstoffen
stellt somit eine große Herausforderung aus Sicht der Tierernährung dar. In der Regel
erfolgt mit der Einstallung in den Abferkelstall eine restriktive Zuteilung von ca. 3 kg eines
faserarmen Laktationsfutters täglich bis zur Geburt (JEROCH et al. 1999; KAMPHUES et
al. 2014). Obwohl die zugeteilte Futtermenge nach der Geburt stufenweise angehoben und
das Laktationsfutter ab der zweiten Laktationswoche nahezu ad libitum angeboten wird,
werden geringe Futtermengen in der ersten Laktationswoche nicht durch eine höhere
Futteraufnahme in der weiteren Laktation kompensiert (AHERNE u. WILLIAMS 1992;
VIGNOLA 2009). Eine ad-libitum-Fütterung der Sauen im Abferkelstall führt zwar zu
höheren Futteraufnahmen in der Laktation und folglich geringeren Körpermasseverlusten
(NEIL 1996; COOLS et al. 2014), dennoch wird in wissenschaftlichen Studien immer
wieder ein Zusammenhang zwischen einer ad-libitum-Fütterung und dem Auftreten
peripartaler Erkrankungen wie dem MMA-Komplex oder einer temporären
Futterverweigerung in der späteren Laktation beobachtet (JEROCH et al. 1999; MAES et
al. 2010; PAPADOPOULOS et al. 2010). Vor diesem Hintergrund soll in der vorliegenden
Studie dargestellt werden, inwieweit eine maximale Futteraufnahme der Sauen – ohne
negative Beeinflussung des Geburtsvorganges oder des Puerperiums – durch ein ad-
libitum-Angebot rohfaserreicher Futterkomponenten im peripartalen Zeitraum erreicht
werden kann. So führt der Einsatz von Rohfaserkomponenten wie Sojabohnenschalen,
welche reich an bakteriell fermentierbarer Substanz sind und über eine vergleichsweise
hohe Wasserbindungskapazität verfügen (DONGOWSKI u. EHWALD 1999; DE LEEUW
et al. 2008), zu einer weicheren Kotkonsistenz bei Schweinen (TABELING et al. 2003;
Einleitung
2
WARZECHA 2006). Eine weiche Kotkonsistenz zur Geburt wirkt sich wiederrum positiv
auf den Geburtsprozess aus (BEENING 1999; OLIVIERO et al. 2010) und reduziert die
Gefahr einer möglichen Verstopfung der Sau mit nachfolgender Schädigung der Darmwand
rund um den Geburtszeitpunkt, was einer MMA-Erkrankung Vorschub leisten könnte
(MARTINEAU et al. 1992; KAMPHUES et al. 1998; REINER et al. 2009). In dieser
Studie sollen somit die in der Literatur beschriebenen positiven Effekte einer faserreichen
Fütterung im peripartalen Zeitraum mit denen einer ad-libitum-Fütterung kombiniert und
den Sauen erst ab Tag 3 p.p. ein Laktationsfutter zur freien Aufnahme angeboten werden.
Vor diesem Hintergrund soll insgesamt überprüft werden, inwieweit sich ein ad libitum
angebotenes rohfaserreiches Mischfutter (peripartal) oder Laktationsfutter (postpartal) in
Ergänzung zu der restriktiv zugeteilten Ration auf
� die Sauen- und Ferkelgesundheit im peripartalen Zeitraum
� die Sauen- und Ferkelentwicklung in der Laktation
auswirkt. Die gewonnenen Erkenntnisse aus diesen Untersuchungen sollen dazu beitragen,
Empfehlungen im Hinblick auf eine optimale Fütterungsstrategie von hochfruchtbaren und
leistungsstarken Sauenlinien unter Berücksichtigung der Tiergesundheit und des
Wohlbefindens von Sauen und Ferkeln geben zu können.
Schrifttum
3
Schrifttum 2
Energie- und Nährstoffbedarf von Sauen in der Hochträchtigkeit 2.1
und in der Laktation
Die Zeitspanne von der Hochträchtigkeit bis zum Ende der Laktation ist mit wechselnden
Anforderungen an die Energie- und Nährstoffversorgung von Sauen verbunden
(KIRCHGEßNER 2011; THEIL 2015). Während in den ersten zwei Dritteln der
Trächtigkeit die Energieretention in den Konzeptionsprodukten wie Feten, Placenta, Uterus
und Flüssigkeiten noch sehr gering ist und weniger als 1 MJ ME pro Tag beträgt, steigt
diese aufgrund des exponentiellen Wachstums der Feten im letzten Drittel der Trächtigkeit
auf bis zu 2-2,5 MJ ME pro Tag deutlich an (NOBLET et al. 1997). Somit wird in der
Hochträchtigkeit – neben dem Erhaltungsbedarf der Sau – im Vergleich zu der
Frühträchtigkeit eine höhere Energie- und Nährstoffzufuhr für das Wachstum der Feten und
der Milchdrüse sowie der Kolostrumproduktion benötigt (NOBLET et al. 1985;
KIRCHGEßNER 2011). In der Laktation hingegen wird ein Großteil der über das Futter
aufgenommenen Mengen an Energie und Nährstoffen für die Milchsynthese beansprucht
(NOBLET et al. 1990; JEROCH et al. 1999). Somit lässt sich diese Zeitspanne von der
Hochträchtigkeit bis zum Ende der Laktation aus ernährungsphysiologischer Sicht in zwei
Phasen gliedern: Die Transitphase und die Laktationsphase (THEIL 2015).
Schrifttum
4
Die Transitphase 2.1.1
Als Transitperiode wird die Zeitspanne von 10 Tagen vor bis 10 Tagen nach der Geburt
bezeichnet (THEIL 2015). In den letzten Wochen der Trächtigkeit findet nicht nur das
stärkste Wachstum der Föten und des Mammagewebes, sondern auch die Produktion von
Kolostrum statt, was zu einem steigenden Energie- und Nährstoffbedarf der Sauen in dieser
Phase der Trächtigkeit im Vergleich zu den restlichen Trächtigkeitsabschnitten führt
(NOBLET et al. 1985; JEROCH et al. 1999; KIRCHGEßNER 2011; THEIL 2015). So
steigt der Energiebedarf für den Zuwachs der Konzeptionsprodukte von 3,9 MJ ME in den
ersten 84 Tagen der Gravidität auf 9,3 MJ ME in den letzten 30 Tagen der Trächtigkeit an
(JEROCH et al. 1999).
Insbesondere die stetige Zucht auf hochfruchtbare Sauenlinien in den letzten Jahren und die
daraus resultierende höhere Anzahl an Föten bzw. schnell an Körpermasse zunehmenden
Ferkeln (RUTHERFORD et al. 2013; KNEES u. REINECKE 2016) induzieren steigende
maternale Investitionen in diesem Zeitraum (ANDERSEN et al. 2011). Neuere
Untersuchungen belegen zudem, dass die ante partum gebildete Kolostrummenge mit
durchschnittlich 5,9 kg pro Sau höher zu sein scheint, als bisher angenommen (rund 4 kg
Kolostrum) (THEIL et al. 2014). Nach der Geburt kommt es ab dem zweiten Tag der
Laktation analog zu der größer werdenden Milchproduktion zu einem stetig steigenden
Bedarf an Energie und Nährstoffen (HANSEN et al. 2012). So steigt beispielweise der
Energiebedarf von ca. 40 MJ ME in den letzten Tagen der Hochträchtigkeit auf ca. 60 MJ
ME an Tag 2 p.p. und schließlich auf ca. 80 MJ ME an Tag 10 p.p. rapide an (THEIL
2015).
Einige Autoren sehen die Notwendigkeit, den komplexen und wechselnden Anforderungen
der Sau an die Energie- und Nährstoffversorgung im peripartalen Zeitraum eine größere
Beachtung in den heutigen Fütterungskonzepten von Sauen zukommen zu lassen
(DEROUCHERY et al. 2007; THEIL 2015; TROTTIER et al. 2015). So ändert sich in
diesem Zeitraum der Transitphase nicht nur der Energie- und Nährstoffbedarf der Tiere;
vielmehr ist die Sau in dieser sensiblen Zeit einer Vielzahl von Veränderungen ausgesetzt:
Nicht nur das Haltungssystem (von der Gruppenhaltung im Wartestall zur Einzelhaltung im
Abferkelstall), auch das Fütterungsregime (von einer restriktiven zu einer ad-libitum-
Schrifttum
5
Fütterung) und die Futterzusammensetzung an sich (von einem rohfaserreichen
Tragendfutter zu einem energiereichen und rohfaserarmen Laktationsfutter) werden in
dieser Zeit grundlegend geändert. Vor diesem Hintergrund wird zunehmend eine an die Sau
angepasste Fütterung in der Transitphase gefordert (THEIL 2015).
Die Laktationsphase 2.1.2
Der Energie- und Nährstoffbedarf laktierender Sauen setzt sich aus dem Erhaltungs- und
Leistungsbedarf der Sauen zusammen (GFE 2006). Während für die Berechnung des
Erhaltungsbedarfs verschiedene Faktoren wie die Körpermasse, das Alter, die Wurfnummer
und die Umgebungstemperatur Berücksichtigung finden, hängt der Leistungsbedarf
laktierender Sauen im Wesentlichen von der produzierten Milchmenge ab (JEROCH et al.
1999; GFE 2006; KIRCHGEßNER 2011). Diese wiederrum wird maßgeblich von der
Anzahl saugender Ferkel und somit von der Milchabnahme durch die Ferkel bestimmt
(TONER et al. 1996; KIRCHGEßNER 2011; THEIL et al. 2012) und kann bis zu 14 kg pro
Sau und Tag ausmachen (THEIL et al. 2012; DERKING 2015).
Aufgrund der Tatsache, dass die Sauenmilch im Vergleich zu anderen Tierarten bezogen
auf die Körpermasse extrem energiereich ist, sind Sauen in der Laktation auf eine hohe
Energie- und Nährstoffzufuhr über das Futter angewiesen (THEIL et al. 2012). Da die
Milchleistung bei Sauen unter Praxisbedingungen schwierig zu erfassen ist, der
Wurfzuwachs jedoch eng mit der Milchaufnahme der Ferkel korreliert, kann der Energie-
und Nährstoffbedarf der Sau indirekt über den Wurfzuwachs der Ferkel ermittelt werden
(GFE 2006; KIRCHGEßNER 2011). Vor dem Hintergrund, dass für 1 kg Wurfzuwachs in
etwa 4,1 kg Sauenmilch benötigt werden, ergibt sich bei einem Energiegehalt der Milch
von durchschnittlich 5 MJ/kg und einem Teilwirkungsgrad von k=0,7 ein Energiebedarf
von 7,15 MJ ME pro kg Milch bzw. 29,3 MJ ME pro kg Wurfzuwachs (GFE 2006). Bei
einem durchschnittlichen Wurfzuwachs von 3,0 kg / Tag beträgt der Energiebedarf
demnach ca. 90-98 MJ ME (KIRCHGEßNER 2011; KAMPHUES et al. 2014). Obwohl ein
Großteil der experimentellen Daten, auf deren Grundlage die Ableitung der Energie und
Nährstoffversorgung laktierender Sauen durch die GFE (2006) erfolgte, in den 80-iger
Jahren erhoben wurden, scheinen diese Grunddaten auch für Tiere mit hohen Leistungen
von 14-15 kg Milch zuzutreffen (SUSENBETH 2015). In der folgenden Tabelle 1 sind
Schrifttum
6
Richtwerte für die tägliche Versorgung mit Energie und ausgewählten Nährstoffen
dargestellt.
Tabelle 1: Empfehlungen zur täglichen Versorgung mit Energie und ausgewählten Nährstoffen von Sauen in Trächtigkeit und Laktation (GFE 2006); KAMPHUES et al. (2014)
1
ME
MJ
Rp
g
pcv Rp
g
pcv Lys
g
Ca
g
vP
g
Trächtigkeit
NT (d 1-84) 31-35 260-310 220-230 11-12 6-8 2-3
HT (d 85-115) 39-43 355-415 300-310 16-18 6-7 1,5
Laktation2
WZ 2,5 kg/d 75-78 860-1055 730-790 46 39 20
WZ 3,0 kg/d 90-93 1060-1270 900-950 56 45 23
NT: Niedertragend; HT: Hochtragend, WZ: Wurfzuwachs 1 Angaben gelten für den thermoneutralen Bereich (19 °C bei Einzel-; 14 °C bei Gruppenhaltung) 2 Laktationsdauer: 25 Tage; KM zu Laktationsbeginn: 185-225 kg; KM-Verlust in der Laktation: bis zu 20 kg
Um diesen hohen Energie- und Proteinbedarf in der Laktation decken zu können, müsste
eine Sau demnach täglich 7 kg eines Laktationsfutters mit einem Energiegehalt von 13 MJ
ME aufnehmen. Da die TS-Aufnahmekapazität jedoch begrenzt ist – laktierende Sauen
können 2,5-3,5% der Körpermasse an Trockensubstanz aufnehmen (KAMPHUES et al.
2014) – und die Aufrechterhaltung der Milchsynthese für die Sau oberste Priorität hat
(THEIL et al. 2012), kommt es während der Laktation insbesondere bei einer
unzureichenden Futteraufnahme zwangsläufig zu einem Energie- und Proteindefizit und
somit zu einer Einschmelzung von Körpersubstanz (JEROCH et al. 1999; EISSEN et al.
2000; TROTTIER et al. 2015). Das in der Laktation auftretende Energiedefizit wird zudem
durch die genetische Selektion der Sauen hin zu einer besseren Fruchtbarkeit in den letzten
Jahren verschärft (WHITTEMORE 1996): Die Zucht auf großrahmige Sauen mit
reduzierten Körperfettanteil, welche zusätzlich eine größer werdende Anzahl an Ferkeln
absetzen und somit höhere Milchleistungen erreichen, führt zu einem stetig steigenden
Energiebedarf dieser Sauen (WHITTEMORE 1996).
Doch auch ein in der Laktation auftretendes Proteindefizit der Sauen sollte nicht
unterschätzt werden: So stellten CLOWES et al. (2003) bei Sauen mit geringer
Proteinzufuhr von 491 g Rp/Tag im Vergleich zu Sauen, welche täglich 878 g Rp
aufnahmen, nicht nur deutlich höhere Körpermasseverluste (-13 kg vs. -28 kg KM),
sondern auch eine reduzierte Ovaraktivität mit verminderter Follikelqualität der betroffenen
Schrifttum
7
Sauen fest. Vor diesem Hintergrund sollte für eine ausreichende Kondition zum Absetzen
ein Körpermasseverlust von 5 bis maximal 10 % bzw. 20 kg nicht überschritten werden
(THAKER u. BILKEI 2005; KIRCHGEßNER 2011; KAMPHUES et al. 2014).
Andernfalls sind negative Auswirkung sowohl auf die weitere Fruchtbarkeit, wie ein
verlängertes Absetz-Beleg-Intervall und geringere Ovulationsraten (TANTASUPARUK et
al. 2001; CLOWES et al. 2003; THAKER u. BILKEI 2005; KIRCHGEßNER 2011), als
auch auf die Langlebigkeit der Sauen zu erwarten (TROTTIER et al. 2015).
Aus diesen Gründen kommt einer optimalen Versorgung der Sau mit Energie und
Nährstoffen eine herausragende Bedeutung zu. So konnte gezeigt werden, dass durch eine
zusätzliche Aufnahme von Energie und Protein in der Laktation die Milchleistung dieser
Sauen sowie das Absetzgewicht der Ferkel gesteigert (NELSSEN et al. 1985; DOURMAD
et al. 1998), die Mobilisierung von Körperfettreserven der Sau reduziert (MCNAMARA u.
PETTIGREW 2002) und das Absetz-Östrus-Intervall verkürzt (KOKETSU et al. 1998;
DERKING 2015) werden konnten. Zudem wurde ein deutlicher Zusammenhang zwischen
den aufgetretenen Körpermasseverlusten in der Laktation und den Reproduktionsleistungen
der folgenden Abferkelung nachgewiesen (DE RENSIS et al. 2005; THAKER u. BILKEI
2005).
Um übermäßige Körpermasseverluste der Sauen in der Laktation zu verhindern, wird von
vielen Autoren eine frühe Beifütterung der Saugferkel empfohlen (LINDBERG et al. 1997;
JEROCH et al. 1999). Laut den Empfehlungen zur Energie- und Nährstoffversorgung von
Schweinen kann pro kg Ergänzungsfutter, welches von den Saugferkeln aufgenommen
wird, 22 MJ ME für die Sau eingespart werden, was einem verminderten
Körpersubstanzverlust von 0,9 kg entspricht (GFE 2006). Verschiedene Untersuchungen
aus den letzten Jahren zeigen jedoch nicht immer positive Effekte einer frühen
Ferkelbeifütterung auf die Körpermassenentwicklung der Sau: So wirkte sich eine
Supplementation von Milchaustauscher in der Abferkelbucht zwar positiv auf die
Ferkelentwicklung aus (nach 3-wöchiger Säugezeit 6,13 vs. 6,74 kg KM), die
Rückenspeckdicke der Sau war jedoch unbeeinflusst und das Körpergewicht der Sauen
dieser Versuchsgruppen sogar um ca. 2 kg geringer (DUNSHEA et al. 1999). Studien von
AZAIN et al. (1996) und PUSTAL (2014) kommen zu ähnlichen Ergebnissen. Da die
Schrifttum
8
Milchleistung der Sau größtenteils von dem Aufnahmevermögen der Ferkel und der
Gesäugestimulation bestimmt wird (QUESNEL et al. 2015), sind die durch die frühe
Beifütterung gut entwickelten und vitalen Ferkel in der Lage das Gesäuge intensiver zu
stimulieren und größere Milchmengen aufzunehmen (ALGERS u. JENSEN 1991; KING et
al. 1997). Die hierdurch ansteigende produzierte Milchmenge der Sau und dem dadurch
steigenden Energie- und Nährstoffbedarf kann die Sau bei begrenzter Futteraufnahme
wiederrum nur durch eine forcierte Einschmelzung von Körpersubstanz begegnen, was die
oben erwähnte Situation weiter verschlimmert. Aus diesen Gründen ist eine maximale
Futteraufnahme der Sau in der Laktation die einzige Möglichkeit die Sau vor zu großen
Körpermassenverlusten zu schützen und somit von größter Bedeutung (AHERNE u.
WILLIAMS 1992; EISSEN et al. 2000; KAMPHUES et al. 2014).
Einflussfaktoren auf die Futteraufnahme bei Schweinen 2.1.3
Vielfältige Faktoren und Parameter regeln die Futteraufnahme bei Schweinen. So wird
beispielsweise im Gastrointestinaltrakt über Dehnungsrezeptoren der Füllungszustand von
Magen und Darm ermittelt und diese Information an das Zentralnervensystem,
insbesondere den Hypothalamus weitergeleitet und dort verarbeitet (JEROCH et al. 1999;
CUMMINGS u. OVERDUIN 2007; SOMMER 2007).
Auch die Energie- und Proteinkonzentration des angebotenen Futters sind von großer
Bedeutung für die Futteraufnahme bei Schweinen: So konnte bei steigender
Energiekonzentration im Futter nicht nur eine reduzierte Futteraufnahme von Schweinen
nachgewiesen werden (SCHARRER u. GEARY 1977; JEROCH et al. 1999); vielmehr
konnte gezeigt werden, dass beispielsweise wachsende Schweine in der Lage zu sein
scheinen bei freien Zugang zu jeweils einem energie- bzw. proteinreichen Futter eine
Ration zusammenzustellen, die ihrem Wachstumsvermögen entspricht (KYRIAZAKIS et
al. 1990; BRADFORD u. GOUS 1991).
Die Futteraufnahme wird innerhalb jeden Tieres durch ein Zusammenspiel von chemischen
und mechanischen Rezeptoren und zentralnervösen Strukturen reguliert (SCHARRER u.
GEARY 1977; EISSEN et al. 2000), jedoch wird diese auch durch äußere Faktoren
maßgeblich beeinflusst. Wesentliche äußere Einflussfaktoren sind nicht nur die
Schrifttum
9
Verfügbarkeit und Akzeptanz des angebotenen Wassers und Futters, auch Faktoren des
Individuums an sich, wie das Alter, die Wurfnummer, die Genetik oder die soziale
Stellung, aber auch Erkrankungen des Tieres haben Auswirkungen auf die Futteraufnahme
(O'GRADY et al. 1985; EISSEN et al. 2000; KRUSE et al. 2011; KAMPHUES et al.
2014).
Zudem scheinen die Fütterung und die Zusammensetzung des Futters in der Gravidität
einen Einfluss auf die Futteraufnahme in der folgenden Laktation zu haben (O'GRADY et
al. 1985; DOURMAD 1991; EISSEN et al. 2000): Bei einer restriktiven Futterzuteilung in
der Gravidität (1,8-2,7 kg/Tag) und einer ad-libitum-Fütterung unmittelbar post partum,
konnte in der ersten Laktationswoche im Vergleich zu den folgenden Wochen eine um bis
zu 15 % geringere Futteraufnahme im Vergleich zu der mittleren Futteraufnahme in der
ganzen Laktation beobachtet werden, was mit einer notwendigen Adaptation des
Verdauungstraktes an die großen Futtermengen erklärt wurde (DOURMAD 1991). Diese
These bestätigen auch die Untersuchungen von FARMER et al. (1996), in denen Sauen,
welche bereits in der Gravidität hohe Mengen an rohfaserreichen Futter erhielten, in der
Laktation die höchsten Futteraufnahmen zeigten.
Dass darüber hinaus die Körperkondition zur Abferkelung von großer Bedeutung für die
spätere Futteraufnahme in der Laktation ist, belegen diverse Untersuchungen, in denen
Sauen mit hohen Ernährungsniveau während der Trächtigkeit die niedrigsten
Futteraufnahmen in der Laktation aufwiesen (DOURMAD 1991, 1993; PRUNIER et al.
2001; KIRCHGEßNER 2011). Je größer die gemessene Rückenspeckdicke bzw. der Body
Condition Score der Sauen zur Geburt, desto geringer war die Futteraufnahme in der
Laktation (O'GRADY et al. 1985; DOURMAD 1991). Bereits O'GRADY et al. (1985)
stellten eine um knapp 10 % geringere Futteraufnahme in der Laktation bei fetten Sauen
fest (4,86 kg vs. 4,48 kg). DOURMAD (1991) wiesen pro in der Trächtigkeit zusätzlich
aufgenommenen MJ DE/Tag einen Rückgang der Futteraufnahme in der Laktation um
50 g/Tag nach. Auch PRUNIER et al. (2001) beobachteten eine um 16 % reduzierte
Futteraufnahme (5,8 vs. 4,9 kg uS) bei Sauen, welche in der Trächtigkeit 190 % ihres
Energiebedarfes an Energie zugeteilt bekamen im Vergleich zu Sauen mit einer
Energieaufnahme von 115 % des Bedarfes.
Schrifttum
10
COOLS et al. (2014) dagegen konnten diesen Effekt nicht beobachten, allerdings bekamen
die Sauen in diesem Versuch bis zum 105. Tag der Trächtigkeit ein Tragendfutter restriktiv
(ca. 3 kg/Tag) zugeteilt und erst ab diesen Zeitpunkt Laktationsfutter ad libitum. EISSEN et
al. (2000) und FORBES (2007) vermuten hinter dieser reduzierten Futteraufnahme von sehr
gut konditionierten Sauen eine höhere Glukosetoleranz zusammen mit einer
Insulinresistenz, welche durch eine hohe Energieaufnahme während der Trächtigkeit
hervorgerufen wird.
Ein besonders großer direkter Einfluss auf die Futteraufnahme laktierender Sauen kann bei
hohen Umgebungstemperaturen beobachtet werden (BLACK et al. 1993; EISSEN et al.
2000; KIRCHGEßNER 2011). So werden durch den hohen Metabolismus in der Laktation
große Mengen an Wärme im Tierkörper produziert – ca. 15 % der aufgenommenen Energie
gehen in der Laktation als Hitze aufgrund von Milchproduktion verloren (THEIL 2015) – ,
welche nur dann in ausreichender Menge an die Umgebung abgegeben werden können,
wenn die Umgebungstemperatur nicht zu hoch ist (FORBES 2007; KIRCHGEßNER 2011).
Bei Überschreitung dieser Temperaturgrenze kann die Sau die Körpertemperatur lediglich
über eine forcierte Atmung und die durch den ausgeatmeten Wasserdampf entstehende
Verdunstungskälte, oder über eine Reduktion der freiwerdenden Stoffwechselwärme durch
eine Senkung der Futteraufnahme regulieren (WILLIAMS 1998).
BLACK et al. (1993) konnten einen Rückgang der Futteraufnahme um 40 % (von ca. 3,5
kg auf ca. 2 kg uS) feststellen, wenn die Umgebungstemperatur im Abferkelstall von 18 °C
auf 28 °C angehoben wurde. Insgesamt kann davon aufgegangen werden, dass bei Anstieg
der Raumtemperatur über 20 °C die Energieaufnahme pro Grad um ca. 1 % bzw. 120-
140 g/Sau und Tag abnimmt (JEROCH et al. 1999; KAMPHUES et al. 2014). In einer
anderen Studie, in der Sauen im Abferkelstall unterschiedlichen Temperaturen zwischen
18-29 °C ausgesetzt waren, konnte jedoch eine deutliche Reduktion der Futteraufnahme
erst bei Temperaturen von über 25 °C nachgewiesen werden (QUINIOU u. NOBLET
1999). Auch diverse andere Untersuchungen belegen geringere Futteraufnahmen
laktierender Sauen bei steigenden Temperaturen (KOKETSU et al. 1996; PRUNIER et al.
1997; SILVA et al. 2006; MALMKVIST et al. 2012). Eine Übersicht über die ermittelten
Schrifttum
11
Futteraufnahmen von laktierenden Sauen bei unterschiedlichen Umgebungstemperaturen
gibt Tabelle 2.
Tabelle 2: Mittlere Futteraufnahmen (kg) von laktierenden Sauen bei unterschiedlichen Temperaturen in Untersuchungen von PRUNIER et al. (1997), QUINIOU und NOBLET (1999) und
MALMKVIST et al. (2012)
Autor 15 °C 18 °C 25 °C 27 °C 29 °C
PRUNIER et al. (1997) 6,10a
4,40b
QUINIOU und
NOBLET (1999) 5,66
a 4,95
b 4,52
b 3,08
c
MALMKVIST et al.
(2012) 7,23
a 5,63
b
a,b,c ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Analog zu der reduzierten Futteraufnahme wurde in vielen Untersuchungen auch von einer
reduzierten Milchleistung bzw. einem geringeren Wurfzuwachs der Ferkel bei sehr warmen
Temperaturen berichtet (BLACK et al. 1993; PRUNIER et al. 1997; QUINIOU u.
NOBLET 1999; RENAUDEAU u. NOBLET 2001). So sank die Milchleistung von
10,43 kg/Tag auf 7,35 kg/Tag ab, wenn die Umgebungstemperatur von 20 °C auf 29 °C
angehoben wurde (RENAUDEAU u. NOBLET 2001). Eine Ursache dafür sehen BLACK
et al. (1993) in einer Umverteilung des Blutes von der Milchdrüse in die Haut im Rahmen
der Thermoregulation, sodass die für die Milchbildung benötigten Nährstoffe aus dem Blut
für eine ausreichende Milchsynthese fehlen. Zudem mangelt es der Sau durch die
hitzebedingte geringere Futteraufnahme an Energie und wichtigen Nährstoffen für die
weitere Milchproduktion (WILLIAMS 1998).
Fütterungskonzepte für laktierende Sauen 2.2
Um den wechselnden Anforderungen der Sauen an den Energie- und Nährstoffbedarf in der
Hochträchtigkeit und der Laktation im Abferkelstall gerecht zu werden, wurden nicht nur
unterschiedliche Futterzusammensetzungen, sondern auch eine Reihe von verschiedenen
Fütterungssystemen und – techniken entwickelt. Generell wird zwischen einer sogenannten
Alleinfütterung, bei welcher ausschließlich ein dem Bedarf der Tiere angepasstes
Alleinfutter verwendet wird, und einer kombinierten Fütterung unterschieden
(KIRCHGEßNER 2011; KAMPHUES et al. 2014).
Schrifttum
12
Während eine kombinierte Fütterung, bei welcher wirtschaftseigene Futtermittel mit einem
Ergänzungsfutter kombiniert werden, eher bei tragenden Sauen oder in Betrieben mit einer
Flüssigfütterungsanlage zum Einsatz kommt, wird die Alleinfütterung eines Tragenden-
oder Laktationsfutters insbesondere in den Betrieben gesehen, in welchen die
Futterzuteilung via Rohrketten und Volumendosierer vorgenommen wird. Bei Fütterung
eines Alleinfutters richtet sich der mengenmäßige Einsatz zum einen nach dem
Leistungsstadium der Sau und den daraus resultierenden Energie- und Nährstoffbedarf und
zum anderen nach dem Gehalt an Energie und an Nährstoffen in dem eingesetzten
Laktationsfutter (KIRCHGEßNER 2011).
In der gängigen Fütterungspraxis erfolgt die Futterzuteilung vor der Abferkelung und den
ersten Tagen nach der Geburt restriktiv (ca. 40 MJ ME/Sau/Tag); post partum wird die
zugeteilte Futtermenge stufenweise angehoben, sodass nach ca. 7-10 Tagen die maximale
Futtermenge erreicht wird (JEROCH et al. 1999; KIRCHGEßNER 2011; KAMPHUES et
al. 2014). Diese maximale Futtermenge sollte nach Meinung von KAMPHUES et al.
(2014) durch eine ad-libitum-Fütterung der Sauen bei Würfen mit mehr als 10 Ferkeln
erzielt werden. Zusätzlich empfehlen einige Autoren am Tag der Geburt zur MMA-
Prophylaxe eine Futtermengenrestriktion auf 1-2 kg täglich (GÖRANSSON 1989;
JEROCH et al. 1999); diese Fütterungspraxis wird von anderen Autoren jedoch zunehmend
kritisch hinterfragt (DEROUCHERY et al. 2007; KIRCHGEßNER 2011).
Auch die Anfütterung der Sauen nach der Geburt stellt eine große Herausforderung für den
Landwirt dar. Einerseits können durch eine zu schnelle postpartale Futtermengensteigerung
Verdauungsstörungen, Futterverweigerungen in der Laktation sowie eine verstärkte
Disposition für eine MMA-Erkrankung hervorgerufen werden (GÖRANSSON 1989;
JEROCH et al. 1999; MAES et al. 2010; PAPADOPOULOS et al. 2010). Andererseits wird
durch eine zu langsame Futtermengensteigerung die gesamte in der Laktation
aufgenommene Futtermenge reduziert, da fehlende Futtermengen in der ersten
Laktationswoche nicht durch eine höhere Futteraufnahme in der weiteren Laktation
kompensiert werden (AHERNE u. WILLIAMS 1992; VIGNOLA 2009). Dies führt zu
einer zusätzlichen Verstärkung der Defizite an Energie und Nährstoffen wie Protein oder
Lysin in der Laktation insbesondere bei einer kurzen Laktationsdauer. Somit lauten
Schrifttum
13
Empfehlungen der Kansas State University die zugeteilten Futtermengen innerhalb von drei
Tagen auf ein ad-libitum-Fütterungsniveau anzuheben (DEROUCHERY et al. 2007).
Andere Autoren konnten keine negativen Auswirkungen einer frühen ad-libitum-Fütterung
der Sauen beobachten und empfehlen diese Art der Fütterung aufgrund höherer
Futteraufnahmen in der Laktation, weniger Körpermasseverluste und höhere
Absetzgewichte, bereits vor der Geburt bzw. unmittelbar nach der Abferkelung (STAHLY
et al. 1979; TOKACH u. DIAL 1992; NEIL 1996; COOLS et al. 2014).
Störungen der Geburt und des Puerperiums 2.3
Einer der wichtigsten und weltweit verbreiteten Erkrankungskomplexe der Sau nach der
Geburt ist die Mastitis-Metritis-Agalaktie (MMA) (PLONAIT 2004; JENNY 2015). Da
jedoch eine Metritis oder eine komplette Agalaktie der Sau nur in wenigen Fällen auftreten
(REINER et al. 2009), wird im internationalen Sprachgebrauch der Begriff Postpartales
Dysgalaktie-Syndrom (PPDS) bevorzugt (MARTINEAU et al. 2012). Die Bezeichnung
MMA wird jedoch im Folgenden wegen des verbreiteten Gebrauchs im deutschen
Sprachraum beibehalten. Die Inzidenz der Erkrankung beträgt ca. 13 %, variiert jedoch
zwischen Herden und Ländern und ist aufgrund der vielen verschiedenen
Erscheinungsbilder dieser Erkrankung schwierig zu ermitteln (HIRSCH et al. 2003;
MARTINEAU et al. 2012; JENNY 2015).
Hauptsymptom dieses Erkrankungskomplexes, welcher nahezu ausschließlich in den ersten
3 Tagen post partum auftritt, ist eine ungenügende Milchproduktion, was sich wiederrum in
höheren Saugferkelverlusten und heterogenen Würfen zum Zeitpunkt des Absetzen äußert
(BÄCKSTRÖM et al. 1984; PLONAIT 2004). Weitere Symptome bei der Sau sind
Mastitis, Ödeme der Milchdrüse, vaginaler Ausfluss, Fieber und eine reduzierte
Futteraufnahme bis hin zur Anorexie (MARTINEAU et al. 1992). Dabei ist der
Ausprägungsgrad der Symptome zwischen den einzelnen Tieren einer Herde sehr variabel
(HERMANSSON et al. 1978), sodass insbesondere in „modernen“ Betrieben mit gutem
Gesundheitsstatus zunehmend subklinische Erkrankungen beobachtet werden
(MARTINEAU et al. 1992). Obwohl das Auftreten von Fieber als ein Indikator einer
MMA-Erkrankung angesehen wird, ist dessen Definition sehr umstritten: Während in
älteren Untersuchungen von einer MMA-Erkrankung ab einer Körpertemperatur von
Schrifttum
14
39,5°C ausgegangen wird (SCHULZ 1987; GÖRANSSON 1989), zeigen neuere
Untersuchungen, dass die Körpertemperatur gesunder, laktierender Sauen aufgrund der
produzierten Stoffwechselwärme zwischen 38,4 - 40,0°C betragen kann und deshalb nicht
als alleiniges Merkmal zur Diagnose einer MMA-Erkrankung dienen sollte (DE
BRAGANCA et al. 1997; PLONAIT 2004; REINER et al. 2009; MARTINEAU et al.
2012). Als weiteres Merkmal einer MMA-Erkrankung wird zudem von
Fruchtbarkeitsproblemen der betroffenen Sauen wie eine verlängerte Zwischenwurfzeit
sowie reduzierte Anzahl geborener Ferkel im folgenden Wurf berichtet (HOY 2006).
Die Pathogenese dieses multifaktoriellen Krankheitsgeschehens ist bis heute nicht
vollständig aufgeklärt: Jedoch scheinen durch E.-coli-Bakterien freigesetzte Endotoxine
und die daraus resultierenden Veränderungen immunologischer und hormoneller
Funktionen maßgeblich an der Entstehung des Krankheitskomplexes beteiligt zu sein
(REINER et al. 2009; MARTINEAU et al. 2013). So soll durch freies Endotoxin im Blut
die Prolaktinsynthese inhibiert werden, was sich wiederrum negativ auf das Einsetzen und
den Erhalt der Milchproduktion auswirkt (SMITH u. WAGNER 1984; KAMPHUES et al.
1998).
Bei Eindringen infektiöser Noxe, wie z.B. E.-coli-Bakterien, oder Auftreten eines
Gewebeschadens werden sogenannte „sentinel cells“ (Makrophagen, Dendritische Zellen,
Mastzellen) aktiviert, woraufhin diese proinflammatorische Zytokine wie IL-1, IL-6 und
TNFα produzieren (TIZARD 2008). Unter dem Einfluss der proinflammatorischen
Zytokine werden in den Hepatozyten Akute-Phase-Proteine, beim Schwein hauptsächlich
das C-reaktive Protein (CRP), das Serum-Amyloid-A (SAA) und der Proteaseinhibitor
Major-Akute-Phase-Protein (MAP) synthetisiert (DU CLOS 2000; TIZARD 2013). Durch
Bindung an bakterielle Polysaccharide und Glycolipide sowie an veränderte Zellen im Blut,
fördert CRP insbesondere die Phagozytose und die Aktivierung des Komplementsystems
und ist somit ein wichtiger Bestandteil der Infektionsabwehr (DU CLOS 2000). Die
Bestimmung bestimmter für eine Tierart spezifischer Akute-Phase-Proteine dient zum
einen einem frühzeitigen Erkennen von Krankheiten wie dem MMA-Erkrankungskomplex
(MIRKO u. BILKEI 2004). Zum anderen kann eine Bestimmung bestimmter Akute-Phase-
Proteine auch zu einem besseren Verständnis von Gesundheit und Wohlbefinden vor allem
Schrifttum
15
bei Nutztieren beitragen (MURATA et al. 2004). So wiesen SALAMANO et al. (2008) und
PINEIRO et al. (2007) beispielweise nach Stresssituationen wie nach längeren Transporten
oder bei einem Auftreten von Schwanzbeißen bei Schweinen einen Anstieg der Akute-
Phase-Proteine CRP, Haptoglobin und MAP nach.
Folgende Organe werden als mögliche Eintragsquellen der E.-coli-Bakterien diskutiert:
Gesäuge, Harnblase und harnableitende Wege, Uterus sowie der Verdauungstrakt
(MARTINEAU et al. 1992). Da bei der Mehrzahl der an MMA erkrankten Sauen eine
coliforme Mastitis nachweisbar ist, ist ein galaktogener Eintrag der Bakterien in die
Milchdrüse sehr gut denkbar (PLONAIT 2004). Diese Hypothese wird durch diverse
Untersuchungen gestützt, in denen eine Hypogalaktie und Allgemeinstörungen bei Sauen
durch eine intramammäre Applikation von Koliendotoxinen sowie galaktogene Infektionen
mit Klebsiellen und E. coli hervorgerufen werden konnten (NACHREINER u. GINTHER
1974; BERTSCHINGER et al. 1977; MAGNUSSON et al. 2001). Aus den
Gesäugekomplexen betroffener Tiere konnten vor allem Enterobakterien wie Eschericha,
Citrobacter, Enterobacter sowie Klebsiella isoliert werden (HIRSCH et al. 2003; KEMPER
u. GERJETS 2009), was eine galaktogene Infektion hervorgerufen durch eine fäkale
Kontamination der Milchdrüse wahrscheinlich macht (BERTSCHINGER et al. 1990;
KEMPER u. GERJETS 2009).
Die Rolle der bakteriellen Besiedlung von Uterus und Harnblase in der Pathogenese des
MMA-Geschehens ist noch umstritten. Während im Uterus nur selten gram-negative
Bakterien nachgewiesen werden konnten (MORKOC et al. 1983), kann die Harnblase
insbesondere bei einer ungenügenden Wasseraufnahme durchaus als Reservoir für
coliforme Keime in Frage kommen (DEE 1992; WENDT u. PLONAIT 2004).
Verschiedenen Untersuchungen zufolge ist die Mikroflora des Darmtraktes eine wichtige
Quelle für die Freisetzung von Endotoxinen (REINER et al. 2009; MARTINEAU et al.
2013). So kommt es rund um die Geburt zu einer natürlichen Darmträgheit der Sauen
(TABELING et al. 2003; OLIVIERO et al. 2009; TAN et al. 2015), welche durch eine
Kombination mit einer geringen Futtermenge mit niedrigen Rohfasergehalt, mangelnder
Bewegung und limitierter Wasseraufnahme zusätzlich verstärkt wird (KAMPHUES et al.
2000; TABELING et al. 2003). Eine Ansammlung von harten Kotmassen im Darmlumen
Schrifttum
16
stellt nicht nur ein mechanisches Geburtshindernis dar (COWART 2007). Bei Vorliegen
einer Stase könnte es vielmehr durch eine massive Bakterioloyse (mangels fermentierbaren
Substrates) zu einer übermäßigen Anflutung von Endotoxinen kommen, die dann bei einer
gestörten Darmbarriere vermehrt absorbiert werden (KAMPHUES et al. 1998; REINER et
al. 2009).
Einen Hinweis auf eine gestörte Darmintegrität kann auch der D-Laktatgehalt im Serum
geben (RIXEN et al. 2002). Kommt es zu einer verminderten Perfusion der Peripherie und
somit auch der Darmmukosa, wie z.B. bei einem Schockgeschehen, so können durch die
gestörte Darmbarriere sowohl vermehrt Endotoxine als auch Stoffwechselprodukte der
Dickdarmflora absorbiert werden (DEITCH 1990). Da D-Laktat (die linksdrehende Form
der Milchsäure) nahezu ausschließlich durch Bakterien produziert werden kann, weisen D-
Laktatwerte im Serum im millimolaren Bereich zum einen auf eine forcierte
Dickdarmfermentation und zum anderen auf eine Störung der Blut-Darmschranke
zusammen mit einer forcierten Absorption des gebildeten D-Laktats hin (EWASCHUK et
al. 2005). Bei Ratten wurde beispielweise bei einer unter experimentellen Bedingungen
ausgelöste intestinalen Ischämie ein Anstieg der D-Laktatkonzentrationen im Blut von
0,25 mmol/l auf 0,81 mmol/l beobachtet (DUZGUN et al. 2006). Auch bei Kälbern mit
einem starken Durchfallgeschehen konnte bereits eine D-Laktatazidose (13,9 mmol/l)
beobachtet werden (EWASCHUK et al. 2004).
Als weitere wichtige Risikofaktoren für die Entstehung einer MMA-Erkrankung werden
insbesondere Stressfaktoren jeglicher Art, wie beispielsweise spätes Umstallen der
tragenden Sauen in den Abferkelstall, Hitzestress und enge Abferkelbuchten diskutiert
(MAES et al. 2010; PAPADOPOULOS et al. 2010; JENNY 2015). So konnte gezeigt
werden, dass Sauen mit einer im Vergleich zur Kontrollgruppe höheren
Cortisolkonzentrationen im Blut eine längere Geburtsdauer aufwiesen und häufiger an
MMA erkrankten (SMITH u. WAGNER 1984; PELTONIEMI u. OLIVIERO 2015). Auch
ein spätes Eingliedern von Remonten in die Großgruppe kann aufgrund einer fehlenden
Immunanpassung dieser Tiere zu einer MMA-Prädisposition beitragen (JENNY 2015).
Jedoch scheinen auch andere Faktoren wie die Durchführung einer Geburtshilfe,
Lahmheiten der Sauen, überkonditionierte Sauen zur Geburt (RSD > 17 mm) sowie eine zu
Schrifttum
17
schnelle Umstellung einer restriktiven zu einer ad-libitum-Fütterung post partum ein Risiko
für die Entstehung dieses Erkrankungskomplexes darzustellen (OLIVIERO et al. 2010;
PAPADOPOULOS et al. 2010; BARDEHLE et al. 2012; MARTINEAU et al. 2012;
JENNY 2015). Eine Übersicht über die pathophysiologischen Hintergründe der MMA-
Entstehung ist in Abbildung 1 dargestellt.
Abbildung 1: Pathophysiologische Hintergründe der Entstehung von MMA, modifiziert nach MARTINEAU et al. (1992)
Chemische Struktur und Terminologie der Rohfaser 2.4
Im Rahmen der klassischen Weender Analyse ist die Fraktion der Rohfaser als der in
verdünnten Säuren und Laugen unlösliche fett- und aschefreie Rückstand definiert und
umfasst nach dieser Definition nur unlösliche Anteile von Zellulosen, Hemizellulosen wie
Pentosane und Hexosane sowie Lignin (KAMPHUES et al. 2014). Alle löslichen
Faserbestandteile werden hingegen der Fraktion der Stickstoff-freien-Extraktstoffe (NfE)
zugerechnet, welche je nach Futtermittel wechselnde Anteile an Gerüstsubstanzen enthält
(KIRCHGEßNER 2011).
In der Humanernährung werden pflanzliche Faserkomponenten bzw. Ballaststoffe als
Summe aus Lignin und Polysacchariden bezeichnet, welche nicht durch körpereigene
Enzyme, sondern nur von Enzymen der intestinalen Mikroflora verdaut werden können
Schrifttum
18
(TROWELL et al. 1976). Diese Definition lässt sich auch auf alle nicht-wiederkauenden
Tiere anwenden und beinhaltet somit alle Polysaccharide inklusive resistenter Stärke sowie
lösliche und unlösliche Nicht-Stärke-Polysaccharide (NSP), welche den Dickdarm des
Tieres erreichen und dort durch mikrobielle Enzyme abgebaut werden (MONTAGNE et al.
2003). Im Zuge der mikrobiellen Verdauung entstehen je nach Faserart mehr oder weniger
große Mengen an flüchtigen Fettsäuren, Hitze, Gase und Mikroben, von welchen jedoch
nur die flüchtigen Fettsäuren zur Energiegewinnung vom Tier genutzt werden und die
restlichen Verdauungsprodukte vom Tier ausgeschieden werden (MATHERS 1991). Die
damit verbundenen Energieverluste insbesondere in Form von Fermentationswärme führen
dazu, dass die fermentierbaren Kohlenhydrate eine um 15 % geringere energetische
Effizienz im Vergleich zur praecaecal verdaulichen Stärke aufweisen (GFE 2006). Die bei
der Fermentation von faserreichen Futtermitteln entstehenden flüchtigen Fettsäuren Acetat,
Propionat und Butyrat (durchschnittlich im Verhältnis von 65:20:10) liefern nicht nur
Energie und fördern die epitheliale Darmzellproliferation, sondern führen auch zu einer
moderaten Absenkung des pH-Wertes im Dickdarm, was das Wachstum bestimmter
Bakterienarten limitiert (JEROCH et al. 1999; WENK 2001; CONLON u. BIRD 2014).
Je nach Herkunft (Pflanzenart), Verholzungsgrad, Löslichkeit sowie der Verarbeitung nach
der Ernte unterscheiden sich die verschiedene Rohfasertypen in ihrer Verdaulichkeit bzw.
mikrobiellen Abbaubarkeit (MATHERS 1991). Da Lignin für das Schwein nahezu
unverdaulich ist, sinkt die Verdaulichkeit des Futtermittels mit steigenden Ligningehalten
(JOHNSTON et al. 2003). Auch konnte gezeigt werden, dass Rübentrockenschnitzel und
Sojabohnenschalen sehr gut verdaulich sind, während Weizenstroh kaum verdaut wird
(CHABEAUTI et al. 1991; NOBLET u. LE GOFF 2001). In dem von DE LEEUW et al.
(2008) entwickelten Schema werden die verschiedenen Kohlenhydratfraktionen in
Futtermitteln unter Berücksichtigung der Fermentation durch die mikrobielle Darmflora
klassifiziert (Abbildung 2).
Schrifttum
19
Abbildung 2: Schematische Darstellung der verschiedenen Kohlenhydratfraktionen in Futtermitteln;
modifiziert nach DE LEEUW et al. (2008)
Die Fraktion der NSP, welche hauptsächlich aus Zellulose, Pektinen, β-Glucanen und
Hemizellulose (Pentosane und Hexosane) besteht, wird in wasserlösliche und
wasserunlösliche NSP untergliedert (PLUSKE et al. 2001; KAMPHUES et al. 2014).
Während lösliche Faserbestandteile wie Pectine und ß-Glucane zu einer verzögerten
Magenentleerung, einer beschleunigten Darmpassage und verlangsamten
Glucoseabsorption führen, wird durch den Einsatz von unlöslichen Faserbestandteilen die
Darmpassage im Dickdarm verlangsamt und die Kotmasse gesteigert (MONTAGNE et al.
2003). Dabei scheint die in vitro nachgewiesene Löslichkeit ein guter Indikator für die
Fermentation in vivo zu sein: So werden lösliche Faserbestandteile im Gegensatz zu
unlöslichen schnell und nahezu vollständig fermentiert, was wiederrum zu einer höheren
Anzahl und Aktivität der im Dickdarm befindlichen Bakterien führt (KNUDSEN 2001;
WENK 2001).
Außerdem wird durch ein hohes Wasserbindungsvermögen der löslichen Faserbestandteile,
welches auch als Wasserbindungskapazität bzw. WHC (water-holding-capacity) bezeichnet
wird, die Viskosität des Darminhaltes deutlich gesteigert (EASTWOOD u. MORRIS 1992;
Schrifttum
20
DONGOWSKI u. EHWALD 1999). Hierdurch kann es einerseits zu einer beeinträchtigten
Nährstoffresorption insbesondere im Dünndarm kommen (GRAHAM u. ÅMAN 1991;
SMITS et al. 1997; PLUSKE et al. 2001), andererseits wird durch die Einlagerung von
Wasser als sogenannte Hydrokolloide die Oberfläche der Faserpartikel vergrößert, wodurch
den Bakterien des Dickdarms ein verbesserter Zugang zu den abbaubaren Nährstoffen zur
Verfügung steht (KNUDSEN 2001; JOHNSTON et al. 2003).
Entgegen der Meinung, dass durch Faserzulagen die Energie- und Nährstoffaufnahme aus
der Ration bei Schweinen negativ beeinträchtigt wird (GRAHAM u. ÅMAN 1991;
NOBLET u. LE GOFF 2001; WENK 2001), konnten RENTERIA-FLORES et al. (2008)
zeigen, dass für die Verdaulichkeit der Nährstoffe die Art der Faser wichtiger zu sein
scheint als die eingesetzte Menge: Während durch die Zulage von unlöslicher Faser
(Weizenstroh) die Energieverdaulichkeit verringert wurde, stieg diese bei Zulage löslicher
Faser (Haferkleie) sogar an. Auf die Stickstoff-Retention konnte bei keiner Faserart ein
Einfluss nachgewiesen werden. Eine Übersicht über die verschiedenen Faserfraktionen
einiger Futtermittel ist in der Tabelle 3 dargestellt (JOHNSTON et al. 2003).
Tabelle 3: Faserfraktionen einiger Futtermittel; modifiziert nach JOHNSTON et al. (2003)
Futtermittel Rfa % NDF % ADF % TDF % SDF % IDF %
Mais 2,6 9,0 3,0 6,4 1,7 4,7
SES 44 % Rp 7,0 13,3 9,4 33,1 1,6 31,5
SES 47 % Rp 3,0 8,9 5,4 27,6 1,4 26,2
Alfalfa 26,2 45,0 35,0 56,7 4,2 52,4
Haferkleie - 19,2 - 15,8 7,5 8,3
DDGS 9,9 44,0 18,0 42,9 0,7 42,2
Haferstroh 40,5 70,0 47,0 76,6 2,2 74,4
Sojabohnenschalen 40,1 67,0 50,0 83,9 8,4 75,5
Weizenstroh 41,6 85,0 54,0 71,5 0,5 71,0
Maisstängel 34,4 67,0 39,0 77,3 2,9 74,4
Zuckerrübenschnitzel 19,8 54,0 33,0 65,6 11,7 53,9
Kartoffelpülpe - - - 33,3 11,0 22,3 NDF=Neutral Detergent Fiber, ADF=Acid Detergent Fiber, TDF=Total Dietary Fiber (SDF+IDF);
SDF=Soluble Dietary Fiber, IDF=Insoluble Dietary Fiber; DDGS=Dried Destillers Grains Solubles
Schrifttum
21
Einfluss einer faserreichen Fütterung auf das Wohlbefinden von 2.5
Sauen
Das Wohlbefinden von Tieren wurde im Jahre 1973 folgendermaßen definiert: „Es handelt
sich um einen Zustand physischer und psychischer Harmonie des Tieres in sich und mit
seiner Umwelt. Regelmäßige Anzeichen des Wohlbefindens sind Gesundheit und ein in
jeder Beziehung normales Verhalten. Beide setzen einen ungestörten, artgemäßen und
verhaltensgerechten Ablauf der Lebensvorgänge voraus“(LORZ 1973). Nach Meinung von
DE LEEUW et al. (2008) ist das Wohlergehen von Tieren beeinträchtigt, wenn zum einen
bestimmte Verhaltensmuster, wie beispielsweise die Nahrungssuche und das Wühlen beim
Schwein, nicht ausgelebt werden können und zum anderen die Futtermenge nicht zu einer
Sättigung des Tieres führt. So werden Stereotypien, welche als atypische Verhaltensweisen
nach obiger Definition als Zeichen eines reduzierten Wohlbefindens gewertet werden
können, besonders häufig bei restriktiv gefütterten Sauen unmittelbar nach der
Futteraufnahme beobachtet (TERLOUW et al. 1993). Da in verschiedenen Untersuchungen
nachgewiesen wurde, dass sowohl durch Steigerung der zugeteilte Futtermenge, als auch
des Faseranteils in der Ration diese Verhaltensweisen effektiv reduziert werden konnten
(BROUNS et al. 1994; BERGERON et al. 2000; MEUNIER-SALAÜN et al. 2001), kann
davon ausgegangen werden, dass diese Verhaltensmuster insbesondere durch eine
mangelnde Sättigung der Tiere hervorgerufen werden (DE LEEUW et al. 2008).
Der Einsatz volumenreicher Rohfaserkomponenten mit hoher Wasserbindungskapazität,
wie beispielsweise Rübentrockenschnitzel oder Sojabohnenschalen, führt nicht nur zu einer
verlangsamten Futteraufnahme, sondern – bedingt durch eine starke Füllung des Magen-
Darm-Traktes – zu einer mechanischen Sättigung des Tieres (BROUNS et al. 1994;
RAMONET et al. 1999; CUMMINGS u. OVERDUIN 2007). Dies wiederrum reduziert das
Auftreten von Aggressionen und Stereotypien restriktiv gefütterter tragender Sauen
(RAMONET et al. 1999; DANIELSEN u. VESTERGAARD 2001; KALLABIS u.
KAUFMANN 2012). Dass faserreiche Rationen stressreduzierend wirken, konnten auch
Untersuchungen von RUSHEN et al. (1999) durch Messung niedrigerer
Cortisolkonzentration im Blut rohfaserreich gefütterter Sauen bestätigen.
Schrifttum
22
Zusätzlich führt die bakterielle Verstoffwechselung von fermentierbarer Rohfaser im
Dickdarm des Schweines zur Bildung von kurzkettigen Fettsäuren, insbesondere Acetat,
Propionat und Butyrat, welche wiederrum über das Darmepithel resorbiert werden und als
Energiequelle für das Tier dienen (BERGMAN 1990). Circa 5-6 h nach einer Mahlzeit
konnte bei Sauen eine zunehmende Unruhe zeitgleich mit einem Abfall der
Glukosekonzentration im Blut beobachtet werden (DE LEEUW et al. 2004). Die Fütterung
einer fermentierbaren Faserquelle (450 g Rübentrockenschnitzel/kg Futter) stabilisierten die
Insulin- und Glucosekonzentrationen im Blut der Tiere und reduzierten die Unruhe
zwischen zwei Fütterungen (DE LEEUW et al. 2004). Aus diesen Gründen wird davon
ausgegangen, dass fermentierbare Rohfaser durch die verzögerte Bildung der kurzkettigen
Fettsäuren im Dickdarm zusätzlich zu der mechanischen Sättigung eine „metabolische
Sättigung“ induziert, wodurch die Dauer des Sättigungsgefühls deutlich verlängert wird.
Doch nicht nur die Futterzusammensetzung, auch die Futtermenge ist von entscheidender
Bedeutung für das Wohlergehen der Tiere. So konnten BERGERON et al. (2000) durch
eine ad-libitum-Fütterung eines faserarmen Kontrollfutters (8 % ADF, 20 % NDF) im
Vergleich zu einer sehr rohfaserreichen jedoch restriktiven Fütterung (29 % ADF, 50 %
NDF; 4,5 kg/Tag) Stereotypien und Unruhen bei tragenden Sauen am stärksten reduzieren.
Einfluss einer faserreichen Fütterung auf die Geburt und das 2.6
Puerperium
Einfluss auf die Geburtslänge 2.6.1
Ein komplikationsloser Geburtsvorgang kann insbesondere durch die Geburtslänge
charakterisiert werden, welche nicht länger als 300 Minuten (5 h) betragen sollte, da mit
steigender Geburtslänge auch die Anzahl totgeborener Ferkel größer wird (OLIVIERO et
al. 2010; PELTONIEMI u. OLIVIERO 2015). Die Geburtslänge wiederrum wird durch
viele verschiedene Faktoren, wie die Anzahl lebend- und totgeborener Ferkel, das
Haltungssystem der Sau sowie anderer Stressfaktoren beeinflusst (VAN DIJK et al. 2005;
OLIVIERO et al. 2010). Neben diesen Einflussfaktoren scheint jedoch auch eine
faserreiche Ration der Sauen rund um die Geburt eine positive Auswirkung auf die
Schrifttum
23
Geburtslänge auszuüben (MORGENTHUM u. BOLDUAN 1987; BILKEI 1990;
BEENING 1999).
Durch die bakterielle Fermentation der ß-glykosidisch gebundenen Kohlenhydrate
faserreicher Rationen im Dickdarm entstehen kurzkettige Fettsäuren (Short-Chain-Fatty
Acids – SCFA), wodurch der pH-Wert der Ingesta abgesenkt wird (SCHNABEL et al.
1990; MATHERS 1991). Je nach Rationszusammensetzung kann das Fermentationsmuster
stark variieren: Während der Abbau leicht fermentierbarer Kohlenhydrate die Bildung von
Propionat und Butyrat fördert, steigt die Konzentration von Acetat durch die Fermentation
schwerer verdaulicher Kohlenhydrate wie beispielsweise Zellulose (FRIEND et al. 1963;
SCHNABEL et al. 1990). Den produzierten SCFA kommen spezielle Aufgaben im
Stoffwechsel des Tieres zu: Acetat dient dem Muskelgewebe als Energiequelle, Propionat
wird in der Leber zu Glucose umgewandelt und Butyrat ist eine wichtige Energiequelle für
das Darmepithel (JENSEN 2001; MONTAGNE et al. 2003). Vor diesem Hintergrund
kommt den SCFA – trotz einer um ca. 15 % geringeren energetischen Effizienz im
Vergleich zu Stärke (GFE 2006) – eine nicht unbedeutende Rolle in der Energieversorgung
des Tieres zu (JØRGENSEN et al. 1997; SERENA et al. 2009). Aufgrund der Tatsache,
dass viele Sauen rund um den Geburtszeitpunkt die Futteraufnahme und folglich
Energieaufnahme verringern (TABELING et al. 2003; QUESNEL et al. 2009; COOLS et
al. 2014), kommt einer faserreichen Fütterung und der daraus resultierenden Bildung von
SCFA in diesem Zeitraum eine besondere Bedeutung als Energiequelle für die Sauen zu
(THEIL 2015): So konnte beispielsweise nachgewiesen werden, dass bei einer täglichen
Fütterung von 2 kg einer Ration, welche v.a. aus löslicher Rohfaser (Rübenschnitzel,
Pektinreste sowie Kartoffelpülpe) bestand, eine hohe und verlängerte Energieaufnahme
mehr als 10 h lang nach der letzten Futteraufnahme in Form von SCFA aus dem Dickdarm
erfolgte (SERENA et al. 2009). Durch die Bereitstellung von Energie in Form von SCFA
für beispielweise die Uterusmuskulatur, kann eine faserreiche Fütterung folglich indirekt zu
einer Verkürzung der Geburtsdauer beitragen (THEIL 2015).
Weiterhin wird insbesondere durch den Einsatz von fermentierbaren Rohfaserquellen mit
einer hohen Wasserbindungskapazität wie Rübentrockenschnitzel und Sojabohnenschalen
der TS-Gehalt des Kotes deutlich gesenkt und die Passagegeschwindigkeit und somit die
Schrifttum
24
Kotabsatzfrequenz erhöht (NELSON et al. 1992; TABELING et al. 2003; WARZECHA
2006). Vor dem Hintergrund, dass die Geburtsdauer von verstopften Sauen mit sehr harten
Kot in einer Studie von OLIVIERO et al. (2010) signifikant länger als bei Sauen mit
weichen Kot war, scheint auch die Kotkonsistenz einen Einfluss auf die Geburtslänge zu
haben. So konnte BEENING (1999) nach Verabreichung von 0,5 g Glaubersalz pro kg KM
und Mahlzeit an Sauen rund um die Geburt nicht nur niedrige TS-Gehalte im Kot (9,7 %),
sondern auch mittels hysterographischer Untersuchungen höhere Kontraktionsfrequenzen
des Myometriums im Vergleich zur Kontrollgruppe (ca. 33 % TS im Kot zur Geburt)
nachweisen. Als möglicher Grund für diese Beobachtung dient die Tatsache, dass harte
Kotmassen im Dickdarm durch Druck auf den Geburtskanal ein mechanisches
Geburtshindernis für die Ferkel darstellen können (COWART 2007; THEIL 2015). Zudem
führen schmerzhafte Zustände wie eine schwere Obstipation zu einer Freisetzung
endogener Opioide, welche die Freisetzung von Oxytocin und somit die
Uteruskontraktionen hemmen (BICKNELL u. LENG 1982; SCHNURRBUSCH 2006).
Insgesamt scheint jedoch nicht nur der Fasergehalt in der Ration, sondern auch die
Faserquelle sowie der Zeitraum und der Beginn der Verabreichung der Faser in der
Trächtigkeit eine wesentliche Rolle in der Beeinflussung der Geburtsdauer zu spielen.
Einige Autoren konnten durch die Zulage von rohfaserreichen Futtermitteln wie Strohmehl,
Maissilage oder Haferspelzen die Geburtsdauer um bis zu 16 % (ausgehend von ca.
32 Min./Ferkel) reduzieren (MORGENTHUM u. BOLDUAN 1987; BILKEI 1990;
BEENING 1999). In einer anderen Untersuchung, in welcher eine faserreiche Ration
bestehend aus verschiedenen Rohfaserquellen wie Zuckerrübenschnitzel, Weizenkleie,
Sonnenblumenmehl und Sojabohnenschalen (3,2% Rfa vs. 12,4% Rfa in der TS) ab der 5.
Trächtigkeitswoche bis zum Tag der Geburt eingesetzt wurde, war die Geburtslänge (211
±12Min.) sowie das Geburtsintervall zwischen den einzelnen Ferkeln (16,5 ±0,9Min.) von
der Fütterung wiederrum unbeeinflusst (GUILLEMET et al. 2007).
Einfluss auf die Kolostrumversorgung der Saugferkel 2.6.2
Unmittelbar nach der Geburt ist die Kolostrumversorgung der neugeborenen Ferkel von
großer Wichtigkeit für das Überleben und die weitere Entwicklung der Ferkel
(DEVILLERS et al. 2011; QUESNEL et al. 2012). Zwar würde eine mittlere
Schrifttum
25
Kolostrummenge von ca. 5,9 kg (THEIL 2015) bei einer empfohlenen
Mindestaufnahmemenge von 250 g Kolostrum pro Ferkel (QUESNEL et al. 2012) für 23,6
Ferkel reichen, jedoch muss beachtet werden, dass die Variation der Kolostrummenge der
einzelnen Sauen sehr hoch und von der Anzahl geborener und saugender Ferkel
weitestgehend unabhängig ist (LE DIVIDICH et al. 2005; QUESNEL et al. 2012). So
konnte gezeigt werden, dass die aufgenommene Kolostrummenge pro Ferkel mit steigender
Wurfgröße deutlich abnimmt und somit hauptsächlich von dem Geburtsgewicht und der
Vitalität der Ferkel bestimmt wird (DEVILLERS et al. 2007).
Eine ausreichende Kolostrumversorgung ist nicht nur essentiell für die Energieversorgung
der Ferkel nach der Geburt, sondern trägt durch die Übertragung maternaler Antikörper
maßgeblich an der Ausbildung einer passiven Immunität der Neugeborenen bei (PLONAIT
2004; LE DIVIDICH et al. 2005). Zur Überprüfung der Kolostrumproduktion von Sauen
eignet sich neben der Bestimmung des IgG-Gehaltes auch die Bestimmung des
Immunokrits im Serum der Ferkel (VALLET et al. 2013). Der Immunokrit, welcher die
Gesamtheit der im Serum enthaltenden Immunglobuline wiederspiegelt, lässt sich sehr
leicht bestimmen und korreliert zu 86 % mit den ermittelten IgG-Konzentrationen im
Ferkelblut (VALLET et al. 2013). So konnte in einer Studie an Ferkeln, welche für die
Nachzucht bestimmt waren, nicht nur gezeigt werden, dass die Ferkel mit niedrigen
Immunokritwerten eine kleinere Überlebenswahrscheinlichkeit haben, sondern auch
langsamer wachsen und selber im ersten eigenen Wurf weniger Ferkel mit reduziertem
Immunokrit und geringerer Wachstumsrate produzieren (VALLET et al. 2015).
Da ein Großteil der Kolostrumproduktion schon in den letzten 10 Tagen der Trächtigkeit
stattfindet, ist es durchaus denkbar, dass die Fütterung der Sau im peripartalen Zeitraum
einen Einfluss auf die Kolostrumproduktion ausüben kann (THEIL 2015). Durch ein
Anheben des Rohfasergehaltes von 2,8 auf 11,0 % bei einer täglichen Energiezufuhr von
33 MJ DE/Tag (2,4 vs. 2,8 kg Futter/Tag) vom 26. Trächtigkeitstag bis zur Geburt konnten
QUESNEL et al. (2009) einen präpartum größeren Prolaktinanstieg zusammen mit einer
tendenziell höheren Kolostrummenge nachweisen. Dass ein Abfall des Progesterons
zusammen mit einem Anstieg des Prolaktinspiegels im Blut 24 h ante partum essentiell für
eine hohe Kolostrumproduktion sind, zeigten auch Untersuchungen von FOISNET et al.
Schrifttum
26
(2010) und LOISEL et al. (2015). So produzierten Sauen mit hohen Progesteron- und
niedrigen Prolaktinkonzentrationen 20-30 Stunden vor der Geburt signifikant weniger
Kolostrum im Vergleich zu Sauen mit einem niedrigen Prolaktin/Progesteronquotienten
(3,48 kg vs. 4,11 kg) (LOISEL et al. 2015). Andere Versuche wiederrum zeigten keinen
Effekt einer faserreichen Fütterung auf die Kolostrummenge, wohl aber auf die
Kolostrumzusammensetzung (LOISEL et al. 2013). So führte beispielsweise ein Zusatz von
Seegras von Tag 107 der Trächtigkeit bis zur Geburt zu höheren IgA- und IgG-Gehalten im
Kolostrum (LEONARD et al. 2012).
Einfluss auf das Auftreten von MMA 2.6.3
Viele Autoren sehen in einer peripartalen Verstopfung von Sauen– aufgrund einer
möglicherweise forcierten Absorption von Endotoxinen im Dickdarm (KAMPHUES et al.
1998; REINER et al. 2009) – einen Risikofaktor für das Auftreten einer MMA-Erkrankung
(HERMANSSON et al. 1978; MARTINEAU et al. 1992; JENNY 2015). Vor dem
Hintergrund, dass durch den Einsatz rohfaserhaltiger Futterkomponenten das Auftreten von
peripartalen Obstipationen reduziert wird (OLIVIERO et al. 2009), konnte BEENING
(1999) eine Reduktion von MMA-Erkrankungen von 25 % in der Kontrollgruppe auf
14,3 % bei Zulage von 300 g Haferspelzen pro Mahlzeit nachweisen. Zudem kommt es
durch den Abbau von leicht fermentierbaren Rohfaserkomponenten zur Freisetzung von
kurzketten Fettsäuren, von denen insbesondere dem Butyrat positive Eigenschaften für eine
intakte Darmbarriere zugeschreiben werden (SIMPSON 1998).
Ein weiterer Aspekt, weshalb durch eine faserreiche Fütterung einer MMA-Erkrankung
entgegenwirkt werden kann, ist die Tatsache, dass ein höherer Rohfaseranteil in der Ration
zu einer höheren Wasseraufnahme führt (TABELING et al. 2003; OLIVIERO et al. 2009).
Eine ausreichend hohe Wasseraufnahme laktierender Sauen ist nicht nur für die
Milchbildung essentiell, sondern beugt zudem einer Vermehrung potentiell pathogener
Erreger in den harnableitenden Wegen und der Harnblase und somit aufsteigenden
Infektionen vor (FINKENSIEP 1993; MROZ et al. 1995; WENDT u. PLONAIT 2004;
JENNY 2015). Aus diesem Grund lauten gängige Empfehlungen den Sauen rund um die
Geburt beispielweise 500 g Weizenkleie pro Tag zu supplementieren oder das
Schrifttum
27
rohfaserhaltigere Tragendfutter bzw. ein Alleinfutter mit 12 %igem Rohfasergehalt in
diesem Zeitraum zu verabreichen (SCHNURRBUSCH 2006; KAMPHUES et al. 2014).
Einfluss auf die Laktation 2.6.4
Diversen Untersuchungen zufolge führt eine Rohfaserzulage durch Haferspelzen,
Zuckerrübenschnitzel, Weizenstroh oder Konjakmehl (der hauptsächlich aus
Glucomannanen bestehende gemahlene Wurzelstock der Pflanze Teufelszunge) in der
Trächtigkeit von Sauen zu einer gesteigerten Futteraufnahme von bis zu 0,94 kg pro Tag in
der darauf folgenden Laktation (FARMER et al. 1996; QUESNEL et al. 2009; VEUM et al.
2009; SUN et al. 2015). MATTE et al. (1994) führt dies auf die Tatsache zurück, dass der
Magen-Darm-Trakt der Tiere bereits durch die voluminösen Futtermassen in der
Trächtigkeit an eine starke Magen-Darm-Füllung adaptiert ist und somit in der Laktation
höhere Futtermengen aufnehmen und verwerten kann. Da die Sättigung der Tiere mitunter
durch Dehnungsreize der Magenwand vermittelt wird, kommt es bei diesen Tieren erst
später zu einer Sättigung und Einstellung der Futteraufnahme (JEROCH et al. 1999). Auch
das vom Fettgewebe sezernierte Hormon Leptin bewirkt eine Reduktion der
Futteraufnahme (BARB 1999). QUESNEL et al. (2009) wiesen in Blut rohfaserreich
gefütterter Sauen in der Trächtigkeit signifikant niedrigere Leptinkonzentrationen nach und
schlossen daraus, dass durch eine Zulage von Rohfaser in der Trächtigkeit die tägliche
Energieaufnahme der Sauen und somit der Fettanteil im Körper reduziert wird. Durch den
geringerer Fettanteil wird weniger Leptin sezerniert, was sich wiederrum positiv auf die
Futteraufnahme auswirkt (QUESNEL et al. 2009).
Sauen, welche in der Trächtigkeit rohfaserreich gefüttert wurden, zeigten zudem eine
höhere Milchleistung, was folglich zu einem höheren Absetzgewicht der Ferkel um bis zu
0,7 kg führte (FARMER et al. 1996; GUILLEMET et al. 2007; QUESNEL et al. 2009;
VEUM et al. 2009). Dies wird als Resultat der gesteigerten Futteraufnahme von bis zu
0,94 kg/Tag bei ad-libitum-Fütterung in der Laktation gewertet, wodurch den Tieren
größere Mengen an Energie und Nährstoffen zur Verfügung steht. Dass die Futteraufnahme
in der Laktation zwar ein wichtiger Faktor für eine hohe Milchleistung darstellt, die Sau
aber dennoch in der Lage ist eine hohe Milchleistung durch den Abbau von Körpermasse
bis zu einem gewissen Grad aufrecht zu erhalten, zeigen Untersuchungen von CLOWES et
Schrifttum
28
al. (2003). Wurde die Proteinzufuhr in der Laktation bei identischer Energiezufuhr massiv
reduziert (von 878 g/Rp/Tag auf 491 g Rp/Tag), so verloren diese Sauen zwar signifikant
mehr Körpermasse (-13 kg vs. -28 kg KM), eine signifikante Reduktion der Zunahmen der
Ferkel konnte jedoch erst ab dem 20. Laktationstag beobachtet werden (CLOWES et al.
2003).
Einfluss einer faserreichen Fütterung auf die Darmgesundheit 2.7
Die Darmgesundheit von Schweinen stellt ein sehr komplexes Themengebiet dar, welches
im Wesentlichen durch Interaktionen zwischen drei Komponenten bestimmt wird: Der Art
und Zusammensetzung des Futters; der Darmbarriere, welche das Darmepithel, die
Mukusschicht sowie das Darm-assoziierte lymphatische Gewebe (GALT) beinhaltet, und
der Mikroflora des Darms (
Abbildung 3) (MONTAGNE et al. 2003). Eine faserreiche Fütterung beeinflusst somit in
Abhängigkeit von der Struktur, Zusammensetzung und Löslichkeit der Faser nicht nur
Komponenten der Darmbarriere, sondern auch die Zusammensetzung der Mikroflora des
Darms (MONTAGNE et al. 2003; JHA u. BERROCOSO 2015).
Abbildung 3: Schematische Darstellung des Ökosystems des Darms; modifiziert nach MONTAGNE
et al. (2003) (modifiziert nach CONWAY (1994))
Schrifttum
29
Einfluss auf die Darmbarriere 2.7.1
Eine rohfaserreiche Fütterung scheint einen Einfluss auf die Darmanatomie und somit auf
die Darmbarriere auszuüben: So konnte nicht nur ein steigendes Leergewicht von Caecum
und Colon rohfaserreich gefütterter Mastschweine, sondern auch eine größere Gesamtlänge
des Colons beobachtet werden (JØRGENSEN et al. 1996). Auch TOPPING et al. (1997)
und MARTINEZ-PUIG et al. (2003) wiesen ein verlängertes Colon bei Flatdeckferkeln
unter Zufuhr von resistenter Stärke nach. Da in den genannten Studien nicht nur die
Verdaulichkeit der organischen Substanz absank (0,89 vs. 0,58), sondern auch die
Passagerate der Ingesta unter der Fütterung von roher Kartoffelstärke bzw. aus Erbsen
gewonnener Faser anstieg, gehen MARTINEZ-PUIG et al. (2003) von einer adaptiven
Darmverlängerung zur verbesserten Absorption der SCFA aus. JIN et al. (1994) setzten der
Ration von Flatdeckferkeln 10 % Weizenstroh über einen Zeitraum von 14 Tagen zu und
wiesen bei konstanter Anzahl an Darmzellen eine höhere Zellteilungsrate der Kryptenzellen
im Kolon nach. Eine mögliche Erklärung für diese gesteigerte Proliferationsrate sehen
SIMON (2001) und MONTAGNE et al. (2003) aufgrund einer höheren Zellabschilferung,
welche durch mechanische Reize der Rohfaser hervorgerufen wird. Die mechanische
Irritation der Darmoberfläche durch vor allem unlösliche Faserbestandteile führt zudem zu
einem höheren Abtrag der Mukusschicht, welche eine Barriere gegen pathogene Bakterien
darstellt (LIEN et al. 2001). Hierdurch wird die Mukusproduktion der Becherzellen
gefördert, wobei der gebildete Mukus zunächst noch unreif ist, was wiederrum einen
Einfluss auf die gebundene Bakterienflora und somit auf die Darmgesundheit haben könnte
(SPECIAN u. OLIVER 1991; MONTAGNE et al. 2003).
Einfluss auf das intestinale Mikrobiom 2.7.2
Die intestinale Mikroflora des Schweins setzt sich aus über 500-1000 unterschiedlichen
Bakterienstämmen zusammen, wobei ca. 80 % den gram-positiven Firmicutes und ca. 10-
15 % den gram-negativen Bacteroidales zuzuordnen sind (LESER et al. 2002; KIM u.
ISAACSON 2015; NIU et al. 2015). Die 16 am häufigsten vorkommenden Bakteriengenera
waren bei den folgenden Autoren KIM et al. (2012) und NIU et al. (2015): Lactobacillus,
Subdoligranulum, Roseburia, Oscillibacter, Eubacterium, Dorea, Streptococcus,
Clostridium, Megasphaera, Escherichia/Shigella, Oribacterium, Blautia,
Schrifttum
30
Faecalibacterium, Coprococcus, Ruminococcus und Treponema. Dabei variiert die Anzahl
der Bakterien in Abhängigkeit vom Abschnitt des Gastrointestinaltraktes und erreicht die
höchste Dichte im Dickdarm mit einer Anzahl zwischen 1010
bis 1012
koloniebildenden
Einheiten pro g Dickdarminhalt (SAVAGE 1977). Durch die Bildung von kurzkettigen
Fettsäuren und Vitaminen trägt die kommensale Bakterienflora nicht nur zur Energie- und
Nährstoffversorgung des Tieres bei, sondern erschwert durch die Konkurrenz um
Nährstoffe und Bindungsstellen auch eine Ansiedlung von potentiell pathogenen Bakterien
(VAN DER WAAIJ et al. 1971; RICHARDS et al. 2005).
Die Zusammensetzung der bakteriellen Mikroflora des Dickdarms hängt wesentlich von der
Fütterung des Tieres ab (ISAACSON u. KIM 2012; AUMILLER et al. 2015; PAßLACK et
al. 2015). Da vor allem rohfaserreiche Futterpartikel mikrobiell abgebaut werden und die
durch den mikrobiellen Abbau von Rohfaserträgern produzierten SCFA eine wichtige
Energiequelle für die Mikroben darstellen, verursacht eine Veränderung der
Rohfaserversorgung des Tieres auch eine Veränderung innerhalb der Darmflora
(METZLER u. MOSENTHIN 2008; JHA u. BERROCOSO 2015). Während durch den
Einsatz eher schwer fermentierbarer Faserarten die Proliferation zellolytisch wirkender
Bakterienspezies wie Ruminococcus flavefaciens gefördert wird, bewirkt der Einsatz von
pektinreichen oder ß-Glucanreichen Faserträgern die Vermehrung von Bacteroides und
Lactobacilli (VAREL et al. 1989; METZLER u. MOSENTHIN 2008; WEISS et al. 2015).
Insbesondere fermentierbare Rohfaserträger fördern die Proliferation saccharolytischer
Bakterienpopulationen, was einen Anstieg der SCFA und somit einen pH-Wert Abfall der
Ingesta zur Folge hat (GIBSON u. ROBERFROID 1995). Ein niedriger pH-Wert
wiederrum vermindert das Wachstum potentiell pathogener Bakterien wie beispielsweise E.
coli, Salmonella und Clostridium-Spezies (MAY et al. 1994; AUMILLER et al. 2015).
Durch den Zusatz bestimmter Kohlenhydrate – den sogenannten Präbiotika – wie z.B.
Inulin oder Laktulose wird gezielt das Wachstum erwünschter Keime wie Bifidobakterien
und Laktobazillen gefördert (PATTERSON et al. 2010; SATTLER et al. 2015). Diese
Bakterienspezies sollen die Darmgesundheit positiv beeinflussen und durch die Bildung
von Laktat und Azetat die Ausbreitung pathogener Keime verhindern (GIBSON u.
ROBERFROID 1995).
Schrifttum
31
Da auch verschiedene Rohfaserträger die Proliferation erwünschter Bakterienspezies
begünstigen können, wurden in den letzten Jahren einige Studien nahezu ausschließlich an
Absetz- und Flatdeckferkeln durchgeführt, um den nach dem Absetzen oftmals
auftretenden Durchfallerkrankungen vorbeugen zu können (HILL et al. 2005; PIEPER et al.
2008; HERMES et al. 2010; CHEN et al. 2013). Durch den Einsatz rohfaserreicher
Futtermittel und die daraus resultierende höhere Produktion von SCFA soll das Wachstum
pathogener Bakterien, vor allem enterotoxischer E.-coli-Bakterien, nach dem Absetzen im
Ferkeldarm minimiert und gleichzeitig die Proliferation gesundheitsfördernder Keime
unterstützt werden (MONTAGNE et al. 2003). So wurde beispielsweise bei Fütterung einer
gerstenreichen Diät (65 % Gerste) über drei Wochen im Caecum von Ferkeln eine
signifikant höhere Anzahl an Lactobacillaceae (8,55 log10 vs. 8,14 log10) und eine
tendenziell geringere Anzahl an Enterobacteriaceae (5,96 log10 vs. 6,27 log10) – zu dieser
Bakterienfamilie gehört unter anderem E. coli – im Vergleich zu Ferkeln mit einer
maislastigen Ration nachgewiesen (DREW et al. 2002). Zu ähnlichen Ergebnissen kam
auch eine Studie von WEISS et al. (2015).
Zudem scheint auch die Fermentierbarkeit und Viskosität der eingesetzten Rohfaserträger
von großer Bedeutung zu sein. METZLER-ZEBELI et al. (2013) verglichen das
Vorkommen von Clostridium perfringens Typ A in der fäkalen Mikroflora von
Absetzferkeln, welche jeweils eins von vier NSP-Konzentraten mit unterschiedlichen
Viskositäts- und Fermentationseigenschaften erhielten. Bei Zulage hoch fermentierbarer ß-
Glucane war – unabhängig von der Viskosität – das Clostridium-perfringens-α-Toxin
unterhalb der Nachweisgrenze der qPCR. Dies ist vor allem deshalb von Bedeutung, da
Clostridium perfringens Typ A zu einem Durchfallgeschehen bei Saug- und Absetzferkeln
führen kann (SONGER u. UZAL 2005). PIEPER et al. (2012) beobachteten mithilfe von
in-vitro-Versuchen, dass entspelzte Gerste mit hohen ß-Glucan und
Amylosekonzentrationen im Gegensatz zu behüllter Gerste die Clostridienanzahl im Kot
bzw. Ileum reduzieren konnte (z.B. Clostridien-Cluster I: 8,70 vs. 8,03 Genkopien/g Kot).
Somit scheint sowohl der ß-Glucan- als auch der Amylose/Amylopectingehalt sowie der
totale, lösliche und unlösliche NSP-Gehalt einen Einfluss auf die mikrobielle Darmflora zu
haben.
Schrifttum
32
Doch nicht nur die Art der Faser, sondern auch das Alter der Tiere beeinflusst die
Zusammensetzung des gastrointestinalen Mikrobioms (FRESE et al. 2015). Während bei
jungen Ferkeln eine gerstenreiche Fütterung die Fraktion der Bifidobakterien reduzierte,
konnte bei selbiger Fütterung von Mastschweinen ein Anstieg dieser Bakterienpopulation
beobachtet werden (O'CONNELL et al. 2005; GARRY et al. 2007). Es sollte jedoch
beachtet werden, dass jedes Schwein eine eigene individuell leicht unterschiedliche
Bakterienzusammensetzung beherbergt und es somit zu individuellen Schwankungen
innerhalb der Bakterienpopulation kommen kann, selbst wenn diese denselben
Haltungsbedingungen ausgesetzt sind (HILL et al. 2005; CONLON u. BIRD 2014). So
konnte in einer Studie von HILL et al. (2005) im Ileum von Absetzferkeln eine Variation
beispielsweise der Spezies Lactobacillus amylovorus von unterhalb der Nachweisgrenze bis
hin zu Werten von 4x1010
Genkopien/g Chymus nachgewiesen werden. Auch die in den
Studien angewandten unterschiedlichen mikrobiellen Untersuchungstechniken (kulturell
oder molekularbiologisch, in vivo oder in vitro) erschweren einen Vergleich zwischen den
einzelnen Studien (KIM u. ISAACSON 2015).
Vor dem Hintergrund, dass der Magen-Darm-Trakt neugeborener Ferkel zur Geburt steril
ist und im Laufe der ersten Lebensstunden von den Bakterien der Sau, der Umwelt sowie
im Zuge der ersten Nahrungsaufnahme (Kolostrum) besiedelt wird, kommt der bakteriellen
Kotzusammensetzung der Muttertiere im Hinblick auf die mikrobielle Besiedlung der
Ferkel eine besondere Bedeutung zu (RICHARDS et al. 2005). So konnte in einigen
Untersuchungen gezeigt werden, dass die Fütterung der Sau einen Einfluss auf die
mikrobielle Zusammensetzung der Darmflora der Ferkel ausübt, jedoch beziehen sich diese
Effekte meist auf die Verabreichung von Pro- oder Präbiotika (BAKER et al. 2013;
STARKE et al. 2013; PAßLACK et al. 2015). PAßLACK et al. (2015) verabreichten
beispielweise im Zeitraum 21 Tage a.p. bis 14 Tage p.p. Sauen eine Ration mit einem
Inulingehalt von 3 % und beobachteten sowohl im Sauenkot 24 h p.p. als auch im Caecum
der Ferkel einen signifikant höheren Gehalt an Enterokokken (5,96 ±0,31 vs. 7,00 ±0,91
log10/g Kot bzw. 6,76 ±0,49 vs. 7,57 ±0,46 log10/g Caecuminhalt). SCHUBBERT et al.
(2010) und TAN et al. (2015) wiesen zwar durch Raufuttergaben bzw. durch die Zulage
von 2,2 % Konjak-Mehl (gemahlener Wurzelstock der Pflanzenart Teufelszunge) zur
Basaldiät in der Trächtigkeit eine um den Faktor 10 reduzierte Keimzahl von Clostridium
Schrifttum
33
perfringens im Kot tragender bzw. laktierender Sauen nach. Die Darmgesundheit der
Ferkel in diesen Studien wurde jedoch weder klinisch, noch mikrobiologisch dokumentiert.
Doch nicht nur die mikrobiologische Zusammensetzung, sondern auch bestimmte
Inhaltsstoffe des maternalen Kotes wie z.B. Eisen sind im Hinblick auf ein mögliches
Infektionsgeschehen der Ferkel von Bedeutung. Für das Überleben und die Vermehrung
vieler pathogener Erreger wie z.B. E. coli ist die Verfügbarkeit von freiem Eisen von
höchster Wichtigkeit (STARKENSTEIN 1934). Als natürliche Schutzreaktion des Körpers
kommt es im Rahmen eines Entzündungsgeschehens zu einer vermehrten Sekretion
eisenbindender Proteine wie Haptoglobin und Transferrin, um den potentiell pathogenen
Bakterien die Wachstumsgrundlage zu entziehen (TIZARD 2013). Kommt es jedoch im
noch unreifen Darm der Saufgferkel zu einer übermäßigen Verfügbarkeit von freiem Eisen,
z.B. durch eine orale Verabreichung eisenhaltiger Präparate, kann ein z.T. letales
Durchfallgeschehen bei diesen Tieren ausgelöst werden (KADIS et al. 1984). Vor diesem
Hintergrund käme auch dem von den Ferkeln oral aufgenommenen Sauenkot eine
besondere Bedeutung als mögliche Eisenquelle für pathogene Durchfallerreger der Ferkel
zu.
Ableitung der Aufgabenstellung 2.8
Die Transit- und die Laktationsphase ist mit vielen hormonellen und metabolischen
Veränderungen für die Sau verbunden und stellt mitunter den wichtigsten Zeitraum in dem
Produktionszyklus der Sau dar (THEIL 2015; PEDERSEN et al. 2016). Insbesondere vor
dem Hintergrund der gestiegenen Fruchtbarkeitsleistungen „moderner“ Sauenlinien
innerhalb der letzten Jahre stellt eine adäquate Versorgung der Sau mit Energie und
Nährstoffen eine große Herausforderung für Landwirte und Tierärzte dar. Bei der
Versorgung der Sauen rund um die Abferkelung gilt seit Jahren eine restriktive Fütterung
als Standard: Während den Sauen in der Hochträchtigkeit maximal 40 MJ ME/Tag zugeteilt
werden, erfolgt 1-2 Tage a.p. ggf. eine Futtermengenrestriktionen (auf ca. 20 MJ ME /Tag)
gefolgt von einer schrittweisen Steigerung der Futtermenge in der ersten Laktationswoche
um ca. 7 MJ ME/Tag bis zur ad-libitum-Fütterung ab Tag 7-10 (JEROCH et al. 1999;
KAMPHUES et al. 2014). Aus einer langsamen Futtermengensteigerung zu Beginn der
Laktation resultiert jedoch eine Verringerung der gesamten über die Laktationsperiode
Schrifttum
34
aufgenommenen Futtermenge (AHERNE u. WILLIAMS 1992; VIGNOLA 2009). Dies
wiederrum kann zu übermäßigen Körpermasseverlusten der Sauen in der Laktation mit
nachfolgenden Einbußen in der Reproduktionsleistung im Folgewurf führen (THAKER u.
BILKEI 2005; REMPEL et al. 2015). Durch eine ad-libitum-Fütterung im Abferkelstall
werden zwar höhere Futteraufnahmen der Sauen in der Laktation erreicht (NEIL 1996;
COOLS et al. 2014), dennoch wird immer wieder ein wissenschaftlicher Zusammenhang
zwischen einer ad-libitum-Fütterung und dem Auftreten peripartaler Erkrankungen wie
dem MMA-Komplex gesehen (NEIL et al. 1996; MAES et al. 2010; PAPADOPOULOS et
al. 2010). Für eine ausreichende Milchleistung der Sauen hochfruchtbarer Linien bei
gleichzeitig geringen Körpermasseverlusten in der Laktation, muss somit eine maximale
Futteraufnahme der Sauen in der Laktation, jedoch ohne negative Beeinflussung des
Puerperiums erreicht werden.
In der vorliegenden Arbeit wurde eine restriktive Fütterung im peripartalen Zeitraum durch
ein ad libitum angebotenes rohfaserreiches Mischfuttermittel ergänzt. Ab dem dritten Tag
post partum wurde ein jederzeit frei verfügbares Laktationsfutter zusätzlich zu den
Futtermengen, welche nach einer Futterkurve für laktierenden Sauen zugeteilt wurden,
angeboten. Folgende Hypothesen wurden vor Versuchsbeginn aufgestellt:
1.) Durch ein ad-libitum-Angebot eines rohfaserreichen Mischfuttermittels im peripartalen
Zeitraum
� kommt es bereits a.p. zu hohen TS-Aufnahmen der Sauen, was sich wiederrum
positiv auf die Futteraufnahme p.p. auswirkt.
� wird der TS-Gehalt im Sauenkot reduziert. Dies führt zu einem schnelleren
Geburtsverlauf und senkt das Risiko von peripartalen Erkrankungen wie dem
MMA-Komplex.
� kommt es zu einer moderaten pH-Wert-Absenkung im Kot und in der Ingesta
aufgrund der im Rahmen der mikrobiellen Fermentation vermehrt gebildeten
kurzkettigen Fettsäuren. Dies übt einen positiven Effekt auf die mikrobielle
Kotzusammensetzung der Sauen nach der Geburt aus.
Schrifttum
35
� kommt es zu einer vollständigen Sättigung der Tiere und somit zu weniger Stress im
peripartalen Zeitraum. Dies führt zu weniger Unruhe der Sauen und nachfolgend
weniger Saugferkelverlusten sowie einer verbesserten Kolostrumaufnahme auch
kleiner Ferkel.
2.) Durch ein ad-libitum-Angebot eines Laktationsfutters ab Tag 3 post partum
� kommt es zu einer schnellen Futtermengensteigerung der Sauen p.p. und folglich zu
einer höheren Gesamtfutteraufnahme in der Laktation. Dies wirkt sich – bei
geringeren Körpermasseverlusten der Sau – positiv auf die Milchleistung und den
Ferkelzuwachs aus.
Die aus diesen Untersuchungen gewonnenen Erkenntnisse können potentiell dazu dienen,
eine optimale Fütterungsstrategie für hochfruchtbare und leistungsstarke Sauenlinien
entwickeln zu können.
Material und Methoden
37
Material und Methoden 3
Das folgende Kapitel „Material und Methoden“ stellt den Aufbau des Versuchsvorhabens
vor. In diesem Vorhaben wurde der Einfluss von ad libitum angebotenen rohfaserreichen
Mischfuttermitteln (ante partum und peripartal) und einem Laktationsfutter (post partal) auf
die peripartale Darmtätigkeit und den Geburtsverlauf bei Sauen sowie die
Ferkelentwicklung untersucht. Dabei kamen zwei unterschiedlich zusammengesetzte
rohfaserreiche Mischfuttermittel, im Folgenden als Rohfaserpellet 1 und Rohfaserpellet 2
bezeichnet, abwechselnd zum Einsatz.
Die Versuche erstreckten sich über einen Zeitraum von Ende Mai bis Mitte Dezember 2015
und wurden in zwei baugleichen Abferkelabteilen im Schweinestall des Lehr- und
Forschungsguts Ruthe der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover durchgeführt. Auf
diesem konventionell geführten Betrieb wurden im Untersuchungszeitraum circa 80 Sauen
der Genetik BHZP in einem 2-Wochen-Rhythmus bei 5-wöchiger Säugezeit gehalten
Insgesamt wurden für das Promotionsprojekt sieben Untersuchungsdurchgänge, bestehend
aus jeweils einer Rohfaser- und Kontrollgruppe, durchgeführt. Ein Durchgang bestand
dabei aus maximal n=8 Tieren (Sauengruppe), welche im Schnitt eine Leistung von 27,4
abgesetzten Ferkeln pro Sau und Jahr erreichten. Die maximal 8 Sauen eines Durchganges
wurden auf jeweils 2 Fütterungsgruppen verteilt, wovon der einen Gruppe das
entsprechende Rohfaserpellet und anschließend das Laktationsfutter ad libitum
(Rohfasergruppe 1 [n=12] bzw. 2 [n=13]) und der andere Gruppe ausschließlich
Laktationsfutter nach Futterkurve zugeteilt wurde (Kontrollgruppe 1 [n=10] bzw. 2 [n=13]).
Während der gesamten Versuchsphase wurden insgesamt zwei Jungsauen aufgestallt,
wovon eine der Rohfasergruppe 1 und eine der Kontrollgruppe 1 zugeteilt wurde.
Eine Übersicht über den zeitlichen Ablauf der durchgeführten Versuche geht aus der
Abbildung 4 hervor.
Material und Methoden
38
Abbildung 4: Überblick über den zeitlichen Ablauf der Versuche: In insg. 7 Durchgängen wurden die Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen auf 2 baugleiche Abferkelställe aufgeteilt
Tiere und Gesundheitsvorsorge 3.1
Eine Woche vor dem errechneten Abferkeltermin wurden die Sauen gewaschen und in
einen von zwei identisch aufgebauten Abferkelabteilen mit jeweils acht Abferkelbuchten
eingestallt. Nachdem die Sauen nach Wurfnummern und zuvor erbrachter Leistung sortiert
worden waren, erfolgte die Aufteilung der Tiere auf die beiden Fütterungsgruppen
randomisiert. Zum Ausleben des Nestbauverhaltens wurde drei Tage vor dem errechneten
Geburtszeitpunkt in jedem Ferkelschutzkorb ein Jutesack aufgehängt. Zudem wurden zur
Geburt zusätzliche Rotlichtlampen hinter und neben der Sau angebracht. 24 Stunden nach
der Geburt erfolgte ein Wurfausgleich, sodass jede Sau maximal so viele Ferkel säugte, wie
sie funktionstüchtige Zitzen aufwies. Dabei wurde darauf geachtet, dass die Anzahl der
Ferkel der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen in etwa übereinstimmte. Überstieg die
Anzahl der geborenen Ferkel die verfügbare Zitzenanzahl der Sau, so wurden jeweils die
größten und vitalsten Ferkel des jeweiligen Wurfes von der Muttersau entfernt und zu einer
Ammensau verbracht. Als Ammensauen dienten entweder zur Schlachtung vorgesehene
Sauen oder Sauen, deren Würfe vor der regulären Säugezeit von fünf Wochen abgesetzt
worden waren.
Die Sauen wurden routinemäßig gegen das Porzine Parvovirus und den Erreger des
Rotlaufs Erysipelothrix rhusiopathiae (Parvoruvac®, Merial GmbH, Hallbergmoos) sowie
Material und Methoden
39
drei Wochen ante partum im Sinne einer Mutterschutzimpfung gegen die E.-coli-
Enterotoxikose (Porcilis® Porcoli Diluvac Forte, Intervet Deutschland GmbH;
Unterschleissheim) immunisiert.
Allen Sauen, welche am 115. Trächtigkeitstag noch nicht geferkelt hatten, wurde an diesem
Tag 75 μg (+)-Cloprostenol/Tier (Dalmazin®, Selectavet Dr. Otto Fischer GmbH, Weyarn-
Holzolling) und 24 Stunden später – wenn immer noch keine Ferkel geboren worden waren
–70 μg Carbetocin (Depotocin®, Veyx-Pharma GmbH, Schwarzenborn) zur Einleitung der
Geburt intramuskulär appliziert. Bei den Sauen, die nicht bereits im Rahmen der
Geburtseinleitung Carbetocin (Depotocin®, Veyx-Pharma GmbH, Schwarzenborn)
erhalten hatten, wurde die Wehentätigkeit durch eine einmalige Applikation dieses
Präparates in der oben genannten Dosierung nach Geburt des ersten Ferkels gefördert. Kam
die Geburt dennoch ins Stocken (> 1 h lang keine Geburt von einem Ferkel), wurden den
Sauen 10-15 ml einer calciumhaltigen Injektionslösung (Calcitat® S 50, aniMedica GmbH,
Senden-Bösensell) appliziert und eine manuelle Geburtshilfe geleistet.
Nach der Geburt wurde routinemäßig die Körpertemperatur der Sauen morgens und abends
über drei Tage protokolliert. Sobald die Körpertemperatur über 39,5 °C anstieg und die
Tiere ihr Futter verweigerten, wurde in Absprache mit dem bestandsbetreuenden Tierarzt
(Ambulatorische Klinik der Klinik für kleine Klauentiere der Stiftung Tierärztliche
Hochschule Hannover) eine MMA-Behandlung eingeleitet. Diese bestand aus einer
dreimaligen Injektion eines Cefquinom-haltigen Präparates (Cobactan®2,5%, Intervet
Deutschland GmbH, Unterschleissheim – 2 mg Cefquinom/kg KM) und der einmaligen
Injektion sowohl eines Antiphlogistikums (Melosolute®, CP-Pharma Handelsgesellschaft
mbH, Burgdorf – 0,4 mg Meloxicam/kg KM) als auch eines Präparates zur Förderung der
Milchejektion (Oxytocin ad us. vet, aniMedica GmbH, Senden-Bösensell).
Am ersten Tag nach der Geburt wurden den Ferkeln die Schwanzspitzen gekürzt. Um eine
Eisenmangelanämie der Saugferkel zu vermeiden, erfolgte ferner innerhalb der ersten 48
Stunden nach der Geburt die Verabreichung von 2 ml einer Eisen-Dextran-Lösung
(Ursoferran®, Serumwerk Bernburg AG, Bernburg – 100 mg/ml –). Da in der Versuchszeit
vermehrt Nabelentzündungen auftraten, wurden den Ferkeln einiger Würfe zudem einmalig
am zweiten Lebenstag 0,1 ml eines Ceftiofur-haltigen Präparates appliziert (Naxcel®
Material und Methoden
40
100 mg/ml; Zoetis Deutschland GmbH, Berlin). Am sechsten Lebenstag wurden die
männlichen Ferkel eines Wurfes kastriert. Kam es innerhalb der ersten Lebenswoche zu
einem starken hellgelblichen und wässrigen Durchfall, so wurde der gesamte Wurf nach
Absprache mit dem bestandsbetreuenden Tierarzt (Ambulatorische Klinik der Klinik für
kleine Klauentiere der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover) antimikrobiell
behandelt (Apramycin Doser aniMedica®, aniMedica GmbH, Senden-Bösensell).
In der dritten Lebenswoche wurden die Ferkel gegen das Porzine Circovirus Typ 2 (PCV 2)
und Mycoplasma hyopneumoniae (Porcilis®PCV M Hyo, Intervet Deutschland GmbH;
Unterschleissheim) immunisiert. Das Absetzen der Ferkel von der Sau erfolgte im Alter
von fünf Wochen.
Die Versuche dieser Arbeit wurden bei der zuständigen Behörde unter folgendem
Aktenzeichen 33.19-42502-05-15A521 und 33.19-42502-05-15A541 angezeigt.
Haltung der Tiere 3.2
Die Durchführung der Versuche fand in zwei baugleichen Abferkelabteilen mit jeweils acht
Abferkelbuchten mit einer Grundfläche von 2,28 m x 1,98 m statt. Ein Mittelgang teilte die
Abferkelabteile in 2 x 4 Abferkelbuchten, sodass die vier Abferkelbuchten rechts bzw. links
des Mittelgangs jeweils der Versuchs- bzw. Kontrollgruppe zugeteilt werden konnten. Ein
schematischer Aufbau einer typischen Abferkelbucht ist in der Abbildung 5 dargestellt.
Jede Abferkelbucht verfügte über einen schräg zum Kontrollgang angebrachten
Ferkelschutzkorb, einem nach oben geschlossenen Ferkelnest und einer Nippeltränke für
die Ferkel. Der Boden der Buchten bestand aus nicht perforierten Betonestrich im Bereich
des Troges und des Ferkelnestes und aus perforierten Gussrosten am kaudalen Ende der
Sau (Abbildung 5). Rechts und links der Gussroste waren für eine gute Trittsicherheit der
Ferkel Plastikroste verlegt. Um eine gute Kleinklimazone für die Ferkel zu gewährleisten,
war jedes Ferkelnest über einen Deckel nach oben geschlossen und mit einer Rotlichtlampe
und einer Fußbodenheizung ausgestattet. Das Lichtregime im Abferkelstall war dem
natürlichen Tag-Nacht-Rhythmus mit mindestens acht Stunden Helligkeit angepasst. Die
Lufttemperatur wurde durch eine Lüftungsanlage im Unterdrucksystem gesteuert, indem
mithilfe von Wandventilen Frischluft zugeführt und die verbrauchte Luft über
Material und Methoden
41
Absaugeinheiten in der Decke entfernt wurde. Über die Justierung der Geschwindigkeit,
mit welcher die Frischluft in den Stall gelangt, konnte somit das Stallklima reguliert
werden.
In der gesamten Versuchsphase wurde für jeden Durchgang ein Temperatur- /
Feuchtelogger der Serie EBI 20 (WTW GmbH, Geschäftsbereich ebro Electronic,
Ingolstadt) im Tierbereich aufgehängt, um die Temperatur und die Luftfeuchtigkeit zu
überprüfen. Analog zu den Untersuchungen von QUINIOU und NOBLET (1999), welche
eine deutlich reduzierte Futteraufnahme ab einer Temperatur von >25 °C nachwiesen,
wurden auch in dieser Studie Tage mit einer mittleren Temperatur von >25 °C als „heiß“
definiert.
Abbildung 5: Schematische Darstellung einer Abferkelbucht; dargestellt sind die Elemente
Ferkelschutzkorb, Ferkelnest, Trog und Ferkeltränke sowie die Gestaltung des Bodens
Material und Methoden
42
Ausschlusskriterien 3.3
In dem Falle, dass eine Sau im Laufe der Versuchsphase als Ammensau eingesetzt und
somit frühzeitig abgesetzt werden musste, schied diese für die Datenerfassung der weiteren
Versuchsphase aus. Dasselbe galt für Sauen, welche den Funktionsmechanismus des ad-
libitum-Fütterungsautomaten nicht verstanden oder aus anderen gesundheitlichen Gründen
frühzeitig ausgestallt werden mussten.
Futtermittel und Fütterung 3.4
Fütterung der Sauen 3.4.1
Mit der Einstallung der Sauen in den Abferkelstall erfolgte auch die Futterumstellung von
einem pelletierten Alleinfuttermittel für tragende Sauen (FESONI-FEG NT 11,8 K Ruthe,
Bruno Fehse und Sohn GmbH & Co. KG, Estorf-Leeseringen) auf ein pelletiertes
Alleinfutterfuttermittel für laktierende Sauen (FESONI-FEG ZS Lac 13,0 K Ruthe, Bruno
Fehse und Sohn GmbH & Co. KG, Estorf-Leeseringen).
Tabelle 4: Zusammensetzung des Laktationsfutters laut Deklaration (Anteile in %)
Komponente Anteil an der Ration
Weizen 39,0
Gerste 20,0
Sojaextraktionsschrot, dampferhitzt 10,0
Weizenfuttermehl 8,00
Weizenkleie 7,50
Weizengrießkleie 4,00
Sojavollbohnen 3,20
Alle Sauen eines Abferkelabteils erhielten jeweils morgens (ca. 06:00 Uhr) und
nachmittags (ca. 14:30 Uhr) über eine Volumendosiervorrichtung das kommerzielle
Laktationsfutter. Dabei erfolgte die Futterzuteilung restriktiv, das heißt die Sauen bekamen
pro Mahlzeit eine Menge von circa 1,4 kg des Laktationsfutters in dem Zeitraum von der
Einstallung in den Abferkelstall bis zum Tag 1 p.p.. Ab dem zweiten Tag post partum
wurde die Futtermenge stufenweise um circa 0,5 kg täglich dem steigenden Bedarf der Sau,
in Abhängigkeit von der Ferkelanzahl, angepasst, sodass diese Sauen nach der ersten
Laktationswoche ad libitum – jedoch auf leeren Trog – gefüttert wurden.
Material und Methoden
43
Neben dem restriktiv zugeteilten Laktationsfutter über die Volumendosiervorrichtung
hatten die Sauen der Versuchsgruppe (ad-libitum-Gruppe) die Möglichkeit über einen
kleinen Automaten (SowMax, Hogslat GmbH, Langen), welcher am Kopfende über dem
Trog der Sau angebracht war, zusätzliches Futter ad libitum aufzunehmen. Bei diesem
Futter handelte es sich vom Tag des Einstallens (d-7) bis zum zweiten Tag nach der Geburt
um jeweils ein von zwei geringgradig unterschiedlichen Rohfaserpellets, welche für eine
bessere Akzeptanz der Sauen mit 20% Laktationsfutter vermischt wurden. Ab dem dritten
Tag post partum wurde das kommerzielle Laktationsfutter in die Automaten gefüllt, sodass
den Sauen der ad-libitum-Gruppe ab diesem Zeitpunkt ausschließlich Laktationsfutter ad
libitum zur Verfügung stand. Die Befüllung der zusätzlichen Automaten erfolgte zeitlich
parallel mit der Fütterung über die Volumendosierer morgens und nachmittags; jedoch
wurde darauf geachtet, dass die Automaten zu keinem Zeitpunkt leer wurden. Eine
schematische Übericht über die Futterzuteilung der ad libitum bzw. restriktiv gefütterten
Sauen gibt Abbildung 6.
Abbildung 6: Schematische Übersicht über die Fütterung der Sauen während der Versuchsphase. Der hellblaue oberste Pfeil kennzeichnet das Futter im ad-libitum-Fütterungsautomaten.
Um eine Mindestaufnahme von dem jeweiligen Rohfaserpellet ante partum gewährleisten
zu können, wurde den Tieren der ad libitum gefütterten Gruppe zudem zu jeder Mahlzeit
bis zum Geburtszeitpunkt 250 g des Pellets per Hand auf das Laktationsfutter gegeben. Die
botanische Zusammensetzung der beiden Rohfaserpellets ist in Tabelle 5 dargestellt.
Material und Methoden
44
Tabelle 5: Zusammensetzung der beiden Rohfaserpellets (Anteile in %)
Komponente Rohfaserpellet 1 Rohfaserpellet 2
Gerstenschrot 49,0 49,0
Druckhydrothermisch aufgeschlossene
Sojabohnenschalen * 49,0 24,75
Haferschälkleie 20,0
Sojaextraktionsschrot (44%Rp) 4,00
Melasse 1,50 1,50
Viehsalz 0,50 0,50
CaCO3 0,25
* GelaminFaserGold, Gesellschaft für Tierernährung mbH, Wildeshausen
Den Sauen der Kontrollgruppe wurde zu jeder Mahlzeit manuell Wasser in die Tröge
gegeben, um eine gute Aufnahme der großen in einer Portion gegebenen Futtermengen zu
gewährleisten. Da dies in der ad libitum gefütterten Gruppe nicht möglich war, wurde die
über die Volumendosierer zugeteilte Futtermenge in dieser Gruppe auf max. 3,3 kg Futter
pro Mahlzeit begrenzt. Die weitere Futteraufnahme bis zur vollständigen Sättigung der
Tiere erfolgte über die zusätzlichen ad-libitum-Fütterungsautomaten. Die
Wasserversorgung der Sauen erfolgte über eine Zapfentränke im Trog ad libitum. Dabei
wurde darauf geachtet, dass die Durchflussrate jeder Tränke ≥ 4 l/Minute betrug.
Fütterung der Saugferkel 3.4.2
Nach der Kolostrumaufnahme (24h p.n.) bis zum 14. Lebenstag wurde den Saugferkeln ein
kommerzieller Ferkeljoghurt (Nuklospray Yoghurt, Sloten BV, Deventer, NL) in einer
separaten Futterschale zur freien Aufnahme angeboten. Ab Tag 7 wurde ein herkömmlicher
pelletierter Prestarter (Super-Früh, UNA HAKRA Hanseatische Kraftfuttergesellschaft
mbH, Hamburg / Panto®Biowean, HL Hamburger Leistungsfutter GmbH, Hamburg) über
einen kleinen Trog zugefüttert. Im Laufe der Versuchsphase wurde der Hersteller des
Prestarters gewechselt, sodass insgesamt zwei Prestarter zum Einsatz kamen. Die
Zusammensetzung der Ferkelfutter ist in Tabelle 6 dargestellt.
Die Wasserversorgung der Ferkel erfolgte durch eine separate Ferkeltränke im hinteren
Buchtenbereich.
Material und Methoden
45
Tabelle 6. Botanische Zusammensetzung der verwendeten Ferkelfutter laut Deklaration
Ferkeljoghurt Prestarter Super Früh Prestarter Panto®Biowean
Molkepulver Weizen Weizen, aufgeschlossen
Planzl. ÖL (Sonnenblume,
Kokos, Palm) Gerste Gerste
Erbsenstärke Sojabohnen, dampferhitzt Leinsaat, aufgeschlossen
Erbsenproteinisolat Molkepulver Weizenkleie
Traubenzucker Haferflocken Gerste, aufgeschlossen
Kartoffelstärke Sojaproteinkonzentrat Nebenerzeugnisse der Back-
und Teigwarenindustrie
Weizenprotein, hydrolysiert Leinexpeller Molkepulver
Hefeprotein Weizenkleie Sojaproteinkonzentrat
Eiererzeugnisse (getrocknet) Sojaöl Dextrose
Magnesiumsulfat Traubenzucker Rapsöl
Kartoffeleiweiß Kartoffeleiweiß
Palmöl Monocalciumphosphat
Monocalciumphosphat Pflanzenöl (Kokos, Palm)
Natriumchlorid Natriumchlorid
Kokosöl Calciumcarbonat
Calciumcarbonat Mono- und Diglyceride von Fettsäuren
Rohproteinreiches
Nebenerzeugnis* Glycerin
Magnesiumoxid
* aus der Feststofffermentation mit Pilzen
Erhobene Parameter und Probengewinnung im Stall 3.5
Futteraufnahme 3.5.1
Zur Erfassung der täglichen individuellen Futteraufnahme der Sauen wurde das Füllgewicht
jedes Volumendosierers bei jeder Veränderung der Füllhöhe bestimmt und dokumentiert.
Um die tägliche zusätzliche Futteraufnahme der ad libitum gefütterten Tiere ermitteln zu
können, wurden individuell markierte Behältnisse, aus welchen die Automaten befüllt
wurden, täglich morgens nach Befüllung der Automaten gewogen. Auch die ante partum
manuell zugegebenen Rohfasermengen wurden dokumentiert. Bei geringer Fresslust und
Verderb des Futters wurde dieses aus dem Trog genommen, rückgewogen, die
Trockensubstanz bestimmt und der Futterverlust in die Berechnung der täglich
aufgenommenen Futtermenge mit einberechnet. Da sich die Gesamtfutteraufnahme der ad
libitum gefütterten Sauen somit ante partum und peripartal aus drei Komponenten
(Laktationsfutter aus dem Volumendosierer + Rohfaserpellet/Laktationsgemisch aus dem
Material und Methoden
46
Automaten + Rohfaserpellet manuell) zusammensetzte, erfolgte die Auswertung der
Gesamtfutteraufnahme in kg Trockensubstanz. Im Anschluss wurde die täglich
aufgenommene Menge an Rohfaser, Neutrale-Detergenz-Faser (NDF) und Saure-
Detergenz-Faser (ADF) pro Sau anhand der Ergebnisse der chemischen Futtermittelanalyse
kalkuliert.
Die Ermittlung der Beifutteraufnahme der Saugferkel erfolgte auf Wurfebene durch
tägliches Aus- und Einwiegen sowohl des Ferkeljoghurts, als auch des Prestarters. Wurde
den Tieren zusätzlich nachmittags Ferkeljoghurt nachgegeben, so wurde dies vermerkt.
Durch die Kenntnis des Anmischverhältnisses (1 Teil Wasser zu 2,5 Teilen
Ferkeljoghurtpulver) des Ferkeljoghurts und den Trockensubstanzgehalt der einzelnen
Futtermittel konnte somit die tägliche Trockensubstanzaufnahme des einzelnen Wurfes
berechnet werden und durch Division mit der Anzahl abgesetzter Ferkel auf die mittlere
Trockensubstanzaufnahme des einzelnen Ferkels geschlossen werden.
Wasseraufnahme 3.5.2
Die Wasseraufnahme der Sauen wurde mit einem herkömmlichen Wasserzähler
(Wohnungswasserzähler für Kaltwasser, Conmetall GmbH und Co. KG, Celle) gemessen
und dieser morgens um 6:00 abgelesen. Da aus bautechnischen Gründen nicht an jeder von
der Hauptleitung abgehenden Stichleitung Wasseruhren angebracht werden konnten, wurde
jeweils eine Wasseruhr am Wasserzufluss der jeweiligen Abteilhälfte angebracht. Da über
diesen Wasserzufluss auch die Ferkeltränken der jeweiligen Abteilhälfte mit Wasser
versorgt wurden, entsprach die Differenz aus zwei abgelesenen Werten dem
Wasserverbrauch der jeweiligen Kontroll- bzw. Versuchsgruppe (bis zu vier Tiere) plus
deren Ferkel. Dieser Wert wurde durch die Anzahl der Sauen der jeweiligen
Versuchsgruppe dividiert, um so den Wasserverbrauch auf Einzeltierbasis bewerten zu
können. In der Berechnung des mittleren Wasserverbrauchs fand die Wasseraufnahme der
Ferkel keine Berücksichtigung; es wurde jedoch darauf geachtet die Anzahl der Ferkel bei
Wurfausgleich möglichst gleichmäßig auf beide Gruppen aufzuteilen, um diese
Ungenauigkeit zu minimieren.
Material und Methoden
47
Allgemeinbefinden der Tiere 3.5.3
Das Allgemeinbefinden der Tiere wurde täglich beurteilt und Abweichungen, wie
beispielsweise eine reduzierte Futteraufnahme oder eine verhärtete Gesäugeleiste notiert.
Zusätzlich wurde die Körperinnentemperatur der Sauen beim Einstallen und im weiteren
Versuchsablauf 2 Mal wöchentlich morgens gemessen. Zwei Tage vor dem errechneten
Geburtszeitpunkt bis vier Tage nach der Geburt wurde die Körpertemperatur zudem
zweimal täglich (morgens und abends) gemessen, um ein mögliches MMA-Geschehen
zeitig erkennen zu können.
Geburtsparameter und Leistungsdaten der Sauen 3.5.4
Rund um die Geburt fand zwischen 06:00 und 24:00 Uhr eine Geburtsüberwachung durch
die Doktorandin und die Mitarbeiter des Lehr- und Forschungsgut Ruthe statt. Sauen, die in
der unbeobachteten Zeit zwischen 0:00 und 06:00 abferkelten, konnten bei der Auswertung
der Geburtsparameter nicht berücksichtigt werden. Im Rahmen dieser Geburtsüberwachung
wurde die Geburtslänge (Zeit vom erst- bis zum letztgeborenen Ferkel), sowie die Anzahl
insgesamt, lebend, tot und mumifiziert geborener Ferkel notiert. Auch besondere
Vorkommnisse, wie Interventionen (manuell oder medikamentös) in den Geburtsablauf,
wurden festgehalten. Das Geburtsintervall zwischen zwei Ferkeln berechnete sich, indem
die Geburtslänge durch die Anzahl aller geborenen Ferkel (inklusive der mumifiziert
geborenen Ferkel) dividiert wurde. Die Totgeburtenrate ergab sich durch Division der
Anzahl der totgeborenen Ferkel (ohne mumifizierte Ferkel) durch die Gesamtzahl der
geborenen Ferkel (ohne mumifizierte Ferkel) und anschließender Multiplikation mit dem
Faktor 100. Zudem wurden sowohl die Saugferkelverluste jeder Sau mit dem jeweiligen
Todeszeitpunkt - am ersten, zweiten und dritten Lebenstag sowie die Verluste ab dem
vierten Lebenstag -, die Ursachen der Ferkelverluste, als auch die Anzahl abgesetzter
Ferkel aufgezeichnet.
Material und Methoden
48
Kotscore 3.5.5
Während eines gesamten Versuchsdurchganges wurde zweimal wöchentlich morgens der
frisch abgesetzte Kot der Sauen adspektorisch und palpatorisch auf die Konsistenz hin
untersucht. Zwei Tage vor dem errechnetem Geburtszeitpunkt bis eine Woche nach der
Geburt wurde der Sauenkot zudem einmal täglich befundet. Dabei richtete sich die
Beurteilung nach dem von OLIVIERO et al. (2009) entwickelten Boniturschema, bei
welchem die Sau als umso verstopfter gilt, je kleiner der Score wird.
Tabelle 7: Boniturschema zur Klassifizierung des Sauenkotes nach OLIVIERO et al. (2009)
Score Beschreibung
0 kein Kotabsatz
1 trockener Kot pelletförmig, nicht geformt
2 trockener bis normaler Kot
pelletförmig, aber geformt
3 normaler Kot weich, aber stabil und geformt
4 normaler bis breiiger Kot
noch geformt, aber nicht stabil
5 flüssiger Kot
ungeformt und flüssig
Verschmutzung von Tier und Stand 3.5.6
Zwei Tage vor dem errechneten Abferkeltermin bis eine Woche nach Abferkelung wurde
die Verschmutzung von der Sau und von dem hinteren Teil des Ferkelschutzkorbes täglich
bonitiert. Hierzu wurde das Boniturschema nach WARZECHA (2006) angewandt. Auf
dieser Grundlage wurde die Verschmutzung der Tiere und der Stände in die beiden
Kategorien „sauber“ und „verschmutzt“ eingeteilt. Dabei galt die Standfläche der Sauen
ausschließlich mit der Scorenote 1 als „sauber“, während bei der Beurteilung der
Tierverschmutzung die Scorenoten 1 und 2 als „sauber“ bezeichnet wurden. Demnach
entsprachen Scorenoten oberhalb dieser Werte der Kategorie „verschmutzt“.
Material und Methoden
49
Tabelle 8: Score zur Einschätzung der subjektiv beurteilten Standflächenverschmutzung des Liegebereichs nach WARZECHA (2006)
Score Hintere Standfläche des Liegebereichs der Sauen Verschmutzungsgrad des
Bodens
1 0-25% der Fläche verkotet Sauber
2 25-50% der Fläche verkotet Geringgradig
3 50-75% der Fläche verkotet Mittelgradig
4 75-100% der Fläche verkotet Hochgradig
Tabelle 9: Score zur Quantifizierung der subjektiv beurteilten Tierverschmutzung nach WARZECHA (2006)
Score Tier Beurteilung der
Verschmutzung
1 Keine Verunreinigung mit bloßem Auge erkennbar Sauber
2 Ausschließlich Verunreinigung perianal Geringgradig
3 Bereich von After und Oberschenkeln verschmutzt Mittelgradig
4 After, Oberschenkel und Gesäuge stark mit Kot
verschmutzt Hochgradig
Körpermasse der Sauen und Ferkel 3.5.7
Die Ermittlung der Körpermasse der Sauen erfolgte im Laufe eines Versuchsdurchganges
zu vier Zeitpunkten, jeweils morgens zwei Stunden nach der morgendlichen Fütterung:
� Einstallung (Tag 7 a.p.)
� 24 h p.p., nach Aufnahme einer Mahlzeit
� Tag 14
� Ausstallung (Tag 35 p.p.)
Für die Wiegungen wurden die Sauen aus den Abferkelbuchten heraus auf eine fest im
Laufgang installierte Waage (Soehnle Industrial Solutions GmbH, Backnang) getrieben,
welche einen Messbereich zwischen 4 – 600 kg und eine Messgenauigkeit von 0,2 kg
aufwies.
Die Ferkel wurden 24 Stunden nach der Geburt individuell mit einer Ohrmarke
gekennzeichnet und zu diesem Zeitpunkt, sowie in der Zeit bis zum Absetzen einmal
wöchentlich mit einer mobilen Tierwaage (KERN & SOHN GmbH, Balingen-Frommern;
Messbereich: max. 150 kg, Messgenauigkeit: 0,05 kg) gewogen. Somit konnten für jedes
Ferkel insgesamt sechs Gewichte ermittelt werden. In dem Falle, dass Ferkel zum
Material und Methoden
50
Wurfausgleich an eine andere Sau gesetzt werden mussten, wurde zusätzlich das Gewicht
des jeweiligen Ferkels beim Umsetzen bestimmt. Auch alle verendeten, sowie tot oder
mumifiziert geborenen Tiere wurden gewogen.
Rückenspeckdicke der Sauen 3.5.8
Zur Erfassung eines Körpersubstanzverlustes der Sauen in der Laktation erfolgte eine
Ermittlung der Rückenspeckdicke per Ultraschall (Lean-Meater®, Renco, Minnesota,
USA) parallel zu den Wägungen der Sauen.
Dabei zeigten drei Leuchtdioden die vom Ultraschall erfassten Gewebeschichten an;
gleichzeitig erschien auf dem Display des Gerätes die ermittelte Rückenspeckdicke in mm.
Die auf dem Display angezeigte Millimeterzahl wurde nur dann gewertet, wenn alle drei
Dioden aufleuchteten und somit sowohl beide Speckschichten als auch das auf dem M.
longissimus aufliegende Bindegewebe (Faszie) mit in die Messung einbezogen wurden
(Abbildung 7). Diese Messmethode stimmt mit den vom ALZ (Ausschuss für
Leistungsprüfung und Zuchtwertfeststellung beim Schwein) des ZDS (Zentralverband der
deutschen Schweineproduktion) empfohlenen Vorgehen für Eigenleistungsprüfungen von
Zuchttieren überein. Als Messstellen dienten jederseits drei Punkte (MÜLLER u. POLTEN
2004): Zum einen mittig zwischen Schulter und Schinken und von dort jeweils 15 cm
kranial und kaudal. Die Messstellen befanden sich jeweils 6 cm von der Wirbelsäule
entfernt (paramedian). Aus den Werten wurde im Anschluss ein Mittelwert gebildet. Um
sicherzugehen, dass immer genau dieselben Stellen gemessen wurden, wurden diese farbig
mit Viehspray markiert.
Material und Methoden
51
Abbildung 7: Schematische Darstellung der bei der Messung der Rückenspeckdicke erfassten
Gewebeschichten. (modifiziert nach STEFFENS (2005))
Material und Methoden
52
Body Condition Score (BCS) 3.5.9
Weiterhin wurde als zusätzlicher Parameter zur Erfassung der Körpersubstanz eine
Ermittlung des Body Condition Scores zum Ein- und Ausstallen der Sauen in bzw. aus dem
Abferkelstall durch dieselbe Person mithilfe des Scoring Systems der Top Agrar aus
KAMPHUES et al. (2014) durchgeführt (
Abbildung 8).
Merkmal BCS
1 2 3 4 5
Hüft- und Sitzbeinhöcker
+++
“eckige Kontur” bildbestimmend
++
+
−
−
(nicht mehr zu
ertasten)
Dornfortsätze der
Wirbelsäule1
Kontur bestimmt
durch
BW +++ LW +++
++
BW sichtbar LW ertastbar
−
BW / LW nicht sicht- / tastbar
Schwanzansatz
markant,
umgebendes
Gewebe eingefallen
→ von
Fettgewebe
umgeben
→ im Fettgewebe
versunken /
eingebettet
Innenschenkel- und
Vulvabereich
(Fettfalten)
mehr Haut als Unterhaut /
Fettgewebe, flache
Muskeln
→
erste leichte „Fettfalten“ im Innenschenkel-
bereich
→
„Fettfalten“ im gesamten
Innenschenkel- bereich u. in
Vulvanähe
Seitl. Konturen:
- Rippen - Scapula
Kontur bestimmt
durch +++
+++
→ nicht zu sehen,
ertastbar →
- nicht zu fühlen
- nur unter Druck
zu ertasten
1 BW = Brustwirbelbereich; LW = Lendenwirbelbereich
Bewertung von +++ (auffällig bzw. leicht zu ertasten) bis – (nicht mehr ertastbar)
Abbildung 8: Boniturschema zur Beurteilung des BCS = body condition score; modifiziert nach KAMPHUES et al. (2014).
Material und Methoden
53
Schulterscore 3.5.10
Ein weiterer Parameter zur Beurteilung der Einschmelzung von Körpersubstanz der Sauen
war ein Bewertungsschlüssel, bei dem mögliche Schulterläsionen der Sau bewertet wurden
(SCHÄFFER et al. 2014). Es wurde zwischen Art der Läsion (Druckstelle / Delle,
Schwellung, Narbe / verheilte Wunde und offener Wunde) und Größe der Läsion (0 bis > 8
cm Durchmesser) unterschieden. Da Druckstellen auch nach einer längeren Ruhephase der
Sau in Längslage auftreten können, wurden bei der Auswertung der erhobenen Befunde alle
Sauen mit einem Score ≥ 21 als verletzt, alle Tiere mit einem Scorewerten von 0, 11, 12, 13
als gesund bezeichnet.
Tabelle 10: Bewertungsschlüssel für die Erfassung von Schulterläsionen (modifiziert nach SCHÄFFER
et al. (2014))
Ausprägung 0
Ohne Befund
1 Druckstelle /
Delle
(ohne Borsten / Schorf /
Wunde)
2 Schwellung
(ohne Schorf /
Wunden)
3 Narbe / ver-
heilte Wunde
(Schorf auf kahler Stelle /
Schwellung)
4 Offene frische
Wunde
(mit Blut / Eiter)
Grad ∅
(cm)
1 bis 4
0
11 21 31 41
2 bis 8 12 22 32 42
3 > 8 13 23 33 43
Analyse der Futtermittel 3.6
Alle in der Versuchsphase eingesetzten Futtermittel wurden auf den Gehalt an
Rohnährstoffen, an Mengen- und Spurenelementen sowie an Aminosäuren untersucht.
Mittels eines Probenstechers wurde eine Futterprobe der zu untersuchenden Futtermittel
entnommen und mithilfe eines Probenteilers aus der gewonnenen Sammelprobe ein
repräsentatives Aliquot gewonnen, welches anschließend für die weiteren Untersuchungen
gemahlen wurde (10.000 U/min, Zentrifugalmühle ZM 1000, Retsch, Haan; 0,5 mm Sieb).
Die Analysen der im Versuch eingesetzten Futtermittel wurden im Institut für
Tierernährung der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover durchgeführt. Hierbei
erfolgten die Untersuchungen im Doppelansatz gemäß den amtlichen Methoden der
VDLUFA (Verband Deutscher Landwirtschaftlicher Untersuchungs- und
Forschungsanstalten), Methodenbuch Band III (NAUMANN u. BASSLER 1976)
einschließlich der achten Ergänzung von 2012 mit institutseigenen Modifizierungen.
Material und Methoden
54
Darüber hinaus wurde von dem Laktationsfutter sowie von beiden Rohfaserpellets eine
nasse Siebanalyse zur Bestimmung der Partikelgrößenverteilung durchgeführt.
Rohnährstoffe 3.6.1
Mithilfe der Weender Analyse wurden die Gehalte an Rohnährstoffen und Rohwasser
bestimmt.
Trockensubstanzgehalt (TS-Gehalt)
Zur Ermittlung des Trockensubstanzgehaltes wurden je nach Probenmaterial 10-100 g des
Probenmaterials in eine gewichtskonstante Aluminiumschale eingewogen und über Nacht
in einem Trockenschrank bei 103 °C bis zum Erreichen der Massekonstanz (mindestens für
12 h) getrocknet. Nach Abkühlung in einem Exsikkator wurde das getrocknete
Probenmaterial rückgewogen und der TS-Gehalt nach folgender Formel berechnet:
TS-Gehalt (g/kg) = (Auswaage/Einwaage) *1000
Der berechnete Trockensubstanzgehalt wurde in g/kg der ursprünglichen Substanz
angegeben.
Rohasche (Ra)
Damit der Rohaschegehalt (enthält Mineralstoffe und anorganische Verunreinigungen)
ermittelt werden konnte, wurden 3 g des Probenmaterials in einen gewichtskonstanten
Keramiktiegel eingewogen und für sieben Stunden in einem Muffelofen bei 600 °C
verascht. Nach Abkühlung in einem Exsikkator wurde das veraschte Probenmaterial
rückgewogen und der Rohaschegehalt nach folgender Formel berechnet:
Ra-Gehalt (g/kg) = (Auswaage/Einwaage)*1000
Der berechnete Rohaschegehalt wurde in g/kg der Trockensubstanz angegeben.
Rohprotein (Rp)
Mithilfe der DUMAS-Verbrennungsmethode wurde zur Ermittlung des Rohproteingehaltes
(enthält Reineiweiß und stickstoffhaltige Verbindungen nicht eiweißartiger Natur, wie
Harnstoff etc.) der Gesamtstickstoffgehalt des Probenmaterial bestimmt. Dazu wurden 0,1-
0,3 g des Probenmaterials in einen Keramiktiegel eingewogen und unter Sauerstoffzufuhr
bei 1140 °C in einem Analysator (vario Max cube CNS, Elementar Analysensysteme
GmbH, Hanau) verbrannt. Der bei der Verbrennung freigesetzte Stickstoff wurde selektiv
Material und Methoden
55
mit einem Wärmeleitfähigkeitsdetektor erfasst und der ermittelte Gesamtstickstoffgehalt
anschließend mit dem Faktor 6,25 multipliziert, um den Rohproteingehalt, welcher in g/kg
der Trockensubstanz angegeben wurde, abzuleiten.
Rohfett (Rfe)
Der Rohfettgehalt (enthält neben Fetten auch ätherische Öle, Fettsäuren, Stearine, Wachse
und Pigmente) wurde bestimmt, indem 3 g des Probenmaterials in 140 ml Wasser und
60 ml 30 %iger Salzsäure 30 Minuten lang in einem 600 ml fassenden Becherglas gekocht
wurden. Nach anschließender Filtration (Faltenfilter 595 1/2 D 185mm, Schleicher &
Schuell, Micro Science GmbH, Dassel) und chloridionenfreier Waschung, wurden die
Filter im Trockenschrank bei 80 °C getrocknet. Nach der Trocknung wurde das Fett aus
den Filtern in einem Soxhletapparat mit 200 ml Petrolether über sechs Stunden extrahiert.
Nachdem der überschüssige Petrolether mithilfe eines Rotationsverdampfers (Rotavapor
R114, Büchi Labortechnik GmbH, Essen) abdestilliert wurde, wurden die Fettkolben in
einem Trockenschrank erneut bei 80 °C getrocknet und nach Abkühlung in einem
Exsikkator gewogen. Der Rohfettgehalt wurde schließlich durch Multiplikation des
Quotienten aus Auswaage und Einwaage der Probe mit dem Faktor 1000 ermittelt und in
g/kg Trockensubstanz angegeben.
Rohfaser (Rfa)
Zur Ermittlung des Rohfasergehaltes (enthält die unlöslichen Teile von Lignin, Zellulose,
Pentosanen sowie Cutin und Suberin) wurde 1 g des Probenmaterials in einen
Glasfiltertiegel gegeben und mit 150 ml 1,25 %iger Schwefelsäure 30 Minuten lang in
einem Rohfaserextraktor (Fibertec 2010 Hot Extractor, Foss GmbH, Hamburg) gekocht.
Nach Abnahme der flüssigen Phase, wurde der gleiche Vorgang mit 150 ml einer
1,25 %igen Natronlauge wiederholt. Im Anschluss wurde der Rückstand mit heißem
Wasser gespült, bei 103 °C in einem Trockenschrank getrocknet, ausgewogen, danach bei
500 °C in einem Muffelofen verascht und erneut gewogen. Der Rohfasergehalt wurde nun
aus der Differenz der beiden Wiegungen vor und nach der Veraschung berechnet, indem
diese Differenz multipliziert mit dem Faktor 1000 ermittelt und in g/kg Trockensubstanz
angegeben wurde.
Material und Methoden
56
Stickstoff-freie Extraktstoffe (NfE)
Die Gruppe der Stickstoff-freien Extraktstoffe, welche Stärke, Glykogen, Inulin, Zucker,
Pektinstoffe sowie die löslichen Anteile an Zellulose, Lignin und Pentosanen enthält, wurde
rein rechnerisch nach folgender Formel ermittelt:
NfE = TS – (Ra + Rp + Rfe + Rfa)
Kohlenhydrate 3.6.2
Stärke
Zur Ermittlung des Stärkegehaltes wurden in einem 100 ml fassenden Messkolben zu 2,5 g
des Probenmaterials 50 ml Salzsäure (c = 0,31 mol/l) gegeben und durch 15-minütiges
Kochen im Wasserbad aufgeschlossen. Nachdem die Probe durch Zugabe von destilliertem
Wasser auf 20 °C abgekühlt wurde, erfolgte ihre Klärung durch die Zugabe von je 5 ml
CARREZ-Reagenz I und II. Anschließend wurde die geklärte Lösung mit destilliertem
Wasser auf 100 ml aufgefüllt, geschüttelt und filtriert. Die optische Drehung der filtrierten
Lösung wurde mithilfe eines Polarimeters (Polatronic E, Schmidt und Haensch GmbH &
Co., Berlin) bestimmt. Als Blindwert dienten 50 ml eines Filtrat (hergestellt aus 5 g
Probenmaterial, welches mit 80 ml einer 40 %igen Ethanollösung eine Stunde bei
Raumtemperatur inkubiert und anschließend mit 40 %iger Ethanollösung auf 100 ml
aufgefüllt wurde), welches mit 2,1 ml einer 25 %igen Salzsäure 15 Minuten lang gekocht
und anschließend in einen 100 ml fassenden Messkolben überführt wurde. Nach Abkühlung
wurden je 5 ml CARREZ-Reagenz I und II zugegeben, die geklärte Lösung filtriert und die
optische Drehung analog der Probe bestimmt. Der Stärkegehalt konnte nun aus der
Differenz der polarimetrischen Untersuchung von Probenwert und Blindwert unter
Berücksichtigung eines Stärkefaktors ermittelt werden. Nach der Multiplikation des
ermittelten Stärkegehaltes mit dem Faktor 10, wurde dieser in der Einheit g/kg
Trockensubstanz angegeben.
Zucker
Um den Zuckergehalt zu analysieren, wurden 2,5 g des Probenmaterials mit 200 ml einer
40 %igen Ethanollösung versetzt und das Gemisch zur Lösung des Zuckers eine Stunde
unter ständigem Schütteln inkubiert. Nachfolgend erfolgte die Klärung der Lösung durch
Zugabe von je 5 ml CARREZ-Reagenz I und II nacheinander. Daran anschließend wurde
Material und Methoden
57
die Lösung mit 40 %iger Ethanollösung auf 250 ml aufgefüllt und mithilfe eines
Faltenfilters filtriert. Nachdem 200 ml des Filtrates auf unter 100 ml eingedampft, in einen
100 ml Messkolben überspült, auf Raumtemperatur abgekühlt und mit destillierten Wasser
wieder auf 100 ml aufgefüllt wurden, wurden von dieser Lösung 50 ml entnommen und mit
einigen Tropfen des Indikators Methylorange gemischt. Daraufhin wurde Salzsäure (c = 4
mol/l) bis zum Farbumschlag zugegeben. Es folgten 15 ml Salzsäure (c = 0,1 mol/l) als
Katalysator, bevor die Probe 30 Minuten lang im Wasserbad gekocht wurde. Anschließend
wurde die Lösung durch Zugabe von 15 ml Natriumhydroxyd (c = 0,1 mol/l) neutralisiert
und mit destillierten Wasser auf 100 ml aufgefüllt. 25 ml dieser Lösung wurden mit 25 ml
Reagenz nach LUFF-SCHOORL versetzt, 10 Minuten gekocht und in einem Wasserbad
abgekühlt. Nach Zugabe von 10 ml einer 30 %igen Kaliumiodidlösung und 25 ml Salzsäure
(c = 6 mol/l), wurden einige ml einer 0,5 %igen Stärkelösung als Indikator zugegeben und
eine Titration mit einer Natriumthiosulfatlösung (c = 0,1 mol/l) durchgeführt. Gleichzeitig
wurde ein Blindwert bestehend aus je 25 ml destillierten Wasser und der Reagenz nach
LUFF-SCHOORL hergestellt und ebenso der Titration unterzogen. Der Zuckergehalt
konnte nun aus der Differenz aus verbrauchter Natriumthiosulfatlösung des Haupt- und des
Blindwertes bestimmt werden und wurde in g/kg Trockensubstanz angegeben.
Laktose
Die in dem eingesetzten Ferkeljoghurt sowie in der Sauenmilch enthaltende
Laktosekonzentration wurde mit einem kommerziell erhältlichen Testkit (Lactose/D-
Glucose UV-Test, R-Biopharm AG, Darmstadt) bestimmt.
Zur Herstellung der verwendeten Probelösung wurden 1 g des Probenmaterials in einen
100 ml Messkolben eingewogen und 60 ml Wasser hinzugefügt. Im Anschluss erfolgte die
Klärung der Lösung durch Zugabe von je 5 ml Carrez-Reagenz I und II und eine Korrektur
des pH-Wertes durch Zugabe von 10 ml einer 0,1-molaren Natronlauge. Dabei wurde die
Suspension nach jeder Zugabe gemischt und filtriert. Nachdem die Probelösung hergestellt
worden war, wurden die im Testkit enthaltenden Reagenzien nach dem folgenden Protokoll
zugefügt (Tabelle 11):
Material und Methoden
58
Tabelle 11: Verwendetes Arbeitsprotokoll gemäß der Anleitung des Testkits (Lactose/D-Glucose UV-Test, R-Biopharm AG, Darmstadt)
In Küvetten pipettieren
Leerwert Laktose-Probe
Laktose-Probe Leerwert D-
Glukose-Probe D-Glukose-Probe
Lösung *
Suspension **
Probelösung
0,20 ml
0,05 ml
-
0,20 ml
0,05 ml
0,10 ml
-
-
-
-
-
0,10 ml
Mischen, 20 Min. bei 20-25°C stehenlassen. Zugabe von:
Lösung ***
Bidest. Wasser
1,00 ml
2,00 ml
1,00 ml
1,90 ml
1,00 ml
2,25ml
1,00 ml
2,15 ml
Mischen, nach ca. 2 Min. Extinktion der Lösung messen (E1)
Reaktion starten durch Zugabe von:
Suspension **** 0,02 ml 0,02 ml 0,02 ml 0,02 ml
Mischen, Extinktion der Lösung nach ca. 15 Min messen (E2)
* Citrat-Puffer, pH 6,6 **** Hexokinase, ca. 400 U;
** β-Galaktosidase, ca. 100 U Glukose-6-Phosphat-Dehydrogenase
*** Triethanolaminpuffer, pH 7,6 ca. 200 U NADP (70 mg)
ATP (170 mg)
Magnesiumsulfat
Das Prinzip des Testes beruhte dabei auf einer enzymatischen Umwandlung der Laktose zu
D-Glukose und im weiteren Reaktionsverlauf zu D-Glukonat-6-Phosphat und reduziertes
Nicotinamid-adenin-dinucleotidphosphat (NADPH). Die während der Reaktion gebildete
Menge an NADPH, welche äquivalent zu der entstandenen D-Glucose Konzentration ist,
wurde photometrisch bei 340 nm bestimmt und der Gehalt an Laktose durch die Differenz
der D-Glukose mit und ohne Hydrolyse durch die β-Galaktosidase mit folgender Formel
berechnet:
c = �∗��
∗∗�∗� * ΔE (g/l)
V = Testvolumen (ml) v = Probevolumen (ml)
MG = Molekulargewicht der zu bestimmenden Substanzen (g/mol)
d = Schichtdicke (cm)
ε = Extinktionskoeffizient von NADPH bei 340 nm = 6,3 (l * mmol-1
* cm-1
) ΔE = (E2-E1)Probe – (E2-E1) Leerwert
Material und Methoden
59
Energie 3.6.3
Die Schätzung der umsetzbaren Energie (ME) in dem eingesetzten Laktationsfutter und den
beiden Prestartern erfolgte mithilfe folgender Schätzformel für Mischfuttermittel (GFE
2008):
ME (MJ/kg TS) =
0,021503 * Rohprotein (g/kg TS)
+ 0,032497 * Rohfett (g/kg TS) – 0,021071 * Rohfaser (g/kg TS)
+ 0,016309 * Stärke (g/kg TS) + 0,014701 * organischer Rest1 (g/kg TS)
1oorganischer Rest (g/kg TS) = organische Substanz (g/kg TS) – [Rp (g/kg TS) +
Rfe (g/kg TS) + Rfa (g/kg TS) + Stärke (g/kg TS)]
Diese Gleichung sollte jedoch nur für Mischfuttermittel mit folgenden Eigenschaften
angewendet werden (GFE 2008):
Rohprotein ≥ 150 und ≤ 250 g/kg TS,
Rohfett ≤ 60 g/kg TS
Rohfaser ≤ 80 g/kg TS
Die in den Versuchen eingesetzten Rohfaserpellets verfügten über einen zu hohen
Rohfaser- und einen zu niedrigen Rohproteingehalt, sodass für diese Futtermittel die
umsetzbare Energie auf Basis der Rohnährstoffe unter Berücksichtigung des ADF-Gehaltes
mit der folgenden Formel nach KIRCHGESSNER und ROTH (1983) geschätzt wurde:
ME (MJ/kg TS) =
0,0218 * Rohprotein (g/kg TS) + 0,0314 * Rohfett (g/kg TS)
+ 0,0171 * Stärke (g/kg TS)
+ 0,0169 * Zucker (g/kg TS) + 0,0081 * organischer Rest (g/kg TS)
- 0,0066 * ADF (g/kg TS)
Da der eingesetzte Ferkeljoghurt über einen zu hohen Rohfettgehalt für die Benutzung der
Schätzformel für Mischfuttermittel verfügte, wurde der Energiegehalt in Anlehnung an
TROOST (2014) und (TRAUSCHKE 2008) mittels einer Formel berechnet, welche
üblicherweise zur Energiekalkulation von Milchaustauscher bei Kälbern eingesetzt wird:
ME (MJ/kg TS) = (vRp * 18,1 + vRfe * 32,4 + vNfE * 15,2)/1000
Material und Methoden
60
Als Verdaulichkeiten wurden für Rohprotein 0,98, Rohfett 0,97 und Stickstoff freie
Extraktstoffe 0,96 angenommen (WILSON u. LEIBHOLZ 1981; MILLER u. ULLREY
1987; DARRAGH u. MOUGHAN 1995).
Mengen- und Spurenelemente 3.6.4
Der Gehalt an Mengen- und Spurenelementen wurde ermittelt, indem 0,5 g des
Probenmaterials mit 10 ml einer 65 %igen Salpetersäure und 2 ml einer 30 %igen
Wasserstoffperoxid-Lösung für 30 Minuten in einer Mikrowelle (MLS-1200 MEGA,
Milestone, Shelton, USA) nach dem Prinzip einer Mikrowellen-Druckveraschung
aufgeschlossen wurden. Nach Abkühlung wurde die Lösung filtriert (Aschefreier
Rundfilter, Diam. 90 mm, IDL GmbH & Co. KG, Nidderau) und mit tridestillierten Wasser
auf ein Volumen von 50 ml aufgefüllt. Die nach diesem Prinzip bearbeitete Probe konnte
für die weitere Mineralstoffanalyse verwendet werden. Die Messergebnisse wurden in g/kg
Trockensubstanz angegeben.
Calcium (Ca), Magnesium (Mg)
Zur Ermittlung der Calcium- und Magnesiumgehalte wurde die Aschelösung mit einer
0,5 %igen Lathanchloridlösung, je nach erwartetem Ca- oder Mg-Gehalt 1:10, 1:100 oder
1:1000, verdünnt. Im Anschluss erfolgte die Messung der jeweiligen Ionenkonzentrationen
mit einem Atomabsorptionsspektrometer (Unicam SOLAAR M Series Flame and Furnace
Atomic Absorption Spectrometer Systems, Thermo Elemental/Thermo Scientific,
Cambridge, England).
Phosphor
Zur Erhebung der Phosphorgehalte wurde die Vanadat-Molybdat-Methode (GERICKE u.
KURMIES 1952) mit institutseigenen Modifikationen durchgeführt. In einem Messkolben
wurden 10 ml eines Gemisches bestehend aus Ammoniummolybdat, Ammoniumvanadat
und Salpetersäure vorgelegt und anschließend so viel der Aschelösung hinzugegeben, bis es
zu einer Gelbfärbung der Lösung kam, welche zwischen der von zwei zuvor erstellten
Standards bekannten Phosphorgehaltes lag (2 mg/l bzw. 0,5 mg/l). Nachdem mit
tridestillierten Wasser bis auf ein Volumen von 50 ml aufgefüllt wurde, wurde nach
Aufschütteln der Lösung und einer Inkubationszeit von 30 Minuten der Phosphorgehalt
Material und Methoden
61
mittels eines Spektralphotometers (Cadas 100, Hach Lange GmbH, Düsseldorf) bei einer
Wellenlänge von 365 nm ermittelt.
Natrium (Na), Kalium (K)
Um die Natrium- und Kaliumgehalte zu erfassen, wurde die Aschelösung mit einer
Caesiumchlorid-Aluminiumnitrat-Lösung (50 g/l CsCl + 250 g/l Al(NO3)2 + 9 H2O)
verdünnt und die jeweiligen Ionenkonzentrationen mit einem Atomabsorptionsspektrometer
(Unicam SOLAAR M Series Flame and Furnace Atomic Absorption Spectrometer
Systems, Thermo Elemental/Thermo Scientific, Cambridge, England) gemessen.
Chlorid (Cl)
Zur Ermittlung der Chloridgehalte wurden 5 g des Probenmaterials mit 30-40 ml
destilliertem Wasser versetzt und mithilfe eines Rüttlers 30 Minuten geschüttelt, bevor auf
ein Volumen von 50 ml mit destillierten Wasser aufgefüllt wurde. Im Anschluss wurde ein
Teil der Probe bei 1500 x g für 15 Minuten zentrifugiert (Megafuge 1.0, Heraeus, Hanau)
und der gewonnene Überstand für eine Fällungstitration im Chlorid-Analysator (Chloride
Analyser 925, Fa. Ciba Corning Diagnostics, Medfield, USA) verwendet.
Spurenelemente
Zur Ermittlung der Spurenelementgehalte in den Aschelösungen wurde ein
Atomabsorptionsspektometer (Unicam SOLAAR M Series Flame and Furnace Atomic
Absorption Spectrometer Systems, Thermo Elemental/Thermo Scientific, Cambridge,
England) verwendet.
Aminosäuren 3.6.5
Lysin
In dem Versuchsvorhaben wurden zur Ermittlung des Lysingehaltes 0,5 g des
Probenmaterials mit 80 ml Salzsäure (c = 6 mol/l) über Nacht bei 110 °C in einem
Aufschlussgerät (Kjeldatherm, C. Gerhardt GmbH & Co. KG, Königswinter) gekocht und
nach dem Abkühlen mit einem internen Standard (3,28 mg Norleucin / ml) – je nach Rp-
Gehalt – versetzt. Nachdem das Gemisch mit 6-molarer Salzsäure auf 100 ml aufgefüllt
wurde, wurde 1 ml dieser Lösung in einen Spitzkolben (50 ml) überführt und dreimal in
einem Rotationsverdampfer (Rotavapor R114, Büchi Labortechnik GmbH, Essen)
Material und Methoden
62
eingetrocknet und mit destillierten Wasser wieder aufgefüllt. Je nach Rp-Gehalt wurde ein
Probenverdünnungspuffer hinzugegeben, bevor der Gehalt der Aminosäuren mittels
Ionenaustauschchromatographie in einem Aminosäurenanalysator (Biotronik LC 3000,
Eppendorf AG, Maintal) bestimmt wurde.
Methionin und Cystein
Zur Ermittlung der Methionin- und Cysteingehalte wurden 0,2 g des Probenmaterials mit
5 ml Perameisensäure versetzt und über Nacht bei einer Temperatur von 4 °C gekühlt,
wodurch eine Oxidation hervorgerufen wurde. Nachdem die Oxidation durch Zugabe von
0,8 g Natriumdisulfit gestoppt wurde, erfolgte eine saure Hydrolyse, indem das
Probenmaterial mit 50 ml einer 6-molaren Salzsäure und 0,1 %igen Phenol vermischt und
bei 110 °C über Nacht aufgeschlossen wurde (Kjeldatherm, C. Gerhardt GmbH & Co. KG,
Königswinter). Anschließend wurde die Probe in einem Wasserbad abgekühlt, mittles einer
Unterdruck-Wasserstrahlpumpe filtriert (Zellulose Azetat Filter, 0,2 μm Porenweite,
Whatman GmbH, Dassel), dreimal in einem Rotationsverdampfer (Rotavapor R114, Büchi
Labortechnik GmbH, Essen) eingetrocknet und mit destillierten Wasser wieder aufgefüllt.
Nach der Überführung in einen 50 ml fassenden Messkolben und Auffüllung desselben mit
Probenverdünnungspuffer wurde die Probe abhängig vom Rp-Gehalt verdünnt und der
Gehalt der Aminosäuren in dem Aminosäurenanalysator (Biotronik LC 3000, Eppendorf
AG, Maintal) bestimmt.
Neutrale-Detergenz-Faser (NDF, Neutral Detergent Fiber) 3.6.6
Die Bestimmung der Neutralen-Detergenz-Faser (NDF – Summe der pflanzlichen
Gerüstsubstanzen) erfolgte nach dem Methodenbuch Band III einschließlich der achten
Ergänzung aus dem Jahre 2012 der VDLUFA (Verband Deutscher Landwirtschaftliche
Untersuchungs- und Forschungsanstalten) (NAUMANN u. BASSLER 1976). Hierzu
wurden 0,5 g des Probenmaterials in einen gewogenen Glasfiltertiegel gegeben und im
Rohfaserextraktionsgerät (Fibertec 2010 Hot Extractor, Foss, Schweden) in 100 ml
neutraler Detergentienlösung (Natriumlaurylsulfat, EDTA, pH 7) und einigen Tropfen 1-
Octanol zur Verhinderung der Schaumbildung bis zum Sieden erhitzt. Nach dem
Hinzufügen von 2 ml einer hitzestabilen α-Amylase (Termamyl®120L, Type L, Univar,
Essen) wurde die Lösung eine Stunde lang gekocht. Anschließend wurde die Flüssigkeit
Material und Methoden
63
durch den Glasfiltertiegel abgesaugt, der Glasfiltertiegel bis zur Hälfte mit heißem
destillierten Wasser bedeckt und erneut 2 ml der α-Amylase zugegeben. Nach einer
Inkubationszeit von mindestens einer Minute, wurde der Rückstand zwei Mal mit heißem
destillierten Wasser gewaschen. Mithilfe einer Kaltextraktionseinheit (Saugflasche und
Wasserstrahlpumpe) wurde der Glasfiltertiegel so lange mit Aceton durchspült, bis dieses
farblos geworden war. Nachdem der Tiegel in einem Trockenschrank bei 103 °C bis zur
Gewichtskonstanz getrocknet worden war, wurde dieser nach Abkühlen im Exsikkator
gewogen und der NDF-Gehalt mit folgender Formel bestimmt:
NDF (g/kg TS) = �����
��������
m1: Masse des leeren Filtertiegels
m2: Masse des Filtertiegels mit NDF
Säure-Detergenz-Faser (ADF, Acid Detergent Fiber) 3.6.7
Die Bestimmung der Säure-Detergenz-Faser (ADF – insbesondere Zellulose und Lignin)
erfolgte ebenfalls nach dem Methodenbuch Band III einschließlich der achten Ergänzung
aus dem Jahre 2012 der VDLUFA (Verband Deutscher Landwirtschaftliche
Untersuchungs- und Forschungsanstalten) (NAUMANN u. BASSLER 1976). Hierzu
wurden 0,5 g des Probenmaterials analog der Vorgehensweise der Bestimmung der NDF
behandelt, mit der Ausnahme, dass keine neutrale, sondern eine saure Detergentienlösung
(Cetyltrimethylammoniumbromid in 1 molarer Schwefelsäure) zur Anwendung kam und
auf den Zusatz von α-Amylase verzichtet wurde.
Analyse der Futterstruktur 3.6.8
Die Beurteilung der Verteilung der Partikelgrößen in dem verwendeten Laktationsfutter
und den beiden Rohfaserpellets erfolgte mithilfe einer nassen Siebanalyse. Hierzu wurden
Siebtürme (Retsch GmbH, Haan) bestehend aus 8 Einzelsieben mit jeweils
unterschiedlicher Maschenweite (0,2 / 0,4 / 0,56 / 0,8 / 1 / 1,4 / 2 / 3,15 mm) verwendet.
Nachdem die Siebtürme in einem Trockenschrank bei 103 °C bis zur Gewichtskonstanz
getrocknet, in einem Exsikkator abgekühlt und jedes Sieb einzeln gewogen wurde, wurde
eine Suspension bestehend aus 30-50 g des zu untersuchenden Probenmaterials, welches
zuvor in einem Liter destillierten Wasser für eine Stunde eingeweicht wurde, über den
Turm gegeben und der Turm mit 10 l destillierten Wasser durchgespült. Im Anschluss
Material und Methoden
64
erfolgte erneut eine Trocknung im Trockenschrank bei 103 °C und nach Abkühlung in
einem Exsikkator die Auswaage der einzelnen Siebe mit den darauf liegenden
Futterpartikeln. Unter Berücksichtigung des zuvor ermittelten TS-Gehaltes, konnte nun die
anteilsmäßige Verteilung der Partikel auf den Sieben bestimmt werden. Der Anteil gelöster
und feinster ausgewaschener Probenanteile (<0,2 mm) wurde durch Subtraktion der
Auswaage von der Einwaage erfasst.
Analyse der Kotzusammensetzung 3.7
Die Bewertung der Kotqualität erfolgte an insgesamt 10 Kotproben pro Sau. Dafür wurden
von jeder Sau zur Einstallung, in der Woche des Abferkelns alle zwei Tage und ab der
zweiten Laktationswoche einmal wöchentlich, Kotproben rektal entnommen.
TS-Gehalt
Der TS-Gehalt der Kotproben wurde analog dem der eingesetzten Futtermittel bestimmt
(Methode: siehe Kapitel 3.6.1).
pH-Wert
Zur Ermittlung des pH-Wertes wurde ca. 1 g der Kotprobe im Verhältnis von 1:4 mit
destilliertem Wasser gemischt und das Gemisch für ca. 30 Minuten bei Raumtemperatur
stehen gelassen. Anschließend erfolgte die Bestimmung des pH-Wertes mit einem pH-
Meter (SG2 Seven GoTM
pH-Meter, Mettler-Toldo, Greifensee, Schweiz).
Eisengehalt (Fe-Gehalt)
In den 24 - 48 Stunden nach der Geburt entnommenen Kotproben wurde der Eisengehalt
analog der bereits beschriebenen Methode zur Bestimmung der Spurenelemente bestimmt
(siehe Kapitel 3.6.4).
Analyse der Milchleistung- und Milchzusammensetzung 3.8
Kalkulation der Milchleistung 3.8.1
Die Milchleistung der Sauen wurde anhand des Wurfmassenzuwachses kalkuliert. Als
Kalkulationsgrundlage dienten verschiedene Untersuchungen, welche belegen, dass –
relativ unabhängig von der Wurfgröße – für einen kg Wurfzuwachs 4,1 kg Sauenmilch
Material und Methoden
65
benötigt werden (GFE 2006). Unter Berücksichtigung eines Teilwirkungsgrades von k=0,7
wurde die von den Ferkeln aufgenommene Energie über das Beifutter errechnet und von
der eigentlich für den Wurfzuwachs benötigten Energie aus der Sauenmilch abgezogen. Die
für den Zuwachs benötigte Energie aus der Sauenmilch wurde ermittelt, indem der in den
eigenen Untersuchungen ermittelte Energiegehalt der Sauenmilch, sowie die Umsetzbarkeit
von k=0,9 und der Teilwirkungsgrad von k=0,7 der Sauenmilch in die Rechnung mit
einbezogen wurden.
Chemische Analyse der Sauenmilch 3.8.2
In der dritten und vierten Laktationswoche wurde den Sauen eine Milchprobe entnommen,
indem in einer regulären Säugeperiode ein bis zwei Ferkel von der Sau entfernt wurden.
Nach gründlicher Reinigung der entsprechenden Mammakomplexe mit einem
Desinfektionstuch wurden zwischen 1-7 ml Milch von Hand ermolken und bei -20 °C
tiefgefroren. Die weitere Untersuchung der Milch erfolgte im Doppelansatz im Labor des
Institutes für Tierernährung der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover nach den
amtlichen Methoden der VDLUFA (Verband Deutscher Landwirtschaftliche
Untersuchungs- und Forschungsanstalten), Methodenbuch Band III (NAUMANN u.
BASSLER 1976) einschließlich der achten Ergänzung von 2012 mit institutseigenen
Modifizierungen.
Nachdem die Sauenmilch bei Raumtemperatur aufgetaut worden war, wurde aufgrund der
geringen Milchmenge aus den Einzelproben eine Sammelprobe gebildet und diese für die
weiteren Untersuchungen verwendet. Folgende Parameter wurden analysiert und in g/kg uS
abgegeben:
� Trockensubstanzgehalt (TS-Gehalt)
� Rohprotein (Rp)
� Rohfett (Rfe)
� Laktose
� Lysin
Material und Methoden
66
Die Bestimmung dieser Parameter erfolgte analog der Beschreibungen der Kapitel 3.6.1,
3.6.2 und 3.6.5; jedoch mit einer Einwaage von jeweils 5 g (TS-Gehalt und Rfe-Gehalt)
bzw. 1 g Sauenmilch (Rp-Gehalt).
Der Energiegehalt der Sauenmilch wurde mit folgender Formel bestimmt
(KIRCHGESSNER et al. 1992):
Energie (kJ/g uS) = 0,268 * %Protein + 0,346 * %Fett + 1,138
Analyse des Cortisolgehaltes im Speichel der Sauen 3.9
Zur Einstallung in den Abferkelstall sowie 2 Tage vor dem errechneten Geburtszeitpunkt
und 24 und 72 Stunden nach der Geburt wurden mithilfe einer Salivette (Sarstedt AG &
Co., Nümbrecht) von jeder Sau ca. 1,5 ml Speichel entnommen. Zur Einstallung geschah
dies am späten Nachmittag, sodass sich die Sauen von dem Einstallungsprozedere beruhigt
hatten, während die Probengewinnung an den anderen Zeitpunkten in den frühen
Morgenstunden eine halbe Stunde nach der morgendlichen Fütterung, vor jeder anderen
Manipulation stattfand. Für eine ausreichende Einspeichelung des Wattetupfers, wurde
dieser mit einer langen Kornzange für circa eine Minute in das Maul der Sauen gehalten.
Nach einer Zentrifugation der Salivette (1500 x g, Megafuge 1.0, Heraeus, Hanau) wurde
der gewonnene Speichel in Reagiergefäße (SafeSeal Reagiergef. 2ml, PP, Sarstedt AG &
Co., Nümbrecht) gegeben und bis zur weiteren Analyse bei -20 °C tiefgefroren.
Die quantitative Bestimmung des freien Cortisols im Speichel erfolgte im
Endokrinologischen Labor der Rinderklinik der Tierärztlichen Hochschule Hannover
mithilfe eines kommerziell verfügbaren Enzymimmunoassays (Cortisol free in Saliva
ELISA DES6611, Demeditec Diagnostics GmbH, Kiel, Germany). Hierzu wurden die
Speichelproben zunächst bei Raumtemperatur aufgetaut und abzentrifugiert (1000 x g,
5 Min). Die mit polyklonalen Anti-Cortisol-Antikörpern beschichteten Wells der
Mikrotiterplatte wurden im Anschluss mit je 50 μl der Standards (0/ 0,1/ 0,4/ 1,7/ 7/
30 ng/ml), der Speichelproben und zwei Kontrollflüssigkeiten, welche je einen hohen und
einen niedrigen Cortisolgehalt aufwiesen, befüllt. Nachdem 50 μl eines Enzymkonjugates –
mit Meerrettichperoxidase markiertes Cortisol – hinzugegeben wurde, wurde die
Mikrotiterplatte nach kurzem Aufschütteln für eine Stunde bei Raumtemperatur inkubiert.
Es folgten vier Waschgänge, die Zugabe von je 200 μl Substratlösung in die Wells und eine
Material und Methoden
67
30-minütige Inkubationszeit bei Raumtemperatur in einem abgedunkelten Bereich des
Labors. Durch die Zugabe von 50 μl einer Stopplösung wurde die Reaktion schließlich
beendet, bevor die Extinktion der Lösungen in den Wells bei 450±10 nm bestimmt wurde
(Sunrise™, Tecan Group Ltd, Männedorf, Schweiz). Dabei war die Intensität der
Gelbfärbung umgekehrt proportional zu der Cortisolkonzentration in der Probe. Die
Sensitivität des Testes betrug 0,024 ng/ml, bei einem Messbereich von 0,1 – 30 ng/ml.
Serologische Untersuchungen 3.10
Blutparameter der Sauen 3.10.1
Zur Einstallung (7 Tage a.p.), sowie 24 und 72 Stunden p.p. wurden jeweils 2 Stunden nach
der morgendlichen Futtergabe ca. 10 ml venöses Blut aus der Vena jugularis entnommen
und dieses nach 10-minütiger Abzentrifugation (1500 x g, Megafuge 1.0, Heraeus, Hanau)
bis zur weiteren Untersuchung bei -20°C eingefroren. Die weiterführenden Untersuchungen
fanden in dem Labor der Klinik für kleine Klauentiere, Forensische Medizin und
Ambulatorische Klinik der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover statt. Hierzu
wurden die Serumproben vor jeder Untersuchung bei Raumtemperatur aufgetaut. Folgende
Parameter wurden in dem gewonnenen Serum der Sauen ermittelt:
Porzines C-reaktives Protein (CRP)
Die Konzentration des im Serum vorliegenden C-reaktiven Proteins wurde mithilfe eines
kommerziell verfügbaren Enzymimmunoassays ("PHASE"TM Porcine CRP Assay,
Tridelta Development Ltd, Kildare, Irland) bestimmt. Hierzu wurden die Proben zunächst
je nach erwarteter CRP-Konzentration mit einem im Testkit enthaltenden
Verdünnungspuffer verdünnt (1:100 / 1:200 / 1:400). Daraufhin wurden je 100 μl der
jeweiligen Standards (0/ 46,9/ 93,75/ 187,5/ 375/ 750/ 1500/ 3000 ng/ml) und verdünnten
Serumproben in die mit polyklonalen anti-porzinen CRP-Antikörpern beschichteten Wells
der Mikrotiterplatte des Testkits gegeben und diese 15 Minuten lang bei einer Temperatur
von 37°C inkubiert. Nach viermaligem Waschen mit dem beigefügten Waschpuffer,
wurden in jedes Well 100 μl eines Enzymkonjugates – mit Meerrettichperoxidase markierte
anti-porzine CRP-Antikörper – hinzugefügt und die Mikrotiterplatte für 15 Minuten bei
37°C inkubiert. Anschließend folgte nochmals ein viermaliger Waschgang, bevor 100 μl
Material und Methoden
68
einer Tetramethylbenzidinsubstratlösung hinzugefügt wurden und die Mikrotiterplatte für
weitere 15 Minuten bei Raumtemperatur in einem abgedunkelten Bereich platziert wurde.
Das Zufügen von 100 μl einer schwefelhaltigen Stopplösung beendete die Reaktion und
führte zu einer Gelbfärbung der Probe, wobei die Intensität der Gelbfärbung proportional
zu der in der Probe enthaltenen CRP-Konzentration war. Die Extinktion der in den Wells
vorhandenen Lösungen wurde mithilfe eines Photometers (ELISA Reader MRX, Dynex
Technologies GmbH, Denkendorf) bei 450 nm bestimmt und im Anschluss die
Konzentration des in den Proben enthaltenen CRPs berechnet (mithilfe von Microsoft
Excel 2010).
D- Laktat
Zur Bestimmung von D- Laktat im Serum der Sauen wurde eine modifizierte Methode nach
Bergmeyer (HAMER 1962) angewandt. Hierzu wurden die Serumproben zunächst mit
Perchlorsäure enteiweißt und der nach Zentrifugation entstandene Überstand für die
Laktatbestimmung genutzt. Im Anschluss wurden 50 μl des Überstandes sowie 500 μl eines
Puffergemisches bestehend aus Nikotinamid-Adenin-Dinucleotid (NAD, Roche,
Mannheim), Tris(hydroxylmethyl)-aminomethan-Puffer (Merck KGAa, Darmstadt), L-
Glutaminsäure (Merck KGAa, Darmstadt), 1-molarer Natronlauge und einer Glutamat-
Pyruvat-Transaminase (GPT, Roche, Mannheim) in eine Halbmikroküvette gegeben,
gemischt und nach einer Minute die Extinktion (= Leerwert) bestimmt. Nach Zugabe von
5 μl L-LDH für die Bestimmung von L-Laktat bzw. D-LDH für die Bestimmung von D-
Laktat wurde die Extinktion erneut nach 30, 40 und 50 Minuten abgelesen. Die Differenz
zwischen der gemessenen Extinktion von Serumprobe und Leerwert multipliziert mit einem
Faktor F=10,78 ergab den Gehalt an D- und L-Laktat und wurde in mmol/l angegeben.
Blutparameter der Ferkel 3.10.2
Bei vier Ferkeln pro Wurf wurden 24 Stunden p.p. sowie zum Absetzen (Tag 35) ca. 4 ml
venöses Blut aus der Vena cava cranialis, bzw. am Tag 35 aus der Vena jugularis
entnommen und dieses nach 10-minütiger Abzentrifugation (1500 x g, Megafuge 1.0,
Heraeus, Hanau) bis zur weiteren Untersuchung bei -20°C eingefroren. Hierzu wurden
jeweils zwei Ferkel mit dem größten Geburtsgewicht und zwei Ferkel mit einem niedrigen
Geburtsgewicht (jedoch > 1 kg KM) ausgewählt. Die weiterführenden Untersuchungen
Material und Methoden
69
fanden in dem Labor der Klinik für kleine Klauentiere, Forensische Medizin und
Ambulatorische Klinik der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover statt. Hierzu
wurden die Serumproben vor jeder Untersuchung bei Raumtemperatur aufgetaut. Folgende
Parameter wurden in dem gewonnenen Serum der Ferkel ermittelt:
Immunokrit
Zur Ermittlung des Immunokrits – der Gesamtheit der im Ferkelserum enthaltenden
Immunglobuline – wurde die von VALLET et al. (2013) beschriebene Methodik leicht
modifiziert, angewandt. Hierzu wurden zunächst 100 μl des Ferkelserums mit 100 μl einer
40 %igen Ammoniumsulfatlösung vermischt und im Doppelansatz für 10 Minuten in einer
Hämatokrit-Mikrokapillare (Hirschmann Laborgeräte GmbH & Co. KG, Eberstadt)
zentrifugiert (Heraeus® Biofuge® Haemo, Heraeus, Hanau). Der Quotient aus der Länge
des Präzipitates und der Gesamtlänge der Probe ergab den Wert des Immunokrits, welcher
ohne eine bestimmte Einheit ist. Als Negativkontrolle diente eine Mischung bestehend aus
jeweils 100 μl destilliertem Wasser und 40 %iger Ammoniumsulfatlösung, welche in
derselben Art und Weise behandelt wurde, wie die zu untersuchenden Serumproben. Vor
Beginn der Untersuchungen wurde der Variationskoeffizient innerhalb dieses Testsystems
bestimmt, indem der Immunokrit eines Schweineserums mit einem bekannten Proteingehalt
zwanzig Mal hintereinander ermittelt wurde. Dieses Schweineserum diente in den darauf
folgenden Untersuchungen des Ferkelserums als Kontrolle und wurde jeweils im
Doppelansatz zu jeder Untersuchung mitgeführt.
Proteingehalt
Der im Serum enthaltende Proteingehalt wurde mithilfe eines Nasschemie Analysators
(Cobas Mira Plus, Roche, Mannheim) nach dem Prinzip der Biuret-Reaktion (GORNALL
et al. 1949) bestimmt. Der ermittelte Wert wurde in g/l angegeben.
Albumingehalt und Globulin/Albuminquotient
Nach dem Prinzip der Bindung von Bromkresolgrün an Albumin (SCHIRARDIN u. NEY
1972) wurde der im Serum enthaltende Albumingehalt mithilfe eines Nasschemie
Analysators (Cobas Mira Plus, Roche, Mannheim) bestimmt und der ermittelte Wert in g/l
angegeben. Der Globulingehalt entsprach der Differenz zwischen Albumin- und
Proteingehalt. Somit wurde der Globulin/Albuminquotient wie folgt berechnet:
Material und Methoden
70
Globulin/Albuminquotient = [������������� (�/�) – ���!��������� (�/�)]
���!��������� (�/�)
Bestimmung der weiteren Globulinfraktionen
Die im Serum enthaltenden weiteren Globulinfraktionen wurden nach dem Prinzip einer
Elektrophorese mittles eines Elektrophorese Gerätes auf Zellulose-Acetatfolien
(Elphoscan-Mini Plus, Sarstedt AG & Co., Nümbrecht) bestimmt.
Mikrobiologische Untersuchungen 3.11
Bestimmung der Keimzahlen von Clostridium perfringens im Sauenkot post partum
Von jeder Sau wurde unmittelbar nach der Geburt (max. 10 h p.p.) rektal eine Kotprobe
entnommen und in dieser die Anzahl der Kolonie bildenden Einheiten von C. perfringens
bestimmt. Hierzu wurde zunächst ohne vorangegangene Anreicherung eine Erstverdünnung
(1 g Kot in 9 ml sterile Phosphatgepufferte Salzlösung, PBS) vorgenommen und aus dieser
weitere Dezimalverdünnungen bis 10-4
angefertigt. Dabei wurde darauf geachtet, die Probe
mit Hilfe eines Vortexers mit jeder erfolgten Verdünnung oder Überführung gründlich zu
durchmischen. Im Anschluss wurden 0,1 ml aus jeder Dezimalverdünnung entnommen, im
Doppelansatz auf die Oberfläche eines Nährbodens für C. perfringens (NPC-Agar) gegeben
und mit einem Spatel homogen auf die Oberfläche verteilt. Der angewendete „NPC-Agar“
wurde im Institut für Mikrobiologie der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover
hergestellt, wobei die Zusammensetzung des Agars in Anlehnung an GAD et al. (2011)
gewählt und institutsintern modifiziert wurde. Der Nährboden basierte auf einem 5 %igen
Schafblutagar. Als Zusätze wurden Neomycin (200μg/ml, Neomycin sulfate, research
grade, Serva Electrophoresis GmbH, Heidelberg), Polymyxin B (100μg/ml, Polymyxin B -
Sulfat BioChemica BC, AppliChem GmbH, Darmstadt) und Cystein (300μg/ml, L-
Cysteine·HCl·H2O, cryst. research grade, Serva Electrophoresis GmbH, Heidelberg)
zugefügt. Die Bebrütung der beimpften Nährböden erfolgte bei 37 °C für insgesamt 48 h in
anaerober Atmosphäre. (erzeugt durch AnaeroGen; Oxoid Deutschland GmbH, Wesel). Für
C. perfringens typische Kolonien wiesen eine Hämolyse- und eine Toxinzone auf. Zur
weiteren Absicherung der Diagnose „C. perfringens“ wurden Keime einer typischen
Kolonie in einem Tropfen einer sterilen 0,9 %igen Natriumchloridlösung suspendiert und
mikroskopisch auf die C. perfingens-typische Morphologie hin untersucht. Die
Material und Methoden
71
Bakterienspezies C. perfringens stellt sich unter dem Mikroskop als plumpes,
unbewegliches Stäbchen ohne Auftreibungen mit den Maßen 0,8-1 μm x 3-10 μm dar.
Weiterhin erfolgte eine Färbung nach Gram (GRAM u. FRIEDLAENDER 1884), um die
Gramlabilität der stäbchenförmigen Bakterien nachweisen zu können.
Zur weiteren Verifizierung wurden die typischen Kolonien einem CAMP-Test (CHRISTIE
et al. 1944) unterzogen, bei welchem es zu einer synergistischen Hämolyse zwischen dem
α-Toxin des C. perfringens Stammes und dem β-Toxin eines Streptococcus agalactiae
kommt. Hierzu wurde auf einer Columbia-Blut-Agar-Platte (Oxoid Deutschland GmbH,
Wesel) ein Streifen einer Stammkultur von S. agalactiae aufgetragen und die verdächtigen
Kolonien ca. 0,3 cm von dem aufgetragenen Streifen entfernt in einem 90° Winkel zu
diesem mit einer Öse aufgetragen. Nachdem diese Agarplatte für 24 h bei 37°C bebrütet
wurde, konnte im positiven Fall ein CAMP-Phänomen; eine deutlich sichtbare
Hämolysezone zwischen den beiden Bakterienspezies gesehen werden (Abbildung 9).
Abbildung 9: Schematische Darstellung des CAMP-Phänomens
Material und Methoden
72
Abbildung 10: Darstellung eines positiven (links) und eines negativen (rechts) Ergebnisses des CAMP-Testes
Die Bestimmung der Anzahl Kolonie bildender Einheiten von C. perfringens erfolgte
analog der Norm für Campylobacter spp. (ISO 2006) in leicht modifizierter Weise. Hierzu
wurde zunächst die Anzahl der als C. perfringens identifizierten Kolonien gezählt und aus
den Doppelansätzen der Mittelwert bestimmt. Für dieses Vorgehen wurden jedoch nur die
Platten berücksichtigt, auf denen zwischen 10-100 Kolonien gewachsen waren.
Die Anzahl der KbE/g Probe wurde nach folgender Formel ermittelt (ISO 2006):
" = ∑ $
�×[�% &( ,�×�')]×
" = KbE/g
∑ . = Summe aller Kolonien der Agarplatten, auf denen mindestens 30 und höchstens
300 gezählt wurden; modifiziert in: 10 bis 100 Kolonien
: = Volumen der Infektionssuspension in ml, welche auf eine Agar-Platte aufgebracht
wurde
;1 = Anzahl der Platten der ersten (niedrigsten) auswertbaren Verdünnungsstufe
;2 = Anzahl der Platten der zweiten (nächst höheren) auswertbaren Verdünnungsstufe
< = Verdünnungsfaktor der ersten (niedrigsten) auswertbaren Verdünnungsstufe
Bis zur weiterführenden Untersuchung wurden die Reinkulturen von C. perfringens in eine
Suspension bestehend aus Brain Heart Infusion, Pferdeserum und Glycerin
(Mischungsverhältnis 1:2:1) nach BAST (2001) modifiziert durch das Institut für
Mikrobiologie der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover gegeben und in einem
Kryoröhrchen (CryoPure, Sarstedt AG & Co., Nümbrecht) bei -80°C tiefgefroren.
Material und Methoden
73
Molekularbiologische Untersuchungen 3.12
Bestimmung der Toxintypen von Clostridium perfringens im Kot p.p. 3.12.1
Die weitere Klassifizierung der gewonnenen C.-perfringens-Kulturen hinsichtlich der
verschiedenen Toxintypen erfolgte stichprobenweise mit einem kommerziell erhältlichen
Multiplex-PCR-Kit (BACTOTYPE® PCR Amplification Kit Clostridium perfringens,
Biotype Diagnostics GmbH, Dresden). Zunächst wurde die Bakteriensuspension bei
Raumtemperatur aufgetaut und auf einer Columbia-Blut-Agar-Platte (Oxoid Deutschland
GmbH, Wesel) für 24 h bei 37 C anaerob inkubiert. Im Anschluss erfolgte ein
Zellaufschluss der Bakterienkolonien. Hierzu wurde jeweils eine Bakterienkolonie in 25 μl
destilliertem Wasser suspendiert und anschließend für 15 Minuten bei 98°C inkubiert.
Gleichzeitig erfolgte die Herstellung eines Mastermixes, indem dem Testkit beigefügten
PCR-Mix 247,5 μl Magnesiumchlorid, 33 μl Nuklease-freies Wasser und 22 μl einer Taq-
DNA-Polymerase zugesetzt wurden. Anschließend wurden je 22,5 μl des Mastermixes
zusammen mit je 2,5 μl der hitzebehandelten Bakteriensuspensionen bzw. der Positiv- und
Negativkontrolle in PCR-Gefäße gegeben, sodass ein Reaktionsvolumen von insgesamt
25 μl zur Verfügung stand.
Gemäß der Anleitung des Testkits wurde mithilfe eines PCR-Cyclers (LightCycler® 96,
Roche Diagnostics Deutschland GmbH, Mannheim) folgendes PCR-Protokoll verwendet
(Tabelle 12):
Tabelle 12: Verwendetes PCR-Protokoll gemäß der Anleitung des Testkits BACTOTYPE® PCR
Amplification Kit Clostridium perfringens
Temperatur Zeit
94 °C 3 Minuten Präinkubation
94 °C
55 °C
72 °C
60 Sekunden 60 Sekunden
60 Sekunden
35 Zyklen
72 °C
10 °C
5 Minuten
∞ Bis zum Ende
Im Anschluss erfolgte eine Elektrophorese (Sub-Cell® GT Cell, Bio-Rad Laboratories
GmbH, München) der Genfragmente in einem 2 %igen Agarosegel und Anfärbung der
DNA-Fragmente mit einem floureszierenden Agens (GelRed, VWR International GmbH,
Material und Methoden
74
Erlangen). Die entstandenen Banden wurden unter UV-Licht sichtbar gemacht und
ausgewertet (Gel DocTM XR, Bio-Rad Laboratories GmbH, München).
Bestimmung des Mikrobioms 3.12.2
In den Kotproben der Sauen wurde zu Versuchsbeginn (Einstallung), sowie ca. 24 - 48 h
p.p. und zu Beginn der dritten Laktationswoche das Mikrobiom bestimmt. Hierzu wurden
ca. 0,2 g des Kotes in 1,5 ml PBS suspendiert, eine Edelstahlkugel hinzugefügt und mit
einer Schwingmühle bei 25 Hz für eine Minute homogenisiert (Schwingmühle MM 400,
Retsch GmbH, Haan). Aus dieser Suspension wurden 200 μl entnommen und in eine Deep-
Well-Mikrotiterplatte überführt. Die DNA-Extraktion und Aufreinigung fand im Labor des
Boehringer Ingelheim Veterinary Research Centers GmbH & Co. KG Hannover mithilfe
eines automatisierten Pipettiersystems (Microlab STAR, Fa. Hamilton Company USA,
USA) und eines modifizierten Testkits (QIAamp 96er DNA Blood Kit, Qiagen GmbH
Germany, Hilden) statt. Hierbei wurden zunächst die in der Probe enthaltenden
Zellmembranen durch eine Protease zerstört und anschließend die freigesetzte DNA durch
Bindung an einer spezifischen Silikonmembran extrahiert.
Die Sequenzierung der in den Proben vorliegenden DNA wurde im Helmholtz-Zentrum für
Infektionsforschung GmbH in Braunschweig mithilfe einer 16S rRNA Analyse
durchgeführt. Diese Analyse beruht auf der Methodik des HUMAN MICROBIOME
PROJECT CONSORTIUM (2012). Dabei wurde die variable Region V4 der ribosomalen
RNA (rRNA) sequenziert (MiSeq System, Illumina Inc., San Diego, USA), wodurch in
etwa 20.000 Sequenzen pro Probe entstanden. Diese wurden mithilfe des Software
Programms QUIIME (Quantitative Insights Into Microbial Ecology) Version 1.8.0, welches
eine open-source Datenbank basierend auf zehntausenden Proben verschiedener Studien
darstellt, analysiert und interpretiert. Hierzu wurden über sogenannte OTUs (Operational
Taxonomic Units) relevante Sequenzen gefiltert, gebündelt und bei einer Übereinstimmung
von 97 % mit der Referenzdatenbank in Clustern geordnet (EDGAR 2010). Anschließend
erfolgte die taxonomische Zuordnung (WANG et al. 2007) der rRNA und die Einordnung
in den phylogenetischen Stammbaum (PRICE et al. 2010). Die statistische Auswertung
erfolgte mit dem Statistikprogramm R, Packet phyloseq (MCMURDIE u. HOLMES 2013).
Material und Methoden
75
Leistungsdaten der Sauen im Folgewurf 3.13
Zur Erfassung möglicher Langzeitauswirkungen der durchgeführten Fütterung in der
Laktation auf die folgende Reproduktionsleistungen der Sauen, wurden die in der
vorliegenden Studie eingesetzten Sauen nach dem Absetzen und bei der auf dem Versuch
folgenden Abferkelung beobachtet und folgende Parameter ermittelt:
Nach dem Absetzen unmittelbar nach Versuchsende:
� Absetz-Östrus-Intervall
� Sauenverluste (Schlachtung)
Bei der auf den Versuch folgenden Abferkelung:
� Anzahl der insgesamt / lebend / tot / mumifiziert geborenen Ferkel
Material und Methoden
76
Statistische Auswertung 3.14
Die statistischen Analysen des gewonnenen Datenmaterials wurden mithilfe eines
Statistical Analysis Systems für Windows, dem SAS® Enterprise Guide®, Version 7.1
(SAS Institute Inc. Cary, USA) durchgeführt. Modellresiduen wurden mittels Shapiro-
Wilk-Test und Kolmogorow-Smirnov-Test sowie visueller Beurteilung der Q-Q-Plots auf
Normalverteilung geprüft. Für das Vorliegen normalverteilter Daten wurde ein
parametrischer 2-Stichproben-t-Test angewendet. Im Falle nicht-normalverteilter Daten
wurde hingegen der nicht-parametrische Wilcoxon’s two sample Test vorgenommen. Für
die statistische Auswertung der Clostridium-perfringens-Keimzahlen wurden diese zuvor
logarithmiert. Varianzanalysen für Messwertwiederholungen (t-Test für verbundene
Stichproben bei normal und Vorzeichen-Rang-Test bei nicht normal verteilten
Messdifferenzen) wurden genutzt, um beispielweise die analysierten Parameter im Serum
der Sauen zu verschiedenen Zeitpunkten rund um die Geburt zu bewerten. Für die Analyse
der qualitativen Zielgrößen wurde der Chi-Quadrat-Homogenitätstest nach Pearson bzw.
bei einer geringen Anzahl an Beobachtungen der Test nach R.A. Fisher angewendet.
Korrelationsanalysen wurden durch die Bestimmung des Korrelationskoeffizienten nach
Pearson bzw. Spearman durchgeführt. Auswertungsergebnisse mit p-Werten kleiner als das
festgelegte Signifikanzniveau von α = 0,05 wurden als statistisch signifikant eingestuft. In
dem folgenden Kapitel sind die statistisch signifikant unterschiedlichen Mittelwerte durch
unterschiedliche hochgestellte Buchstaben gekennzeichnet. Die Darstellung der Ergebnisse
in den Abbildungen erfolgte durch das Programm Excel 2010 (Microsoft Corp., USA).
Ergebnisse
77
Ergebnisse 4
In diesem Kapitel werden die Ergebnisse der Versuche getrennt in drei Teilen dargestellt.
Während im ersten Teil die Ergebnisse der durchgeführten Futtermitteluntersuchungen
wiedergegeben werden, befassen sich die Teile 2 und 3 mit den Ergebnissen der
unterschiedlichen Fütterung der Sauen im peripartalen Zeitraum (Tag 7 a.p. bis Tag 2 p.p.)
und in der folgenden Laktation (ab Tag 3 p.p.). So wird im zweiten Teil der Auswertung
das zusätzliche ad-libitum-Angebot der Rohfaserpellets zu einem restriktiv gefütterten
Laktationsfutter bis Tag 2 post partum und die damit im Zusammenhang stehenden
Parameter präsentiert. Im dritten Teil der Auswertung erfolgt die Darstellung der
Ergebnisse der ad-libitum-Fütterung mit einem kommerziellen Laktationsfutter ab Tag 3
post partum.
Im Folgenden werden die Ergebnisse als Mittelwerte mit Standardabweichungen in
tabellarischer oder graphischer Form dargestellt; Einzelwerte sind dem Anhang zu
entnehmen. Die Kennzeichnung von statistisch signifikanten Unterschieden (p<0,05)
erfolgt mit hochgestellten Klein- oder Großbuchstaben (a,b,A,B). Die beiden
Fütterungsgruppen werden je nach eingesetztem Rohfaserpellet in den folgenden Tabellen
und Abbildungen mit den Abkürzungen Rohfaser 1/ Rfa 1 und Rohfaser 2 /Rfa 2 versehen.
Ergebnisse der Futtermitteluntersuchungen 4.1
Chemische Zusammensetzung der eingesetzten Futtermittel 4.1.1
Da in diesem Versuchsvorhaben eine Reihe von verschiedenen Futtermitteln zum Einsatz
kam, wurden die ermittelten Inhaltstoffe der Futtermittel zur besseren Vergleichbarkeit der
Ergebnisse bezogen auf die Trockensubstanz angegeben.
Neben den im Abferkelstall verwendeten Mischfuttermitteln wurde auch das Futter für die
tragenden Sauen untersucht, da die Kotqualität zu Beginn des Versuches bei Einstallung in
den Abferkelstall von der vorangegangenen Fütterung im Wartestall beeinflusst wird.
Während es sich bei dem eingesetzten Laktationsfutter, Tragendfutter, Prestarter und
Ferkeljoghurt um kommerziell erhältliche Produkte handelte, wurden die beiden
Ergebnisse
78
Rohfaserpellets mithilfe der institutseigenen Anlage zur Herstellung von Mischfuttermittel
hergestellt und entstammten jeweils einer einzigen Charge.
In der Tabelle 13 sind die analysierten Nährstoff-, Mineralstoff-, Aminosäuren- und
Energiegehalte des eingesetzten Laktationsfutters, der beiden Rohfaserpellets sowie des
Futters der tragenden Sauen zusammengefasst.
Tabelle 13: Analysierte Nährstoff-, Mineralstoff-, Aminosäuren- und Energiegehalte in dem Tragendfutter sowie den eingesetzten Laktationsfutter sowie Rohfaserpellet 1 (Rfa 1) und Rohfaserpellet 2 (Rfa 2)
Tragend-
futter
Laktations-
futter Rfa 1 Rfa 2
TS g/kg uS 897 891 885 899
Ra
g/kg TS
56,1 63,3 41,2 49,2
Rp 158 190 119 125
Lysin n.a. 11,3 5,97 6,15
Methionin n.a. 2,86 2,18 1,78
Cystein n.a. 3,62 2,71 2,44
Rfe 42,3 40,8 29,5 24,5
Rfa 71,9 48,3 197 179
NDF 353 186 426 431
ADF 101 56,8 253 230
NfE 671 657 613 622
Stärke 370 412 309 276
Zucker 59,4 52,1 31,1 32,5
Ca 8,77 11,0 4,07 5,18
P 5,59 6,62 2,29 2,96
Mg 2,13 2,27 1,73 1,77
Na 3,62 2,52 2,72 3,06
K 6,99 8,29 9,48 9,01
Cl 5,59 4,30 5,12 5,67
Cu
mg/kg TS
17,2 32,2 5,74 8,62
Zn 157 198 52,4 49,5
Se 0,40 0,67 0,10 0,12
Mn 146 177 14,2 30,6
Fe 237 489 363 279
Energiegehalt* MJ ME/kg TS 13,7 14,7 10,1 10,0
*berechnet; siehe Kapitel 3.6.3; n.a.: nicht analysiert
Der Vergleich der beiden hergestellten Rohfaserpellets zeigte höhere Rp-Gehalte in dem
Rohfaserpellet 2, zu welchem 4 % Sojaextraktionsschrot zugesetzt worden war. Trotz des
Zusatzes von Haferschälkleie zum Rohfaserpellet 2, war sowohl der Rfa- als auch der
ADF-Gehalt in diesem Pellet geringer als im Rohfaserpellet 1.
Ergebnisse
79
Da im Rohfaserpellet 1 jedoch ein höherer Rohfett- sowie Stärkegehalt analysiert wurde,
blieben die Energiegehalte in beiden Pellets weitgehend unverändert. Das Ca:P-Verhältnis
war in beiden Pellets nahezu identisch (Rfa 1: 1,76:1; Rfa 2: 1,75:1).
Die analysierten Energie- und Nährstoffgehalte der bei den Saugferkeln eingesetzten
Futtermittel sind in Tabelle 14 dargestellt. Während der Versuchsphase wurde im Bereich
der Saugferkeln aus betriebsinternen Gründen ein Wechsel des Prestarter-Herstellers
vorgenommen: Der Prestarter „Super-Früh“ (UNA HAKRA Hanseatische
Kraftfuttergesellschaft mbH, Hamburg) wurde durch den Prestarter „Panto®Biowean“ (HL
Hamburger Leistungsfutter GmbH, Hamburg) ersetzt. Beide Prestarter waren energetisch
gleichwertig, jedoch war ein tendenziell geringerer Rp-Gehalt und ein höherer Rfe- sowie
Rfa-Gehalt im Prestarter Panto®Biowean auffällig. Das Ca:P-Verhältnis war in diesem
Prestarter etwas geringer (1,05:1) als in dem Prestarter Super Früh (1,19:1).
Ergebnisse
80
Tabelle 14: Analysierte Nährstoff-, Mineralstoff-, Aminosäuren- und Energiegehalte der eingesetzten Futtermittel der Ferkel
Ferkeljoghurt Prestarter
Super Früh
Prestarter
Panto®Biowean
TS g/kg uS 941 901 900
Ra
g/kg TS
63,8 52,9 52,8
Rp 220 201 192
Lysin 18,4 15,1 14,7
Methionin 7,58 5,93 5,98
Cystein 3,89 3,35 4,15
Rfe 210 82,4 133
Rfa 2,04 39,6 57,5
NfE 504 625 565
Stärke 108 377 305
Laktose/Zucker 382 85,6 78,7
Ca 5,46 7,59 6,90
P 5,26 6,40 6,53
Mg 1,17 1,63 2,40
Na 4,70 2,46 2,20
K 13,7 7,38 6,51
Cl 9,34 6,19 6,08
Cu
mg/kg TS
129 216 159
Zn 96,4 205 196
Se 0,38 0,53 0,75
Mn 6,04 81,5 132
Fe 60,4 521 352
Energiegehalt* MJ ME/kg TS 17,9 15,9 16,0 *berechnet; siehe Kapitel 3.6.3
Ergebnisse
81
Futterstruktur 4.1.2
Das im Versuch eingesetzte Laktationsfutter sowie beide Rohfaserpellets wurden mithilfe
einer nassen Siebanalyse auf ihre Futterstruktur hin untersucht. Die Ergebnisse der nassen
Siebanalyse sind in der Tabelle 15 dargestellt.
Tabelle 15: Vergleich der unterschiedlichen Vermahlungsgrade in den eingesetzten Mischfuttermitteln
der Sauen (Angaben in %)
Siebmaschenweite
(mm) Laktationsfutter Rfa 1 Rfa 2
> 1 32,3 37,5 30,8
1,0 – 0,2 35,7 33,0 40,1
< 0,2 32,0 29,5 29,1
Beide Rohfaserpellets zeigten einen nahezu identischen Anteil an feinsten Partikeln
< 0,2 mm. Während das Rohfaserpellet 1 einen hohen Anteil an groben Partikeln > 1mm
aufwies, war der Großteil der Partikel im Rohfaserpellet 2 zwischen 0,2 und 1 mm verteilt.
Ergebnisse des ad-libitum-Angebotes von zwei verschiedenen 4.2
Rohfaserpellets zu einem restriktiv gefütterten Laktationsfutter im
peripartalen Zeitraum (Tag 7 a.p. bis Tag 2 p.p.)
Von der Auswertung ausgenommene Sauen 4.2.1
Innerhalb des Versuchszeitraums ferkelte eine Gesamtzahl von 48 Sauen in beiden
Abferkelabteilen ab. Da eine Sau der Rohfasergruppe 2 die Funktionsweise des ad-libitum-
Futterautomaten nicht verstand, wurde diese gemäß den formulierten Ausschlusskriterien
(siehe Kapitel 3.3) bei der Auswertung der Versuche nicht berücksichtigt.
Umgebungstemperatur 4.2.2
Die Versuchsphase erstreckte sich über einen Zeitraum von sieben Monaten (Juni bis
Dezember 2015), was dazu führte, dass die Sauen des Versuches verschiedenen
Umgebungstemperaturen ausgesetzt waren. Eine Übersicht über die Temperaturen im
Tierbereich ist der Abbildung 11 zu entnehmen.
Ergebnisse
82
Abbildung 11: Mittlere Umgebungstemperatur im Tierbereich der Abferkelställe während des
Versuchszeitraumes; gemessen von den Temperaturloggern der Serie EBI 20
Wie aus der Abbildung 11 hervorgeht, waren trotz alternierender Anordnung der
Versuchsdurchgänge die Durchgänge der Rohfasergruppe-1-Fütterung einer stärkeren
Hitzeeinwirkung ausgesetzt als die Tiere der Rohfasergruppe 2. Während der prozentuale
Anteil an heißen Tagen (mittlere Temperatur in 24 h > 25 °C) in der peripartalen Zeit pro
Sau in diesen Durchgängen 23,6 % betrug, betrug dieser in den Durchgängen der
Rohfasergruppe-2-Fütterung nur 1,60 %.
Aus diesem Grund werden im Folgenden die Ergebnisse der Untersuchungen getrennt nach
den beiden Rohfasergruppen mit den jeweiligen Kontrollgruppen dargestellt. Anschließend
werden die Ergebnisse beider Rohfasergruppen untereinander verglichen.
Allgemeine Daten zu den Sauen 4.2.3
Die Auswertungen der erhobenen Parameter im peripartalen Zeitraum fanden an folgender
Anzahl an Sauen statt (Tabelle 16 und Tabelle 17):
Tabelle 16: Anzahl und mittlere Wurfnummer der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Kontrollgruppe 1 Rohfaser 1
Anzahl Sauen (n) 10 12
mittl. Wurfnummer 4,22a ±0,97 4,17
a ±1,7
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Ergebnisse
83
Tabelle 17: Anzahl und mittlere Wurfnummer der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Kontrollgruppe 2 Rohfaser 2
Anzahl Sauen (n) 13 12
mittl. Wurfnummer 4,00a ±1,91 3,58
a ±1,38
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Futteraufnahme 4.2.4
Die Futteraufnahme jeder einzelnen Sau wurde täglich dokumentiert und ausgewertet.
Dadurch, dass jedoch nicht alle Sauen exakt an demselben Tag abferkelten, war jede Sau
zum Zeitpunkt der Geburt bereits unterschiedlich lange im Abferkelstall aufgestallt. Da der
Tag der Geburt als Tag 0 festgelegt wurde, wurden in den Tagen -6 bis -3 – je nach
Abferkeltag jeder einzelnen Sau – eine unterschiedliche Anzahl an Sauen in die statistische
Auswertung mit einbezogen.
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Die durch die Sauen der Kontroll- sowie der Rohfasergruppe 1 aufgenommene tägliche
Futtermenge in kg Trockensubstanz in Relation zu dem Tag der Geburt ist in Tabelle 18
dargestellt.
Während den restriktiv gefütterten Kontrolltieren bis zur Geburt relativ konstant
2,58 ±0,31 kg TS zugeteilt wurde, war die Futteraufnahme der mit Rohfaser ad libitum
supplementierten Tieren der Versuchsgruppe in diesen Tagen im Schnitt um 2 kg TS und
somit statistisch signifikant höher. Eine deutliche Reduktion der Futteraufnahme der ad
libitum gefütterten Tiere war erst am Tag der Geburt zu erkennen, jedoch war die TS-
Aufnahme an diesem Tag um ca. 1 kg höher, als die der restriktiv gefütterten Kontrolltiere.
Zwar sank die TS-Aufnahme der Rohfasergruppe einen Tag nach der Geburt – aufgrund
von Futterverweigerung einzelner Sauen – unter das Niveau der Kontrollgruppe ab und
erreichte einen Tiefpunkt von 2,96 ±0,80 kg TS, dennoch stieg diese bereits am zweiten
Tag post partum wieder auf die zuvor aufgenommene Menge ante partum an.
Ab dem ersten Tag nach der Geburt wurde die Futtermenge der restriktiv gefütterten Tiere
schrittweise angehoben; somit wurde die TS-Aufnahme der Kontrollgruppe post partum
schrittweise höher. Nach der Geburt bis zum zweiten Tag post partum war die TS-
Aufnahme zwischen den Gruppen nicht statistisch signifikant unterschiedlich.
Ergebnisse
84
Bei Betrachtung der minimalen und maximalen TS-Aufnahmen fällt in der Rohfasergruppe
eine deutliche Schwankung der Futteraufnahme zwischen den einzelnen Tieren auf. So
erreichte diese bei einzelnen Tieren bereits ante partum an Tag -3 ein Maximum von
8,49 kg TS. Insbesondere am Tag der Geburt variierte die TS-Aufnahme deutlich zwischen
1,5 und 7,5 kg TS.
Tabelle 18: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der TS-Aufnahme/Tag (kg/Sau) der Rohfaser 1- und Kontrollgruppe im peripartalen Zeitraum
Tag Kontrollgruppe 1 Rohfaser 1
n x
s Min
Max n x
s
Min
Max
-6 6 2,60a
±0,32 2,17
3,06 8 5,58
b ±1,68
4,00
8,34
-5 8 2,58a
±0,33 2,17
3,06 11 4,59
b ±1,35
3,56
7,97
-4 9 2,55a
±0,31 2,17
3,06 12 4,80
b ±1,00
3,09
6,56
-3 9 2,55a
±0,31 2,17
3,06 12 4,83
b ±1,48
3,58
8,49
-2 10 2,58a
±0,31 2,17
3,06 12 4,56
b ±1,41
2,79
8,15
-1 10 2,58a
±0,31 2,17
3,06 12 4,42
b ±0,87
3,24
6,29
0 10 2,58a
±0,31 2,17
3,06 12 3,67
b ±1,50
1,50
7,50
1 10 3,09a
±0,51 2,51
4,16 12 2,96
a ±0,80
1,37
4,14
2 10 3,84a
±1,11 1,45
5,63 12 4,54
a ±1,35
2,79
6,94 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Die täglich aufgenommene Mengen an Rohfaser, NDF und ADF (Tabelle 19) in der
Kontrollgruppe war – analog zur TS-Aufnahme – ante partum sehr konstant. So konnte eine
tägliche Aufnahme von Rohfaser von 0,12 ±0,02 kg TS, von NDF von 0,48 ±0,06 kg TS
und von ADF von 0,15 ±0,02 kg TS beobachtet werden, welche nach der Geburt durch die
steigende TS-Aufnahme schrittweise anstieg. In der Rohfasergruppe wurden vor der Geburt
hohe Rohfaser-, NDF- und ADF-Aufnahmen beobachtet, wobei diese 5-6 Tage vor dem
Geburtszeitpunkt am höchsten waren. Sechs Tage vor der Geburt betrug die
Rohfaseraufnahme mit 0,63 ±0,31 kg TS nahezu das 5-Fache, die NDF-Aufnahme mit 1,62
±0,68 kg TS nahezu das 3,5-Fache und die ADF-Aufnahme mit 0,80 ±0,40 kg TS das 5-
Fache der Aufnahme der Kontrollgruppe. Auch bei diesen Parametern konnte eine
deutliche Verringerung am Tag der Geburt und eine minimale Aufnahme an Faser und
Ergebnisse
85
Gerüstsubstanzen einen Tag nach der Geburt festgestellt werden. Die Aufnahme von
Rohfaser, NDF und ADF stieg am folgenden Tag zwar wieder an, erreichte aber – anders
als die TS-Aufnahme insgesamt – lediglich den Wert vom Tag der Geburt. Ein Vergleich
der Mittelwerte zwischen den Gruppen ergab sowohl bei der Rohfaser-, als auch bei der
NDF- und ADF-Aufnahme signifikante Unterschiede an den Tagen vor der Geburt bis zum
Geburtszeitpunkt. Am ersten Tag der Geburt konnten keine signifikanten Unterschiede
zwischen den Fütterungsgruppen beobachtet werden, jedoch wurde eine signifikante
Differenz sowohl bei der Rohfaser- als auch bei der NDF-Aufnahme der beiden Gruppen
am zweiten Tag nach der Geburt nachgewiesen.
Tabelle 19: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen Aufnahme an Rohfaser, NDF und ADF in kg TS/Sau der Rohfaser 1- und Kontrollgruppe im peripartalen Zeitraum
a,b,A,B,α,β ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p <
0,05)
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Die mittlere TS-Aufnahme der Rohfasergruppe 2 und deren Kontrolltiere im peripartalen
Zeitraum ist in Tabelle 20 dargestellt. Ähnlich wie bei der bereits beschriebenen TS-
Aufnahme der Kontrollgruppe 1, war auch bei diesen Kontrolltieren vor der Geburt eine
konstante Futteraufnahme von 2,63 ±0,23 kg TS mit geringen Schwankungen gefolgt von
einer steigenden Tendenz post partum zu beobachten. Im Gegensatz dazu zeigte die
Rohfasergruppe ante partum 2-mal so hohe TS-Aufnahmen, welche aber innerhalb der
Gruppe sehr variierten. So ließ sich in diesem Zeitraum ein Maximum von 9,03 kg TS und
ein Minimum von 3,10 kg TS erkennen, womit die minimale TS-Aufnahme ante partum
höher als die durchschnittliche TS-Aufnahme der Kontrollgruppe war. Erst am Tag der
Geburt konnte eine deutliche Reduktion der TS-Aufnahme der Rohfasergruppe
Tag
Kontrollgruppe 1 Rohfaser 1
Rfa NDF ADF Rfa NDF ADF
n x s x s x s n x s x s x s
-6 6 0,13a ±0,02 0,48A
±0,06 0,15α ±0,02 8 0,63b
±0,31 1,62B ±0,68 0,80β
±0,40
-5 8 0,12a ±0,02 0,48A
±0,06 0,15α ±0,02 11 0,61b
±0,24 1,58B ±0,53 0,77β
±0,31
-4 9 0,12a ±0,02 0,47A
±0,06 0,15α ±0,02 12 0,49b
±0,18 1,32B ±0,40 0,62β
±0,23
-3 10 0,12a ±0,02 0,47A
±0,06 0,15α ±0,02 12 0,50b
±0,26 1,32B ±0,59 0,62β
±0,34
-2 10 0,12a ±0,01 0,48A
±0,06 0,15α ±0,02 12 0,45b
±0,26 1,22B ±0,57 0,56β
±0,33
-1 10 0,12a ±0,01 0,48A
±0,06 0,15α ±0,02 12 0,42b
±0,16 1,16B ±0,35 0,53β
±0,20
0 10 0,12a ±0,01 0,48A
±0,06 0,15α ±0,02 12 0,30b
±0,21 0,88B ±0,50 0,37β
±0,27
1 10 0,15a ±0,02 0,57A
±0,10 0,18α ±0,03 12 0,16a ±0,04 0,57A
±0,15 0,19α ±0,05
2 10 0,19a ±0,05 0,71A
±0,21 0,22α ±0,06 12 0,29b
±0,14 0,96A ±0,36 0,35β
±0,17
Ergebnisse
86
nachgewiesen werden; an diesem Tag war die mittlere TS-Aufnahme dieser Gruppe mit
3,73 ±1,42 kg TS am kleinsten, jedoch um ca. 1 kg TS höher als die der Kontrollgruppe.
Am ersten Tag post partum gab es in der Rohfasergruppe zwar einen Anstieg der mittleren
TS-Aufnahme, jedoch war die maximal beobachtete TS-Aufnahme an diesem Tag mit
5,49 kg TS im Vergleich zu den Vortagen am niedrigsten. Zwei Tage nach der Geburt
konnte mit einem mittleren Wert von 5,80 ±1,22 kg TS eine vergleichbar hohe TS-
Aufnahme wie ante partum beobachtet werden. Ein Vergleich der mittleren TS-Aufnahme
im peripartalen Zeitraum zeigte signifikante Differenzen in den Gruppen zu jedem
Zeitpunkt.
Tabelle 20: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der TS-Aufnahme/ Tag (kg/Sau) der Rohfaser 2- und Kontrollgruppe im peripartalen Zeitraum
Tag Kontrollgruppe 2 Rohfaser 2
n x
s Min
Max n x
s
Min
Max
-6 5 2,57a
±0,05 2,50
2,62 5 5,65
b ±1,40
3,73
7,19
-5 11 2,63a
±0,24 2,33
3,11 7 5,71
b ±0,90
4,90
7,41
-4 13 2,63a
±0,23 2,33
3,11 11 6,49
b ±1,76
3,33
9,03
-3 13 2,63a
±0,23 2,33
3,11 12 6,16
b ±1,43
3,88
8,50
-2 13 2,63a
±0,23 2,33
3,11 12 5,94
b ±1,22
3,14
7,40
-1 13 2,63a
±0,23 2,33
3,11 12 5,29
b ±1,02
3,10
6,87
0 13 2,63a
±0,23 2,33
3,11 12 3,73
b ±1,42
2,33
7,04
1 13 2,90a
±0,39 2,47
3,59 12 3,99
b ±0,96
2,71
5,49
2 13 3,77a
±0,93 2,54
5,49 12 5,80
b ±1,22
3,69
7,61 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Die mittleren Aufnahmen von Rohfaser, NDF und ADF der beiden Fütterungsgruppen im
peripartalen Zeitraum sind in Tabelle 22 angegeben. Ähnlich wie bei der TS-Aufnahme der
Kontrolltiere konnte in dieser Gruppe ante partum eine konstante Aufnahme von
0,13 ±0,01 kg TS Rohfaser, 0,49 ±0,04 kg TS NDF und 0,15 ±0,02 kg TS ADF beobachtet
werden. Erst nach der Geburt kam es zu einem leichten Anstieg dieser Parameter. In der
Fasergruppe war die Aufnahme von Rohfaser und Gerüstsubstanzen ante partum deutlich
höher und erreichte 4 Tage vor der Geburt das Maximum. An diesem Tag entsprach die
Ergebnisse
87
Aufnahme von 0,75 ±0,25 kg TS Rohfaser dem 5,7-Fachen, die Aufnahme von 2,02
±0,63 kg TS NDF dem 4-Fachen und die Aufnahme von 0,95 ±0,32 kg TS ADF dem 6-
Fachen der Aufnahmen durch die Kontrollgruppe. Zwar war nach Tag -4 eine fallende
Tendenz der Rohfaser-, NDF- und ADF-Aufnahme zu erkennen, eine deutliche
Verringerung in der Aufnahme dieser Parameter konnte jedoch erst an dem Tag der Geburt
festgestellt werden. An diesem Tag wurde mit der Aufnahme von 0,31 ±0,22 kg TS Rfa,
0,94 ±0,55 kg TS NDF und 0,39 ±0,28 kg TS ADF das Minimum erreicht. Ab dem ersten
Tag post partum wurde eine steigende Aufnahme an Faser- und Gerüstsubstanzen
beobachtet, welche jedoch am zweiten Tag nach der Geburt die ante partum
aufgenommenen Mengen noch nicht erreicht hatten. Ein Vergleich der Mittelwerte der
aufgenommenen Mengen von Rohfaser, NDF und ADF führte in allen genannten
Parametern zu signifikanten Unterschieden zwischen den beiden Fütterungsgruppen an
allen Tagen im peripartalen Zeitraum.
Tabelle 21: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen Aufnahme an Rohfaser, NDF und ADF in kg TS/Sau der Rohfaser 2- und Kontrollgruppe im peripartalen Zeitraum
a,b,A,B,α,β ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p <
0,05)
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Die mittlere zusätzlich zum Laktationsfutter aufgenommene Futtermenge bestehend aus
dem Rohfaserpellet/Laktationsfutter-Gemisch aus dem ad-libitum-Automaten und den per
Hand zugegebenen Rohfaserpellets betrug für die mit dem Rohfaserpellet 1 gefütterten
Tiere 2,13 ±1,15 kg TS und für die mit dem Rohfaserpellet 2 gefütterten Tiere 3,14
±0,68 kg TS und war statistisch signifikant unterschiedlich (Tabelle 22).
Tag
Kontrollgruppe 2 Rohfaser 2
Rfa NDF ADF Rfa NDF ADF
n x s x s x s n x s x s x s
-6 5 0,12a ±0,00 0,48A
±0,01 0,15α ±0,00 5 0,61b
±0,21 1,68B ±0,53 0,77β
±0,27
-5 11 0,13a ±0,01 0,49A
±0,05 0,15α ±0,01 7 0,62b
±0,14 1,70B ±0,34 0,78β
±0,18
-4 13 0,13a ±0,01 0,49A
±0,04 0,15α ±0,01 11 0,75b
±0,25 2,02B ±0,63 0,95β
±0,32
-3 13 0,13a ±0,01 0,49A
±0,04 0,15α ±0,01 12 0,69b
±0,22 1,87B ±0,55 0,87β
±0,28
-2 13 0,13a ±0,01 0,49A
±0,04 0,15α ±0,01 12 0,65b
±0,19 1,79B ±0,47 0,82β
±0,24
-1 13 0,13a ±0,01 0,49A
±0,04 0,15α ±0,01 12 0,56b
±0,16 1,54B ±0,39 0,70β
±0,20
0 13 0,13a ±0,01 0,49A
±0,04 0,15α ±0,01 12 0,31b
±0,22 0,94B ±0,55 0,39β
±0,28
1 13 0,14a ±0,02 0,54A
±0,07 0,16α ±0,02 12 0,32b
±0,14 0,98B ±0,34 0,40β
±0,17
2 13 0,18a ±0,04 0,70A
±0,17 0,21α ±0,05 12 0,50b
±0,19 1,50B ±0,47 0,63β
±0,24
Ergebnisse
88
Tabelle 22: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen zusätzlichen Futteraufnahme in kg TS/Sau im peripartalen Zeitraum
Rohfaser 1 (n=12)
Rohfaser 2 (n=12)
x s x s
2,13a
±1,15 3,14b
±0,68 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
TS- Aufnahme
Bei Betrachtung der mittleren TS-Aufnahme im peripartalen Zeitraum (Tabelle 18 und
Tabelle 20) zeigte sich fünf bis sechs Tage vor der Geburt in beiden Rohfasergruppen eine
ähnlich hohe und somit statistisch nicht signifikant unterschiedliche Futteraufnahme.
Während die Tiere der Rohfasergruppe 2 am vierten Tag vor der Geburt mit einer
Aufnahme von 6,49 ±1,76 kg TS die maximale Futteraufnahme ante partum erreichten, fiel
die TS-Aufnahme der Tiere der Rohfasergruppe 1 von ursprünglich 5,58 ±1,68 kg TS (Tag
-6) auf 4,80 ±1,00 kg TS (Tag -4) ab. Bis einen Tag vor der Geburt konnte in den folgenden
Tagen eine stetige Reduktion der Futteraufnahme in beiden Gruppen beobachtet werden.
Jedoch wurde in den Tagen -4 bis -1 eine signifikant höhere TS-Aufnahme der
Rohfasergruppe 2 um ca. 1 kg TS nachgewiesen. Am Tag der Geburt gab es in beiden
Gruppen eine deutliche Reduktion der TS-Aufnahme auf 3,67 ±1,50 bzw. 3,73 ±1,42 kg
TS, wobei mit einer Aufnahme von 3,73 ±1,42 kg TS der Rohfasergruppe 2 der Tiefpunkt
der Futteraufnahme dieser Gruppe erreicht wurde. Die geringste Futteraufnahme der
Rohfasergruppe 1 hingegen konnte am Tag 1 post partum festgestellt werden. An diesem
Tag stieg die TS-Aufnahme der Rohfasergruppe 2 schon wieder an und war statistisch
signifikant höher im Vergleich zur Rohfasergruppe 1. Am zweiten und somit letzten Tag
des ad-libitum-Angebotes des Rohfaser/Laktationsfuttergemischs zeigte die TS-Aufnahme
in beiden Gruppen steigende Tendenzen, war jedoch bei der Rohfasergruppe 2 statistisch
signifikant höher als in der Rohfasergruppe 1.
Rohfaser-, NDF- und ADF-Aufnahme
Die TS-Aufnahme von Rohfaser und Gerüstsubstanzen der beiden Rohfasergruppen
(Tabelle 19 und Tabelle 21) zeigte einen ähnlichen Verlauf wie der der mittleren
Futteraufnahme. So war die mittlere Rohfaser-, NDF- und ADF-Aufnahme fünf und sechs
Tage ante partum mit Werten von ca. 0,62 kg TS Rfa, ca. 1,63 kg TS NDF und 0,78 kg TS
Ergebnisse
89
ADF in beiden Gruppen ähnlich hoch. Die Tiere der Rohfasergruppe 2 steigerten die
aufgenommenen Mengen dieser Parameter bis zum vierten Tag (0,75 ±0,25 kg TS Rfa, 2,02
±0,63 kg TS NDF, 0,95 ±0,32 kg TS ADF); anschließend erfolgte eine schrittweise
Reduktion der aufgenommenen Rohfaser- und Gerüstsubstanzen bis zum Tag der Geburt.
Diese Reduktion der Rohfaser-, NDF- und ADF-Aufnahme bis zum Tag der Geburt der
Rohfasergruppe 1 betrug ca. 30 % und begann bereits ohne vorherige Zunahme dieser
Parameter ab Tag -4. Dies führte zu einer signifikant höheren TS-Aufnahme von Rohfaser
und Gerüstsubstanzen der Rohfasergruppe 2 im Vergleich zur Rohfasergruppe 1 von Tag -4
bis Tag -1. Am Tag der Geburt kam es in beiden Gruppen zu einer deutlichen Verringerung
der Rohfaser-, NDF- und ADF-Mengen, sodass zu diesem Zeitpunkt keine signifikanten
Unterschiede auftraten. Am ersten Tag nach der Geburt reduzierten die Sauen der
Rohfasergruppe 1 die Aufnahme dieser Parameter weiter und erreichten die minimale
Aufnahme mit 0,16 kg ±0,04 kg TS, 0,57 ±0,15 kg TS NDF und 0,19 ±0,05 kg TS ADF pro
Sau. Erst nach diesem Tag stiegen die Werte in dieser Gruppe wieder langsam an. Da die
Sauen der Rohfasergruppe 2 die Aufnahme der Rohfaser und Gerüstsubstanzen ab dem
ersten Tag nach der Geburt steigerten, hatte diese Gruppe in den beiden Tagen post partum
signifikant höhere aufgenommene Mengen an Rohfaser, NDF und ADF.
Wasserverbrauch 4.2.5
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Wie in Tabelle 23 ersichtlich, zeigten die Tiere der Kontrollgruppe – trotz der manuellen
zusätzlichen Wassergabe – einen geringeren Wasserverbrauch im Vergleich zu der
Rohfasergruppe. Diese Unterschiede konnten bis auf Tag -6 statistisch nicht als signifikant
abgesichert werden. In beiden Gruppen wurde am Tag vor der Geburt ein deutlicher
Anstieg des Wasserverbrauchs, gefolgt von einer starken Abnahme am Tag der Geburt
beobachtet. Ab Tag 2 der Laktation war in beiden Fütterungsgruppen ein Anstieg des
Wasserkonsums im Vergleich zu den vorherigen Tagen erkennbar.
Ergebnisse
90
Tabelle 23: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen Wasseraufnahme/Sau (l) der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im peripartalen Zeitraum
Tag Kontrollgruppe 1 (n=3 DG, 10 Sauen)
Rohfaser 1 (n=3 DG, 12 Sauen)
p-Wert
x s x s
-6 8,08a
±1,23 21,8b
±3,63 0,00
-5 16,8
±13,4 21,3 ±5,27 0,62
-4 14,8 ±11,7 23,4 ±5,51 0,31
-3 19,8 ±13,0 22,2 ±2,98 0,77
-2 18,5 ±7,58 21,2 ±6,29 0,66
-1 19,4 ±8,65 26,3 ±3,91 0,28
0 17,4 ±6,05 16,5 ±8,76 0,89
1 18,8 ±9,74 22,3 ±4,14 0,59
2 20,4 ±13,3 27,8 ±5,48 0,43 a,b
ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Der mittlere Wasserverbrauch pro Sau im peripartalen Zeitraum war in der Rohfasergruppe
2 tendenziell höher als in der Kontrollgruppe, jedoch nicht statistisch signifikant
unterschiedlich (Tabelle 24). Auch hier wurde in der Kontrollgruppe 2 ein deutlicher
Anstieg des Wasserverbrauchs einen Tag ante partum beobachtet. Während der
Wasserkonsum in den Tagen vor der Geburt in beiden Gruppen relativ konstant blieb,
konnte in den Tagen post partum ein stufenweiser Anstieg des Wasserverbrauches
beobachtet werden.
Tabelle 24: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen Wasseraufnahme/ Sau (l) der
Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im peripartalen Zeitraum
Tag Kontrollgruppe 2 (n=4 DG, 13 Sauen)
Rohfaser 2 (n=4 DG,13 Sauen)
p-Wert
x s x s
-6 18,9 ±5,43 17,3 ±3,90 0,66
-5 15,5 ±2,73 18,9 ±4,28 0,31
-4 14,9 ±6,32 19,4 ±4,51 0,38
-3 18,7 ±4,89 20,7 ±4,55 0,47
-2 18,1 ±4,83 21,4 ±4,42 0,31
-1 25,9 ±8,33 20,8 ±5,73 0,47
0 19,4 ±8,31 19,6 ±10,7 1,00
1 21,7 ±5,06 25,3 ±10,6 1,00
2 29,0 ±7,71 31,3 ±5,03 0,67
Ergebnisse
91
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Der mittlere berechnete Wasserverbrauch pro Sau war bis einen Tag vor der Geburt in den
drei Durchgängen der Rohfasergruppe 1 tendenziell höher als in den vier Durchgängen der
Rohfasergruppe 2. Während die Wasseraufnahme der Rohfasergruppe 1 bis zwei Tage vor
der Geburt relativ konstant zwischen 21,2 ±6,29 l und 23,4 ±5,51 l variierte, stieg der
Wasserverbrauch pro Sau in der Rohfasergruppe 2 in diesen Tagen kontinuierlich um ca. 1
l täglich auf 20,8 ±5,73 l/Sau an. Am Tag der Geburt verringerten die Sauen beider
Gruppen die Wasseraufnahme auf ein Minimum von 16,5 ±8,76 bzw. 19,7 ±10,7 l/Sau. In
den folgenden beiden Tagen kam es zu einem Anstieg der Wasseraufnahme in beiden
Gruppen, welcher bereits am Tag 2 p.p. die Werte ante partum überstieg. Insgesamt
erbrachte ein Vergleich der mittleren täglichen Wasseraufnahmen zwischen den beiden
Gruppen keine signifikanten Unterschiede.
Körpertemperatur 4.2.6
Einige Sauen ferkelten bereits vor dem berechneten Geburtstermin. Aus diesem Grund
ergab sich eine unterschiedlich große Anzahl an Sauen, deren Körpertemperatur in den
Tagen vor der Geburt berücksichtigt werden konnte. Der Messzeitpunkt 4 Tage a.p.
orientierte sich an den errechneten Geburtsterminen. In einem Zeitraum von 24 h rund um
diesen errechneten Geburtszeitpunkt ferkelten 86,4 % (Kontroll- und Rohfasergruppe 1)
bzw. 72 % (Kontroll- und Rohfasergruppe 2) der Sauen.
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Die mittlere Körpertemperatur beider Gruppen im peripartalen Zeitraum ist in Tabelle 25
dargestellt. Bis zum Tag der Geburt variierte die Körpertemperatur beider Gruppen
zwischen 37,9 und 38,1 °C. Einen Tag vor der Geburt konnte bereits ein leichter Anstieg
der Körpertemperatur beobachtet werden, bevor beide Gruppen am ersten Tag der Geburt
eine maximale Körpertemperatur von 39,0 ±0,32 °C und 39,1 ±0,58 °C erreichten. In den
folgenden Tagen sanken die Werte wieder und pendelten sich etwas oberhalb der
Ausgangstemperatur ante partum zwischen 38,6 und 38,7 °C ein. Ein Vergleich der
Mittelwerte zeigte an keinem Tag statistisch signifikante Differenzen der Körpertemperatur
zwischen den Gruppen.
Ergebnisse
92
Die mittlere Körpertemperatur korrelierte nicht statistisch signifikant mit der
Futteraufnahme vom Vortag (p=0,6030).
Tabelle 25: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der mittleren täglichen Körpertemperatur in °C der Rohfaser 1- und Kontrollgruppe im peripartalen Zeitraum
Tag Kontrollgruppe 1 Rohfaser 1
n x s n x s
Einstallung 10 38,0a
±0,22 11 37,9a
±0,30
-4* 10 37,9a
±0,20 11 37,9a
±0,46
-2 6 37,9a
±0,18 10 38,0a
±0,17
-1 8 38,1a
±0,44 11 38,1a
±0,25
0 10 38,7a
±0,80 12 38,8a
±0,73
1 10 39,0a
±0,32 12 39,1a
±0,58
2 10 38,9a
±0,51 12 38,7a
±0,65
3 10 38,5a
±0,48 12 38,6a
±0,43
4 7 38,7a
±0,29 10 38,6a
±0,41
*Tag -4: ±24h; 86,4% der Sauen a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Bei Betrachtung der mittleren Körpertemperaturen der Rohfaser 2- und der jeweiligen
Kontrollgruppe im peripartalen Zeitraum (Tabelle 26), fällt zur Einstallung der Tiere in den
Abferkelstall eine signifikant niedrigere Körpertemperatur der Rohfasergruppe 2 auf. Vier
Tage vor dem errechneten Abferkeldatum sowie zwei Tage vor der Geburt variierte die
Temperatur in beiden Gruppen zwischen 37,6 und 37,9 °C, woraufhin diese in der
Rohfasergruppe 2 bereits einen Tag vor der Geburt auf 38,3 ±0,25 °C anstieg und an
diesem Tag signifikant höher als in der Kontrollgruppe war. Zur Geburt wurde die
Körpertemperatur in beiden Gruppen höher und erreichte an Tag 1 und 2 mit einem Wert
von 38,8 °C ein Maximum. In der Rohfaser- sowie Kontrollgruppe zeigte sich in den
beiden darauffolgenden Tagen eine tendenzielle Abnahme der Körpertemperatur.
Es konnte keine signifikante Korrelation zwischen der Körpertemperatur und der
Futteraufnahme vom Vortag festgestellt werden (p=0,1798).
Ergebnisse
93
Tabelle 26: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der mittleren täglichen Körpertemperatur in °C der Rohfaser 2- und Kontrollgruppe im peripartalen Zeitraum
Tag Kontrollgruppe 2 Rohfaser 2
n x s n x s
Einstallung 13 38,2a
±0,47 12 37,8b
±0,41
-4* 12 37,6a
±0,34 12 37,8a
±0,38
-2 13 37,9a
±0,30 10 37,9a
±0,40
-1 12 37,8a
±0,30 9 38,3b
±0,25
0 13 38,4a
±0,46 11 38,3a
±0,48
1 13 38,8a
±0,56 12 38,8a
±0,32
2 13 38,8a
±0,51 12 38,8a
±0,47
3 13 38,6a
±0,47 12 38,7a
±0,40
4 9 38,5a
±0,38 11 38,7a
±0,39
*Tag -4: ±24h; 72 % der Sauen a,b
ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
In beiden Rohfasergruppen konnte ein Anstieg der Körpertemperatur zur Geburt beobachtet
werden (Tabelle 25 und Tabelle 26), wobei das Maximum von 39,1 ±0,58 °C am ersten Tag
post partum der Rohfasergruppe 1 leicht über dem Maximalwert der Rohfasergruppe 2 lag
(38,8 ±0,32 °C). In beiden Gruppen verringerte sich die Temperatur in den Tagen darauf
tendenziell, erreichte aber nicht mehr das Ausgangsniveau. Zu keinem Zeitpunkt wurden
signifikante Unterschiede zwischen den beiden Fasergruppen nachgewiesen.
Geburtsparameter 4.2.7
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Erhobene Parameter rund um den Geburtszeitpunkt
Am 115. und 116. Trächtigkeitstag ferkelten 77,8 % der Sauen der Kontrollgruppe sowie
91,7 % der Sauen der Rohfasergruppe 1. Die übrigen Sauen ferkelten vor dem 115.
Trächtigkeitstag. Die Anzahl der Sauen, bei denen die Geburt am 115. Trächtigkeitstag
eingeleitet werden musste, war somit in der Kontrollgruppe geringer als in der
Rohfasergruppe (Tabelle 27). Dieser Unterscheid war nicht signifikant. Auch die Anzahl
der durchgeführten Geburtshilfen und der peripartal aufgetretenen MMA-Erkrankungen
waren ohne signifikante Unterschiede.
Ergebnisse
94
Tabelle 27: Häufigkeit der geburtshilflichen Manipulationen und Auftreten peripartaler MMA-Erkrankungen der Rohfasergruppe 1 und Kontrolltiere
Parameter Kontrollgruppe 1
(n=9) Rohfaser 1
(n=12) p-Wert
n % n %
Geburtseinleitung* 6 66,7 10 83,3 0,61
Geburtshilfe 3 33,3 3 25,0 1,00
MMA-Erkrankung 0 0,00 1 8,33 1,00
* Am Tag 115. der Trächtigkeit 75 μg (+)-Cloprostenol
Eine Übersicht über die im Versuch bestimmten Geburtsparameter beider
Fütterungsgruppen ist in Tabelle 28 dargestellt. Da eine Sau aus der Kontrollgruppe kurz
vor dem errechneten Geburtstermin abortierte, wurde diese von der Auswertung der
Geburtsparameter ausgeschlossen. Zudem ferkelten 2 Sauen der Rohfasergruppe nachts
während der unbeobachteten Zeit. Eine Sau dieser Gruppe gebar lediglich 4 Ferkel, welche
aufgrund ihrer Größe nacheinander manuell aus der Sau geholt werden mussten, sodass die
Geburtslänge und das Geburtsintervall zwischen zwei Ferkeln aus n=9 Sauen ermittelt
werden mussten.
Tabelle 28: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der erhobenen Geburtsparameter der Rohfasergruppe 1 und Kontrollgruppe
Parameter Kontrollgruppe 1
(n=9) Rohfaser 1
(n=12) p-Wert
x s x s
Wurfnummer 4,22 ±0,97 4,17 ±1,7 0,70
Geburtslänge (min) (n Rfa =9)
214 ±114 231 ±107 0,79
Intervall zw. 2 Ferkeln
(min) (n Rfa =9) 12,4 ±5,49 12,9 ±6,30 0,66
geborene Ferkel1
16,6 ±2,83 16,4 ±4,72 0,67
lebend geb. Ferkel 15,6 ±2,30 15,8 ±4,45 0,59
tot geb. Ferkel1
1,00 ±1,12 0,67 ±1,07 0,43
Totgeburtenrate (%) 5,52 ±5,94 3,54 ±5,59 0,43
Geburtsmasse insg. (kg) 2
23,6 ±3,13 21,5 ±6,55 0,40
Geburtsgewicht (kg)3
1,47 ±0,22 1,33 ±0,19 0,17 1ohne mumifizierte Ferkel 2Geburtsmasse = Summe aller geb. Ferkel (inkl. Mumien) 3 lebend geborene Ferkel
Die Geburtslänge variierte in beiden Gruppen beträchtlich zwischen den Sauen. Während
die Geburtsdauer der Kontrollgruppe zwischen 95 und 480 Minuten betrug, variierte diese
in der Rohfasergruppe 1 zwischen 101 und 435 Minuten.
Ergebnisse
95
Die Anzahl totgeborener Ferkel und somit ermittelte Totgeburtenrate war bei den Sauen der
Rohfasergruppe 1 tendenziell geringer; jedoch war auch das Geburtsgewicht der einzelnen
Ferkel etwas niedriger als in der Kontrollgruppe. Insgesamt ergaben sich hinsichtlich dieser
Geburtsparameter keine signifikanten Unterschiede zwischen den beiden Gruppen.
Ferkelverluste
Verendete Ferkel wurden der Sau zugeordnet, an der sie sich zum Zeitpunkt des Todes
befanden. Ein vorheriges Versetzen der Ferkel konnte nicht berücksichtigt werden. Die
Ferkelverluste bis zum Absetzen betrugen in der Kontrollgruppe 14,3 % und in der
Rohfasergruppe 19,0 % der lebend geborenen Ferkel (Tabelle 29). Dabei trat die Mehrzahl
der Verluste in den ersten beiden Lebenstagen auf; ca. 30 % der Ferkelverluste wurden
jedoch in beiden Gruppen nach Tag 4 beobachtet.
Tabelle 29: Ferkelverluste bis zum Absetzen der Rohfasergruppe 1 und Kontrollgruppe, nach
Lebenstagen sortiert
Gruppe Kontrollgruppe 1
(n=9) Rohfaser 1
(n=12)
nF % nF %
1. LT 8 36,4 15 38,5
2. LT 8 36,4 9 23,1
3. LT 0 0,00 2 5,13
> 4. LT 6 27,3 13 33,3
Gesamt 22 39
% der leb. geb.
Ferkel 14,3
a 19,0
a
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
nF: Anzahl der Ferkel
Die Ursache der höchsten Ferkelverluste war in beiden Gruppen ein Erdrücken der Ferkel
durch die Sau, wobei diese Verluste in der Rohfasergruppe 1 ca. 10% höher waren als in
der Kontrollgruppe (Tabelle 30). Jedoch mussten in der Kontrollgruppe ca. 17 % mehr
Ferkel aufgrund von Lebensschwäche getötet werden.
Ergebnisse
96
Tabelle 30: Ursachen für Ferkelverluste bis zum Absetzen der Rohfasergruppe 1 und Kontrollgruppe
Gruppe Kontrollgruppe 1
(n=9) Rohfaser 1
(n=12)
nF % nF %
Erdrückung 13 59,1 28 71,8
Euthanasie wegen
Lebensschwäche 6 27,3 4 10,3
Euthanasie wegen Verletzung
1 4,55 3 7,69
Durchfall 0 0,00 0 0,00
Sonstiges1
1 4,55 2 5,13
Unbekannt 1 4,55 2 5,13
Gesamt 22 39 1Sonstige Ursachen: z.B. Euthanasie aufgrund eines Kümmerhabitus, einer Arthritis etc.
nF: Anzahl der Ferkel
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Erhobene Parameter rund um den Geburtszeitpunkt
Während in der Kontrollgruppe 84,6 % der Sauen am 115. und 116. Trächtigkeitstag
abferkelten, – die restlichen Sauen der Gruppe hatten bereits zuvor abgeferkelt – waren dies
in der Rohfasergruppe 2 lediglich 58,3 % der Tiere. Aus diesem Grund war der prozentuale
Anteil der Tiere mit Geburtseinleitung in der Kontrollgruppe etwas höher als in der
Rohfasergruppe (Tabelle 31). Geburtshilfe wurde in beiden Gruppen ähnlich oft geleistet,
das Auftreten einer MMA-Erkrankung wurde in der Kontrollgruppe tendenziell häufiger
beobachtet, war aber statistisch nicht signifikant höher.
Tabelle 31: Häufigkeit der geburtshilflichen Manipulationen und Auftreten peripartaler MMA-Erkrankungen der Rohfasergruppe 2 und Kontrolltiere
Parameter Kontrollgruppe 2
(n=13) Rohfaser 2
(n=12) p-Wert
n % n %
Geburtseinleitung* 10 76,9 7 58,3 0,41
Geburtshilfe 1 7,69 1 8,33 1,00
MMA-Erkrankung 2 15,4 1 8,33 1,00
* Am Tag 115. der Trächtigkeit 75 μg (+)-Cloprostenol
Die erfassten Parameter rund um die Geburt werden in der Tabelle 32 wiedergegeben.
In dem Zeitraum, in welchem die Sauen unbeobachtet waren, ferkelten 2 Sauen der
Rohfasergruppe sowie 3 Sauen der Kontrollgruppe, sodass die Geburtslänge und das
Ergebnisse
97
Geburtsintervall zwischen zwei Ferkeln in beiden Gruppen lediglich aus n=10 Sauen
ermittelt werden konnten.
Tabelle 32: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der erhobenen Geburtsparameter der Rohfasergruppe 2 und Kontrollgruppe
Parameter Kontrollgruppe 2
(n=13) Rohfaser 2
(n=12) p-Wert
x s x s
Wurfnummer 4,00 ±1,91 3,58 ±1,38 0,54
Geburtslänge (min; n=10) 287 ±143 222 ±62,7 0,20
Intervall zw. 2 Ferkeln (min; n=10)
16,3a ±6,74 11,0
b ±3,49 0,04
geborene Ferkel1
16,8 ±5,15 18,8 ±2,09 0,23
lebend geb. Ferkel 15,6 ±4,19 17,6 ±1,68 0,14
tot geb. Ferkel1
1,15 ±1,34 1,17 ±1,03 0,75
Totgeburtenrate (%) 5,72 ±6,13 5,96 ±4,73 0,85
Geburtsmasse insg. (kg) 2
23,0 ±4,83 24,8 ±2,62 0,26
Geburtsgewicht (kg)3
1,43 ±0,21 1,32 ±0,12 0,14 1ohne mumifizierte Ferkel 2Geburtsmasse = Summe aller geb. Ferkel (inkl. Mumien) 3 lebend geborene Ferkel a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Die Sauen der Kontrollgruppe befanden sich während der Versuchsphase durchschnittlich
im vierten Wurf und waren somit tendenziell älter als die Sauen der Versuchsgruppe. Auch
die Geburtslänge war insgesamt länger und variierte stärker zwischen den Sauen dieser
Gruppe. Das Geburtsintervall zwischen zwei Ferkeln war bei diesen Sauen mit
durchschnittlich 16,3 ±6,74 Minuten signifikant länger als in der Rohfasergruppe (11,0
±3,49 Minuten). Zwar gebaren die Sauen der Rohfasergruppe eine um durchschnittlich
2 Ferkel höhere Anzahl lebend geborener Ferkel pro Sau, diese Ferkel wiesen jedoch ein
geringeres Geburtsgewicht auf als die lebend geborenen Ferkel der Kontrolltiere. Insgesamt
ließen sich mit Ausnahme des Geburtsintervalls keine signifikanten Unterschiede
hinsichtlich der untersuchten Geburtsparameter zwischen den Fütterungsgruppen
nachweisen.
Ferkelverluste
Verendete Ferkel wurden der Sau zugeordnet, an der sie sich zum Zeitpunkt des Todes
befanden, ein vorheriges Versetzen der Ferkel konnte nicht berücksichtigt werden.
Ergebnisse
98
Insgesamt verendeten in der Kontrollgruppe 14,7 % und in der Rohfasergruppe 2 16,3 %
der lebend geborenen Ferkel (Tabelle 33). Dabei fanden über 50 % der Verluste in den
ersten beiden Lebenstagen statt, weitere 40,6 % bzw. 31,4 % verendeten nach dem vierten
Lebenstag.
Tabelle 33: Ferkelverluste bis zum Absetzen der Rohfasergruppe 2 und Kontrollgruppe, nach
Lebenstagen sortiert
Gruppe Kontrollgruppe 2
(n=13) Rohfaser 2
(n=12)
nF % nF %
1. LT 9 28,1 13 37,1
2. LT 8 25,0 7 20,0
3. LT 2 6,25 4 11,4
> 4. LT 13 40,6 11 31,4
Gesamt 32 35
% der leb. geb. Ferkel
14,7a
16,3a
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
nF: Anzahl der Ferkel
In beiden Gruppen verendeten die meisten Ferkel aufgrund eines Erdrückens durch die
Muttersau (Tabelle 34). In der Rohfasergruppe 2 konnte zudem eine höhere Anzahl
lebensschwacher Ferkel nachgewiesen werden, sodass über 20 % der verendeten Ferkel
wegen Lebensschwäche starben oder euthanasiert werden mussten.
Tabelle 34: Ursachen für Ferkelverluste bis zum Absetzen der Rohfasergruppe 2 und Kontrollgruppe
Gruppe Kontrollgruppe 2
(n=13) Rohfaser 2
(n=12)
nF % nF %
Erdrückung 26 81,3 25 71,4
Euthanasie wegen
Lebensschwäche 1 3,13 8 22,9
Euthanasie wegen
Verletzung 1 3,13 1 2,86
Durchfall 1 3,13 0 0,00
Sonstiges1
2 6,25 0 0,00
Unbekannt 1 3,13 1 2,86
Gesamt 32 35 1Sonstige Ursachen: z.B. Euthanasie aufgrund eines Kümmerhabitus, einer Arthritis etc.
nF: Anzahl der Ferkel
Ergebnisse
99
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Ein Vergleich der beiden Rohfasergruppen untereinander ergab hinsichtlich der
Geburtsparameter keine signifikanten Unterschiede.
Korrelation der Geburtslänge mit der Ferkelanzahl in allen Gruppen
Insgesamt bestand eine positive Korrelation zwischen der Anzahl an geborenen Ferkeln
und der Geburtslänge. Der Korrelationskoeffizient nach Spearman betrug 0,35.
Eine positive Korrelation zwischen der Anzahl totgeborenen Ferkeln und der Geburtslänge
konnte nicht nachgewiesen werden.
Kotscore 4.2.8
Zur Einstallung sowie rund um den Geburtszeitpunkt wurde die Konsistenz des frisch
abgesetzten Sauenkots mithilfe eines Scoresystems näher charakterisiert. Weicher Kot
wurde mit hohen Scorenoten (5=flüssiger Kot) und harter Kot mit niedrigen Scorenoten
(0=kein Kotabsatz) bonitiert.
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Alle Sauen wiesen zum Zeitpunkt der Einstallung in den Abferkelstall (Tag -7) eine
ähnliche Kotkonsistenz auf (Tabelle 35). Während der Kot der Sauen der Kontrollgruppe
zum Geburtszeitpunkt hin zunehmend härter wurde, konnte bei den Sauen der
Rohfasergruppe eine signifikant weichere Kotkonsistenz – mit Ausnahme des Tags 3 p.p –
bis zum 5. Tag nach der Abferkelung festgestellt werden.
Ergebnisse
100
Tabelle 35: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Kotscores der Rohfasergruppe 1 und Kontrollgruppe
Tag* Kontrollgruppe 1
(n=10) Rohfaser 1
(n=12)
x s x s
-7 2,95a
±0,50 2,94a
±0,11
-4 2,15a
±0,63 3,35b
±0,63
-2 1,55a
±0,50 3,17b
±0,36
-1 1,45a ±0,64 3,48
b ±0,68
0 1,05a ±0,72 2,50
b ±0,90
1 1,50a ±0,53 2,59
b ±1,07
2 1,85a ±0,47 2,63
b ±0,35
3 2,58a
±0,93 2,84a
±0,50
5 2,33a
±0,99 2,94b
±0,45 a,b
ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 86,4% der Sauen (Kot wurde an festgelegten Tagen beurteilt; jedoch ferkelten nicht alle Sauen
zu exakt demselben Zeitpunkt)
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Auch der Kot der Tiere der Rohfasergruppe 2 ließ 4 Tage vor bis 5 Tage nach dem
errechneten Geburtstermin signifikant höhere Scorewerte im Vergleich zur Kotkonsistenz
der Kontrollgruppe erkennen.
Tabelle 36: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Kotscores der Rohfasergruppe 2 und Kontrollgruppe
Tag*
Kontrollgruppe 2 (n=13)
Rohfaser 2 (n=12)
x s x s
-7 3,04a ±0,22 3,06
a ±0,16
-4 2,38a ±0,42 3,35
b ±0,29
-2 2,17a
±0,72 3,40b
±0,27
-1 2,10a
±0,69 3,04b
±0,42
0 1,50a
±0,89 2,85b
±0,94
1 1,23a ±0,33 2,46
b ±1,00
2 1,81a ±0,83 2,85
b ±0,45
3 2,10a ±0,81 3,13
b ±0,56
5 2,52a ±0,59 3,10
b ±0,23 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05) * Tag ±24h, 72,0% der Sauen (Kot wurde an festgelegten Tagen beurteilt; jedoch ferkelten nicht alle Sauen
zu exakt demselben Zeitpunkt)
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Bei Vergleich der mittleren Scorewerte des Kots beider Rohfasergruppe fiel zur Einstallung
und 2 Tage vor der Geburt ein signifikant höherer Kotscore und somit weichere
Ergebnisse
101
Kotkonsistenz in der Rohfasergruppe 2 auf (Tabelle 35 und Tabelle 36). An allen übrigen
Zeitpunkten unterschied sich die Kotkonsistenz beider Rohfasergruppen nicht voneinander.
Verschmutzungsgrad von Tier und Stand 4.2.9
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Zur Einstallung waren alle Abferkelbuchten gereinigt und die Sauen gewaschen worden,
somit waren weder die hinteren Standbereiche, noch die Sauen selber verschmutzt (Tabelle
37). Während die hinteren Standbereiche der Kontrollgruppe bis zur Geburt nahezu sauber
waren, konnte in dieser Zeitspanne in der Rohfasergruppe 1 eine deutliche Verschmutzung
beobachtet werden (Tabelle 37). So waren in dieser Gruppe 4 Tage a.p. 75 % der Stände
verschmutzt. Am 2. Tag a.p. konnte eine signifikant höhere Verschmutzung der
Standfläche festgestellt werden. Nach der Geburt wurden jedoch in den ersten beiden Tage
in beiden Gruppen ausschließlich saubere Stände beobachtet.
Tabelle 37: Anzahl verschmutzter Stände der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im
peripartalen Zeitraum
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 86,4 % der Sauen
Die Verschmutzung der Sauen spiegelte in etwa den Verschmutzungsgrad der Standflächen
wider (Tabelle 38). So wurden die Sauen der Rohfasergruppe im peripartalen Zeitraum zu
einem höheren prozentualen Anteil als „verschmutzt“ bewertet als die Sauen der
Kontrollgruppe; dies galt insbesondere für die Zeit vor dem errechneten Geburtszeitpunkt.
Einen Tag vor der Geburt waren die Sauen der Rohfasergruppe signifikant verunreinigter
als die der Kontrollgruppe.
Tag*
Kontrollgruppe 1 (n=10)
Rohfaser 1 (n=12)
n % n %
-7 0a
0,00 0a
0,00
-4 3a
30,0 9a
75,0
-2 0a 0,00 6
b 50,0
-1 2a
20,0 4a
33,3
0 2a
20,0 3a
25,0
1 0a
0,00 0a
0,00
2 0a
0,00 0a
0,00
3 0a
0,00 4a
33,3
5 1a
10,0 4a
33,3
Ergebnisse
102
Tabelle 38: Anzahl verschmutzter Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im peripartalen Zeitraum
Tag*
Kontrollgruppe 1 (n=10)
Rohfaser 1 (n=12)
n % n %
-7 0a
0,00 0a
0,00
-4 1a
10,0 5a
41,7
-2 0a
0,00 4a
33,3
-1 0a
0,00 5b 41,7
0 3a
30,0 7a
58,3
1 3a
30,0 4a
33,3
2 1a
10,0 1a
8,33
3 2a
20,0 4a
33,3
5 1a
10,0 4a
33,3 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 86,4 % der Sauen
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Im peripartalen Zeitraum ließen sich in der Kontrollgruppe nur sehr wenige verschmutze
Standflächen hinter den Sauen erkennen; während die der Rohfaserguppe 2 in den letzten 4
Tagen vor dem errechneten Geburtszeitpunkt zu einem höheren Anteil verschmutzen
(Tabelle 39). 4 bzw. 2 Tage vor der Geburt waren mit 50% verschmutzen Standflächen die
Stände der Rohfasergruppe signifikant verunreinigter als die der Kontrolltiere. Zur Geburt
wurden in beiden Gruppen saubere Stände beobachtet.
Tabelle 39: Anzahl verschmutzter Stände der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im
peripartalen Zeitraum
Tag* Kontrollgruppe 2
(n=13) Rohfaser 2
(n=12)
n % n %
-7 0a
0,00 0a
0,00
-4 1a
7,69 6b
50,0
-2 0a
0,00 6b
50,0
-1 0a
0,00 3a
25,0
0 0a
0,00 0a
0,00
1 1a
7,69 0a
0,00
2 1a
7,69 0a
0,00
3 5a
38,5 3a
25,0
5 3a
23,1 3a
25,0 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 72,0 % der Sauen
Auch in der Rohfasergruppe 2 spiegelte sich die Verschmutzung der Stände in der
Verunreinigung der Sauen wider. So waren die Sauen der Fasergruppe ante partum zu
Ergebnisse
103
einem höheren Anteil verdreckt als die Sauen der Kontrollgruppe (Tabelle 40). Diese
Differenzen waren am 4. und 2. Tag vor dem errechneten Geburtszeitpunkt statistisch
signifikant abzusichern. Zur Geburt und in den ersten Tagen danach wiesen beide
Fütterungsgruppen einen ähnlich hohen Anteil an verschmutzten Sauen auf.
Tabelle 40: Anzahl verschmutzter Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im peripartalen Zeitraum
Tag*
Kontrollgruppe 2 (n=13)
Rohfaser 2 (n=12)
n % n %
-7 0a
0,00 0a
0,00
-4 0a
0,00 4b
33,3
-2 0a
0,00 7b
58,3
-1 1a
7,69 3a
25,0
0 2a
15,4 2a
16,7
1 1a
7,69 0a
0,00
2 0a
0,00 0a
0,00
3 3a
23,1 4a
33,3
5 1a
7,69 2a
16,7 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 72,0 % der Sauen
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Ein Vergleich der prozentualen Anteile von verschmutzen Ständen und Sauen beider
Rohfasergruppen zeigte keine statistisch signifikanten Unterschiede der Verschmutzung
zwischen den beiden Gruppen.
Kotzusammensetzung 4.2.10
Zur Einstallung sowie rund um den erwarteten Geburtszeitpunkt alle 2 Tage wurden den
Sauen rektal Kotproben entnommen und in diesen der TS-Gehalt und der pH-Wert
bestimmt. Zudem wurde der Eisengehalt in einer 24-48 h post partum entnommenen
Kotprobe bestimmt.
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
TS-Gehalt
Der Trockensubstanzgehalt des Kotes stieg in beiden Gruppen zur Geburt hin deutlich an,
wobei der trockenste Kot einen Tag nach der Geburt zu beobachten war (Tabelle 41).
Ergebnisse
104
Insgesamt war der Kot der mit Rohfaser supplementierten Tiere 4 Tage vor bis 5 Tage nach
dem errechneten Geburtstermin signifikant weicher als der Kot der Kontrolltiere.
Tabelle 41: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des TS-Gehaltes (%) im Kot der Rohfasergruppe 1 und Kontrollgruppe
Tag*
Kontrollgruppe 1 (n=10)
Rohfaser 1 (n=12)
x s x s
-7 25,5a ±2,73 23,8
a ±1,33
-4 29,1a ±3,06 25,9
b ±2,07
-2 31,7a ±3,24 25,4
b ±2,07
1 35,1a
±4,73 27,4b
±2,00
3 30,1a
±4,55 27,1b
±2,26
5 29,7a
±3,01 27,2b
±1,58 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 86,4% der Sauen (Kot wurde an festgelegten Tagen beurteilt; jedoch ferkelten nicht alle Sauen
zu exakt demselben Zeitpunkt)
pH-Wert
Während der pH-Wert im Kot der Rohfasergruppe 1 zur Geburt hin niedriger wurde und
erst nach Ende der Rohfasersupplementation nach Tag 3 wieder das Ausgangsniveau
erreichte, stieg der pH-Wert im Kot der Kontrollgruppe zur Geburt hin an (Tabelle 42).
Somit wurden in der Rohfasergruppe 4 Tage vor bis 1 Tag nach dem errechneten
Geburtszeitpunkt signifikant niedrigere pH-Werte im Kot ermittelt.
Tabelle 42: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des pH-Wertes im Kot der Rohfasergruppe
1 und Kontrollgruppe
Tag*
Kontrollgruppe 1 (n=10)
Rohfaser 1 (n=12)
x s x s
-7 7,05a ±0,31 6,87
a ±0,27
-4 7,32a ±0,36 6,35
b ±0,36
-2 7,13a ±0,37 6,34
b ±0,34
1 7,20a ±0,38 6,42
b ±0,39
3 7,17a
±0,41 6,77a
±0,54
5 6,83a
±0,33 7,01a
±0,39 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 86,4% der Sauen (Kot wurde an festgelegten Tagen beurteilt; jedoch ferkelten nicht alle Sauen
zu exakt demselben Zeitpunkt)
Ergebnisse
105
Fe-Gehalt im Kot p.p.
In dem 24-48 h post partum entnommenen Kotproben der Rohfasergruppe wurden
signifikant geringere Fe-Gehalte im Vergleich zu den Kotproben der Kontrolltiere
festgestellt.
Tabelle 43: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Fe-Gehaltes (g/kg TS) im Kot der Rohfasergruppe 1 und Kontrollgruppe
Tag* Kontrollgruppe 1
(n=10) Rohfaser 1
(n=12)
x s x s
1 2,95a
±0,50 2,23b
±0,43 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag 1: 24-48 h post partum
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
TS-Gehalt
Der TS-Gehalt im Kot beider Fütterungsgruppen stieg zur Geburt hin an, erreichte das
Maximum an Tag 1 p.p. und fiel daraufhin wieder leicht ab (Tabelle 44). Der Vergleich der
mittleren TS-Gehalte im peripartal entnommenen Kot zeigte insgesamt einen niedrigeren
TS-Gehalt im Kot der Rohfasergruppe, diese Differenz war jedoch nur am vierten Tag a.p.
statistisch signifikant.
Tabelle 44: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des TS-Gehaltes (%) im Kot der Rohfasergruppe 2 und Kontrollgruppe
Tag* Kontrollgruppe 2
(n=13) Rohfaser 2
(n=12)
x s x s
-7 24,1a ±1,99 24,3
a ±1,88
-4 28,8a ±2,12 26,6
b ±1,96
-2 28,5a
±4,34 26,4a
±2,51
1 32,6a
±4,90 30,4a
±4,42
3 28,4a
±3,17 26,6a
±4,30
5 26,6a ±3,05 25,4
a ±2,20 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 72,0 % der Sauen (Kot wurde an festgelegten Tagen beurteilt; jedoch ferkelten nicht alle Sauen
zu exakt demselben Zeitpunkt)
pH-Wert
Analog zu den Veränderungen des pH-Wertes im Kot der Rohfasergruppe 1 fiel der pH-
Wert der Rohfasergruppe 2 zur Geburt hin ab, während der pH-Wert im Kot der
Ergebnisse
106
Kontrolltiere zunächst anstieg (Tabelle 45). Vier Tage vor bis drei Tage nach der Geburt
war der mittlere pH-Wert im Kot der Rohfasergruppe statistisch signifikant niedriger als im
Kot der Kontrollgruppe.
Tabelle 45: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des pH-Wertes im Kot der Rohfasergruppe
2 und Kontrollgruppe
Tag*
Kontrollgruppe 2 (n=13)
Rohfaser 2 (n=12)
x s x s
-7 7,04a
±0,25 6,86a
±0,30
-4 7,00a ±0,40 6,36
b ±0,29
-2 7,22a ±0,39 6,30
b ±0,18
1 7,16a ±0,37 6,35
b ±0,53
3 7,01a ±0,45 6,49
b ±0,34
5 6,82a
±0,48 6,58a
±0,33 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag ±24h, 72,0 % der Sauen (Kot wurde an festgelegten Tagen beurteilt; jedoch ferkelten nicht alle Sauen
zu exakt demselben Zeitpunkt)
Fe-Gehalt im Kot p.p.
Im Kot der Rohfasergruppe konnte 24-48 h post partum ein statistisch signifikant niedriger
Fe-Gehalt festgestellt werden als in dem Kot der Kontrollgruppe.
Tabelle 46: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Fe-Gehaltes (g/kg TS) im Kot der Rohfasergruppe 2 und Kontrollgruppe
Tag Kontrollgruppe 2
(n=13) Rohfaser 2
(n=12)
x s x s
1 2,31a
±0,59 1,55b
±0,46 a,b
ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* Tag 1: 24-48 h post partum
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
TS-Gehalt
In beiden Gruppen stieg der TS-Gehalt im Kot im peripartalen Zeitraum zur Geburt hin
deutlich an, um in den folgenden Tagen langsam wieder auf das Ausgangsniveau
abzusinken (Tabelle 41 und Tabelle 44). Dieser Abfall des TS-Gehaltes auf das
ursprüngliche Niveau post partum war in der Rohfasergruppe 2 tendenziell schneller, was
zu einem statistisch signifikant niedrigeren TS-Gehalt im Kot am 5. Tag post partum führte.
Ergebnisse
107
pH-Wert
Während der Zeit der Rohfaserzugabe konnten in beiden Rohfasergruppen sinkende pH-
Werte im Kot der Sauen beobachtet werden. Nach der Umstellung der Fütterung auf die
alleinige Gabe von Laktationsfutter stiegen die pH-Werte stufenweise an (Tabelle 42 und
Tabelle 45). Dieser Anstieg der pH-Werte nach der Geburt vollzog sich in der
Rohfasergruppe 2 etwas langsamer, sodass die pH-Werte im Kot am Tag 5 post partum in
dieser Gruppe signifikant niedriger als in der Rohfasergruppe 1 waren.
Fe-Gehalt
Im Vergleich zu den jeweiligen Kontrollgruppen wurden in beiden Rohfasergruppen
signifikant niedrigere Fe-Gehalte im 24-48 h post partum entnommenen Kot nachgewiesen
(Tabelle 43 und Tabelle 46). Ein Vergleich der Fe-Gehalte in dem Kot zwischen diesen
beiden Fasergruppen zeigte jedoch einen signifikant niedrigeren Fe-Gehalt im Kot der
Rohfasergruppe 2.
Korrelation des TS-Gehaltes mit der Geburtslänge
Es konnten keine signifikanten Korrelationen zwischen dem TS-Gehalt des Kotes ante
partum und der mittleren Geburtslänge bzw. dem Geburtsintervall zwischen den Ferkeln
nachgewiesen werden.
Ergebnisse der Speicheluntersuchungenn 4.2.11
Zur Einstallung, 2 Tage vor dem berechneten Geburtszeitpunkt sowie 24 und 72 h post
partum wurden von allen Sauen Speichelproben entnommen und in diesen der
Cortisolgehalt in ng/ml bestimmt.
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Da eine Sau der Kontrollgruppe bereits 3 Tage vor dem berechneten Geburtszeitpunkt
abferkelte und das 24 h p.p. entnommene Probenvolumen einer Sau der Rohfasergruppe für
eine Cortisolanalyse nicht ausreichte, konnten diese Sauen an den entsprechenden
Messzeitpunkten nicht berücksichtigt werden.
Die Ergebnisse der Cortisolanalyse im Speichel der Sauen zu den verschiedenen
Messzeitpunkten sind in Tabelle 47 dargestellt.
Ergebnisse
108
Insgesamt variierten die Werte beider Gruppen zwischen den einzelnen Tieren deutlich,
sodass sich insbesondere an den beiden Zeitpunkten nach der Geburt große
Standardabweichungen ergaben. In beiden Fütterungsgruppen konnte ein leicht
signifikanter Abfall der Cortisolkonzentrationen vom Tag der Einstallung zum 2. Tag ante
partum, gefolgt von einem signifikanten Anstieg 24 h nach der Geburt beobachtet werden.
Während die Cortisolwerte in der Rohfasergruppe 72 h post partum bereits niedriger
wurden, wurde im Speichel der Kontrolltiere ein weitere Steigerung der Werte festgestellt.
Diese Veränderungen waren in beiden Gruppen jedoch nicht signifikant. Ein Vergleich der
mittleren Cortisolkonzentrationen 72 h post partum ergab einen signifikanten Unterschied
zwischen den beiden Gruppen.
Tabelle 47: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren Cortisolgehaltes (ng/ml) im Speichel der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im peripartalen Zeitraum
Zeitpunkt Kontrollgruppe 1 Rohfaser 1
n x
s Min
Max n x
s
Min
Max
Einstallung 10
1,80a
±0,53 1,11
1,86 12 2,06
a ±0,96
0,72
4,18
2 Tage a.p.* 9
1,13a
±0,63 0,53
2,75 12 1,46
a ±0,67
0,38
2,63
24 h p.p. 10
6,43a
±5,98 1,72
20,9 11 8,03
a ±8,65
1,78
31,2
72 h p.p. 10
10,3a
±7,81 2,54
28,2 12 3,25
b ±1,90
1,41
7,86
*vor dem berechneten Geburtstermin a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Die Cortisolwerte im Speichel der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe zeigten
deutliche Schwankungen insbesondere in der Zeit post partum (Tabelle 48). Auch bei
diesen Tieren konnte ein leichter Abfall der Cortisolkonzentration vom Tag der Einstallung
zum 2. Tag vor dem errechneten Geburtszeitpunkt beobachtet werden; diese Abnahme war
jedoch nicht signifikant. 24 h post partum waren die Cortisolwerte in beiden Gruppen
signifikant im Vergleich zu gemessenen Werten ante partum angestiegen. 72 h nach der
Geburt schwankten die Werte zwischen den einzelnen Tieren so deutlich, dass die
Standardabweichung den Wert des Mittelwerts überstieg. Dies ging vor allem auf zwei
Tiere (jeweils eine Sau der Kontroll- und der Rohfasergruppe) zurück, welche zu diesem
Ergebnisse
109
Zeitpunkt sehr hohe Werte zeigten. Ohne diese beiden Sauen ergab sich für die
Kontrollgruppe ein mittlerer Cortisolwert von 7,31 ±6,13 ng/ml und für die Rohfasergruppe
ein Wert von 3,42 ±1,82 ng/ml. Die Veränderung der Cortisolkonzentration innerhalb der
Gruppen zwischen den Zeitpunkten 24 und 72 h post partum waren nicht signifikant,
jedoch wies die Rohfasergruppe 72 h post partum signifikant niedrigere
Cortisolkonzentrationen im Speichel auf.
Tabelle 48: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren Cortisolgehaltes (ng/ml) im Speichel der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im peripartalen Zeitraum
Zeitpunkt
Kontrollgruppe 2
(n=13)
Rohfaser 2
(n=12)
x
s Min
Max x
s
Min
Max
Einstallung 2,53a
±1,29 0,95
5,58 2,02
a ±0,66
0,99
3,27
2 Tage a.p.* 2,27a
±1,54 0,41
5,31 1,52
a ±0,93
0,39
3,56
24 h p.p. 6,25a
±5,66 2,03
24,3 5,80
a ±4,57
0,82
15,8
72 h p.p. 11,5a
±16,3 2,43
62,2 6,96
b ±12,4
1,65
45,9
*vor dem berechneten Geburtstermin a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Ergebnisse der serologischen Untersuchungen 4.2.12
4.2.12.1 Blutparameter der Sauen
Zur Einstallung sowie 24 bzw. 72 h nach der Geburt wurde den Sauen Blut entnommen und
der Gehalt an Porzinen C-reaktiven Protein sowie D- Laktat im Serum bestimmt. Die
Ergebnisse der Blutuntersuchungen der Sauen werden im Folgenden dargestellt.
4.2.12.1.1 Porzines C-reaktives Protein (CRP)
Die gemessenen CRP-Werte überschritten – trotz einer Verdünnung von bis zu 1:400 –
insbesondere rund um den Geburtszeitpunkt den höchsten maximal messbaren Wert von
1200 mg/l. Eine weitere Verdünnung der Serumproben über 1:400 führte zu starken
Verdünnungsfehlern, sodass der gemessene Wert nicht mehr der ursprünglich im Serum
enthaltenden CRP-Konzentration entsprach. Somit konnten alle Serumproben, welche einen
Wert oberhalb des messbaren Wertes des ELISAs aufwiesen, in dem statistischen Vergleich
Ergebnisse
110
der Mittelwerte zwischen den jeweiligen Fütterungsgruppen nicht berücksichtigt werden.
Zudem erfolgte eine eigene Auswertung des prozentualen Anteils der Sauen, welche eine
CRP-Konzentration oberhalb des klinisch relevanten Bereiches von > 400 mg/l aufwiesen,
welcher auch im Rahmen eines akuten Caudophagie-Geschehens bei Jungsauen oder nach
einer künstlichen Infektion mit Actinobacillus pleuropneumoniae nachgewiesen werden
kann (HEEGAARD et al. 1998; SALAMANO et al. 2008)
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Zum Zeitpunkt des Einstallens in den Abferkelbereich wiesen in beiden Gruppen ca. 10 %
der Sauen einen CRP-Wert oberhalb des maximal messbaren Bereiches von 1200 mg/l auf
(Tabelle 49). Dieser Anteil stieg 24 h post partum in beiden Fütterungsgruppen deutlich an,
um anschließend 72 h post partum wieder leicht abzusinken. Obwohl der prozentuale
Anteil der Sauen, welcher 24 h post partum eine nicht mehr messbare CRP-Konzentration
aufwies, in der Kontrollgruppe mit knapp 90 % deutlich höher war als in der
Rohfasergruppe (50 %), konnten zu keinem Zeitpunkt signifikante Unterschiede
hinsichtlich des Anteils zu hoher CRP-Werte zwischen den Gruppen festgestellt werden.
Tabelle 49: Anzahl und prozentualer Anteil der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1, welche zu
den gemessenen Zeitpunkten einen CRP-Wert oberhalb des messbaren Bereiches von
1200 mg/l aufwiesen
Zeitpunkt Kontrollgruppe 1
(n=10)
Rohfaser 1 (n=12)
p-Wert
n % n %
Einstallung 1 10,0 2 16,7 1,00
24 h p.p. * 8 88,9 6 50,0 0,16
72 h p.p. 2 20,0 4 33,3 0,65
*Gesamtanzahl Kontrolltiere 24 h p.p.: n=9
Bei Betrachtung der prozentualen Anteile der Sauen, die einen CRP-Wert oberhalb einer
Konzentration von 400 mg/l aufwiesen (Tabelle 50), ergab sich ein vergleichbares Bild wie
das der Tiere mit einer Konzentration >1200 mg/l. Es wurden keine statistisch signifikanten
Unterschiede zwischen den beiden Fütterungsgruppen nachgewiesen.
Ergebnisse
111
Tabelle 50: Anzahl und prozentualer Anteil der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1, welche zu den gemessenen Zeitpunkten einen CRP-Wert von >400 mg/l aufwiesen
Zeitpunkt Kontrollgruppe 1
(n=10)
Rohfaser 1 (n=12)
p-Wert
n % n %
Einstallung 2 20,0 3 25,0 1,00
24 h p.p. * 9 100 9 75,0 0,23
72 h p.p. 6 60,0 6 50,0 0,69
*Gesamtanzahl Kontrolltiere 24 h p.p.: n=9
Die Ergebnisse der CRP-Konzentrationen zu den drei Messzeitpunkten von den Sauen,
deren CRP-Konzentrationen innerhalb des messbaren (1200 mg/l) und somit auswertbaren
Bereiches waren, sind in der Tabelle 51 dargestellt.
Tabelle 51: Mittelwerte (x), Standardabweichungen (s) sowie minimal und maximal gemessene CRP-Konzentrationen in mg/l der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Tag Kontrollgruppe 1 Rohfaser 1 p-Wert
n* x
s Min
Max n* x
s
Min
Max
Einstallung 9 147a
±156 18,9
537 10 84,8
b ±132
15,3
444 0,05
24 h p.p. 1 510 – – 6 547
±407
154
1043 –
72 h p.p. 8 425
±269 211
1027 8 382
±384
93,9
1084 0,19
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
* ausschließlich Sauen, deren CRP-Konz. innerhalb des messbaren Bereiches (≤ 1200 mg/l) war
Zur Einstallung konnten signifikant höhere CRP-Werte im Serum der Kontrolltiere
nachgewiesen werden, jedoch variierte die CRP-Konzentration zu allen Zeitpunkten
zwischen den Tieren enorm, sodass die Streuung der Werte sehr hoch war. Innerhalb der
Rohfasergruppe 1 konnte jedoch ein signifikanter Anstieg der CRP-Konzentration zur
Geburt hin beobachtet werden. 72 h nach der Geburt wurden zwar tendenziell niedrigere
Werte nachgewiesen, diese waren jedoch im Vergleich zu den gemessenen Werten 24 h
post partum nicht signifikant kleiner. Da zum Zeitpunkt 24 h post partum nur ein
Kontrolltier eine noch auswertbare CRP-Konzentration aufwies – die Werte aller anderen
Tiere waren oberhalb des messbaren Bereiches – war eine statistische Auswertung des
Verlaufs der CRP-Konzentration innerhalb der Kontrollgruppe nicht möglich. Jedoch ist
anzunehmen, dass der Anstieg zur Geburt auch in dieser Gruppe signifikant war.
Ergebnisse
112
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
In beiden Gruppen konnte ein Anstieg des prozentualen Anteils der Tiere, welche eine
CRP-Konzentration oberhalb des messbaren Bereiches von 1200 mg/l aufwiesen, zur
Geburt hin im Vergleich zu der Ausgangssituation beobachtet werden (Tabelle 52). Zwar
war der Anteil dieser Tiere 24 h post partum in der Fasergruppe mit 75 % im Vergleich zu
46,2 % der Kontrollgruppe etwas höher, wurde jedoch 72 h post partum deutlich kleiner,
während er in der Kontrollgruppe zu diesem Zeitpunkt noch leicht anstieg. Insgesamt
konnten zu keinem Zeitpunkt statistisch signifikant unterschiedliche prozentuale Anteile an
Sauen mit einer CRP-Konzentration oberhalb des Messbereiches zwischen den Gruppen
festgestellt werden.
Tabelle 52: Anzahl und prozentualer Anteil der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2, welche zu den gemessenen Zeitpunkten einen CRP-Wert oberhalb des messbaren Bereiches von
1200 mg/l aufwiesen
Zeitpunkt
Kontrollgruppe 2 (n=13)
Rohfaser 2 (n=12)
p-Wert
n % n %
Einstallung 3 23,1 2 16,7 1,00
24 h p.p. 6 46,2 9 75,0 0,226
72 h p.p. 7 53,9 3 25,0 0,226
Bei Vergleich des prozentualen Anteil der Tiere mit einer CRP-Konzentration >400 mg/l
fiel zur Einstallung bereits ein vergleichsweise hoher Anteil dieser Tiere in der
Kontrollgruppe auf (Tabelle 53). Während zur Geburt ein nahezu identischer Anteil der
Sauen eine CRP-Konzentration oberhalb dieses Wertes aufwies, stieg dieser in der
Kontrollgruppe 72 h p.p. sogar weiter an und betrug 92,3 % der Sauen.
Ergebnisse
113
Tabelle 53: Anzahl und prozentualer Anteil der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2, welche zu den gemessenen Zeitpunkten einen CRP-Wert von >400 mg/l aufwiesen
Zeitpunkt Kontrollgruppe 2
(n=13)
Rohfaser 2 (n=12)
p-Wert
n % n %
Einstallung 4 30,8 1 8,33 0,32
24 h p.p. 11 84,6 10 83,3 1,00
72 h p.p. 12 92,3 10 83,3 0,59
Die Ergebnisse der CRP-Konzentrationen zu den drei Messzeitpunkten von den Sauen,
deren CRP-Konzentrationen innerhalb des messbaren und somit auswertbaren Bereiches
waren (≤ 1200 mg/l), sind in der Tabelle 54 dargestellt.
Tabelle 54: Mittelwerte (x), Standardabweichungen (s) sowie minimal und maximal gemessene CRP-Konzentrationen in mg/l der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Tag Kontrollgruppe 2 Rohfaser 2 p-Wert
n* x
s Min
Max n* x
s
Min
Max
Einstallung 10 109
±174 17,5
575 10 123 ±103
26,2
300 0,19
24 h p.p. 7 521
±242 251
947 3 481
±586
76,7
1154 0,49
72 h p.p. 6 519
±225 126
746 9 622
±312
56,1
1003 0,44
* ausschließlich Sauen, deren CRP-Konz. innerhalb des messbaren Bereiches (≤ 1200 mg/l) war
Auch die gemessenen CRP-Werte der Tiere beider Gruppen schwankten deutlich, sodass
sich hohe Standardabweichungen von dem Mittelwert ergaben. Zwar konnten zu den
verschiedenen Zeitpunkten keine signifikanten Unterschiede zwischen der Kontroll- und
Rohfasergruppe 2 festgestellt werden, dennoch zeigte eine Auswertung des Verlaufs der
CRP-Konzentration innerhalb beider Gruppen einen signifikanten Anstieg der CRP-Werte
24 h post partum im Vergleich zum Ausgangswert. Während die CRP-Konzentration der
Kontrolltiere 72 h nach der Geburt nahezu konstant blieb, wiesen die Tiere der
Rohfasergruppe zu diesem Zeitpunkt im Mittel höhere Werte als 24 h post partum auf.
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Der Vergleich der CRP-Konzentrationen zwischen den beiden Rohfasergruppen ergab
keine statistisch signifikanten Unterschiede sowohl bei der Anzahl der Tiere mit einem
Ergebnisse
114
CRP-Wert oberhalb des Messbereiches, als auch bei den auswertbaren CRP-
Konzentrationen zu den verschiedenen Zeitpunkten.
Korrelation der CRP-Konzentration mit einem MMA-Geschehen
Zu keinem Zeitpunkt konnte eine signifikante Korrelation zwischen den ermittelten CRP-
Konzentrationen und einem MMA-Geschehen ermittelt werden, jedoch traten im Laufe der
Versuchsphase lediglich 4 MMA-Erkrankungen auf.
4.2.12.1.2 D-Laktat
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Die peripartal ermittelten D-Laktat-Werte bewegten sich auf einem sehr niedrigen Niveau
und variierten beträchtlich zwischen den einzelnen Sauen, sodass die Schwankungsbreite
der Werte insgesamt sehr groß wurde (Tabelle 55). In beiden Fütterungsgruppen konnten
zur Geburt hin eher leicht sinkende D-Laktatwerte beobachtet werden, jedoch gab es keine
signifikanten Unterschiede sowohl zwischen den beiden Gruppen, als auch innerhalb einer
Gruppe zu den drei Messzeitpunkten.
Tabelle 55: Mittelwerte (x), Standardabweichungen (s) sowie minimal und maximal gemessene D-Laktatkonzentrationen in mmol/l im Blut der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Tag
Kontrollgruppe 1 (n=10)
Rohfaser 1
(n=12) p-Wert
x
s Min
Max x
s
Min
Max
Einstallung 0,08
±0,08 0,01
0,27 0,06
±0,07
0,01
0,25 0,53
24 h p.p. 0,05*
±0,04 0,00
0,11 0,05
±0,04
0,00
0,11 1,00
72 h p.p. 0,06
±0,06 0,00
0,17 0,04
±0,04
0,00
0,16 0,41
*24h p.p. Kontrolle n=9
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Auch bei den Tieren der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 schwankten die D-Laktatwerte
deutlich (Tabelle 56). Es konnten keine statistisch signifikanten Unterschiede zwischen den
Gruppen und innerhalb einer Gruppe zu den drei Messzeitpunkten festgestellt werden.
Ergebnisse
115
Tabelle 56: Mittelwerte (x), Standardabweichungen (s) sowie minimal und maximal gemessene D-Laktatkonzentrationen in mmol/l im Blut der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Tag
Kontrollgruppe 2 (n=13)
Rohfaser 2
(n=12) p-Wert
x
s Min Max
x
s Min Max
Einstallung 0,02 ±0,04
0,00 0,13
0,05 ±0,07
0,00 0,20
0,11
24 h p.p. 0,05 ±0,04
0,00 0,11
0,04 ±0,04
0,00 0,10
0,44
72 h p.p. 0,04 ±0,06
0,00
0,24 0,03
±0,03 0,00
0,11 1,00
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Ein Vergleich der D-Laktatwerte zwischen den beiden Fasergruppen ergab keine
signifikanten Unterschiede zu den drei Messzeitpunkten.
Korrelation der D-Laktatkonzentrationen mit dem Mikrobiom
Eine Korrelationsanalyse zwischen der D-Laktatkonzentration im Serum der Sauen 24 h
post partum und den prozentualen Anteilen der Bakterienordnungen Clostridiales und
Lactobacillales im 24-48 h post partum entnommenen Kots erbrachte keine signifikanten
Korrelationen.
4.2.12.2 Blutparameter der Ferkel
Von jeweils zwei großen und kleinen Ferkeln (>1 kg KM) eines Wurfes wurde 48 h nach
der Geburt eine Blutprobe entnommen und im Serum der Immunokrit sowie der Gehalt an
Protein, Albumin und Gamma-Globulin bestimmt. Mithilfe dieser Werte konnten der
Globulin/Albumin-Quotient und der prozentuale Anteil der Gamma-Globuline am
Gesamtprotein errechnet werden. Zum Absetzen wurde von diesen Ferkeln erneut in einer
zuvor entnommenen Serumprobe der Immunokrit bestimmt. In dem Falle, dass ein Ferkel
die Säugezeit nicht überlebte, wurde einem anderen Ferkel des Wurfes, welches zur Geburt
ein ähnliches Gewicht aufwies, zum Absetzen Blut entnommen.
Die Darstellung der Ergebnisse erfolgt zunächst nach Fütterungsgruppen sortiert und
anschließend nach den Kriterien große und kleine Ferkel eines Wurfes sowie nach Ferkeln,
welche die Säugezeit überlebt bzw. in dieser Zeit verstorben sind.
Ergebnisse
116
4.2.12.2.1 Einfluss der maternalen Fütterung auf die Blutparameter der Ferkel
Immunokrit
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Da die Blutprobenentnahme der Ferkel von zwei Kontrolltieren nicht exakt nach 48 h
erfolgte sowie eine Sau kurz vor dem errechneten Geburtszeitpunkt abortierte, konnten in
der Kontrollgruppe lediglich 28 Ferkel von 7 Sauen in die Auswertung des Immunokrits
einbezogen werden. Zum Zeitpunkt 48 h p.p. wurde insgesamt fünf Ferkeln einer Sau der
Rohfasergruppe Blut entnommen. Zum Absetzen wurden nur die Ferkel berücksichtigt,
welche nach einer 5-wöchigen Säugezeit abgesetzt wurden. Auch die zugesetzten Ferkel,
welche an die Sau gesetzt worden waren, welche abortiert hatte, wurden zu diesem
Messzeitpunkt berücksichtigt. An beiden Zeitpunkten konnten keine signifikanten
Unterschiede des mittleren Immunokrits zwischen den beiden Fütterungsgruppen
festgestellt werden (Tabelle 57).
Tabelle 57: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren Immunokrits der Ferkel der
Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 48h p.p. sowie zum Absetzen
ZP Kontrollgruppe 1 Rohfaser 1 p-Wert
nS nF x s nS nF x s
48 h p.p. 7 28 0,20 ±0,04 12 49 0,19 ±0,05 0,43
Absetzen 8 33 0,11 ±0,02 11 48 0,11 ±0,02 0,62
nS: Anzahl der Sauen; nF: Anzahl der Ferkel
Ein Vergleich des mittleren Immunokrits der Ferkel, bei welchen der Immunokrit an beiden
Zeitpunkten gemessen werden konnte (Kontrolle n=24, Rfa 1 n= 45), ergab in beiden
Gruppen einen hoch signifikanten Abfall zum Zeitpunkt des Absetzens (p<0,001).
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Auch ein Vergleich der mittleren Immunokritwerte 48 h nach der Geburt zeigte keine
signifikanten Unterschiede zwischen den Gruppen (Tabelle 58). Zum Absetzen wurden nur
die Ferkel mit einer 5-wöchigen Säugezeit berücksichtigt. Zu diesem Zeitpunkt konnte bei
den Ferkeln der Kontrollsauen ein leichter, jedoch signifikant höherer Immunokrit
festgestellt werden.
Ergebnisse
117
Tabelle 58: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren Immunokrits der Ferkel der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 48h p.p. sowie zum Absetzen
ZP Kontrolle Rohfaser 2 p-Wert
nS nF x s nS nF x s
48 h p.p. 13 52 0,22 ±0,03 12 48 0,21 ±0,03 0,41
Absetzen 8 32 0,12a
±0,02 12 48 0,11b
±0,03 0,04
nS: Anzahl der Sauen; nF: Anzahl der Ferkel a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Zwischen den beiden Zeitpunkten konnte bei den Ferkeln, bei welchen der Immunokrit an
beiden Zeitpunkten gemessen werden konnte (Kontrolle n=32, Rfa 2 n= 48), in beiden
Gruppen ein hoch signifikant niedrigerer Immunokrit zum Zeitpunkt des Absetzens
nachgewiesen werden.
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
48 h nach der Geburt ließ sich in der Rohfasergruppe 2 ein signifikant höherer Immunokrit
im Vergleich zur Rohfasergruppe 1 erkennen. Zum Absetzen wurden keine signifikant
unterschiedlichen Immunokritwerte zwischen den beiden Gruppen beobachtet.
Protein- und Proteinfraktionen
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Die mittleren Proteingehalte sowie Proteinfraktionen im Ferkelserum der Sauen der
Kontroll- und Rohfasergruppe 1 48 h nach der Geburt sind in der Tabelle 59 dargestellt. Bis
auf den errechneten Globulin/Albumin-Quotienten waren alle ermittelten Werte zu diesem
Zeitpunkt in dem Serum der Ferkel der Rohfasergruppe tendenziell niedriger. Diese
Unterschiede waren jedoch nicht statistisch signifikant.
Ergebnisse
118
Tabelle 59: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Proteingehalts und der Proteinfraktionen im Ferkelserum der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 48 h post
partum
Kontrolle
(n=28) Rohfaser 1
(n=49) p-Wert
x s x s
Protein (g/l) 60,1 ±14,6 55,3 ±14,7 0,17
Albumin (g/l) 11,3 ±3,68 9,79 ±2,51 0,09
Globulin/Albumin-
Quotient 4,49 ±0,87 4,66 ±0,67 0,35
γ-Globulin (g/l) 29,0 ±11,9 25,8 ±12,0 0,27
γ-Globulin (%) 47,3 ±13,3 44,5 ±11,7 0,33
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Auch in dem Serum der Ferkel der Sauen der Rohfasergruppe 2 konnte 48 h post partum
ein tendenziell niedrigerer Gehalt an Gesamtprotein, γ-Globulin und prozentualen Anteil
von γ-Globulin am Gesamteiweiß beobachtet werden (Tabelle 60). Der Albumingehalt war
im Ferkelserum der Rohfasergruppe im Vergleich zur Kontrollgruppe signifikant niedriger,
was zu einem signifikant höheren Globulin/Albumin-Quotienten führte.
Tabelle 60: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Proteingehalts und der
Proteinfraktionen im Ferkelserum der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 48 h post partum
Kontrolle
(n=52) Rohfaser 2
(n=48) p-Wert
x s x s
Protein (g/l) 64,7 ±13,7 61,4 ±11,9 0,25
Albumin (g/l) 11,6a
±3,06 10,4b
±2,79 0,04
Globulin/Albumin-
Quotient 4,69
a ±0,75 5,05b ±0,84 0,03
γ-Globulin (g/l) 29,2 ±7,51 27,7 ±7,31 0,23
γ-Globulin (%) 44,8 ±4,91 44,7 ±6,03 0,94 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Ein Vergleich der mittleren Proteinkonzentration sowie der ermittelten Parameter der
Proteinfraktionen im Ferkelserum ergab einen signifikant höheren Proteingehalt und
Globulin/Albumin Quotienten in der Rohfasergruppe 2. Alle anderen Parameter im
Ferkelserum unterschieden sich nicht signifikant zwischen den beiden Fasergruppen.
Ergebnisse
119
Korrelation des Immunokrit mit dem Absetzgewicht und den Gehalt an Protein und
γ-Globulin
Es konnte keine positive Korrelation zwischen den ermittelten Immunokritwert 48 h post
partum und dem Absetzgewicht der Ferkel beobachtet werden.
Jedoch wurden hoch signifikante Korrelationen sowohl zwischen dem ermittelten
Immunokrit und dem Proteingehalt in g/l (R2=0,75; p<0,001) als auch zwischen dem
Immunokrit und dem γ-Globulin-Gehalt in g/l (R2=0,81; p<0,001) im Ferkelserum
nachgewiesen.
4.2.12.2.2 Einfluss des Geburtsgewichtes auf die Blutparameter der Ferkel
Die jeweils leichten Ferkel eines Wurfes hatten sowohl 24 h nach der Geburt als auch zum
Zeitpunkt des Absetzens ein signifikant niedrigeres Körpergewicht als die schwereren
Geschwisterferkel (Tabelle 61).
Tabelle 61: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Geburts- und Absetzgewicht in kg der
jeweils leichten und schweren Ferkel eines Wurfes
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Trotz des niedrigeren Geburtsgewichtes der leichten Ferkel eines Wurfes konnte kein
signifikanter Unterschied im mittleren Immunokritwert 48 h post partum beobachtet
werden; zum Absetzen ließ sich jedoch ein signifikant niedrigerer Immunokrit im Serum
dieser Tiere feststellen (Tabelle 62).
Tabelle 62: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Immunokrits im Serum der jeweils
leichten und schweren Ferkel eines Wurfes
ZP Leichte Ferkel Schwere Ferkel
n x s n x s
48 h p.p. 89 0,20a
±0,04 88 0,21a
±0,04
Absetzen 81 0,11a ±0,02 80 0,12
b ±0,02 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Bei der Betrachtung der im Serum ermittelten Blutparameter 48 h post partum wurde bei
den leichten Ferkeln ein signifikant niedrigerer Albumingehalt im Serum nachgewiesen,
ZP Leichte Ferkel Schwere Ferkel
n x s n x s
24 h p.p. 89 1,14a ±0,17 88 1,72
b ±0,22
Absetzen 81 9,50a ±1,92 80 12,0
b ±2,09
Ergebnisse
120
was zu einem signifikant höheren Globulin/Albumin-Quotienten führte (Tabelle 63). Alle
anderen untersuchten Parameter im Ferkelserum unterscheiden sich 48 h nach der Geburt
nicht signifikant zwischen den beiden Gewichtsklassen.
Tabelle 63: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Proteingehalts und der
Proteinfraktionen im Serum der jeweils leichten und schweren Ferkel eines Wurfes
Leichte Ferkel (n=89)
Schwere Ferkel (n=88)
x s x s
Protein (g/l) 59,6 ±15,7 61,4 ±12,2
Albumin (g/l) 10,2a ±3,18 11,3
b ±2,77
Globulin/Albumin-
Quotient 4,95
a ±0,74 4,55
b ±0,80
γ-Globulin (g/l) 27,5
±10,5 28,1
±8,74
γ-Globulin (%) 45,2
±9,86 45,0
±8,20 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
4.2.12.2.3 Einfluss des Überlebens der Säugephase auf die Blutparameter der Ferkel
Die Ergebnisse des Körpergewichtes und der untersuchten Blutparameter derjenigen
Ferkel, die die Säugephase nicht überlebten, im Vergleich zu den überlebenden Ferkel sind
in Tabelle 64 dargestellt. Sowohl das Körpergewicht 24 h post natum als auch die
ermittelten Blutparameter Immunokrit, Gesamtprotein, Albumin und γ-Globulin waren bei
diesen Tieren signifikant niedriger als bei den überlebenden Ferkel. Hinsichtlich des
Globulin/Albumin-Quotienten und des prozentualen Anteils des γ-Globulin am
Gesamtprotein konnten keine signifikanten Differenzen beider Ferkelgruppen beobachtet
werden.
Ergebnisse
121
Tabelle 64: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Gewichts sowie verschiedener Blutparameter im Serum verendeter und überlebender Ferkel
Verendete Ferkel
(n=12) Überlebende Ferkel
(n=165)
x s x s
Gewicht (kg) 1,06a
±0,27 1,46b
±0,34
Immunokrit 0,17a
±0,05 0,21b
±0,04
Protein (g/l) 48,1a
±12,7 61,4b
±13,8
Albumin (g/l) 8,43a ±2,64 10,9
b ±2,99
Globulin/Albumin-
Quotient 4,83
a ±1,09 4,74
a ±0,77
γ-Globulin (g/l) 19,6a
±7,45 28,4b
±9,54
γ-Globulin (%) 42,3a
±14,6 45,3a
±8,55 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Ergebnisse der mikrobiologischen Untersuchung des Sauenkotes 4.2.13
Unmittelbar nach der Geburt wurde den Sauen rektal Kot entnommen und in dieser
Kotprobe der Gehalt an koloniebildenen Einheiten von Clostridium perfringens
mikrobiologisch bestimmt. Aus technischen Gründen konnte der erste Versuchsdurchgang
der Kontroll- und Rohfaserrgruppe 1 bei diesen Untersuchungen nicht berücksichtigt
werden. Somit musste in diesen Gruppen auf die mikrobiologischen Ergebnisse von jeweils
4 Sauen pro Gruppe verzichtet werden.
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Die Anzahl Kolonie bildender Einheiten von C. perfringens im unmittelbar post partal
entnommenen Kot war in der Rohfasergruppe 1 (n = 8 Sauen) statistisch signifikant
niedriger als in dem Kot der Kontrollgruppe (n = 6 Sauen) (Abbildung 12). Während im
Kot der faserreich gefütterten Tiere durchschnittlich 3,02 ±0,76 log10 KbE von C.
perfringens nachgewiesen werden konnten, waren dies im Kot der Kontrolltiere mit einer
Anzahl von 4,44 ±0,99 log10 KbE in etwa 10 mal so viele.
Ergebnisse
122
Abbildung 12: BoxBox-and-Whisker-Plot der mittleren Anzahl Kolonie bildender Einheiten von
Clostridium perfringens (log cfu/g Kot) im unmittelbar postpartal entommenen Kot der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 erzeugt durch das SAS System
a,b
ungleiche Buchstaben kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Auch in dem unmittelbar post partal entnommenen Kot der Rohfasergruppe 2 (n = 12)
konnte eine statistisch hoch signifikant niedrigere Anzahl an koloniebildenden Einheiten
von C. perfringens im Vergleich zur Kontrollgruppe (n = 13) nachgewiesen werden
(Abbildung 13). So war die Anzahl KbE im Kot der Kontrolltiere zur Geburt ca. 100 mal
höher im Vergleich zu der im Kot der faserreich gefütterten Tiere (4,84 ±1,29 log10 KbE vs.
2,10 ±1,50 log10 KbE).
Ergebnisse
123
Abbildung 13: BoxBox-and-Whisker-Plot der mittleren Anzahl Kolonie bildender Einheiten von
Clostridium perfringens (log cfu/g Kot) im unmittelbar postpartal entommenen Kot der
Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 erzeugt durch das SAS System a,b
ungleiche Buchstaben kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Rohfasergruppe 1 und Rohfasergruppe 2
Die mittlere Anzahl KbE von C. perfringens im unmittelbar post partal entnommenen Kot
unterschied sich zwischen den beiden Rohfasergruppen nicht signifikant voneinander.
Ergebnisse der molekularbiologischen Untersuchungen des Sauenkotes 4.2.14
4.2.14.1 Toxintypen von Clostridium perfringens im Kot post partum
Insgesamt wurden 20 für C. perfringens typische Kolonien, welche aus dem Kot von
jeweils 20 unterschiedlichen Sauen isoliert worden waren, mittels PCR hinsichtlich der
enthaltenden Toxingene untersucht. In allen untersuchten Kolonien konnte ausschließlich
das α-Toxin produzierende Genfragment cpa nachgewiesen werden. Somit handelte es sich
bei den untersuchten Kolonien um Bakterien der Spezies Clostridium perfringens Typ A.
Ergebnisse
124
4.2.14.2 Mikrobiom
Alle Bakterienordnungen, welche in dem post partal entnommenen Kot einen mittleren
prozentualen Anteil von > 1% aufwiesen, wurden in die nähere Auswertung des fäkalen
Mikrobioms mit einbezogen. Alle weiteren Bakterienordnungen sind in den Darstellungen
des Mikrobioms auf Ebene der Bakterienordnung unter der Bezeichnung „others“
abgebildet. Zudem wurden die wesentlichen Familien der Bakterienordnung Clostridiales
sowie der Familie der Lactobacillaceae (gehört zu der Ordnung Lactobacillales) näher
beschrieben und ausgewertet.
In insgesamt 10 Kotproben konnte die Sequenzierung der rRNA aufgrund einer zu geringen
Anzahl an detektierbaren Sequenzen nicht ordnungsgemäß durchgeführt werden. Dies
erklärt die zum Teil unterschiedlichen n-Werte.
Zudem wurden deutliche individuelle Variationen innerhalb der einzelnen
Fütterungsgruppen – trotz derselben Aufstallung, Fütterung und Behandlung – beobachtet,
was zu teilweise hohen Standardabweichungen führte.
Kontroll- und Rohfasergruppe 1
Die Ergebnisse der Mikrobiomuntersuchung in den entnommenen Kotproben zu den
Zeitpunkten Einstallung (Tag -7), 24 – 48 h post partum sowie in der dritten
Laktationswoche beider Fütterungsgruppen sind in den folgenden Abbildungen dargestellt.
Legende zu den Abbildungen 13, 14, 15: 1 Bacterioidales A Christensenellaceae
2 Enterobacteriales B Clostridiaceae 3 Lactobacillales C Lachnospiraceae
4 RF 39 D Ruminococcaceae
5 Spirochaetales E Others 6 Verrucomicrobiales
7 Others
8 Clostridiales
Ergebnisse
125
Abbildung 14: Mittlerer prozentualer Anteil der im Kot enthaltenden Bakterienpopulation auf Ebene
der Bakterienordnung (1-8) sowie der wesentlichen Familien der Ordnung Clostridiales (A-E) in der Kontrollgruppe (n=9) und in der Rohfasergruppe 1 (n=10)
im Kot zur Einstallung
Abbildung 15: Mittlerer prozentualer Anteil der im Kot enthaltenden Bakterienpopulation auf Ebene der Bakterienordnung (1-8) sowie der wesentlichen Familien der Ordnung Clostridiales
(A-E) in der Kontrollgruppe (n=9) und in der Rohfasergruppe 1 (n=10)
im Kot 24-48 h p.p
Ergebnisse
126
Abbildung 16: Mittlerer prozentualer Anteil der im Kot enthaltenden Bakterienpopulation auf Ebene der Bakterienordnung (1-8) sowie der wesentlichen Familien der Ordnung Clostridiales (A-E) in der Kontrollgruppe (n=9) und in der Rohfasergruppe 1 (n=10)
im Kot Anfang der dritten Laktationswoche
Zur Einstallung:
Zum Zeitpunkt des Einstallens in den Abferkelbereich (ca. Tag 7 a.p.) konnten keine
signifikanten Unterschiede zwischen den im Kot enthaltenden Bakterienordnungen
nachgewiesen werden (Tabelle 65). Zwar war der prozentuale Anteil an Clostridiales in der
Versuchsgruppe tendenziell höher (40,0 ±4,76 % vs. 43,8 ±15,3 %), insgesamt umfasste
diese Ordnung jedoch in beiden Gruppen den größten Anteil der Bakterienordnungen.
Tabelle 65: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienordnungen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im Kot zur Einstallung
Innerhalb der Ordnung Clostridiales waren in beiden Fütterungsgruppen die
Ruminococcaceae prozentual am häufigsten vertreten (Tabelle 66). Ähnliche prozentuale
Anteile hatte die Familie der Lactobacillaceae (gehört zu der Ordnung der Lactobacillales);
jedoch waren diese Bakterien in der Versuchsgruppe tendenziell niedriger (17,9 ±8,34 %
vs. 14,8 ±13,0 %). Insgesamt wurden bei einem Vergleich der prozentualen Verteilung der
Ordnung
Kontrollgruppe 1 (n=9)
Rohfaser 1 (n=10)
p-Wert
x s x s
Bacteroidales 24,9 ±6,87 25,4 ±9,95 0,90
Clostridiales 40,0 ±4,76 43,8 ±15,3 0,47
Enterobacteriales 0,03 ±0,08 0,01 ±0,03 0,75
Lactobacillales 18,1 ±8,30 15,4 ±12,6 0,59
Ergebnisse
127
häufigsten Bakterienfamilien keine signifikanten Unterschiede zwischen den beiden
Gruppen zur Einstallung festgestellt.
Tabelle 66: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienfamilien der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im Kot zur Einstallung
Familie
Kontrollgruppe 1 (n=9)
Rohfaser 1 (n=10)
p-Wert
x s x s
Christensenellaceae 2,55 ±1,26 3,83 ±3,09 0,25
Clostridiaceae 7,19 ±4,74 10,9 ±15,9 0,97
Lachnospiraceae 5,81 ±2,53 4,82 ±2,26 0,38
Ruminococcaceae 16,3 ±4,40 15,7 ±5,98 0,81
Lactobacillaceae 17,9 ±8,34 14,8 ±13,0 0,55
24 – 48 h post partum:
Die mittleren prozentualen Anteile der im Kot enthaltenden Bakterienordnungen der
Kontroll- und Rohfasergruppe 1 zum Zeitpunkt 24-48 h p.p. sind in Tabelle 67 dargestellt.
Während im Vergleich zur Einstallung im Kot p.p. ein prozentual niedrigerer Anteil an
Bacteroidales in der Kontrollgruppe beobachtet wurde, kam es in der Versuchsgruppe zu
einen Anstieg dieser Bakterienordnung. Obwohl diese Veränderungen in keiner
Fütterungsgruppe signifikant waren, führte dies dazu, dass der prozentuale Anteil an
Bacterioidales zum Zeitpunkt nach der Geburt in der Rohfasergruppe 1 im Kot p.p.
signifikant höher war als in der Kontrollgruppe (20,9 ±4,22 % vs. 28,6 ±3,72 %).
Zur Abferkelung kam es in der Kontrollgruppe zu einem signifikanten Anstieg der
Bakterienordnung Clostridiales auf insgesamt 53,1 ±6,75 %; in der Rohfasergruppe blieb
der Gehalt hingegen nahezu identisch. Somit ergab sich in dem Kot der Kontrolltiere ein
um ca. 10 % statistisch signifikant höherer Anteil an Clostridiales.
In beiden Fütterungsgruppen stieg der prozentuale Anteil der Bakterienordnung
Enterobacteriales zur Geburt statistisch signifikant an. Ein Unterschied zwischen den
Gruppen war jedoch zu diesem Zeitpunkt nicht signifikant.
Der prozentuale Anteil an Lactobacillales fiel in beiden Gruppen zur Geburt hin ab, dieser
Abfall war in der Kontrollgruppe statistisch signifikant abzusichern. Der Anteil der
Lactobacillales war somit nach der Abferkelung in der Versuchsgruppe tendenziell, jedoch
nicht statistisch signifikant höher (8,07 ±8,57 % vs 10,6 ±3,28 %).
Ergebnisse
128
In der prozentualen Verteilung der übrigen Bakterienordnungen gab es im Vergleich zur
Einstallung in der Kontrollgruppe nur marginale Veränderungen; in der Versuchsgruppe
wurde ein signifikanter Abfall der Ordnung RF 39 und ein signifikanter Anstieg der
Verrucomicrobiales ermittelt, sodass für diese beiden Ordnungen ein signifikanter
Unterschied zwischen den beiden Gruppen beobachtet werden konnte.
Tabelle 67: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienordnungen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im Kot 24-48 h p.p.
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Die Darstellung der mittleren prozentualen Anteile ausgewählter Bakterienfamilien der
Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im Kot zum Zeitpunkt 24-48 h p.p. erfolgt in der Tabelle
68.
Innerhalb der Ordnung Clostridiales kam es bei den Tieren der Kontrollgruppe in der
Familie der Christensenellaceae zu einem signifikanten Anstieg dieser Familie, während
dieser Anteil in der Versuchsgruppe im Vergleich zur Einstallung marginal weniger wurde.
Diese Veränderungen führten dazu, dass der prozentuale Anteil der Christensenellaceae in
der Rohfasergruppe 1 nach der Geburt signifikant niedriger war als in der entsprechenden
Kontrollgruppe (6,30 ±3,27 % vs. 2,73 ±3,26 %).
In beiden Gruppen sank der prozentuale Anteil der Clostridiaceae zur Geburt hin deutlich
ab, sodass sich keine signifikanten Unterschiede zwischen den Fütterungsgruppen ergaben.
Innerhalb der Familie der Lachnospiraceae konnte in beiden Gruppen ein Anstieg im
Vergleich zur Einstallung festgestellt werden; welcher in der Fasergruppe signifikant war.
Somit waren zum Zeitpunkt nach der Geburt prozentual gesehen signifikant mehr
Lachnospiraceae im Kot der Fasergruppe (8,27 ±2,74 % vs. 13,9 ±2,88 %).
Während der prozentuale Anteil der Ruminococcaceae im Vergleich zur Einstallung in der
Kontrollgruppe signifikant anstieg, fiel dieser Anteil in der Rohfasergruppe leicht ab, was
Ordnung
Kontrollgruppe 1 (n=10)
Rohfaser 1 (n=12)
x s x s
Bacteroidales 20,9a
±4,22 28,6b
±3,72
Clostridiales 53,1a ±6,75 43,4
b ±4,44
Enterobacteriales 3,68a ±1,35 4,95
a ±2,12
Lactobacillales 8,07a ±8,57 10,6
b ±3,28
Ergebnisse
129
eine signifikant höheren Anteil dieser Bakterienfamilie im Kot der Kontrolltiere bewirkte
(23,3 ±7,48 % vs. 13,4 ±3,42 %).
Außerhalb der Ordnung der Clostridiales konnte in der Familie der Lactobacillaceae in
beiden Gruppen ein deutlicher Abfall zur Geburt hin beobachtet werden. Dieser betrug in
der Fasergruppe ca. 4 %, in der Kontrollgruppe hingegen ca. 11 %, sodass der Anteil der
Lactobacillaceae in der Versuchsgruppe zu diesem Zeitpunkt im Vergleich zu den
Kontrolltieren signifikant höher war (7,10 ±8,30 % vs. 10,23 ±3,15 %).
Tabelle 68: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienfamilien der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im Kot 24-48 h p.p.
Familie Kontrollgruppe 1
(n=10) Rohfaser 1
(n=12)
x s x s
Christensenellaceae 6,30a
±3,27 2,73b
±3,26
Clostridiaceae 4,76a
±2,86 3,92a
±4,19
Lachnospiraceae 8,27a ±2,74 13,9
b ±2,88
Ruminococcaceae 23,3a ±7,48 13,4
b ±3,42
Lactobacillaceae 7,10a ±8,30 10,2
b ±3,15 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Anfang der dritten Laktationswoche:
Zu Beginn der dritten Laktationswoche wurden in der prozentualen Verteilung der
Bakterienordnungen keine signifikanten Unterschiede zwischen den beiden
Fütterungsgruppen nachgewiesen (Tabelle 69).
In beiden Gruppen fiel der Anteil Bacteroidales im Vergleich zur Kotprobe p.p. deutlich
ab. Obwohl dieser Abfall in der Fasergruppe statistisch signifikant war, blieb der Anteil
dieser Bakterienordnung im Vergleich zu den Kontrolltieren auf einem tendenziell höheren
Niveau.
Während der prozentuale Anteil Clostridiales in beiden Gruppen leicht anstieg, konnte in
der Ordnung der Enterobacteriales eine signifikante Reduktion im Vergleich zu dem Kot
p.p. beobachtet werden.
Der Anteil der Lactobacillales stieg in der Kontrollgruppe im Vergleich zum Zeitpunkt
nach der Geburt leicht an, hingegen konnte in der Fasergruppe ein geringer Abfall dieser
Ordnung beobachtet werden. Ungeachtet dieser Veränderungen in den jeweiligen Gruppen,
Ergebnisse
130
kamen die Lactobacillales im Kot der Fasergruppe tendenziell häufiger vor (8,94 ±4,22 %
vs. 9,84 ±11,9 %).
In den Bakterieonordnungen RF 39 und Spirochaetales kam es in beiden Gruppen zu einer
Zunahme und in der Ordnung Verromicrobiales zu einer Abnahme der prozentualen
bakteriellen Anteile im Vergleich zum Kot post partum. Zwar waren diese Veränderungen
in der Fasergruppe signifikant, jedoch bewegten sich die Anteile dieser Ordnungen auf
einem insgesamt niedrigen Niveau.
Im Vergleich zu der prozentualen Verteilung der Bakterienordnungen zur Einstallung
konnten innerhalb der Fasergruppe keine signifikanten Unterschiede nachgewiesen werden.
In der Kontrollgruppe zeigte sich zu Beginn der dritten Laktationswoche ein im Vergleich
zur Einstallung signifikant höherer Anteil an Clostridiales und signifikant niedrigere
Anteile von Lactobacillales und Bacteroidales.
Tabelle 69: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienordnungen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im Kot zu Beginn der dritten
Laktationswoche
Ordnung Kontrollgruppe 1
(n=9) Rohfaser 1
(n=11) p-Wert
x s x s
Bacteroidales 16,0 ±6,57 20,9 ±7,37 0,14
Clostridiales 58,2 ±10,2 52,4 ±16,3 0,37
Enterobacteriales 0,02 ±0,06 0,06 ±0,19 0,71
Lactobacillales 8,94 ±4,22 9,84 ±11,9 0,25
Der prozentuale Anteil der wesentlichen Bakterienfamilien der Kontroll- und
Rohfasergruppe 1 zu Beginn der dritten Laktationswoche ist in der Tabelle 70 dargestellt.
Innerhalb der Ordnung der Clostridiales fiel der prozentuale Anteil der Christensenellaceae
in der Kontrollgruppe leicht ab und stieg in der Versuchsgruppe marginal an, sodass der
prozentuale Anteil dieser Familie in beiden Gruppen nahezu identisch war (3,52 ±2,21 %
vs. 3,60 ±2,67 %).
In beiden Fütterungsgruppen konnte ein signifikanter Anstieg der Clostridiaceae im
Vergleich zu den Werten nach der Abferkelung beobachtet werden. Insgesamt war der
Anteil der Clostridiaceae in der Kontrollgruppe zu diesem Zeitpunkt signifikant größer als
in der Versuchsgruppe, jedoch war innerhalb der Versuchsgruppe eine große
Schwankungsbreite zu erkennen (21,5 ±9,08 % vs. 15,2 ±17,7 %).
Ergebnisse
131
In der Familie der Lachnospiraceae fiel der prozentuale Anteil dieser Bakterienpopulation
in beiden Gruppen auf einen vergleichbaren Wert wie zur Einstallung. Diese Abnahme war
in der Versuchsgruppe signifikant (5,29 ±2,63 % vs. 5,86 ±2,32 %).
Durch einen Abfall der prozentualen Anteile der Ruminococcaceae in der Kontroll- und
einen Anstieg dieser Familie in der Versuchsgruppe, wurden auch hier Werte vergleichbar
mit der Ausgangssituation erreicht.
Dies war auch innerhalb der Familie der Lactobacillaceae der Fall, indem dieser Anteil in
der Kontrollgruppe marginal anstieg und in der Versuchsgruppe abfiel.
Insgesamt konnten somit bis auf die Familie der Clostridiaceae zu Beginn der dritten
Laktationswoche keine signifikanten Unterschiede zwischen den Fütterungsgruppen
festgestellt werden.
Bei Vergleich der prozentualen Anteile der verschiedenen Bakterienfamilien zwischen dem
Zeitpunkt des Einstallens und der dritten Laktationswoche wurden in der Versuchsgruppe
keine signifikanten Unterschiede nachgewiesen. Die Kontrollgruppe zeigte im Vergleich
zur Einstallung signifikant niedrigere Anteile an Lactobacillaceae und höhere Anteile an
Clostridiaceae.
Tabelle 70: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienfamilien der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 im Kot zu Beginn der dritten Laktationswoche
Familie Kontrollgruppe 1
(n=9) Rohfaser 1
(n=11) p-Wert
x s x s
Christensenellaceae 3,52 ±2,21 3,60 ±2,67 0,94
Clostridiaceae 21,5a
±9,08 15,2b
±17,7 0,03
Lachnospiraceae 5,29 ±2,63 5,86 ±2,32 0,54
Ruminococcaceae 18,9 ±6,05 17,0 ±5,05 0,45
Lactobacillaceae 8,94 ±4,21 9,77 ±11,9 0,25 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Kontroll- und Rohfasergruppe 2
In den folgenden drei Abbildungen sind die Ergebnisse der Mikrobiombestimmung zu den
drei Zeitpunkten Einstallung, 24-48h post partum und zu Beginn der dritten
Laktationswoche für beide Fütterungsgruppen dargestellt.
Ergebnisse
132
Legende zu den Abbildungen 16, 17, 18: 1 Bacterioidales A Christensenellaceae
2 Enterobacteriales B Clostridiaceae 3 Lactobacillales C Lachnospiraceae
4 RF 39 D Ruminococcaceae
5 Spirochaetales E Others 6 Verrucomicrobiales
7 Others
8 Clostridiales
Abbildung 17: Mittlerer prozentualer Anteil der im Kot enthaltenden Bakterienpopulation auf Ebene
der Bakterienordnung (1-8) sowie der wesentlichen Familien der Ordnung Clostridiales (A-E) in der Kontrollgruppe (n=12) und der Rohfasergruppe 2 (n=11)
im Kot zur Einstallung
Abbildung 18: Mittlerer prozentualer Anteil der im Kot enthaltenden Bakterienpopulation auf Ebene der Bakterienordnung (1-8) sowie der wesentlichen Familien der Ordnung Clostridiales
(A-E) in der Kontrollgruppe (n=12) und der Rohfasergruppe 2 (n=12)
im Kot 24-48 h post partum
Ergebnisse
133
Abbildung 19: Mittlerer prozentualer Anteil der im Kot enthaltenden Bakterienpopulation auf Ebene der Bakterienordnung (1-8) sowie der wesentlichen Familien der Ordnung Clostridiales
(A-E) in der Kontrollgruppe (n=13) und der Rohfasergruppe 2 (n=10)
im Kot zu Beginn der dritten Laktationswoche
Zur Einstallung (d-7):
Zur Einstallung war der prozentuale Anteil der Clostridiales die dominierende
Bakterienordnung und betrug zu diesem Zeitpunkt in beiden Gruppen ca. 50% der
Gesamtbakterienordnungen (Tabelle 71).
Der prozentuale Anteil der Lactobacillales war in der Kontrollgruppe im Vergleich zur
Versuchsgruppe tendenziell höher (20,0 ±12,2 % vs. 16,1 ±9,32 %). Insgesamt konnten
jedoch bis auf die Ordnung der Spirochaetales keine signifikanten Unterschiede zwischen
den beiden Fütterungsgruppen nachgewiesen werden.
Tabelle 71: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienordnungen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im Kot zur Einstallung
Ordnung Kontrollgruppe 2
(n=12) Rohfaser 2
(n=11) p-Wert
x s x s
Bacteroidales 15,8 ±6,68 17,7 ±8,95 0,69
Clostridiales 50,5 ±10,5 49,7 ±9,66 0,84
Enterobacteriales 0,03 ±0,05 0,00 ±0,01 0,28
Lactobacillales 20,0 ±12,2 16,1 ±9,32 0,41
Innerhalb der Ordnung der Clostridiales dominierten in beiden Gruppen die prozentualen
Anteile der Ruminococcaceae und Clostridiaceae (Tabelle 72). In der Ordnung der
Lactobacillales war die Familie der Lactobacillaceae ebenfalls in dieser Größenordnung
vertreten (18,2 ±12,5 % vs. 15,4 ±9,49 %). Mit Ausnahme der Christensenellaceae, welche
Ergebnisse
134
innerhalb der Clostridiales einen sehr kleinen Anteil darstellte, waren zum Zeitpunkt des
Einstallens keine signifikanten Unterschiede in den Bakterienfamilien zwischen den
Gruppen festzustellen.
Tabelle 72: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienfamilien
der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im Kot zur Einstallung
Familie
Kontrollgruppe 2 (n=12)
Rohfaser 2 (n=11)
p-Wert
x s x s
Christensenellaceae 0,98a
±0,72 2,49b
±1,34 0,00
Clostridiaceae 16,0 ±13,9 14,3 ±9,52 0,93
Lachnospiraceae 6,62 ±3,01 5,96 ±1,15 0,50
Ruminococcaceae 17,1 ±7,08 16,1 ±4,05 0,69
Lactobacillaceae 18,2 ±12,5 15,4 ±9,49 0,55 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
24-48 h post partum:
In Tabelle 73 sind die mittleren prozentualen Anteile der wesentlichen Bakterienordnungen
im Kot der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 dargestellt.
In beiden Fütterungsgruppen wurden im Vergleich zur Einstallung höhere Anteile der
Bakterienordnung Bacteroidales festgestellt. Da dieser Anstieg in der Kontrollgruppe ca.
3%, in der Rohfasergruppe 2 jedoch ca. 6% betrug, war der prozentuale Anteil an
Bacteroidales in der Fasergruppe post partum signifikant größer (18,6 ±3,27 % vs. 23,2
±6,70 %).
Während der Anteil der Clostridiales in der Kontrollgruppe leicht anstieg, wurde dieser in
der Rohfasergruppe 2 niedriger, sodass in der Fasergruppe signifikant niedrigere
prozentuale Anteile an Clostridiales nachgewiesen wurden (55,8 ±7,46 % vs. 44,1
±10,3 %).
Die Veränderung innerhalb der Ordnung Lactobacillales zwischen den beiden Zeitpunkten
war der Entwicklung der Clostridiales entgegengesetzt: Im Vergleich zur Einstallung kam
es in der Kontrollgruppe zu einem signifikanten Abfall dieser Bakterienordnung; in der
Fasergruppe hingegen zu einem leichten Anstieg, sodass der prozentuale Anteil der
Lactobacillales in der Rohfasergruppe 24-48 h post partum signifikant höher war (8,23
±5,60 % vs. 19,6 ±8,71 %).
Ergebnisse
135
Sowohl die Ordnung der Enterobacteriales als auch der Verromicrobiales zeigte in beiden
Gruppen signifikant höhere prozentuale Anteile im Kot nach der Abferkelung.
In der Ordnung der Spirochaetales konnte in der Kontrollgruppe im Vergleich zur
Einstallung ein signifikanter Anstieg und in der Fasergruppe ein signifikanter Abfall
beobachtet werden. Somit waren die prozentualen Anteile der Spirochaetales in der
Rohfasergruppe 2 zum Zeitpunkt nach der Abferkelung signifikant niedriger (6,50 ±4,81 %
vs. 2,48 ±1,29 %).
Tabelle 73: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienordnungen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im Kot 24-48 h p.p.
Ordnung
Kontrollgruppe 2 (n=12)
Rohfaser 2 (n=12)
x s x s
Bacteroidales 18,6a ±3,27 23,2
b ±6,70
Clostridiales 55,8a ±7,46 44,1
b ±10,3
Enterobacteriales 2,97a ±0,76 3,66
a ±1,65
Lactobacillales 8,23a ±5,60 19,6
b ±8,71 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
In der Ordnung der Clostridiales konnte auf Ebene der Bakterienfamilien (Tabelle 74) in
beiden Fütterungsgruppen im Vergleich zur Einstallung ein deutlicher Anstieg der
Christensenellaceae beobachtet werden, welcher in der Kontrollgruppe signifikant war.
Waren zum Zeitpunkt des Einstallens noch prozentual gesehen signifikant höhere Anteile
dieser Bakterienfamilie in der Rohfasergruppe, so wurden zum Zeitpunkt nach der Geburt
signifikant weniger im Kot dieser Tiere festgestellt (7,17 ±3,68 % vs. 2,97 ±3,27 %).
Zudem zeigten beiden Gruppen im Kot nach der Abferkelung signifikant weniger
Clostridiaceae als noch zum Zeitpunkt des Einstallens.
Der Anteil der Lachnospiraceae stieg in beiden Gruppen zur Abferkelung hin an. Diese
Zunahme betrug in der Kontrollgruppe ca. 1,5 % und in der Fasergruppe sogar knapp 7 %,
sodass diese Bakterienfamilie in der Fasergruppe signifikant häufiger nachgewiesen wurde
(8,11 ±2,45 % vs. 12,8 ±3,99 %).
Während im Kot der Kontrolltiere der prozentuale Anteil der Ruminococcaceae nach der
Abferkelung im Vergleich zur Einstallung signifikant zunahm, sank dieser Anteil in der
Versuchsgruppe, weshalb in dieser die prozentualen Anteile der Ruminococcaceae zu
diesem Zeitpunkt post partum signifikant niedriger waren (26,2 ±5,80 % vs. 14,6 ±3,83 %).
Ergebnisse
136
In der Familie der Lactobacillaceae waren die Veränderungen zwischen den beiden
Zeitpunkten der Entwicklung der Ruminococcaceae entgegengesetzt. Dies führte zu einem
signifikant höheren Anteil an Lactobacillaceae nach der Geburt in der Fasergruppe (7,74
±5,61 % vs. 19,3 ±8,78 %).
Tabelle 74: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienfamilien
der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im Kot 24-48 h p.p.
Familie Kontrollgruppe 2
(n=12) Rohfaser 2
(n=12)
x s x s
Christensenellaceae 7,17a
±3,68 2,97b
±3,27
Clostridiaceae 3,36a
±1,59 3,91a
±4,55
Lachnospiraceae 8,11a
±2,45 12,8b
±3,99
Ruminococcaceae 26,2a ±5,80 14,6
b ±3,83
Lactobacillaceae 7,74a ±5,61 19,3
b ±8,78 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Zu Beginn der dritten Laktationswoche:
Zu Beginn der dritten Laktationswoche konnten bis auf die Ordnung RF39 keine
signifikanten Unterschiede innerhalb des Mikrobioms zwischen den beiden
Fütterungsgruppen nachgewiesen werden (Tabelle 75).
In beiden Gruppen kam es zu einer Reduktion des prozentualen Anteils der Bacteroidales
und einem Anstieg des Anteils der Clostridiales im Vergleich zur Abferkelung. Diese
Veränderungen waren innerhalb der Rohfasergruppe signifikant.
Während der prozentuale Anteil der Lactobacillales in der Kontrollgruppe im Vergleich zur
Abferkelung leicht anstieg, konnte in der Versuchsgruppe eine signifikante Abnahme dieser
Bakterienordnung beobachtet werden, sodass dieser Anteil in beiden Gruppen zu Beginn
der dritten Laktationswoche knapp 9 % betrug.
Der prozentuale Anteil der Enterobacteriaceae fiel im Vergleich zum Kot post partum in
beiden Gruppen signifikant ab.
In der Ordnung der Spirochaetales konnte in der Kontrollgruppe im Vergleich zur
Abferkelung ein niedrigerer und in der Fasergruppe ein größerer prozentualer Anteil
festgestellt werden.
Bei Vergleich der prozentualen Verteilung der Bakterienordnung mit der zur Einstallung
waren innerhalb der Rohfasergruppe 2 keine signifikanten Unterschiede ersichtlich. Die
Ergebnisse
137
Tiere der Kontrollgruppe zeigten jedoch in der dritten Laktationswoche im Vergleich zur
Einstallung signifikant höhere Anteile an Clostridiales und signifikant niedrigere Anteile an
Lactobacillales.
Tabelle 75: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienordnungen der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im Kot zu Beginn der dritten Laktationswoche
Ordnung Kontrollgruppe 2
(n=13) Rohfaser 2
(n=10) p-Wert
x s x s
Bacteroidales 15,7 ±6,25 13,0 ±7,64 0,35
Clostridiales 59,5 ±12,6 62,6 ±14,5 0,59
Enterobacteriales 0,01 ±0,02 0,03 ±0,06 0,39
Lactobacillales 8,99 ±10,6 8,63 ±7,79 0,98
Zu Beginn der dritten Laktationswoche konnte weder in den Familien der Ordnung
Clostridiales noch in der Familie der Lactobacillaceae signifikante Unterschiede zwischen
den beiden Fütterungsgruppen nachgewiesen werden (Tabelle 76).
In der Familie der Christensenellaceae wurde in der Kontrollgruppe zu diesem Zeitpunkt
im Vergleich zur Abferkelung eine signifikante und in der Versuchsgruppe eine leichte
Abnahme dieser Familie beobachtet.
Der prozentuale Anteil der Clostridiaceae stieg in beiden Gruppen signifikant auf 24,9
±11,8 % in der Kontroll- und 30,3 ±20,5 % in der Fasergruppe an.
Bei den Lachnospiraceae kam es hingegen in beiden Gruppen zu einem signifikanten
Abfall der prozentualen Anteile.
Verglichen mit den Werten zur Abferkelung sank der prozentuale Anteil der
Ruminococcaceae in der Kontrollgruppe signifikant; gleichzeitig stieg dieser in der
Versuchsgruppe leicht an, sodass die Werte in der Laktation in beiden Gruppen nahezu
identisch waren (17,2 ±5,29 % vs. 16,3 ±7,56 %).
Bei den Lactobacillaceae konnte hingegen eine kleine Zunahme in der Kontroll- und eine
signifikante Abnahme in der Versuchsgruppe festgestellt werden, weshalb es auch in dieser
Familie in der Laktation zu ähnlichen Werten kam (8,92 ±10,7 % vs. 8,53 ±7,81 %).
Während in der Rohfasergruppe 2 keine signifikanten Unterschiede in der prozentualen
Verteilung der Bakterienfamilien im Vergleich zum Einstallen auftraten, wurden in der
Kontrollgruppe signifikant größere Anteile an Christensenellaceae und Clostridiaceae und
Ergebnisse
138
signifikant niedrigere Anteile an Lachnospiraceae und Lactobacillaceae zu Beginn der
dritten Laktationswoche nachgewiesen.
Tabelle 76: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Anteils ausgewählter Bakterienfamilien der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 im Kot zu Beginn der dritten Laktationswoche
Familie
Kontrollgruppe 2 (n=13)
Rohfaser 2 (n=10)
p-Wert
x s x s
Christensenellaceae 2,56 ±2,25 2,38 ±1,41 0,98
Clostridiaceae 24,9 ±11,8 30,3 ±20,5 0,44
Lachnospiraceae 4,29 ±1,82 5,28 ±2,19 0,25
Ruminococcaceae 17,2 ±5,29 16,3 ±7,56 0,73
Lactobacillaceae 8,92 ±10,7 8,53 ±7,81 1,00
Rohfaserguppe 1 und Rohfasergruppe 2
Zur Einstallung:
Zur Einstallung konnte bei der Rohfasergruppe 1 ein tendenziell höherer Anteil an
Bacteroidales beobachtet werden (25,4 ±9,95 % vs. 17,7 ±8,95 %). Jedoch waren keine
signifikanten Unterschiede sowohl innerhalb der Bakterienordnungen als auch der
Bakterienfamilien zwischen den beiden Rohfasergruppen ersichtlich.
24-48 h post partum:
Ein Vergleich des Mikrobioms beider Rohfasergruppen 24-48 h nach der Geburt zeigte
einen signifikant höheren prozentualen Anteil der Bakterienordnung Bacteroidales (28,6
±3,72 % vs. 23,2 ±6,70 %) und einen um 9 % reduzierten Anteil der Ordnung
Lactobacillales in der Rohfasergruppe 1 (10,6 ±3,28 % vs. 19,6 ±8,71 %).
Alle anderen untersuchten Bakterienordnungen unterschieden sich nicht signifikant
voneinander.
Innerhalb der Ordnung Clostridiales gab es nach der Geburt keine signifikanten
Unterschiede zwischen den beiden Rohfasergruppen; der prozentuale Anteil der Familie der
Lactobacillaceae war jedoch in der Rohfasergruppe 2 signifikant größer (10,2 ±3,15 % vs.
19,3 ±8,78 %).
Ergebnisse
139
Beginn der dritten Laktationswoche:
Zu Beginn der dritten Laktationswoche wies die Rohfasergruppe 1 signifikant höhere
Prozentwerte der Ordnung der Bacteroidales auf (20,9 ±7,37 % vs. 13,0 ±7,64 %). Alle
anderen Ordnungen unterschieden sich zu diesem Zeitpunkt nicht signifikant voneinander.
Innerhalb der untersuchten Bakterienfamilien konnten keine signifikanten Unterschiede
zwischen den beiden Rohfasergruppen nachgewiesen werden.
Ergebnisse der ad-libitum-Fütterung in der Laktation 4.3
(ab Tag 3 p.p.)
Von der Auswertung ausgenommene Sauen 4.3.1
Aufgrund der hohen Anzahl lebend geborener Ferkel konnte zum Wohle der Ferkel nicht
auf einen Wurfausgleich und einer Bildung von Ammen verzichtet werden. Da außerhalb
der beiden Versuchsabteile nur ein weiteres Abferkelabteil zur Verfügung stand, wurden
auch die an den Versuchen teilnehmenden Sauen bei der Ammenbildung beteiligt. Alle
Sauen, welche demnach als Amme eingesetzt und somit früher als nach der üblichen 5-
wöchigen Säugezeit abgesetzt werden mussten, konnten in der Auswertung der ad-libitum-
Fütterung in der Laktation nicht berücksichtigt werden. Dies betraf eine Anzahl von 7
Sauen. Zudem vestand eine Sau die Funktionsweise des Fütterungsautomaten nicht, sodass
auch diese von den folgenden Auswertungen ausgeschlossen wurde. Somit fanden die
Auswertungen der untersuchten Parameter einer ad-libitum-Fütterung in der Laktation an
einer Gesamtzahl von n=40 Sauen (restriktiv gefütterte Sauen n= 17, ad libitum gefütterte
Sauen n=23) statt.
Allgemeine Daten zu den Sauen 4.3.2
Die mittlere Wurfnummer der restriktiv gefütterten Tiere unterschied sich nicht signifikant
von der der ad libitum gefütterten Gruppe (3,76 ±1,39 vs. 4,00 ±1,45). Auch die mittlere
Laktationslänge zeigte keine signifikanten Differenzen zwischen den beiden Gruppen 33,76
±1,15 Tage vs. 33,78 ±0,95 Tage).
Ergebnisse
140
Futteraufnahme 4.3.3
Eine Übersicht über die mittlere täglich aufgenommene Futtermenge in kg TS über den
gesamten Versuchszeitraum ist in Abbildung 20 dargestellt. Die Futteraufnahme an den
Tagen vor der Geburt wurde bereits getrennt nach Rohfasergruppen mit den jeweiligen
Kontrollgruppen in dem Kapitel 4.2.4 ausführlich beschrieben. Nach der Geburt zeigten die
Tiere der ad-libitum-Fütterung bis zum siebten Tag post partum eine signifikant höhere
Futteraufnahme im Vergleich zu den restriktiv gefütterten Kontrolltieren. Ab der zweiten
Laktationswoche war die täglich aufgenommene Menge an TS in beiden Gruppen bis auf
einzelne Tage nahezu identisch.
Abbildung 20: Mittlere tägliche Futteraufnahme (kg TS) in Abhängigkeit von der Fütterung über den
gesamten Versuchszeitraum; : bis inkl. Tag 7 signifikant unterschiedliche TS-Aufn.
Bei Betrachtung der mittleren täglich aufgenommenen Futtermengen bezogen auf die
Laktationswoche (Tabelle 77) konnte der signifikante Anstieg der Futteraufnahme der ad
libitum gefütterten Tiere in den ersten Tagen nach der Geburt deutlich beobachtet werden.
So war die mittlere TS-Aufnahme der ad-libitum-Gruppe in der ersten Laktationswoche
signifikant und in den folgenden Laktationswochen, bis auf Woche 2, tendenziell höher als
in der Kontrollgruppe. Während in der Kontrollgruppe die zugeteilte Futtermenge im Laufe
der Laktation stufenweise gesteigert wurde, war in der ad-libitum-Gruppe die maximale
Futteraufnahme in der dritten Laktationswoche erreicht und sank in den folgenden Wochen
0,00
2,00
4,00
6,00
8,00
10,00
12,00
-6 -4 -2 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34
Futt
erau
fnah
me
in k
g TS
Tage in Abhängigkeit zum Geburtszeitpunkt
Ad libitum
Restriktiv
Ergebnisse
141
leicht ab. Dabei entsprach die 1. Laktationswoche den für jede Sau individuellen Tagen 1-7
p.p, die folgenden Laktationswochen entsprechend den Tagen 8-14, 15-21, 22-28 und 29
bis zum jeweiligen Tag des Absetzens.
Tabelle 77: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen mittleren Futteraufnahme in
kg TS dargestellt in Laktationswochen getrennt nach Fütterungsgruppen
Zeitraum
Restriktiv (n=17)
Ad libitum (n=23)
x s x s
Woche 1 5,08a
±0,52 5,93b
±0,77
Woche 2 7,15a ±0,62 7,04
a ±0,84
Woche 3 7,32a ±0,59 7,59
a ±0,98
Woche 4 7,31a ±0,50 7,41
a ±1,33
Woche 5 7,36a ±0,47 7,41
a ±1,32 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Durch den schnelleren Anstieg der Futteraufnahme nach der Geburt und der tendenziell
höheren Futteraufnahme der ad libitum gefütterten Gruppe in den einzelnen
Laktationswochen wurde von diesen Tieren in der gesamten Laktation eine höhere mittlere
TS-Aufnahme von 7,02 ±0,81 kg TS/Tag im Vergleich zu der restriktiv gefütterten Gruppe
(6,75 ±0,44 kg TS/Tag) erreicht. Dieser Unterschied konnte jedoch nicht statistisch
abgesichert werden.
Wasserverbrauch 4.3.4
Bei der Berechnung der verbrauchten Wassermengen entsprach die Woche 1 den
Laktationstagen 1-7, Woche 2 den Laktationstagen 8-14, Woche 3 den Laktationstagen 15-
21, Woche 4 den Laktationstagen 22-28 und Woche 5 den Laktationstagen 29-33. Da der
Abferkeltermin nicht bei allen Sauen der exakt gleiche Tag war, stimmte diese Einteilung
(±24 h) für 75,0 % der restriktiv gefütterten Sauen und für 73,9 % der ad libitum gefütterten
Sauen überein.
Insgesamt war der Wasserverbrauch der ad libitum gefütterten Tiere in jeder
Laktationswoche im Vergleich zu den restriktiv gefütterten Sauen tendenziell höher
(Tabelle 78). Zudem stieg die Wasseraufnahme in dieser Gruppe mit steigender
Laktationslänge leicht an, während diese in der Kontrollgruppe ab der 2. Woche nahezu
identisch blieb. Ein Vergleich der mittleren Wasseraufnahme zwischen den beiden
Fütterungsgruppen zeigte keine signifikanten Unterschiede in den untersuchten Zeiträumen.
Ergebnisse
142
Tabelle 78: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen mittleren Wasseraufnahme in l/Sau dargestellt in Laktationswochen getrennt nach Fütterungsgruppen
Zeitraum Restriktiv (n=7 DG)
Ad libitum (n=7 DG)
p-Wert
x s x s
Woche 1 27,4 ±8,79 31,6 ±4,62 0,29
Woche 2 33,3 ±9,35 35,9 ±3,99 0,52
Woche 3 33,2 ±8,90 39,0 ±3,96 0,15
Woche 4 34,6 ±12,2 40,7 ±5,97 0,27
Woche 5 33,4 ±10,3 41,3 ±4,10 0,13
Körpertemperatur 4.3.5
Ein Vergleich der mittleren Körpertemperatur ab dem dritten Tag der Laktation ergab zu
keinem Messzeitpunkt signifikante Unterschiede zwischen den beiden Fütterungsgruppen.
So variierte die mittlere Körpertemperatur der restriktiv gefütterten Tiere zwischen 38,4
±0,20 °C und 38,8 ±0,43°C und die der ad libitum gefütterten Tiere zwischen 38,3 ±0,42 °C
und 38,8 ±0,46 °C
Zusammensetzung der Sauenmilch 4.3.6
Die analysierten Nährstoff- und Lysingehalte sowie der berechnete Energiegehalte der
entnommenen Sammelmilchprobe, welche zu 43,5 % aus Milch der ad libitum gefütterten
Sauen und zu 56,5 % aus Milch der restriktiv gefütterten Sauen bestand, ist in Tabelle 79
dargestellt.
Tabelle 79: Analysierter Nährstoff-, Lysin- und Energiegehalt der Sauenmilch
Sauenmilch
TS
g/kg uS
189
Rfe 70,3
Rp 64,7
Lysin 4,47
Energie* MJ/kg uS 5,30
* berechnet siehe Kapitel 3.8.2
Leistungsparameter der Sauen 4.3.7
Die Sauen der restriktiv gefütterten Kontrollgruppe wiesen im Vergleich zu der ad-libitum-
Gruppe sowohl zum Zeitpunkt des Wurfausgleiches (WAG) als auch des Absetzens eine
tendenziell größere Anzahl an Ferkeln auf (Tabelle 80). Diese Unterschiede waren nicht
statistisch signifikant.
Ergebnisse
143
Tabelle 80: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der Anzahl der Ferkel nach WAG, zum Absetzen sowie Verluste nach WAG beider Fütterungsgruppen
Restriktiv
(n=17) Ad libitum
(n=23) p-Wert
x s x s
Ferkel nach WAG 13,4 ±1,11 13,0 ±1,60 0,57
abgesetzte Ferkel 12,2 ±2,53 11,9 ±1,90 0,42
Verluste nach WAG -1,18 ±1,78 -1,13 ±1,10 0,53
Milchleistung
Auch ein Vergleich der mittleren täglichen Milchleistung der Sauen zeigte in der gesamten
Laktation und in den einzelnen Laktationswochen keine signifikanten Differenzen
zwischen den beiden Fütterungsgruppen (Tabelle 81). Während in den ersten drei
Laktationswochen in der restriktiv gefütterten Gruppe geringfügig höhere Milchleistungen
beobachtet werden konnten, war dies in der vierten und fünften Laktationswoche in der ad
libitum gefütterten Gruppe der Fall. Die maximale mittlere Milchleistung wurde in der
Kontrollgruppe in der dritten und in der ad-libitum-Gruppe in der vierten Laktationswoche
erreicht, danach sank die mittlere Milchleistung in beiden Gruppen wieder ab.
Tabelle 81: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der mittleren täglichen Milchleistung (kg)
der Fütterungsgruppen in der Laktation und in Laktationswochen
Restriktiv
(n=17) Ad libitum
(n=23) p-Wert
x s x s
Gesamte Laktation 12,5 ±2,34 12,5 ±1,90 0,93
Woche 1 9,27 ±2,42 8,52 ±2,09 0,30
Woche 2 12,9 ±3,02 12,5 ±2,27 0,64
Woche 3 14,0 ±3,05 13,6 ±2,47 0,69
Woche 4 13,8 ±2,44 13,9 ±2,07 0,88
Woche 5 13,2 ±2,54 13,7 ±3,11 0,56
Wurfzuwachs
In beiden Gruppen wurde ein kontinuierlich steigender mittlerer täglicher Wurfzuwachs
festgestellt (Tabelle 85 und Tabelle 82). Analog zu der Milchleistung war dieser in den
ersten drei Laktationswochen in der Kontrollgruppe und in den letzten beiden
Laktationswochen in der Versuchsgruppe tendenziell größer. Diese Unterschiede waren
jedoch statistisch nicht abzusichern.
Ergebnisse
144
Tabelle 82: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren täglichen Wurfzuwachses (kg) der Fütterungsgruppen in der Laktation und in Laktationswochen
Restriktiv
(n=17) Ad libitum
(n=23) p-Wert
x s x s
Gesamte Laktation 3,32 ±0,64 3,25 ±0,42 0,53
Woche 1 2,50 ±0,59 2,30 ±0,49 0,25
Woche 2 3,42 ±0,80 3,31 ±0,51 0,63
Woche 3 3,46 ±0,75 3,38 ±0,58 0,70
Woche 4 3,53 ±0,64 3,56 ±0,48 0,89
Woche 5 3,69 ±0,79 3,73 ±0,72 0,88
Wird der mittlere tägliche Wurfzuwachs weiter differenziert in Zuwachs aufgrund von
Milchaufnahme (Tabelle 83) bzw. Zuwachs aufgrund von Beifutteraufnahme (Tabelle 84),
so lassen sich auch hier keine signifikanten Unterschiede zwischen den beiden
Fütterungsgruppen erkennen. Auffällig ist dennoch die Tatsache, dass der tendenziell
höhere Wurfzuwachs der Ferkel der Kontrollgruppe allein durch die höhere Milchaufnahme
der Ferkel zustande kam; der Wurfzuwachs aufgrund von Beifutteraufnahme war in beiden
Gruppen bis zur 5. Laktationswoche nahezu identisch. Erst ab der 4. Laktationswoche war
der mittlere Wurzuwachs aufgrund von Milchaufnahme in der ad libitum gefütterten
Gruppe größer; in der 5. Woche nahmen die Ferkel dieser Gruppe weniger Gewicht durch
die Beifutteraufnahme im Vergleich zu den Ferkeln der Kontrollsauen zu.
Tabelle 83: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren täglichen Wurfzuwachses (kg)
aufgrund von Milchaufnahme
Restriktiv (n=17)
Ad libitum (n=23)
p-Wert
x s x s
Gesamte Laktation 3,05 ±0,57 3,04 ±0,46 0,93
Woche 1 2,26 ±0,59 2,08 ±0,51 0,30
Woche 2 3,14 ±0,74 3,05 ±0,55 0,64
Woche 3 3,40 ±0,74 3,32 ±0,60 0,69
Woche 4 3,38 ±0,60 3,40 ±0,50 0,88
Woche 5 3,22 ±0,62 3,35 ±0,76 0,56
Ergebnisse
145
Tabelle 84: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren täglichen Wurfzuwachses (kg) aufgrund von Beifutteraufnahme
Restriktiv
(n=17) Ad libitum
(n=23) p-Wert
x s x s
Gesamte Laktation 0,23 ±0,12 0,21 ±0,11 0,51
Woche 1 0,23 ±0,11 0,22 ±0,10 0,58
Woche 2 0,28 ±0,12 0,28 ±0,15 0,64
Woche 3 0,06 ±0,04 0,06 ±0,06 0,68
Woche 4 0,15 ±0,15 0,15 ±0,14 1,00
Woche 5 0,47 ±0,31 0,38 ±0,28 0,26
Bei Betrachtung des mittleren täglichen Zuwachs der einzelnen Ferkel (Tabelle 85) konnte
ein stetiger Anstieg über die gesamte Laktationsperiode festgestellt werden. Dabei waren
die täglichen Zunahmen der einzelnen Ferkel ähnlich wie beim gesamten Wurfzuwachs in
den ersten drei Laktationswochen in der Kontroll- und in den letzten beiden
Laktationswochen in der ad libitum gefütterten Gruppe tendenziell größer. Insgesamt
konnten in keinem Zeitraum signifikante Unterschiede zwischen den beiden
Fütterungsgruppen festgestellt werden.
Tabelle 85: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren täglichen Zuwachses pro Ferkel (g) der Fütterungsgruppen in der Laktation und in Laktationswochen
Restriktiv
(n=17) Ad libitum
(n=23) p-Wert
x s x s
Gesamte Laktation 269 ±25,4 269 ±33,6 0,96
Woche 1 193 ±40,7 178 ±23,7 0,17
Woche 2 275 ±31,5 272 ±35,5 0,74
Woche 3 288 ±44,1 283 ±48,5 0,74
Woche 4 295 ±40,6 304 ±55,8 0,55
Woche 5 306 ±37,4 317 ±59,0 0,50
Beifutteraufnahme der Ferkel 4.3.8
Die Beifutteraufnahme der Ferkel wurde täglich auf Wurfebene bestimmt. Während in der
ersten Lebenswoche ausschließlich Ferkeljoghurt angeboten wurde, bekamen die Ferkel ab
der zweiten Lebenswoche Zugang zu einem ad-libitum-Angebot an Prestarter. In beiden
Gruppen konnte ein Anstieg des Prestarterverbrauches pro Wurf im Laufe der
Laktationsperiode beobachtet werden (Tabelle 86). Hierbei variierten die von den einzelnen
Ergebnisse
146
Würfen aufgenommenen Mengen an Prestarter erheblich. Insgesamt konnten keine
statistisch signifikanten Unterschiede in der Menge des aufgenommenen Prestarters auf
Wurfebene zwischen den beiden Fütterungsgruppen nachgewiesen werden.
Tabelle 86: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen Beifutteraufnahme in g TS /
Wurf beider Fütterungsgruppen insgesamt sowie in den einzelnen Laktationswochen
Zeitraum
Restriktiv (n=17)
Ad libitum (n=23)
p-Wert
x s x s
Insgesamt 273
±142 247
±131 0,49
Prestarter Insg. 204 ±133 169
±113 0,21
Prestarter Woche 2 28,7 ±12,1 24,0 ±13,1 0,29
Prestarter Woche 3 55,6 ±36,2 54,8 ±54,9 0,48
Prestarter Woche 4 190 ±181 161 ±130 0,83
Prestarter Woche 5 582 ±384 461 ±348 0,25
Körpermasseentwicklung der Ferkel 4.3.9
Die Entwicklung der Körpermasse der Ferkel beider Fütterungsgruppen zu den
wöchentlichen Wiegezeitpunkten ist in Tabelle 87 dargestellt. Dabei wurden nur die Ferkel
berücksichtigt, welche die komplette Säugezeit überlebten. Dies waren in der restriktiv
gefütterten Gruppe n=12,2 ±2,53 Ferkel und in der ad libitum gefütterten Gruppe n=11,9
±1,90 Ferkel. Wurden Ferkel zum Wurfausgleich einer Sau zugesetzt, so wurde mit dem
bei der ursprünglichen Muttersau ermittelten Gewicht 24 h p.p. kalkuliert.
24 h nach der Geburt sowie eine Woche später waren die Ferkel der ad-libitum-
Fütterungsgruppe im Vergleich zu den Ferkeln der restriktiv gefütterten Kontrollgruppe
signifikant leichter. Nach diesem Zeitpunkt nahmen die Ferkel beider Gruppen ca.
2 kg/Woche zu. Zwar waren die Ferkel der ad-libitum-Gruppe bis zum Ende der
Säugeperiode tendenziell leichter, jedoch waren diese Differenzen nicht mehr statistisch
signifikant.
Ergebnisse
147
Tabelle 87: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der Körpergewichte (kg) der überlebenden Ferkel der Sauen beider Fütterungsgruppen zu den wöchentlichen Wiegezeitpunkten
Zeitpunkt1
Restriktiv (n=17)
Ad libitum (n=23)
x s x s
24 h p.p. 1,49a
±0,17 1,36b
±0,14
Tag 7
2,85a
±0,40 2,63b
±0,26
Tag 14
4,80a
±0,52 4,57a
±0,40
Tag 21
6,81a ±0,68 6,58
a ±0,64
Tag 28
8,88a ±0,85 8,71
a ±0,93
Tag 34 (Absetzen) 10,7
a ±0,92 10,6a ±1,17
korrigiertes Absetzgewicht
2 11,1a ±0,99 11,0
a ±1,28
1Tage ±24h: 76,5 % der Ferkel der Kontroll- und 73,9 % der Ferkel der ad-libitum-Gruppe 2Gewicht auf 35 Säugetage korrigiert
a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Bei Vergleich der Variationskoeffizienten (VK) innerhalb der einzelnen Würfe beider
Fütterungsgruppen konnte zu allen Wiegezeitpunkten eine größere Schwankungsbreite der
Ferkelgewichte in Würfen der ad-libitum-Fütterungsgruppe beobachtet werden (Tabelle
88). Die Ferkelgewichte innerhalb eines Wurfes variierten an Tag 7 und 14 in der ad
libitum gefütterten Gruppe signifikant stärker als in den Würfen der Kontrollgruppe.
Tabelle 88: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der Variationskoeffizienten (VK) der Ferkelgewichte beider Fütterungsgruppen zu den wöchentlichen Wiegezeitpunkten
Zeitpunkt1
Restriktiv (n=17)
Ad libitum (n=23)
x s x s
VK_24 h p.p. 17,5a ±5,33 19,8
a ±4,12
VK-Tag 7
17,3a ±5,53 22,0
b ±6,06
VK-Tag 14
17,2a
±5,91 22,1b
±6,71
VK-Tag 21
17,8a
±5,74 21,8a
±6,85
VK-Tag 28
17,3a
±5,42 20,6a
±6,12
VK-Tag 34
(Absetzen) 17,1
a ±5,03 19,4
a ±5,33
1Tage ±24h: 76,5 % der Ferkel der Kontroll- und 73,9 % der Ferkel der ad-libitum-Gruppe a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Ergebnisse
148
Körpermasseentwicklung der Sauen 4.3.10
4.3.10.1 Körpergewicht
Zur Einstallung sowie zu verschiedenen Zeitpunkten der Laktation wurde das
Körpergewicht aller Sauen erhoben; wobei 2 Wochen nach der Geburt das Körpergewicht
nur stichprobenweise von einigen Tieren beider Gruppen erfasst wurde. Die Sauen der ad-
libitum-Gruppe wiesen zur Einstallung ein tendenziell höheres Gewicht im Vergleich zur
restriktiv gefütterten Kontrollgruppe auf (Tabelle 89). Bis zur zweiten Woche verloren die
Sauen beider Fütterungsgruppen gleichermaßen an Gewicht. Dennoch konnte zum
Zeitpunkt des Absetzens nach 5-wöchiger Säugezeit ein signifikant geringeres
Körpergewicht bei den restriktiv gefütterten Sauen beobachtet werden. Auch die Differenz
des mittleren Körpergewichts zwischen dem Zeitpunkt der Ein- und Ausstallung war in der
Kontrollgruppe im Vergleich zu der ad-libitum-Gruppe signifikant höher. Der
Körpermasseverlust zwischen dem Zeitpunkt 24 h nach der Geburt und dem Ausstallen der
Tiere unterschied sich in beiden Fütterungsgruppen nicht signifikant voneinander.
Tabelle 89: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der Körpergewichte (kg) der Sauen beider Fütterungsgruppen im Laufe der Laktation
Restriktiv Ad libitum p-Wert
n x s n x s
Einstallung 17 279a ±36,3 23 288
a ±27,8 0,35
Tag 1 p.p. 17 263a
±32,9 23 281a
±33,4 0,09
Tag 14 p.p. 10 261a
±31,8 14 272a
±32,5 0,44
Absetzen 17 240a
±31,9 23 261b
±35,0 0,05
Diff_Lac 17 -23,4a
±12,5 23 -19,7a
±11,9 0,35
Diff_Gesamt 17 -39,1a ±15,5 23 -26,8
b ±13,2 0,01 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
4.3.10.2 Rückenspeckdicke (RSD)
Von Tag 1 bis zum Tag des Absetzens konnte in beiden Gruppen ein kontinuierlicher
Abfall der RSD festgestellt werden, welcher insbesondere zwischen der zweiten
Laktationswoche und dem Zeitpunkt des Absetzens am größten war (Tabelle 90). Zwischen
den Gruppen wurden zu keinem Messzeitpunkt statistisch signifikante Unterschiede der
mittleren RSD beobachtet, jedoch verloren die Sauen der ad-libitum-Fütterungsgruppen in
Ergebnisse
149
der Zeit zwischen Ein- und Ausstallung signifikant weniger Rückenspeck als die restriktiv
gefütterte Kontrollgruppe.
Tabelle 90: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der mittleren RSD (mm) der Sauen beider Fütterungsgruppen im Laufe der Laktation
Restriktiv (n=17)
Ad libitum (n=23)
p-Wert
x s x s
Einstallung 16,9 ±3,24 17,1 ±4,21 0,90
Tag 1 p.p. 16,4 ±3,36 17,6 ±4,38 0,36
Tag 14 p.p. 15,4 ±3,12 16,8 ±3,85 0,21
Absetzen 12,9
±3,29 14,5
±3,33 0,12
Diff_Lac -3,59 ±1,84 -3,09 ±1,98 0,42
Diff_Gesamt -4,04a ±1,74 -2,52
b ±2,04 0,02 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
4.3.10.3 Body Condition Score (BCS)
Die Sauen der ad-libitum-Gruppe wiesen zum Zeitpunkt des Einstallens in den
Abferkelstall einen tendenziell höheren mittleren BCS im Vergleich zu den Kontrollsauen
auf (Tabelle 91); dieser Unterschied war statistisch nicht signifikant. Nach Ablauf der 5-
wöchigen Säugezeit konnte ein signifikant niedrigerer BCS bei den restriktiv gefütterten
Sauen beobachtet werden.
Tabelle 91: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren BCS der Sauen beider Fütterungsgruppen im Laufe der Laktation
Restriktiv
(n=17) Ad libitum
(n=23) p-Wert
x s x s
Einstallung 3,81 ±0,53 3,89 ±0,40 0,99
Ausstallung 2,62a
±0,50 3,05b
±0,58 0,02 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
4.3.10.4 Schulterscore
Zur Einstallung sowie zu Beginn jeder Laktationswoche wurden die Schultern aller Sauen
bonitiert. Dabei wurden die Schultern der jeweiligen Sauen ab einem Scorewerte von ≥ 2
als beschädigt bezeichnet. Zur Einstallung in den Abferkelstall als auch zu Beginn der
ersten Laktationswoche konnte bei keinem Tier eine Schulterläsion festgestellt werden
(Tabelle 92). Im Laufe der weiteren Laktation stieg auch die Anzahl an Schulterläsionen in
Ergebnisse
150
beiden Gruppen an, war jedoch zwischen den Gruppen zu keinem Zeitpunkt signifikant
unterschiedlich.
Tabelle 92: Anzahl an Sauen mit Schulterläsionen (Score ≥2) dargestellt in Laktationswochen getrennt nach Fütterungsgruppen
Restriktiv (n=17)
Ad libitum (n=23)
p-Wert
n % n %
Einstallung 0 0,00 0 0,00
Woche 1 0 0,00 0 0,00
Woche 2 1 5,88 1 4,35 1,00
Woche 3 2 11,8 1 4,35 0,56
Woche 4 1 5,88 2 8,70 1,00
Woche 5 3 17,7 3 13,0 1,00
4.3.10.5 Korrelation der Körpermasseentwicklung der Sauen mit der Milchleistung
Es konnte eine hoch signifikant negative Korrelation der Körpermassenentwicklung der
Sauen mit der mittleren Milchleistung nachgewiesen werden. So hatten die Sauen mit den
größten Körpermasseverlusten auch die höchste Milchleistung. Der Pearsonsche
Korrelationskoeffizient betrug für die Gewichtsdifferenz zwischen Ein- und Ausstallung
-0,47 (p=0,00); für die Gewichtsdifferenz in der Laktation -0,60 (p<0,001) sowie für die
Differenz der RSD zwischen Ein- und Ausstallung -0,52 (p=0,00) und für die RSD-
Differenz in der Laktation -0,48 (p=0,00).
Leistungsdaten der Sauen im Folgewurf 4.3.11
Nach Abschluss der eigentlichen Versuchsphase wurde das Absetz-Beleg-Intervall und in
der auf den Versuch folgenden Abferkelung die Anzahl der insgesamt, lebend, tot und
mumifiziert geborenen Ferkel erfasst. Da jeweils drei Sauen der restriktiv und zwei Sauen
der ad libitum gefütterten Gruppe unmittelbar nach Versuchsende geschlachtet wurden,
reduzierte sich die Anzahl belegter Sauen in beiden Gruppen. Eine Sau der ehemaligen ad-
libitum-Fütterungsgruppen ferkelte eine Woche zu früh und eine Sau der ehemaligen
restriktiven Gruppe wurde nach der Belegung euthanasiert. Somit konnten diese Sauen in
der Auswertung der Daten zur folgenden Abferkelung nicht berücksichtigt werden.
Ergebnisse
151
Das Absetz-Beleg-Intervall der Sauen nach Ausstallung aus dem Abferkelstall war bei den
Sauen der ad-libitum-Fütterungsgruppe tendenziell niedriger im Vergleich zu den restriktiv
gefütterten Sauen (Tabelle 93). Dieser Unterschied war jedoch statistisch nicht signifikant.
Da eine Sau der Kontrollgruppe erst nach 28 Tagen Rauschesymptome zeigte, wurde die
Schwankung des Absetz-Beleg-Intervalls innerhalb dieser Gruppe sehr hoch. Doch auch
ohne Berücksichtigung dieser Sau war das Absetz-Beleg-Intervall der ad libitum gefütterten
Sauen um in etwa einen Tag verkürzt.
Zwar stieg die Anzahl der geborenen Ferkel im Vergleich zum vorangegangenen Wurf in
beiden Gruppen deutlich an, jedoch war dieser Anstieg in der ad libitum gefütterten Gruppe
um ca. 1 Ferkel größer, sodass sich die Anzahl geborener Ferkel im Folgewurf signifikant
unterschied. Während die Anzahl lebend geborener Ferkel in der restriktiv gefütterten
Gruppe im Vergleich zum vorausgegangenen Wurf nahezu konstant ca. 15,5 Ferkel betrug,
konnte eine um 2 Ferkel höhere Anzahl lebend geborener Ferkel in der ad libitum
gefütterten Gruppe beobachtet werden. Somit wiesen die Sauen der ad-libitum-
Fütterungsgruppe im Folgewurf eine signifikant höhere Anzahl an insgesamt geborenen
und lebend geborenen Ferkeln auf. Die Anzahl totgeborener Ferkel in dieser Gruppe war
zwar ebenfalls geringgradig höher, jedoch nicht statistisch signifikant unterschiedlich.
Tabelle 93: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des Absetz-Östrusintervalls (Tagen) und der Anzahl insgesamt geborener sowie lebend, tot und mumifiziert geborener Ferkel der Sauen beider Fütterungsgruppen in der auf dem Versuch folgenden Abferkelung
Restriktiv Ad libitum
n x s n x s
Absetz-Beleg-Intervall 14 7,79*a ±8,17 21 5,19a ±3,57
geb. Ferkel 13 18,2a ±4,36 20 21,1
b ±3,39
geb. Ferkel v. W.1 16 16,8
a ±4,22 23 18,8a ±4,78
leb. geb. Ferkel 13 15,6a ±3,48 20 18,2
b ±3,07
leb. geb. Ferkel v. W. 16 15,4a
±3,22 23 16,7a
±3,50
tot geb. Ferkel 13 1,77a
±2,17 20 2,20a
±1,54
tot geb. Ferkel v. W. 16 0,81a
±1,11 23 0,91a
±1,08
Mumien 13 0,85a ±1,68 20 0,70
a ±0,86 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
*ohne die Sau mit den 28 Tagen bis zur Rausche: 6,23 ±5,97 Tage 1v.W.: vorausgegangener Wurf
Diskussion
152
Diskussion 5
Eine adäquate Versorgung hochleistender Sauen mit Energie und Nährstoffen stellt eine
anspruchsvolle Aufgabe aus Sicht der Tierernährung dar. In der Versorgung von Sauen im
geburtsnahen Zeitraum gilt seit Jahren eine restriktive Fütterung als Standard (JEROCH et
al. 1999). Dennoch sollen die Sauen bei steigender Milchleistung eine maximale
Futteraufnahme in der Laktation erreichen, um möglichst wenig an Körpermasse zu
verlieren (KIRCHGEßNER 2011; KAMPHUES et al. 2014). In den vorliegenden
Untersuchungen wurde diese Problemstellung an konventionell gehaltenen Sauen
untersucht, denen im Abferkelstall zusätzlich zu dem restriktiv angebotenen
Laktationsfutter im peripartalen Zeitraum (Tag -7 bis Tag 2 p.p.) jeweils zwei leicht
unterschiedliche rohfaserreiche Mischfutter und in der weiteren Laktation (ab Tag 3)
konventionelles Laktationsfutter ad libitum zur Verfügung gestellt wurde. Die gewonnenen
Erkenntnisse aus diesen Untersuchungen sollen dazu beitragen, Empfehlungen im Hinblick
auf eine optimale Fütterungsstrategie von hochfruchtbaren Sauenlinien unter
Berücksichtigung der Darm- und Tiergesundheit von Sauen und Ferkeln geben zu können.
Kritik der Methode 5.1
Tiere und Haltung 5.1.1
Während der Versuchsphase wurde zur besseren Durchführung eines Wurfausgleiches und
somit zur Senkung der perinatalen Saugferkelverluste eine Geburtseinleitung der Sauen am
115. Trächtigkeitstag durchgeführt. Wenn nicht schon bereits im Rahmen der
Geburtseinleitung geschehen, wurden den Sauen nach der Geburt des ersten Ferkels zudem
70 μg Carbetocin (Depotocin®, Veyx-Pharma GmbH, Schwarzenborn) intramuskulär zur
Unterstützung der Wehentätigkeit appliziert. Dies betraf in der Kontroll- und
Rohfasergruppe 1 insgesamt 77,8 % bzw. 91,7 % und in der Kontroll- und
Rohfasergruppe 2 61,5 % bzw. 66,7 % der Tiere.
Da das synthetische Oxytocinanalogon Carbetocin zu einer Förderung der
Uteruskontraktionen führt (CORT et al. 1979), kann nicht ausgeschlossen werden, dass
durch den Einsatz diese Präparates die Geburtslänge und das Geburtsintervall in dieser
Studie beeinflusst worden sein könnte. Andererseits wurde in den letzten Jahren von
Diskussion
153
unterschiedlichen Effekten des Carbetocins in der genannten Dosierung im Hinblick auf
eine Beeinflussung des Geburtsvorganges berichtet: So war in einer Studie von ZAREMBA
et al. (2015) lediglich die gesamte Geburtsdauer verkürzt, das Geburtsintervall zwischen
den einzelnen Ferkel jedoch unbeeinflusst. HÜHN et al. (2004) wiederrum konnten keinen
Unterschied in der gesamten Geburtsdauer, wohl aber im zeitlichen Abstand zwischen der
Geburt der Ferkeln feststellen. STRAMPRAAD (2015) hingegen beobachtete weder einen
Effekt des Carbetocins auf die gesamte Geburtsdauer, noch auf das Geburtsintervall
zwischen 2 Ferkeln.
Trotz der Geburtseinleitung am 115. Trächtigkeitstag variierten der Geburtstermin und
somit auch die anschließende Laktationsperiode zwischen den einzelnen Sauen um wenige
Tage (zwischen 33 und 37 Tage Säugezeit). Eine Sau der Kontrollgruppe ferkelte bereits
4 Tage vor dem errechneten Geburtstermin, sodass der geplante Probeentnahmezeitpunkt
am Tag -2 entfallen musste.
Wöchentlich durchgeführte Untersuchungen fanden jeweils an festen Wochentagen statt.
Aus diesem Grund bestand in der Woche nach der Geburt ein unterschiedlich langer
zeitlicher Abstand zwischen der Geburt und den Messungen (insbesondere der zweiten
Wiegung der Ferkel). Durch Division der ermittelten Körpergewichte der Ferkel mit der
Anzahl der Tage der jeweiligen Laktationswoche wurde den unterschiedlich langen
Zeiträumen der ersten Laktationswoche bei der Ermittlung der Ferkelzunahmen pro Tag
Rechnung getragen.
Aufgrund der hohen Anzahl lebend geborener Ferkel konnte auf einen Wurfausgleich und
einer Bildung von Ammen aus Gründen des Tierschutzes nicht verzichtet werden. Da die
Sauen in einem 2-wöchigen Rhythmus abferkelten und eine Säugezeit von 5 Wochen
eingehalten wurde, konnten die in den Versuchen einbezogenen Sauen nicht von der
Ammenbildung ausgeschlossen werden. Hierzu wurden die schwersten Ferkel eines
jeweiligen Wurfes von der Muttersau an eine andere Sau versetzt, deren Ferkel bereits
früher als nach der 5-wöchigen Säugezeit abgesetzt worden waren. Dadurch, dass ein
Großteil der Ferkel bei der eigenen Mutter verblieb und nicht alle Ferkel dem Gewicht nach
aufgeteilt wurden, wurde nach dem Wurfausgleich kein einheitliches Durchschnittsgewicht
der verbliebenen Ferkel eines Wurfes erreicht, was – aufgrund der höheren Anzahl
Diskussion
154
geborener Ferkel in der ad-libitum-Gruppe – zu einem signifikant geringeren mittleren
Körpergewicht der Ferkel in dieser Gruppe nach Wurfausgleich führte (vgl. Kapitel 4.3.9).
Vor dem Hintergrund, dass das Geburtsgewicht den größten Einfluss auf die
Überlebensrate der Ferkel ausübt (MILLIGAN et al. 2002; MUNS et al. 2016) und zudem
leichte Ferkel niedrigere Tageszunahmen und deswegen geringere Gewichte zum Zeitpunkt
des Absetzens aufweisen (GONDRET et al. 2005; ANDERSEN et al. 2011), könnte dieser
Umstand zu einem Nachteil im Hinblick auf die Ferkelentwicklung für die ad libitum
gefütterte Gruppe geführt haben.
Die Durchführung der Versuche fand in zwei baugleichen Abferkelabteilen im
Schweinestall des Lehr- und Forschungsguts Ruthe der Stiftung Tierärztliche Hochschule
Hannover über einen Zeitraum von 7 Monaten statt. Obwohl eine alternierende Reihenfolge
in der Aufstallung der Sauen der jeweiligen Versuchsgruppen gewählt wurde, waren die
Tiere der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 mehr Hitzetagen ausgesetzt als die Tiere der
Kontroll- und Versuchsgruppe 2 (vgl. Kapitel 4.2.2). Insbesondere vor dem Hintergrund,
dass sowohl die Futteraufnahme der Sauen sowie die Milchleistung und die Zunahmen der
Ferkel ab einer Temperatur oberhalb von 25 °C deutlich reduziert werden (QUINIOU u.
NOBLET 1999; RENAUDEAU u. NOBLET 2001), ist davon auszugehen, dass die
Versuchsbedingungen in den Durchgängen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 als
ungünstiger im Hinblick auf die Sauen- und Ferkelentwicklung zu bewerten sind.
Futtermittel und Fütterung 5.1.2
Beurteilung der botanischen Zusammensetzung der Rohfaserpellets
Für die Durchführung dieser Versuche sollte ein einfach zusammengesetztes und
praxistaugliches Rohfaserpellet mit wenigen Komponenten hergestellt werden. Als
Hauptkomponenten wurden Gerste als rohfaserreiches Getreidekorn und
druckhydrothermisch aufgeschlossene Sojabohnenschalen, welche sich nicht nur durch
einen hohen Rohfasergehalt, sondern auch durch eine hohe Fermentierbarkeit sowie Quell-
und Wasserbindevermögen auszeichnen (DE LEEUW et al. 2008), gewählt. Zudem wurde
für eine bessere Akzeptanz des Rohfaserpellets kleine Mengen an Melasse und Viehsalz
zugesetzt. Da bereits aus anderen Studien bekannt war, dass hoch fermentierbare
Rohfaserträger zu einem weichen und mitunter auch klebrigen Kot führen können
Diskussion
155
(STEFFENS 2005; WARZECHA 2006), wurden dem Rohfaserpellet 2 20 %
Haferschälkleie zugesetzt. Um einen vergleichbaren Proteingehalt im Vergleich zum
Rohfaserpellet 1 zu erhalten, wurden zudem 4 % Sojaextraktionsschrot zugefügt.
Beurteilung der chemischen Zusammensetzung der Futtermittel anhand der
Futtermittelanalyse
Über die gesamte Versuchsphase wurde dasselbe kommerziell erhältliche Laktationsfutter
von einem einzigen Futtermittellieferanten verwendet. Zu jeder Anlieferung einer neuen
Charge wurde eine Probe als Rückstellmuster für Futtermittelanalysen entnommen. Bis auf
einen leicht höheren Calciumgehalt im Laktationsfutter entsprach der Energie- und die
Nährstoffgehalte den Empfehlungen aus KAMPHUES et al. (2014) (Tabelle 94).
Tabelle 94: Vergleich der Energie- und Nährstoffgehalte des eingesetzten Laktationsfutters mit den Richtwerten im AF für Sauen (Angaben in kg uS) nach KAMPHUES et al. (2014)
Laktationsfutter Richtwerte
ME MJ 13,1 > 13
Rp g 169 150 – 190
Lysin g 10,1 9 – 10
Rfa g 43,1 max. 60
Ca g 9,77 7 – 8
P g 5,90 6
Sojabohnenschalen weisen im Vergleich zur Haferschälkleie einen höheren Rohfasergehalt
auf (DLG 2014). Aus diesem Grund führte der Austausch von knapp 25 %
Sojabohnenschalen durch 20 % Haferschälkleie zu einem etwas niedrigeren Rohfasergehalt
im Rohfaserpellet 2. Laut den aktuellen DLG-Futterwerttabellen sollten sich die ADF-
Gehalte von Haferschälkleie und Sojabohnenschalen nur marginal unterscheiden. Dennoch
konnte in dem Rohfaserpellet 1 ein leicht höherer ADF-Gehalt festgestellt werden (253 g
ADF/kg TS vs. 230 g ADF/kg TS). Bei Vergleich der deklarierten Inhaltstoffe der
fermentierten Sojabohnenschalen mit „normalen“ Sojabohnenschalen, fielen neben nahezu
identischen Werten der Inhaltsstoffe, ein deutlich höherer ADF-Gehalt in diesem Produkt
auf (450 g ADF/kg TS im Vergleich zu den herkömmlichen Sojabohnenschalen mit 400 g
ADF/kg TS) (DLG 2014). Dies könnte eine mögliche Erklärung für den geringgradig
höheren ADF-Gehalt im Rohfaserpellet 1 darstellen. Da Sojabohnenschalen jedoch im
Vergleich zu Haferschälkleie einen höheren Energiegehalt aufweisen (DLG 2014), war der
Diskussion
156
Energiegehalt beider Rohfaserpellets – trotz des geringeren Rfa und ADF-Gehaltes im
Rohfaserpellet 2 – wiederrum in beiden Rohfaserpellets nahezu identisch.
Der analysierte Rohfettgehalt des Ferkeljoghurts betrug 210 g/kg TS und überstieg somit
3,5-fach den oberen angegebenen Grenzwert zur Anwendung der üblich verwendeten
Schätzformel zum Energiegehalt von Mischfuttermitteln (≤60 g/kg TS) (GFE 2008). Aus
diesem Grund erfolgte die Berechnung des Energiegehaltes des eingesetzten Ferkeljoghurts
auf Grundlage einer Formel, welche üblicherweise zur Energiekalkulationen von
Kälbermilchaustauscher herangezogen wird (TRAUSCHKE 2008; TROOST 2014). Die
angenommenen Verdaulichkeiten bei Saugferkeln von >0,96 für Rohprotein, Rohfett und
Stickstoff-freie Extraktstoffe entsprechen zudem in etwa den bei Kälber ermittelten
Verdaulichkeiten dieser Rohnährstoffe (LÖHNERT u. OCHRIMENKO 1998). Bei
Berechnung des Energiegehaltes des Ferkeljoghurts mit der üblicherweise verwendeten
Schätzformel (GFE 2008), hätte sich ein um 1,2 MJ ME höherer Energiegehalt des Joghurts
ergeben (17,9 vs. 19,1 MJ ME/ kg TS). Da die Energieaufnahme der Ferkel durch das
Beifutter essentiell für die Berechnung der Milchmenge der Sauen ist, ist nicht vollständig
auszuschließen, dass die ermittelte Milchleistung in den ersten beiden Laktationswochen
geringfügig überschätzt worden sein könnte. Dennoch kann diese potentielle
Überschätzung als minimal bewertet werden. Selbst bei einer sehr großen täglichen TS-
Aufnahme pro Wurf von 500 g TS Joghurt und einem angenommenen Wurfzuwachs in den
ersten beiden Laktationswochen von 3 kg/Tag, wäre die tägliche Milchleistung der Sauen
um lediglich 126 ml/Tag in den ersten 14 Tagen überschätzt worden. Da diese Formel
jedoch bei allen Sauen gleichermaßen zum Einsatz kam, hat diese potentielle
Ungenauigkeit keinerlei Einfluss auf mögliche Unterschiede in der Michleistung beider
Fütterungsgruppen.
Aus betriebswirtschaftlichen Gründen wurde während der Versuchsphase der Prestarter für
die Saugferkel gewechselt. Beide eingesetzten Prestarter wiesen im Vergleich zu den
Richtwerten (KAMPHUES et al. 2014) ein tendenziell zu niedrigen Gehalt an Rohprotein,
Lysin sowie Calcium und Phosphor auf (Tabelle 95). Der Rohfasergehalt des neuen
Prestarters Biowean® war geringfügig oberhalb der Empfehlung von maximal 50 g/kg uS.
Da beide Prestarter energetisch gleichwertig waren und für die Berechnung der
Diskussion
157
Milchmenge lediglich die aus Beifutter aufgenommene Energie von großer Bedeutung ist,
stellte der Wechsel der Prestarter während der Versuchsphase für die Kalkulation der
Milchmenge der Sau kein Problem dar.
Tabelle 95: Vergleich der Energie- und Nährstoffgehalte der eingesetzten Prestarter mit den
Richtwerten in Ergänzungsfutter für Saugferkel (Angaben in kg uS) nach KAMPHUES et al. (2014)
Prestarter SuperFrüh
Prestarter Panto®Biowean
Richtwerte
ME MJ 14,4 14,4 >13
Rp g 181 173 220
Lys g 13,6 13,2 ≥14
Rfa g 35,7 51,8 max. 50
Ca g 6,84 6,21 min. 8
P g 5,76 5,88 min. 7
Fütterung der Sauen im Abferkelstall
Während der Laktation wurden den ad libitum gefütterten Sauen lediglich kleine Portionen
Futter (max. 3,3 kg uS /Mahlzeit) über die Volumendosierer zugeteilt. Dies geschah, um
das Auftreten von potentiellen Mahlzeiten-Effekten und eine zu starke Füllung der
Futtertröge zu den Fütterungszeiten durch zusätzliches Futter aus den ad-libitum-
Fütterungsautomaten zu verhindern. Zudem erfolgte die Wasserversorgung der Sauen über
Zapfentränken, welche am Boden des Futtertroges angebracht und durch große
Futtermengen im Trog nur schwer für die Tiere erreichbar waren. Die weitere
Futteraufnahme der ad libitum gefütterten Sauen erfolgte selbstständig über den ad-libitum-
Fütterungsautomaten. Somit war die Zuteilung der Futtermengen zwar in beiden
Fütterungsgruppen nicht völlig identisch; dies dürfte jedoch für die Datenerhebung nicht
von Relevanz gewesen sein.
Wasserversorgung 5.1.3
Da aus bautechnischen Gründen nicht an jeder Stichleitung zur im Trog angebrachten
Zapfentränke ein Wasserzähler angebracht werden konnte, musste die täglich verbrauchte
Wassermenge durch Division des Gesamtverbrauches durch die Anzahl der Sauen auf einer
Abteilhälfte dividiert werden. Aus diesem Grund konnte lediglich ein mittlerer
Wasserverbrauch/Tier/Tag ermittelt werden. Auch kann nicht zwischen Wasserverbrauch
und tatsächlicher Wasseraufnahme durch die Sauen klar unterschieden werden.
Diskussion
158
Insbesondere vor dem Hintergrund, dass mit steigender TS-Aufnahme auch eine steigende
Wasseraufnahme der Tiere zu beobachten ist (KAMPHUES et al. 2014) und auf
Einzeltierbasis in beiden Fütterungsgruppen Unterschiede in der TS-Aufnahme festgestellt
werden konnten, wären an dieser Stelle individuelle Daten von großem Interesse gewesen.
Ein weiterer Punkt, den es zu berücksichtigen gilt, ist die Tatsache, dass auch die
Wasserversorgung der Ferkeltränken über die beiden Stichleitungen eines Abferkelabteils
erfolgte und somit auch die von den Ferkeln verbrauchte Wassermenge von den
Wasserzählern erfasst wurde. Aufgrund des gleichmäßig durchgeführten Wurfausgleiches,
war die Anzahl der Ferkel in den Fütterungsgruppen jedoch nahezu identisch. So wurden
den restriktiv gefütterten Sauen durchschnittlich 13,4 ±1,11 Ferkel/Sau und den ad libitum
gefütterten Sauen 13,0 ±1,60 Ferkel/Sau zugeteilt. Aus diesem Grund dürfte diese
Ungenauigkeit minimal sein. Insgesamt ist der ermittelte Wasserverbrauch somit als
Summe aus dem von Sau und Ferkeln verbrauchten Wassermengen aufzufassen.
Untersuchungsmethoden 5.1.4
Geburtsparameter
Da aus organisatorischen Gründen eine Geburtsüberwachung nur bis 24:00 durchgeführt
werden konnte, war eine Erfassung der Geburtslänge nicht bei allen Tieren möglich. Zwar
ist nicht vollständig auszuschließen, dass der Geburtsvorgang durch die ständige
Anwesenheit einer Person gestört worden sein könnte, dennoch ist dies in diesem Falle sehr
unwahrscheinlich. So waren die zur Geburt ermittelten Cortisolkonzentrationen im Speichel
der Sauen im Vergleich zu anderen Studien sehr niedrig (vgl. Kapitel 5.2.6). Auch die
Kolostrumversorgung und somit die Aufnahme von Immunglobulinen konnte sowohl bei
leichten als auch schweren Ferkeln als optimal bewertet werden (vgl. Kapitel 5.2.8), sodass
eine Unruhe der Sauen während der Geburt ein vergleichsweise unterdurchschnittliches
Ausmaß aufwies.
Körpermasse der Sauen
Zu verschiedenen Zeitpunkten des Versuches wurden die Sauen der restriktiv und ad
libitum gefütterten Gruppen gewogen. Zwar wurde darauf geachtet, dies nach Aufnahme
einer Mahlzeit durchzuführen, jedoch variierte die durch die Sau aufgenommene Menge an
Diskussion
159
Futter und somit die Füllung des Magen-Darm Traktes zwischen den Gruppen am Tag nach
der Geburt deutlich (vgl. Kapitel 4.2.4). Ungenauigkeiten zu diesem Zeitpunkt sind
demnach nicht ganz auszuschließen. Um diese potentiellen Ungenauigkeiten genauer
charakterisieren zu können, wurden die Tiere eines Durchganges (Rohfaserpellet 2) 3 Tage
nach der Einstallung in den Abferkelstall gewogen (Tabelle 96). Während die Tiere beider
Gruppen zum Zeitpunkt des Einstallens noch nahezu identische Körpergewichte aufwiesen,
konnte bereits 3 Tage nach ad-libitum-Angebot des rohfaserhaltigen Mischfutters eine
unterschiedliche Gewichtsentwicklung zwischen den beiden Gruppen beobachtet werden.
So war die Körpermasse der Kontrolltiere zu diesem Zeitpunkt tendenziell geringer als zum
Zeitpunkt der Einstallung, die der ad libitum gefütterten Tiere jedoch um ca. 25 kg/Sau
angestiegen. Unter Berücksichtigung des Gewichtes der Wurfmasse (Summe aller Ferkel
inklusive Mumien ohne Plazenten und Fruchtwasser) stimmt im Vergleich zu dem
ermittelten Körpergewicht drei Tage nach der Einstallung in der Rohfasergruppe 2 das
ermittelte Gewicht 24 h post partum mit dem erwarteten Wert annähernd überein. In der
restriktiv gefütterten Gruppe kann das im Vergleich zu der Wurfmasse leicht höhere
Gewicht post partum mit einer steigenden Futterzuteilung post partum erklärt werden.
Diese Daten zeigen, dass sich eine unterschiedliche Magen-Darm Füllung massiv auf die
Körpermasse der Sauen auswirken kann, weshalb der Wiegezeitpunkt post partum nicht zu
einem Vergleich der beiden unterschiedlich gefütterten Gruppen herangezogen werden
sollte. Da zum Zeitpunkt des Einstallens und ab der zweiten Laktationswoche jedoch
sowohl das Futter an sich, als auch die TS-Aufnahme der Sauen beider Gruppen nahezu
identisch war, ist zu diesen Zeitpunkten lediglich mit minimalen Ungenauigkeiten zu
rechnen.
Tabelle 96: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der Wurfmassen sowie der Sauengewichte
(kg) der beiden Fütterungsgruppen zur Einstallung, 3 Tage vor und 1 Tag nach der Geburt
Zeitpunkt
Kontrolle (n=4)
Rohfaser 2 (n=3)
x s x s
Einstallung 302 ±33,7 305 ±25,1
3 Tage a.p. 298 ±31,2 330 ±25,9
24 h p.p. 287 ±33,5 303 ±43,9
Wurfmasse 20,1 ±4,75 23,2 ±1,45
Diskussion
160
Rückenspeckdicke der Sauen
Um potentielle Ungenauigkeiten bei der Messung der Rückenspeckdicke zu minimieren,
wurden die Messpunkte auf dem Rücken der Sauen mithilfe einer selbst angefertigten
Schablone mit Viehspray an den gewählten Stellen angezeichnet. Zudem erfolgten die
Messungen stets an stehenden Tieren.
Kotproben der Sauen
Aufgrund der Tatsache, dass am Tag der Geburt insbesondere bei den restriktiv gefütterten
Tieren kaum oder nur geringe Kotmengen aus dem Rektum entnehmbar waren, beschränkte
sich die Analyse aufgrund des geringen Probenmaterials ausschließlich auf wesentliche
Parameter dieser Arbeit. So konnte an diesem Tag lediglich die Anzahl von Clostridium
perfringens bestimmt werden. Nach Steigerung der Futteraufnahme nach der Geburt und
damit verbundenen größeren Kotmengen konnte am Tag 1 post partum ausreichend Kot
entnommen werden, um eine Bestimmung des TS- und Fe-Gehaltes sowie des pH-Wertes
durchzuführen.
Mikrobiombestimmung im Sauenkot
Aufgrund einer MMA-Erkrankung mussten 4 Sauen (jeweils 2 in der Kontroll- und
Versuchsgruppe) im Laufe des Versuches antibiotisch behandelt werden. Hierbei wurde
jedoch darauf geachtet, dass die Kotprobenentnahme zur Geburt vor der Behandlung
vorgenommen wurde, um eine mögliche Beeinflussung der mikrobiellen Zusammensetzung
der Darmflora durch das Antibiotikum auszuschließen. Obwohl zwischen der Behandlung
der Sauen und der Probenentnahme zu Beginn der dritten Laktationswochen gut zwei
Wochen vergingen, kann nicht vollständig ausgeschlossen werden, dass die Darmflora
dieser Tiere durch die antibiotische Behandlung verändert worden sein könnte. So konnten
DETHLEFSEN et al. (2008) beispielsweise beim Menschen nach einer Ciprofloxacin
Behandlung erst 4 Wochen nach der Therapie eine Rückkehr auf die ursprüngliche
Zusammensetzung der Darmflora beobachten. Da es sich jedoch im vorliegenden Versuch
lediglich um vier Tiere handelte, welche gleichmäßig auf die Versuchsgruppen verteilt
waren und sich das Mikrobiom, den prozentualen Zahlen nach zu urteilen, nicht vom
gruppenüblichen Mikrobiom unterschied, kann diese mögliche Beeinflussung des
Mikrobioms zu Beginn der dritten Laktationswoche vernachlässigt werden.
Diskussion
161
Die gewonnenen Ergebnisse der Mikrobiomuntersuchung sind mitunter stark von der
Isolierung und Aufreinigung der im Kot enthaltenden RNA abhängig. Im Rahmen eines
Vorversuches wurden zwei verschiedene Präparationsvorgehensweisen der im Kot
enthaltenden Nukleinsäuren (manuell bzw. automatisiert mithilfe eines automatisierten
Pipettiersystems (Microlab STAR, Fa. Hamilton Company USA, USA)) und ihre
Auswirkung auf die Mikrobiombestimmung getestet. Dabei wurde im Vergleich zu
manuellen Aufbereitungsverfahren eine geringere Varianz der Ergebnisse bei Einsatz des
automatisierten Pipettiersystems nachgewiesen. Um individuelle Fehlerquellen
ausschließen und eine bessere Vergleichbarkeit der Ergebnisse gewährleisten zu können,
wurde die Nukleinsäuren-Aufreinigung aller Kotproben nach einem speziellen Protokoll
basierend auf einem QIAamp 96er DNA Blood Kit (Qiagen GmbH Germany) mithilfe des
automatischen Pipettiersystems ausgeführt (KELLER 2016 – persönliche Mitteilung).
Blutparameter der Sauen
Bereits in einigen anderen Studien wurden große individuelle Schwankungen der CRP-
Konzentration im Serum von Schweinen nachgewiesen (KOVÁČ et al. 2008; ZYCZKO u.
LASZYN 2010; STIEHLER 2015). So stieg beispielsweise die CRP-Konzentration in
Untersuchungen von TECLES et al. (2007) als Reaktion auf einen entzündlichen Stimulus
bei manchen Schweinen lediglich um das 6-fache, bei anderen Schweinen jedoch um das
300-fache an. Aufgrund dieser großen Schwankungsbreite der CRP-Konzentration im
Schweineserum waren auch in dieser Studie Verdünnungen der Originalprobe notwendig,
um möglichst viele CRP-Konzentrationen auswerten zu können. Zwar sind hohe
Verdünnungsstufen auch potentiell fehleranfällig – aus diesem Grund wurde lediglich eine
Verdünnung bis maximal 1:400 durchgeführt – dennoch ist die bei dieser Verdünnung
maximal ermittelbare CRP-Konzentration von 1200 mg/l bereits oberhalb der klinisch
relevanten Werte, wie sie beispielsweise im Rahmen einer Infektion mit Actinobacillus
pleuropneumoniae gemessen werden (ca. 400 mg/l) (HEEGAARD et al. 1998). Somit
erfolgte die quantitative Auswertung der CRP-Konzentrationen lediglich von den Sauen,
welche CRP-Werte im klinisch relevanten Bereich von bis zu 1200 mg/l aufwiesen.
Diskussion
162
Einfluss eines ad–libitum-Angebotes eines rohfaserreichen 5.2
Mischfutters bei restriktiver Gabe eines Alleinfutters für
laktierende Sauen im peripartalen Zeitraum auf die Sauen- und
Ferkelgesundheit
Futteraufnahme 5.2.1
In den Tagen vor der Geburt betrug die mittlere Futteraufnahme der restriktiv gefütterten
Tiere durchschnittlich ca. 2,6 kg TS. Die Tiere, welche zusätzlich das jeweiligen Rohfaser-/
Laktationsfuttergemisch ad libitum aufnehmen konnten, nahmen von diesem täglich 2,13
±1,15 kg TS (Rohfasergruppe 1) bzw. 3,14 ±0,68 kg TS (Rohfasergruppe 2) zusätzlich zu
dem angebotenen Laktationsfutter auf. So erreichten die Sauen der ad-libitum-Gruppe
bereits ante partum hohe TS-Aufnahmen, wobei die Tiere der Rohfasergruppe 2 mit 5,5 –
6,5 kg TS/Tag täglich eine um 1 kg TS höhere Futteraufnahme im Vergleich zur
Rohfasergruppe 1 zeigten. Am Tag der Geburt kam es in beiden ad libitum gefütterten
Gruppen zu einer deutlichen Reduktion der Futteraufnahme (bestehend aus Rohfaser-
/Laktationsfuttergemisch und dem restriktiv zugeteilten Laktationsfutter) auf eine Menge
von ca. 3,7 kg TS, wobei jedoch bereits am zweiten Tag post partum die zuvor ante partum
aufgenommene Futtermenge erreicht wurde.
Die Aufnahme von Rohfaser und Gerüstsubstanzen war in allen Gruppen in dem Zeitraum
vor der Abferkelung eng mit der Gesamtfutteraufnahme verbunden, wobei die beiden ad
libitum gefütterten Rohfasergruppen mit Werten von täglich ca. 0,6 kg Rfa, 1,6 kg NDF
und 0,7 kg ADF (bezogen auf die Gesamt-TS-Aufnahme) deutlich höhere Mengen als die
Kontrolltiere aufnahmen (0,13 kg Rfa, 0,48 kg NDF, 0,15 kg ADF). Erst nach der Geburt
zeigten sich in den ad libitum gefütterten Gruppen leichte Diskrepanzen zwischen der TS-
und der Faseraufnahme (schnellerer Anstieg der TS-Aufnahme), was vermutlich mit der
steigenden Zuteilung von rohfaserarmen Laktationsfutter in Verbindung gebracht werden
kann.
Bereits in früheren Untersuchungen wurde beobachtet, dass ad libitum gefütterte Sauen
schon ante partum hohe Futtermengen aufnehmen, zum Zeitpunkt der Geburt eine deutlich
reduzierte Futteraufnahme zeigen und diese anschließend in kurzer Zeit wieder auf das
Diskussion
163
Ausgangsniveau anheben (NEIL 1996; COOLS et al. 2014). Während die ad libitum
gefütterten Sauen bei COOLS et al. (2014) ante partum eine ähnlich hohe Futteraufnahme
wie in der späteren Laktation zeigten (zwischen 7-8 kg uS), erreichten die ad libitum
gefütterten Sauen dieses Versuches die maximale Futteraufnahme erst in der Laktation.
Jedoch ist zu beachten, dass die Sauen in der Studie von COOLS et al. (2014) bereits ab
Tag 105 der Trächtigkeit ein kommerzielles Laktationsfutter (54,6g Rfa /kg uS) bekamen,
während die Sauen in diesem Versuch hauptsächlich rohfaserreiche Pellets aufnahmen.
Insgesamt nahmen die Sauen in der genannten Studie von COOLS et al. (2014) – bezogen
auf die Trockensubstanz – ante partum Rfa-Mengen zwischen 383-437 g/Tag auf; die
Sauen der vorliegenden Untersuchung zeigten jedoch mit einer Aufnahme von
durchschnittlich ca. 600 g Rfa/Tag eine um ca. 33 % höhere Rohfaseraufnahme. Dies
könnte Auswirkungen auf die Füllung des Magen-Darm-Traktes und somit auf das
Sättigungsgefühl der Sauen gehabt haben. Zu ähnlichen Ergebnissen kamen bereits frühere
Untersuchungen: So stellten KYRIAZAKIS und EMMANS (1995) bei Fütterung
verschiedener Faserträger wie Weizenkleie, Zitrusfaser oder Grasmehl eine lineare
Abnahme der Futteraufnahme mit zunehmender Wasserbindungskapazität der
aufgenommenen Faser und somit größer werdenden Magen-Darm-Füllung fest. Auch DE
LEEUW et al. (2008) berichten von einer durch Aufnahme von Faserträgern induzierten
Sättigung von Sauen.
Die Sauen dieser Studie zeigten bei einem ad-libitum-Futterangebot zur Geburt hin eine
deutlich reduzierte Futteraufnahme. Auch TABELING et al. (2003), EISSEN et al. (2000),
QUESNEL et al. (2009) und COOLS et al. (2014) berichteten von einer reduzierten
Futteraufnahme der Sauen zum Geburtszeitpunkt (von ca. 6-8 kg a.p auf 2,7-3,7 kg am Tag
der Geburt). Trotz dieser Reduktion der Futteraufnahme am Tag der Geburt, nahmen die ad
libitum gefütterten Tiere mit einer Aufnahme von ca. 3,7 kg TS an diesem Tag ca. 1 kg TS
mehr auf als die restriktiv gefütterten Sauen. Die minimale Aufnahme von ca. 3,7 kg TS am
Tag der Geburt stimmt zudem ziemlich exakt mit den von COOLS et al. (2014) ermittelten
Werten zu diesem Zeitpunkt überein.
Die insgesamt signifikant geringere Futteraufnahme der Tiere der Rohfasergruppe 1 im
peripartalen Zeitraum, welche im Vergleich zu den Tieren der Rohfasergruppe 2 insgesamt
Diskussion
164
mehr Hitzetagen ausgesetzt waren, bekräftigt die Ergebnisse vieler weiterer Studien
(BLACK et al. 1993; KOKETSU et al. 1996; QUINIOU u. NOBLET 1999). Auch in
diesen Studien konnten geringere Futteraufnahmen bei steigenden Temperaturen im
Abferkelstall beobachtet werden. Während die Futteraufnahme der Rohfasergruppe 2 nach
der Geburt zügig anstieg, wurde diese in der Rohfasergruppe 1 am ersten Tag nach der
Geburt noch geringer. Somit kann vermutet werden, dass hohe Umgebungstemperaturen
vor allem rund um den Geburtszeitpunkt besonders negative Auswirkungen auf die
Futteraufnahme der betroffenen Sauen haben.
Da wissenschaftlich immer wieder ein Zusammenhang zwischen dem Auftreten von
peripartalen Erkrankungen wie dem MMA-Komplex und einer ad-libitum-Fütterung
gesehen wurde (PAPADOPOULOS et al. 2010), sollte in dieser Studie untersucht werden,
inwieweit dies auch für ein zusätzliches Angebot eines rohfaserreichen
Ergänzungsfuttermittels bei ansonsten restriktiver Fütterung gilt. In diesem
Versuchsvorhaben konnten jedoch keinerlei negative Effekte – wie zum Beispiel ein
höheres Vorkommen peripartaler Erkrankungen oder eine geringere Futteraufnahme in der
späteren Laktation – festgestellt werden. Hier scheint die frühe Gewöhnung an die ad-
libitum-Fütterung bereits 7 Tage ante partum und die Futterzusammensetzung bestehend
aus einer Rohfaser-/ Laktationsfuttermischung zur Geburt, einen wesentlichen Einfluss auf
die Tiergesundheit gehabt zu haben.
Wasserverbrauch 5.2.2
Einen Tag vor der Geburt konnte in allen Gruppen ein deutlicher Anstieg gefolgt von einem
starken Abfall der verbrauchten Wassermenge pro Sau zur Geburt hin beobachtet werden.
Dieser Verlauf des peripartalen Wasserverbrauchs konnte bereits in früheren
Untersuchungen von anderen Autoren festgestellt werden (FRASER u. PHILLIPS 1989;
FINKENSIEP 1993; TABELING et al. 2003; OLIVIERO et al. 2009; MALMKVIST et al.
2012). Zwar könnte die vermehrte Wassereinlagerung zum Ende der Trächtigkeit zu einem
steigenden Wasserbedarf kurz vor der Geburt geführt haben, jedoch zeigen Untersuchungen
am Modelltier Ratte, dass die Wasseraufnahme durch eine Applikation von Östrogenen
eher vermindert wird (KRAUSE et al. 2003; JONES u. CURTIS 2009). Eine weitere
mögliche Erklärung für den Anstieg des Wasserverbrauchs einen Tag vor der Geburt sehen
Diskussion
165
FRASER et al. (1990) und FINKENSIEP (1993) in einem „luxuriösen Mehrverbrauch“
durch Langeweile und unausgefüllte Aktivitätsphasen der Sauen.
In beiden Rohfasergruppen konnte im Vergleich zu den jeweiligen Kontrollgruppen ein
höherer Wasserverbrauch der faserreich gefütterten Sauen im peripartalen Zeitraum
beobachtet werden. Da die Wasseraufnahme insbesondere von der aufgenommenen
Futtermenge sowie des Rohfaseranteils in der Ration abhängt (SEYNAEVE et al. 1996;
KAMPHUES 2002; OLIVIERO et al. 2009) ist dies nicht weiter verwunderlich. So konnte
bereits in anderen Studien sowohl bei einer Erhöhung des Rohfaseranteils auf 7 % als auch
bei einer ad-libitum-Fütterung höhere Wasseraufnahmen im Vergleich zu den
Kontrolltieren nachgewiesen werden (TABELING et al. 2003; OLIVIERO et al. 2009).
Der im Vergleich zur Rohfasergruppe 2 gemessene größere Wasserverbrauch der
Rohfasergruppe 1 lässt sich durch die höhere Anzahl an Hitzetagen in dieser Gruppe
erklären. Untersuchungen zufolge kommt der Umgebungstemperatur – insbesondere wegen
der Funktion des Wassers im Rahmen der Thermoregulation – eine sehr große Bedeutung
als Einflussgröße auf die Wasseraufnahme zu (KAMPHUES 2002). So berichteten
VANDENHEEDE und NICKS (1991) von einer Zunahme der evaporativen Wasserverluste
über die Lungen und die Haut laktierender Sauen von 3,5 l bei 10 °C auf 7,0 l bei einer
Temperatur von 25 °C.
Die absolute verbrauchte Wassermenge variierte in beiden Kontrollgruppen in den Tagen
vor der Geburt von ca. 15 bis 18 l/Sau. Diese Wassermenge entspricht einerseits den bereits
ermittelten Werte neuerer Studien (OLIVIERO et al. 2009; MALMKVIST et al. 2012),
jedoch wurde in anderen Studien wiederrum von Wasserverbräuchen von 6-9 l/Sau
berichtet (FRASER u. PHILLIPS 1989; FINKENSIEP 1993). Da in den meisten dieser
Untersuchungen lediglich der Wasserverbrauch und nicht die tatsächlich aufgenommene
Menge an Wasser beurteilt wurde, können diese Unterschiede auch darin begründet sein,
dass auftretende Wasserverluste pro Sau individuell unterschiedlich stark schwanken und
zwischen 25-30 % des Wasserverbrauches betragen können (KAMPHUES 2002).
Diskussion
166
Körpertemperatur 5.2.3
In beiden Rohfaser- sowie den jeweiligen Kontrollgruppen konnte zur Geburt hin ein
Anstieg der rektalen Körpertemperatur nachgewiesen werden, welcher 24 h nach der
Geburt sein Maximum erreichte. Danach kam es zu einem leichten Abfall der
Körpertemperatur, wobei diese in den Tagen nach der Geburt nicht mehr auf das
Ursprungsniveau von vor der Abferkelung herabsank. Dieser Verlauf der Körpertemperatur
rund um den Geburtszeitpunkt wurde auch in den Untersuchungen von DE BRAGANCA et
al. (1997) sowie DEWEY und STRAW (2006) beobachtet, jedoch stieg die Temperatur der
klinisch gesunden Sauen in ihren Untersuchungen auf bis zu 40°C 24 h post partum an,
während das Maximum in dieser Studie lediglich ca. 39 °C betrug. Auch ELMORE et al.
(1979) und MOSER et al. (1987) berichteten von einer steigenden Körpertemperatur zum
Geburtszeitpunkt. Allen Untersuchungen ist zudem gemein, dass die Körpertemperatur
laktierender Sauen leicht höher zu sein scheint als bei nicht laktierenden Tieren.
Trotz der signifikant höheren Futteraufnahme der ad libitum gefütterten Sauen konnten
keine signifikanten Unterschiede zwischen den beiden Fütterungsgruppen festgestellt
werden. Zwar kam es in der Rohfasergruppe 2 im Vergleich zur Kontrollgruppe einen Tag
früher zu einem leichten Temperaturanstieg zur Geburt hin, sodass sich die
Körpertemperaturen an Tag -1 signifikant unterschieden, jedoch muss beachtet werden,
dass in dieser Gruppe tendenziell mehr Sauen ohne Geburtseinleitung und somit etwas
früher ferkelten, was die Körpertemperatur beeinflusst haben könnte. Das Fehlen von
Signifikanzen trotz unterschiedlich aufgenommenen Futtermengen könnte darauf
hindeuten, dass der Geburtsvorgang einen größeren Einfluss auf die Körpertemperatur zu
haben scheint als die Futteraufnahme.
Geburtsparameter 5.2.4
Die Anzahl geborener Ferkel in den Kontroll- und den jeweiligen Rohfasergruppen ist mit
über 16 Ferkeln vergleichbar mit der in anderen kommerziell geführten Sauenbetrieben
beobachteten Anzahl geborener Ferkel (DERKING 2015). Mit mindestens 15,6 lebend
geborenen Ferkeln pro Wurf entsprach die Anzahl lebend geborener Ferkel der in den 25 %
der besten Betriebe im Wirtschaftsjahr 2014/2015 in Schleswig Holstein erreichten
Ferkelanzahl (KNEES u. REINECKE 2016). Die große Anzahl lebend geborener Ferkel in
Diskussion
167
der vorliegenden Studie könnte jedoch unter anderem auf die sehr intensive
Geburtsüberwachung auch in den späten Abendstunden zurückzuführen sein. Dies erklärt
zudem die im Vergleich zu anderen Studien festgestellte niedrige Anzahl an totgeborenen
Ferkeln sowie die niedrige Totgeburtenrate. Während die Totgeburtenrate in dieser Studie
maximal 5,96 % betrug, berichten andere Autoren von 7,5 bis 11,4 % totgeborener Ferkel
(VANDERHAEGHE et al. 2010; DERKING 2015). Da die Trächtigkeitsdauer bei Sauen
mit zunehmender Wurfgröße abnimmt (VANDERHAEGHE et al. 2011), wurde – im
Nachhinein betrachtet – jeweils in den Gruppen eine häufigere Geburtseinleitung
durchgeführt, welche kleinere Würfe zur Welt brachten (vgl. Kapitel 4.2.7).
Die Sauen der Rohfasergruppe 2 gebaren mit einer Anzahl von durchschnittlich 18,8 ±2,09
Ferkeln pro Sau die meisten Ferkel. Zwar gibt es Hinweise darauf, dass eine faserreiche
Fütterung in der Trächtigkeit zu höheren Reproduktionsleistungen der Sau, z.B. einer
größeren Anzahl geborener Ferkel, führen kann (REESE 1997; CRENSHAW 2005), jedoch
ist für die Anzahl geborener Ferkel die Ovulationsrate und die Zeit der Einnistung der
Embryonen in der frühen Trächtigkeit entscheidend (MEINECKE 2015). Somit besteht in
der vorliegenden Studie aufgrund der späten Faserfütterung sieben Tage vor der
Abferkelung kein Zusammenhang zwischen der Fütterung und der Anzahl geborener
Ferkel. Vielmehr wurde in dieser Studie darauf geachtet die Sauen nach Wurfnummer und
zuvor erbrachter Leistung gleichmäßig auf beide Gruppen zufällig zu verteilen.
Auch die Anzahl totgeborener Ferkel (1,17 ±1,03) war in der Rohfasergruppe 2 zwar nicht
signifikant, jedoch tendenziell höher im Vergleich zu den anderen Sauengruppen, was die
Beobachtungen von VANDERHAEGHE et al. (2011) bekräftigt. Diese beobachteten, dass
bei großen Würfen nicht nur die Trächtigkeitsdauer verkürzt ist, sondern auch die Anzahl
unreifer sowie totgeborener Ferkel ansteigt. Die Anzahl totgeborener Ferkel korrelierte in
dieser Studie nicht mit der Geburtsdauer. Dies steht im Widerspruch zu anderen Studien, in
denen die Anzahl totgeborener Ferkel anstieg, je länger die Geburt dauerte (PELTONIEMI
u. OLIVIERO 2015; THEIL 2015). Ein möglicher Grund für diesen Widerspruch könnte
der Tatsache geschuldet sein, dass in der vorliegenden Arbeit bei einer Verzögerung der
Geburt von 60 Minuten manuelle Geburtshilfe geleistet und somit mögliche Totgeburten
verhindert wurden.
Diskussion
168
Schon lange ist bekannt, dass eine größere Anzahl geborener Ferkel auch gleichzeitig
niedrigere Geburtsgewichte der einzelnen Ferkel bedeutet (KŘÍŽENECKÝ 1941;
QUESNEL et al. 2008). Dies konnte auch in der vorliegenden Studie beobachtet werden:
So wurden in der Rohfasergruppe 2 nicht nur die meisten Ferkel geboren, diese waren
zudem mit einem durchschnittlichen Geburtsgewicht von 1,32 ±0,12 kg die leichtesten
Ferkel aller Fütterungsgruppen. Da das Geburtsgewicht der Ferkel ein wesentlicher
Einflussfaktor für das Überleben der Saugferkelphase darstellt (BAXTER et al. 2008;
MUNS et al. 2016), ist es nicht verwunderlich, dass die Saugferkelverluste in dieser Gruppe
tendenziell höher als in der jeweiligen Kontrollgruppe waren (14,7 % vs. 16,3 %).
Insgesamt variierten die Saugferkelverluste zwischen den einzelnen Fütterungsgruppen
zwischen 14,3 und 19 %. Obwohl ähnlich hohe Verluste auch in anderen
wissenschaftlichen Studien beobachtet werden konnten (TUCHSCHERER et al. 2000;
ROOTWELT et al. 2013; MUNS et al. 2016), wurden in konventionell geführten
Schweinebetrieben im letzten Wirtschaftsjahr lediglich 14,1 % Ferkelverluste registriert
(KNEES u. REINECKE 2016). Eine nahezu lückenlose Geburtsüberwachung bei
gleichzeitig kleiner Gruppengröße der Sauen ermöglichte unter den gegebenen Umständen
in der vorliegenden Studie eine optimale Versorgung aller Ferkel. Dies spiegelte sich in den
nahezu identischen Immunokritwerten und somit guter Kolostrumversorgung leichter und
schwerer Ferkel nach der Geburt wieder. Dennoch scheint selbst eine intensive Versorgung
der neugeborenen Ferkel bei lebensschwachen Tieren nicht ausreichend für ein Überleben
der Säugeperiode zu sein. Die herabgesetzte Vitalität führt zu einer ungenügenden
Kolostrumaufnahme infolgedessen das Risiko eines Todes durch Erdrückung ansteigt
(TUCHSCHERER et al. 2000). So wiesen die Ferkel, welche die Säugezeit nicht
überlebten, im Vergleich zu den überlebenden Ferkeln einen signifikant niedrigeren
Immunokrit 48 h p.p. auf (0,17 vs. 0,21). Knapp 70 % der Saugferkelverluste traten
innerhalb der ersten drei Lebenstage – meist durch ein Erdrücken der Sau – auf. Dies
konnte bereits in diversen früheren Untersuchungen nachgewiesen werden
(TUCHSCHERER et al. 2000; LAY et al. 2002; DERKING 2015) und ist der Tatsache
geschuldet, dass die Ferkel nur mit sehr geringen Energiereserven geboren werden
(MELLOR u. COCKBURN 1986) und somit auf eine ausreichende Kolostrumaufnahme
nach der Geburt angewiesen sind (LE DIVIDICH et al. 2005).
Diskussion
169
Auffällig sind vor allem die mit Abstand höchsten Saugferkelverluste in der
Rohfasergruppe 1 (19 %). Bei genauer Betrachtung der Verlustursachen fällt auf, dass im
Vergleich zur Kontrollgruppe mehr Ferkel erdrückt oder aufgrund von Verletzungen
euthanasiert werden mussten. Vor dem Hintergrund, dass auch maternaler Stress zu
höheren Ferkelverlusten vor allem durch Erdrücken führen kann (MUNS et al. 2016),
könnten auch die hohen Temperaturen im Abferkelstall eine Rolle im Verlustgeschehen
gespielt haben. Dadurch, dass diese Sauen nicht wie die Sauen der Kontrollgruppe zweimal
täglich die gesamte Futterration zusammen mit Wasser in den Trog bekamen, sondern
häufiger aufstehen und sich die Portionen aus dem Automaten rütteln mussten, könnte es
zusammen mit dem Stressfaktor der hohen Temperaturen zu einer größeren
Bewegungsaktivität der Sauen gefolgt von höheren Saugferkelverlusten gekommen sein.
Die Geburtslänge variierte zum Teil deutlich zwischen den einzelnen Sauen einer Gruppe,
sodass sich Standardabweichungen von über 100 Minuten ergaben. Jedoch war die mittlere
Geburtsdauer mit Werten zwischen 216 und 287 Minuten unter den von PELTONIEMI und
OLIVIERO (2015) geforderten Obergrenze von 300 Minuten. Da jedoch die Geburtsdauer
von der Anzahl geborener Ferkel abhängig ist (VAN DIJK et al. 2005), scheint ein
Vergleich der Geburtsintervalle zwischen den einzelnen Ferkeln für eine Differenzierung
möglicher Einflussfaktoren auf die Geburtslänge sinnvoll zu sein.
Während das Geburtsintervall der Rohfasergruppe 1 und der jeweiligen Kontrollgruppe 1
(ohne Berücksichtigung der Sau, welche lediglich vier Ferkel durch Geburtshilfe gebar)
nahezu identisch war (12,4 ±5,49 Min. vs. 12,9 ±6,30 Min.), konnte in der Rohfasergruppe
2 ein signifikant kürzeres Geburtsintervall im Vergleich zur Kontrollgruppe 2 beobachtet
werden (16,3 ±6,74 Min. vs. 11,0 ±3,49 Min.). Dies könnte auf mehrere Ursachen
zurückzuführen sein: So waren die Sauen dieser Gruppe mit einer mittleren Wurfnummer
von 3,58 ±1,38 Würfen tendenziell jünger als die Sauen der anderen Fütterungsgruppen (>4
Würfe). Zwar wiesen ZALESKI und HACKER (1993) eine längere Geburtsdauer bei
älteren Sauen aufgrund einer größeren Prädisposition zur Verfettung und einen reduzierten
uterinen Muskeltonus nach, VAN DIJK et al. (2005) und OLIVIERO et al. (2010) hingegen
konnten keinen Einfluss der Parität auf die Geburtslänge beobachten. Da die Sauen in der
Studie von OLIVIERO et al. (2010) ähnlich wie in der vorliegenden Untersuchung eine
Diskussion
170
Wurfnummer von > 4 Würfen aufwiesen und keine Unterschiede hinsichtlich der
Geburtslänge beobachtet wurden, kann davon ausgegangen werden, dass der Einfluss der
Parität auf das Geburtsintervall bei älteren Sauen möglicherweise von einem begrenzten
Umfang ist.
Andererseits wiesen die Ferkel der Rohfasergruppe 2 das niedrigste Geburtsgewicht auf.
Vor dem Hintergrund, dass die Geburtsintervalle zwischen den einzelnen Ferkeln bei
niedrigen Geburtsgewichten kürzer im Vergleich zu schweren Ferkeln sind (VAN DIJK et
al. 2005), könnte durchaus ein Zusammenhang zwischen dem mittleren Geburtsgewicht der
Ferkel und den kurzen Geburtsintervallen in dieser Gruppe gesehen werden. Auch
TUCHSCHERER et al. (2000) und ROOTWELT et al. (2013) beobachteten in ihren
Studien einen kürzeren zeitlichen Abstand von leichten im Vergleich zu schweren Ferkeln.
Eine weitere Ursache für die kurzen Geburtsintervalle der Rohfasergruppe 2 könnte zudem
in der Rohfaserversorgung im peripartalen Zeitraum gesehen werden. Durch das ad-
libitum-Angebot einer faserreichen Ration zusätzlich zum Laktationsfutter konnte der TS-
Gehalt des peripartalen Sauenkotes signifikant im Vergleich zur Kontrollgruppe gesenkt
werden. Ein niedriger TS-Gehalt im Kot zur Geburt wird von einigen Autoren aufgrund
einer höheren Myometriumsaktivität sowie verringerten Vorkommen von mechanischen
Obstruktionen auf den Geburtskanal in einem Zusammenhang mit einer kürzeren
Geburtslänge gebracht (BEENING 1999; COWART 2007; OLIVIERO et al. 2010). So
konnte die Geburtsdauer durch den Zusatz verschiedener Faserträger wie Weizenstroh,
Maissilage oder Haferspelzen in verschiedenen Studien deutlich gesenkt werden
(MORGENTHUM u. BOLDUAN 1987; BILKEI 1990; BEENING 1999). Obwohl die
Aufnahme des Rohfaser-/ Laktationsgemisches in der Rohfasergruppe 2 höher als in der
Rohfasergruppe 1 war (2,13 ±1,15 kg TS vs. 3,14 ±0,68 kg TS), war das Geburtsintervall
dieser Fütterungsgruppe im Vergleich zur Kontroll- und Rohfasergruppe 1 lediglich
tendenziell niedriger. Auch konnte keine signifikante Korrelation zwischen dem TS-Gehalt
des Kotes und der mittleren Geburtslänge nachgewiesen werden. Somit scheint die höhere
Rohfaseraufnahme in dieser Studie nur einen geringen Einfluss auf das Geburtsintervall der
Ferkel gehabt zu haben. Dennoch fällt im Vergleich zu früheren Untersuchungen auf, dass
die in diesem Versuch gemessenen Geburtsintervalle von maximal 16 Minuten selbst bei
Diskussion
171
den Sauen der Kontrollgruppe 2 als relativ kurz bewertet werden können. So berichtete
BEENING (1999) beispielsweise von einem Geburtsintervall von 12,9 Minuten bei einem
Kot-TS-Gehalt von lediglich 9,7 % unter Einsatz von Glaubersalz. Bei Vergleich der
Intervalle in verschiedenen Abferkelsystemen zeigten die Sauen, welche in
Bewegungsbuchten gehalten wurden, einen zeitlichen Abstand zwischen der Geburt der
einzelnen Ferkeln von ca. 19 Minuten und die im Ferkelschutzkorb gehaltenen von sogar
ca. 29 Minuten (OLIVIERO et al. 2010). Auch TUCHSCHERER et al. (2000) und
ROOTWELT et al. (2013) berichten von Geburtsintervallen von 17 - 20 Minuten. Zwar
könnten die Geburtsintervalle auch durch die Gabe von 0,07 mg Carbetocin artifiziell
verkürzt worden sein, jedoch wurden selbst bei Verabreichung von Carbetocin
Geburtsintervalle von rund 20 Minuten beobachtet (HÜHN et al. 2004; ZAREMBA et al.
2015). Somit scheint eine Supplementation rohfaserreicher Futtermittel in Betrieben mit
ohnehin schon kurzen Geburten die Geburtsintervalle nur tendenziell zu beeinflussen. In
Problembetrieben hingegen könnten rohfaserreiche Rationen mitunter eine größere
Wirkung auf die Geburtsintervalle der einzelnen Ferkel ausüben (GUILLEMET et al.
2007).
Kotkonsistenz und Kotzusammensetzung 5.2.5
Zur Einstallung in den Abferkelstall zeigten die Sauen aller Fütterungsgruppen eine
vergleichbare Kotkonsistenz, sodass sich zu diesem Zeitpunkt weder signifikante
Unterschiede im Kotscore noch im TS-Gehalt des Kotes ergaben. Zur Geburt hin wurde der
Kot aller Sauen zunehmend fester, was sich in einer Abnahme der Scorewerte und
Zunahme der TS-Gehalte bis zum Tag 1 p.p. äußerte; an diesem Tag wurde der härteste Kot
beobachtet (Scorewerte von 1-2 und TS-Gehalte von ca. 30-35 %). Dieser Verlauf der
Kotkonsistenz im peripartalen Zeitraum konnte bereits in diversen anderen Studien
beobachtet werden (BEENING 1999; TABELING et al. 2003; OLIVIERO et al. 2009;
TAN et al. 2015). Eine Zunahme der „Kothärte“ zur Geburt hin kann durch die im
Vergleich zu den Vortagen niedrige Wasser- und Futteraufnahmen und somit auch niedrige
Rohfaseraufnahmen der Tiere aller Gruppen zu diesem Zeitpunkt erklärt werden. Zudem
kommt es im Rahmen von Stresssituationen, wie beispielweise durch die Geburt, zu einer
Aktivierung des Sympatikustonus, was eine verminderte Motilität des Magen-Darm-
Traktes zur Folge hat (CHROUSOS 2009).
Diskussion
172
Insgesamt war die Kotkonsistenz beider Rohfasergruppen rund um die Geburt deutlich
weicher als die der jeweiligen Kontrollgruppen. Dies unterstützt die Ergebnisse diverser
anderer Untersuchungen, in denen bereits eine Reduktion der „Kothärte“ bei
Supplementation von rohfaserreichen Futtermitteln festgestellt worden war (MROZ et al.
1986; NELSON et al. 1992; WARZECHA 2006). Insbesondere durch den Einsatz
rohfaserreicher Futtermittel mit hoher Wasserbindungskapazität kommt es über verstärkte
Dehnungsreize auf die Darmwand zu einer forcierten Darmperistaltik und somit zu einer
verkürzten Ingestapassage: Beispielsweise konnten MROZ et al. (1986) die
Darmpassagezeit bei tragenden Sauen durch 7-tägige Fütterung von Haferspelzen von 49 h
ohne Faserzulage auf 34 h mit Zulage von 2,15 kg Haferspelzen verkürzen. Neben der
rohfaserreichen Fütterung könnte jedoch auch die ad-libitum-Fütterung an sich zu einer
weicheren Kotkonsistenz geführt haben. So konnte in einigen Untersuchungen allein durch
die höhere aufgenommene Futtermenge der TS-Gehalt im Kot von Sauen gesenkt werden
(MOSER et al. 1987; TABELING et al. 2003; STEFFENS 2005).
Ein Vergleich des TS-Gehaltes des Kots beider Fasergruppen zeigt einen tendenziell
höheren TS-Gehalt in der Rohfasergruppe 2. Zwar verfügen sowohl Haferschälkleie als
auch Sojabohnenschalen im Vergleich zu beispielsweise Rübentrockenschnitzeln, welche
ca. 33 g Wasser pro g Faser binden können, nur über eine verhältnismäßig geringe
Wasserbindungskapazität, jedoch ist diese in den Sojabohnenschalen etwas größer als in
Haferschälkleie (ca. 8,6 g Wasser pro g Faser vs. < 4 g Wasser pro g Faser)
(DONGOWSKI u. EHWALD 1999; GRIGELMO-MIGUEL u. MARTıN-BELLOSO
1999). Somit könnte die Wasserbindung im Dickdarm der Tiere der Rohfasergruppe 2
geringer gewesen sein, was zu den tendenziell höheren TS-Gehalten im Kot führte.
Zudem kam es durch die Aufnahme der Rohfaser-/ Laktationsfuttermischung in beiden
Rohfasergruppen innerhalb von zwei Tagen zu einer deutlichen Reduktion des pH-Wertes
im Faeces von ursprünglich ca. 6,86 auf 6,36. In den beiden Kontrollgruppen wurde
hingegen ein Anstieg des pH-Wertes zur Geburt hin von ursprünglich ca. 7,05 auf 7,20
beobachtet, sodass sich die pH-Werte des Sauenkotes in diesem Zeitraum signifikant
zwischen den jeweiligen Kontroll- und Rohfaserguppen unterschieden. Diese Feststellung
ist auf die bei der Fermentation rohfaserhaltiger Futtermittel durch die mikrobielle
Diskussion
173
Dickdarmflora freiwerdenden kurzkettigen Fettsäuren zurückzuführen (SCHNABEL et al.
1990). Obwohl Haferschälkleie, welche zu einem Großteil aus Haferspelzen besteht,
deutlich schlechter fermentierbar ist als Sojabohnenschalen (DE LEEUW et al. 2008),
konnte in der Rohfasergruppe 2 eine stärkere und länger anhaltende Absenkung des fäkalen
pH-Wertes nachgewiesen werden. Somit dürfte die höhere Futter- und folglich auch NDF-
Aufnahme der Sauen der Rohfasergruppe 2 a.p. zu einer insgesamt höheren bakteriell
verfügbaren Substratmenge im Dickdarm dieser Tiere zur Geburt und somit zu einer
größeren Produktion von SCFA beigetragen haben.
Aufgrund der durch eine ad-libitum-Fütterung mit einem rohfaserhaltigen Mischfutter im
peripartalen Zeitraum hervorgerufenen Veränderungen im Hinblick auf die Kotkonsistenz
und Kotzusammensetzung der Sauen, wäre ein positiver Effekt dieser Fütterung auf die
Sauen- und Ferkelgesundheit durchaus denkbar. So verringert ein signifikant weicherer Kot
zur Geburt einerseits das Auftreten von Obstipationen und beugt somit der Absorption von
Endotoxinen vor, was wiederrum das Risiko einer MMA-Erkrankung senkt (OLIVIERO et
al. 2009; REINER et al. 2009; MARTINEAU et al. 2013). Zusätzlich werden niedrige TS-
Gehalte des Sauenkotes im peripartalen Zeitraum in einem Zusammenhang mit einer
kürzeren Geburtslänge gebracht (BEENING 1999). Dies konnte auch in dieser Studie
beobachtet werden. Insbesondere vor dem Hintergrund, dass bei Sauen mit langen
Geburten (4-8 h) nicht nur das Risiko einer MMA-Erkrankung, sondern auch die
Totgeburtenrate ansteigt (OLIVIERO et al. 2010; BARDEHLE et al. 2012; TUMMARUK
u. SANG-GASSANEE 2013), erscheint eine faserreiche Fütterung im peripartalen
Zeitraum empfehlenswert. Zwar waren die Sauen der Rohfasergruppen vor der Geburt
verschmutzter als die restriktiv gefütterten Kontrolltiere, dennoch scheint dies aufgrund der
veränderten Kotzusammensetzung im Hinblick auf die Ferkelgesundheit nicht von
Relevanz zu sein: So könnte vielmehr der signifikant niedrigere Eisengehalt im Kot der
rohfaserreich gefütterten Sauen p.p. dazu beitragen, das Risiko eines Durchfallgeschehens
der Ferkel zu minimieren. Vor dem Hintergrund, dass Eisen ein wichtiger Wachstumsfaktor
für viele Bakterienspezies darstellt (STARKENSTEIN 1934) und die neugeborenen
Saugferkel unmittelbar nach der Geburt in einen direkten Kontakt zum Kot der Muttersau
kommen, kann eine Verringerung des Eisengehaltes im peripartalen Kot dazu beitragen,
eine übermäßige Verfügbarkeit von freien Eisen im noch unreifen Darm der Saugferkel zu
Diskussion
174
verhindern und somit eine Vermehrung pathogener Erreger wie z.B. E. coli zu reduzieren.
Zudem führt eine hohe Konzentration kurzkettiger Fettsäuren, welche im Rahmen der
mikrobiellen Fermentation der Rohfaser im Dickdarm der Sau entstehen, und ein damit
verbundener niedriger pH-Wert der Ingesta zu einer veränderten Darmflora im Tier, was
zusätzlich das Wachstum potentiell pathogener Bakterien reduzieren kann (MAY et al.
1994; WENK 2001; MONTAGNE et al. 2003; LOUIS et al. 2007). Auch in der
vorliegenden Studie konnten signifikante Unterschiede in der mikrobiellen
Zusammensetzung des Sauenkotes beobachtet werden, auf welche in dem noch folgenden
Kapitel 5.2.10 näher eingegangen wird.
Cortisolkonzentration im Speichel der Sauen 5.2.6
Im Speichel aller Sauen wurde – unabhängig von der jeweiligen Fütterungsgruppe – ein
leichter Abfall der Cortisolkonzentration ca. 2 Tage vor der Abferkelung (ca. 1,5 ng/ml) im
Vergleich zur Einstallung beobachtet (ca. 2,0 ng/ml). Dies könnte darauf zurückzuführen
sein, dass es aus technischen Gründen erst möglich war, die Speichelproben zu entnehmen,
als die Sauen bereits in den Abferkelstall eingestallt und somit bereits dem Stressfaktor der
Umstallung ausgesetzt worden waren. Für diese Hypothese sprechen die Ergebnisse der
Untersuchungen von ESCRIBANO et al. (2015), in welchen allein durch eine Isolation von
Jungebern im Speichel dieser Tiere ein Anstieg der Cortisolkonzentration bereits
30 Minuten nach Isolation von ähnlichen Basalwerten, wie in dieser Studie (ca. 1,5 ng/ml)
auf ca. 3,5 ng/ml beobachtet werden konnten (ESCRIBANO et al. 2015).
Bei Betrachtung der Cortisolwerte im Speichel der Sauen nach der Geburt, fiel eine große
Schwankungsbreite der Werte vor allem am Tag 3 post partum auf. Diese auffällige
Variationsbreite war auf zwei Sauen – jeweils eine in der Rohfaser- und eine in der
restriktiv gefütterten Gruppe – zurückzuführen, welche jedoch keinerlei besondere oder
gemeinsame Merkmale teilten. Vor dem Hintergrund, dass ein signifikanter Cortisolanstieg
auch nach einer LPS-Injektion beobachtet werden kann (CAMPOS et al. 2014;
ESCRIBANO et al. 2014), kann eine subklinische MMA-Erkrankung bei diesen Tieren
nicht vollständig ausgeschlossen werden. Jedoch sollte beachtet werden, dass auch in
anderen Untersuchungen zu Cortisolkonzentrationen sowohl im Speichel als auch im Blut
Diskussion
175
von Sauen große Variationsbreiten nachgewiesen wurden (MEUNIER-SALAÜN et al.
1991; OLIVIERO et al. 2008), was auf individuelle unterschiedliche Reaktionen auf einen
bestimmten Stimulus zwischen den Sauen hinweist.
Im Vergleich zu den präpartum ermittelten Cortisolkonzentrationen wurde im Speichel aller
Tiere 24 h nach der Abferkelung ein signifikanter Anstieg der mittleren
Cortsiolkonzentration auf 6 – 8 ng/ml festgestellt. Ein höherer Cortisolspiegel rund um den
Geburtszeitpunkt wird bereits in der Literatur beschrieben (MEUNIER-SALAÜN et al.
1991; OSTERLUNDH et al. 1998; OLIVIERO et al. 2008; FOISNET et al. 2010) und ist
nach Meinung der genannten Autoren größtenteils auf den Geburtsstress zurückzuführen.
Während im Blut 24 h nach der Geburt Konzentrationen von ca. 60 ng/ml nachgewiesen
wurden (LAWRENCE et al. 1994; FOISNET et al. 2010), ermittelten OLIVIERO et al.
(2008) im Speichel Werte von ca. 25 ng/ml. Im Vergleich dazu sind die ermittelten
Cortisolkonzentrationen in dieser Studie als sehr niedrig einzustufen. Nach einer LPS-
Injektion konnten beispielsweise im Speichel von Aufzuchtferkeln Konzentrationen von ca.
15 ng/ml gemessen werden (ESCRIBANO et al. 2014). Da die Sauen in der Untersuchung
von OLIVIERO et al. (2008) jedoch rund um die Geburt einen deutlich härteren Kot
aufwiesen als die Sauen dieser Studie, könnte auch eine größere LPS-Freisetzung im
Dickdarm dieser Tiere zu den höheren Cortisolkonzentrationen geführt haben.
Während die Cortisolkonzentration im Speichel der Sauen beider Kontrollgruppen 72 h
nach der Geburt auf einem ähnlich hohen Niveau wie zur Geburt verblieb, wurde bereits in
beiden Fasergruppen ein deutlicher Abfall des Cortisolwertes beobachtet. Dies führte dazu,
dass zu diesem Zeitpunkt die mittleren Cortisolkonzentrationen im Speichel beider
restriktiv gefütterten Kontrollgruppen signifikant höher im Vergleich zu den beiden
Rohfasergruppen waren. Auch in der Untersuchung von OLIVIERO et al. (2008), in der die
Cortisolkonzentration in Abhängigkeit von der Aufstallungsart (Bewegungsbucht vs.
Ferkelschutzkorb) der Sauen verglichen wurde, war eine signifikante Differenz im
Cortisolgehalt im Speichel erst zwischen dem zweiten und fünften Laktationstag erkennbar
(ca. 20 ng/ml im Speichel der Sauen im Ferkelschutzkorb und ca. 12 ng/ml im Speichel der
Sauen in den Bewegungsbuchten am Tag 3 p.p.). Somit scheint zwar der Cortisolanstieg
zur Geburt nicht durch eine unterschiedliche Haltung oder Fütterung der Tiere zu
Diskussion
176
beeinflussen zu sein, wohl aber der benötigte Zeitraum bis zum Erreichen des
ursprünglichen Basalwertes. Vor dem Hintergrund, dass in faserreich gefütterten Sauen
durch die Füllung des Magen-Darmtraktes ein Sättigungsgefühl induziert wird, in Folge
dessen die Tiere weniger Aggressionen und Stereotypien zeigen (BROUNS et al. 1994;
DANIELSEN u. VESTERGAARD 2001; MEUNIER-SALAÜN et al. 2001), kann von
einem stress-reduzierenden Effekt einer faserreichen Ration ausgegangen werden. Zu
ähnlichen Ergebnissen kamen auch RUSHEN et al. (1999), welche in ihren
Untersuchungen niedrigere Cortisolkonzentrationen im Serum von faserreich gefütterten
Jungsauen nachwiesen. Somit scheint der signifikante Unterschied des Cortisolwertes
zwischen den Fütterungsgruppen am dritten Tag der Laktation jedoch insgesamt einen
Hinweis auf weniger Stress bei einem ad-libitum-Angebot einer rohfaserreichen Ration zu
geben.
Blutparameter der Sauen 5.2.7
5.2.7.1 C-reaktives Protein (CRP)
Im Vergleich zum ermittelten CRP-Basalwert am Tag der Einstallung wurde ein
signifikanter Anstieg der CRP-Konzentration von ca. 100 mg/l auf > 500 mg/l 24 h nach
der Geburt bei allen Sauen nachgewiesen. Dieser Anstieg war so groß, dass die CRP-
Konzentration zu diesem Zeitpunkt bei über der Hälfte der Sauen, selbst mit einer
Verdünnung von 1:400, nicht mehr ermittelt werden konnte. Zwar wurden 3 Tage nach der
Geburt tendenziell niedrigere Werte gemessen, jedoch waren diese in allen
Fütterungsgruppen statistisch signifikant höher als die Ausgangskonzentrationen
(ca.480 mg/l). Ein exakter Vergleich der mittleren CRP-Konzentrationen zwischen den
Fütterungsgruppen wurde durch die zum Teil sehr unterschiedliche Anzahl an auswertbaren
CRP-Konzentrationen erschwert, dennoch wurden keine signifikanten Unterschiede
zwischen den Fütterungsgruppen beobachtet.
Generell kommt es in Folge verschiedener Stimuli wie Entzündungen, Infektionen oder
Stresssituationen im Rahmen der Immunantwort zu einem schnellen und meist deutlichen
Anstieg der CRP-Konzentration im Serum von Schweinen für ca. 7-8 Tage (HEEGAARD
Diskussion
177
et al. 1998; SORENSEN et al. 2006; TECLES et al. 2007). Dass das Akute-Phase-Protein
CRP zur Geburt hin im Serum verschiedener Spezies ansteigt, konnte schon von diversen
Autoren beobachtet werden (YAMASHITA et al. 1991; KOSTRO et al. 2002; KOVÁČ et
al. 2008). Somit scheint der signifikante Anstieg der CRP-Konzentrationen zur Geburt und
die nach wie vor recht hohe CRP-Konzentration der Sauen 72 h nach der Geburt dem in der
Literatur angegebenen Zeitraum der Dauer von CRP-Veränderungen von ca. 7 Tagen nach
Auftreten des Stimulus zu entsprechen (ECKERSALL et al. 1996). Auch die große
Schwankungsbreite der CRP-Konzentration konnte bereits in vielen anderen Studien
beobachtet werden (KOVÁČ et al. 2008; ZYCZKO u. LASZYN 2010; STIEHLER 2015).
Der Grund für diese inter-individuellen Schwankungen scheint bis zum heutigen Zeitpunkt
noch nicht vollständig geklärt worden zu sein, allerdings gibt es Hinweise, dass auch
genetische Unterschiede eine Rolle spielen könnten (HAGE u. SZALAI 2007).
Dennoch waren die im Serum der Sauen ermittelten CRP-Konzentrationen im Vergleich zu
den Werten aus anderen wissenschaftlichen Studien relativ hoch: Während in der
vorliegenden Studie bereits zur Einstallung ein CRP-Wert von mindestens 84 mg/l
gemessen wurde, berichteten verschiedene Autoren von einer Konzentration von maximal
40 mg/l vor Setzung eines Stimulus wie beispielweise einer künstlichen Infektion
(HEEGAARD et al. 1998; SORENSEN et al. 2006; POMORSKA-MÓL et al. 2013). Ein
möglicher Grund für diese ca. 2-fach höheren Werte im Vergleich zu anderen Studien
könnte darin gesehen werden, dass die Sauen vor der Blutprobenentnahme bereits
zusammen mit den Sauen der entsprechenden Abferkelgruppe in eine Selektionsbucht
verbracht und gewaschen worden waren. Da die CRP-Konzentration im Serum sehr schnell
auf einen Stimulus reagiert (TIZARD 2013), könnte die Umgruppierung und das Handling
der Sauen zu Stress bei den Tieren und somit zu einem leichten Anstieg der CRP-
Konzentration geführt haben. Für diese Hypothese spricht zudem die Tatsache, dass die
Cortisolkonzentration im Speichel der Sauen unmittelbar nach der Einstallung tendenziell
höher war als 2 Tage a.p. (2,0 ng/ml zur Einstallung vs.1,5 ng/ml 2 Tage a.p.).
Auch die ermittelten CRP-Konzentrationen nach der Geburt erscheinen mit Werten von
>500 mg/l relativ hoch. Zwar berichten ROSENBAUM et al. (2012) von einer nahezu 3-
fach höheren Expression der CRP-codierenden Gene in der Leber laktierender Sauen im
Diskussion
178
Vergleich zu nicht-laktierenden, jedoch wies STIEHLER (2015) am 7. Laktationstag
maximal 216 mg/l im Serum von Sauen nach. In der dritten Laktationswoche wurden
lediglich maximal 50 mg/l CRP im Serum festgestellt (ZYCZKO u. LASZYN 2010), was
darauf hinweist, dass sich die CRP-Konzentration auch im Laufe der Laktation zu
verändern scheint. In anderen Studien konnten im Zuge eines akuten Caudophagie-
Geschehens bei Jungsauen oder nach einer künstlichen Infektion mit Actinobacillus
pleuropneumoniae mittlere CRP-Konzentrationen von maximal. 400 mg/l nachgewiesen
werden (HEEGAARD et al. 1998; SALAMANO et al. 2008). Wurden Jungsauen aufgrund
mehrmaliger Entnahme von Blutproben häufiger Stresssituationen ausgesetzt, so führte dies
dazu, dass die CRP-Konzentration im Blut dieser Tiere – vergleichbar mit einer
Sensibilisierung – von Mal zu Mal höher wurde (SALAMANO et al. 2008). Vor diesem
Hintergrund könnte vermutet werden, dass beispielsweise die Lautäußerungen der Ferkel
zu einer Stressbelastung der Sauen beigetragen haben, in Folge dessen das CRP im Serum
auf hohe Werte anstieg. Dieser Hypothese wird jedoch durch die zur selben Zeit im
Speichel ermittelten Cortisolkonzentrationen widersprochen, welche im Vergleich zu
anderen Studien als sehr niedrig bezeichnet werden können (OLIVIERO et al. 2008) (vgl.
Kapitel 5.2.6). Somit scheint weniger der Geburtsstress, sondern vielmehr die Geburt selber
den starken Anstieg der CRP-Konzentration induziert zu haben. So könnten die im Rahmen
der Geburt aufgetretenen Gewebekompressionen zu einer vermehrten Freisetzung von
proinflammatorischen Zytokinen und somit zu einer deutlichen Akute-Phase-Reaktion
geführt haben (DU CLOS 2000; TIZARD 2013). Für diese Vermutung spricht zudem die
Tatsache, dass die Sauen, welche eine besonders hohe (nicht mehr messbare) CRP-
Konzentration zur Geburt aufwiesen, im Vergleich zu den Tieren mit niedrigen CRP-
Werten signifikant mehr Ferkel gebaren (19,1 ±3,83 vs. 16,4 ±5,22) und ein tendenziell
kürzeres Geburtsintervall zwischen den Ferkeln aufzeigten (13,4 ±6,52 Min. vs. 16,1 ±11,6
Min). Vor diesem Hintergrund scheint ein hoher CRP-Wert zur Geburt nicht zwangsläufig
als negativ bewertet werden zu können.
Zwar konnten an keinem der drei Probeentnahmezeitpunkte im peripartalen Zeitraum
signifikante Unterschiede zwischen den Fütterungsgruppen festgestellt werden, jedoch
waren die gewonnenen Daten aufgrund der fehlenden (nicht messbaren) Werte und der
großen Variationsbreite der gemessenen CRP-Konzentrationen nicht vergleichbar. Im
Diskussion
179
Gegensatz zu KOSTRO et al. (2002) kann die Erfassung der CRP-Konzentrationen im
Serum von Sauen im peripartalen Zeitraum aufgrund der Sensitivität dieses Parameters und
der großen individuellen Schwankungsbreite nicht als geeignete Messgröße zur
Früherkennung peripartaler Erkrankungen empfohlen werden.
5.2.7.2 D-Laktat
Die mittleren D-Laktatkonzentrationen im Serum der Sauen unterschieden sich weder
zwischen den Fütterungsgruppen, noch zwischen den einzelnen Zeitpunkten rund um die
Geburt und erreichten eine Konzentration von maximal 0,08 mmol/l. Bei 30 Tage alten
gesunden Absetzferkeln wurden hingegen ca. 0,4 mmol/l D-Laktat nachgewiesen (WU et
al. 2014), was darauf hindeutet, dass es sich bei den ermittelten Werten um sehr niedrige D-
Laktatkonzentrationen handelt. Bei einer Störung der Blut-Darmschranke werden demnach
deutlich höhere D-Laktatkonzentrationen beobachtet: So konnten EWASCHUK et al.
(2004) bei Kälbern mit einem starken Durchfallgeschehen 13,9 mmol/l D-Laktat
nachweisen. Auch bei Ratten wurde bei einer unter experimentellen Bedingungen
ausgelöste intestinalen Ischämie ein Anstieg der D-Laktatkonzentrationen im Blut von
0,25 mmol/l auf 0,81 mmol/l beobachtet (DUZGUN et al. 2006). Vor dem Hintergrund,
dass prinzipiell auch beim Schwein und anderen Monogastriern ähnliche Zusammenhänge
wie bei der Ratte oder beim Kalb vermutet werden (EWASCHUK et al. 2005), scheint es in
der vorliegenden Studie – zumindest soweit dies anhand der D-Laktatwerte beurteilt
werden kann – zu keiner Schädigung der Darmwand gekommen zu sein. Für diese
Vermutung sprechen auch die zur Geburt gemessenen vergleichbar niedrigen
Cortisolkonzentrationen im Speichel der Sauen: Diese waren mit Werten von ca. 8 ng/ml
deutlich niedriger als die nach einer LPS-Injektion ermittelten Cortisolkonzentrationen im
Speichel von Flatdeckferkeln (ESCRIBANO et al. 2014). Zwar wurden im Laufe der
Versuchsphase insgesamt 4 MMA-Erkrankungen diagnostiziert, jedoch betrug selbst bei
diesen Tieren die maximal gemessene D-Laktatkonzentration lediglich 0,25 mmol/l. Somit
scheint es in diesen Fällen zu einem Bakterieneintrag über andere Organe, wie das Gesäuge
oder den Urogenitaltrakt, gekommen zu sein.
Diskussion
180
Blutparameter der Ferkel 5.2.8
Da über die Plazenta keine Antikörper übertragen werden, sind neugeborene Ferkel zum
Zeitpunkt der Geburt immunologisch betrachtet naiv und somit auf den Transfer maternaler
Antikörper über das Kolostrum angewiesen (PAYNE u. MARSH 1962; ROOKE u.
BLAND 2002). Innerhalb der ersten 24 - 48 h nach der Geburt werden über den Dünndarm
der Saugferkel die im Kolostrum enthaltenden Immunglobuline, aber auch andere Proteine
nicht selektiv absorbiert (PAYNE u. MARSH 1962). Dies führt dazu, dass die
Konzentrationen beispielweise von Protein, Albumin und γ-Globulin im Serum der Ferkel
in dieser Zeit stark ansteigt (TUCHSCHERER et al. 2000; ROOTWELT et al. 2012).
Die ermittelten Immunokritwerte im Ferkelserum 48 h nach der Geburt zeigten eine hohe
positive Korrelation sowohl mit dem Proteingehalt als auch mit dem γ-Globulin-Gehalt im
Serum. Die Fraktion der γ-Globuline spiegelt hauptsächlich den Immunglobulin-G-Gehalt
im Serum wider (ECKERSALL 2008). Diese Ergebnisse unterstützen die Beobachtungen
von VALLET et al. (2013), welche bereits eine hohe Korrelation des Immunokrits mit den
Ergebnissen anderer Immunglobulin-Messmethoden nachwiesen. Somit scheint die
Messung des Immunokrits eine gute Methode zur Beurteilung der passiven Immunität der
Ferkel darzustellen (VALLET et al. 2013).
Zwischen den Rohfasergruppen und den jeweiligen Kontrollgruppen konnten 48 h nach der
Geburt keine signifikanten Unterschiede im Immunokrit, Protein- und γ-Globulin-Gehalt
nachgewiesen werden. Dies galt auch für den Vergleich von leichten und schweren Ferkeln
eines Wurfes. Das Fehlen von Signifikanzen bei unterschiedlichen Geburtsgewichten
widerspricht den Beobachtungen anderer Autoren, welche eine niedrigere Kolostrum- und
somit Immunglobulinaufnahme bei leichten Ferkeln nachwiesen (ANDERSEN et al. 2011;
DEVILLERS et al. 2011; QUESNEL et al. 2012). So steigt insbesondere in großen Würfen
die Anzahl leichter Ferkel, welche nicht in der Lage sind sich gegen die Wurfgeschwister
durchzusetzen und eine ausreichend hohe Kolostrummenge aufzunehmen (DE PASSILLÉ
u. RUSHEN 1989; ANDERSEN et al. 2011). DEVILLERS et al. (2011) beobachteten
parallel zur Kolostrumaufnahme der Ferkel einen Anstieg der mittleren IgG-Konzentration
im Blutplasma der Ferkel 24 h nach der Geburt, welche jedoch ab einer bestimmten
Kolostrummmenge nicht weiter anstieg, sondern ein Plateau von ca. 26,2 g/l erreichte. Da
Diskussion
181
die Konzentration der γ-Globuline im Serum der Ferkel dieser Studie in etwa diesem Wert
entsprach und auch der Immunokrit keine signifikanten Unterschiede aufwies, kann davon
ausgegangen werden, dass auch die leichten Ferkel eine ausreichende Kolostrumversorgung
erhalten hatten. Dies wiederum könnte auf die intensive Geburtsüberwachung im Rahmen
des Versuches zurückzuführen sein: So wurden nach Geburt jedes Ferkels der Eingang der
Atemwege gesäubert und das Ferkel an das Gesäuge angelegt. Zudem wurden bei großen
Würfen stundenweise die schwersten Ferkel vom Gesäuge entfernt, um auch den kleineren
Ferkeln eine adäquate Kolostrumaufnahme zu ermöglichen. Zwar wurden durch diese
Maßnahmen möglicherweise unter natürlichen Bedingungen auftretende Unterschiede in
der Kolostrumversorgung zwischen den einzelnen Ferkeln aufgehoben, jedoch zeigen diese
Ergebnisse deutlich, dass durch eine intensive Überwachung der Kolostrumaufnahme eine
ausreichende Kolostrumversorgung auch leichter Ferkel erreicht werden kann.
Dennoch wurden im Serum der Ferkel der Rohfasergruppe 1 im Vergleich zu den anderen
Fütterungsgruppen der niedrigste Immunokrit sowie die niedrigsten Gehalte an Protein,
Albumin und γ-Globulin nachgewiesen, was auf eine verhältnismäßig schlechtere
Kolostrumaufnahme der Ferkel dieser Gruppe hindeutet. Vor dem Hintergrund, dass die
neonatale Mortalität stark von der Kolostrumaufnahme beeinflusst wird (LAY et al. 2002;
QUESNEL et al. 2012), könnten auch die hohen Saugferkelverluste von 19 % in dieser
Gruppe zum Teil auf die vergleichsweise niedrige Kolostrumversorgung zurückzuführen
sein. Da die typischen Risikofaktoren einer niedrigen Kolostrumaufnahme wie lange
Geburten und somit geschwächte Ferkel, niedrige Geburtsgewichte sowie eine große
Anzahl an Ferkeln (ROEHE u. KALM 2000; LAY et al. 2002) in dieser Gruppe
ausgeschlossen werden konnten, müssen andere mögliche Ursachen in Betracht gezogen
werden. ILLMANN et al. (2015) stellten fest, dass Ferkel von Sauen, welche 12 - 24 nach
der Geburt sehr unruhig waren, weniger an Gewicht zunahmen als Ferkel von ruhigen
Sauen. Zudem haben unruhige und gestresste Sauen im Vergleich zu ruhigen Tieren höhere
Erdrückungsverluste (MUNS et al. 2016). Aus diesem Grund wäre es durchaus denkbar,
dass die hohen Temperaturen im Abferkelstall zusammen mit der für die Sau
„aufwändigeren“ Fütterungstechnik zu unruhigen Sauen geführt und somit eine Rolle in der
niedrigeren Kolostrumaufnahme der Ferkel der Rohfasergruppe 1 gespielt haben könnten.
Diskussion
182
Trotzdem sind weitere Untersuchungen nötig, um auch andere Einflussfaktoren, wie eine
unzureichende Kolostrumqualität oder Fütterungseinflüsse ausschließen zu können.
Ein Vergleich der mittleren Albumingehalte im Serum der Ferkel zeigte zudem einen
signifikant niedrigeren Albumingehalt sowohl bei den jeweils leichten Ferkeln eines
Wurfes, als auch bei den Ferkeln der Rohfasergruppe 2 im Vergleich zu den Ferkeln der
parallel aufgestallten Kontrollgruppe. Das Protein Albumin, welches im Wesentlichen an
der Aufrechterhaltung des kolloidosmotischen Druckes in den Blutgefäßen beteiligt ist und
als Transportprotein fungiert (ECKERSALL 2008), steigt nach der Geburt durch die
Kolostrumaufnahme der Ferkel deutlich an (TUCHSCHERER et al. 2000; ROOTWELT et
al. 2012). ROOTWELT et al. (2013) konnten zudem einen positiven Zusammenhang
zwischen der Albuminkonzentration im Serum der Ferkel und der Fläche und dem Gewicht
der Plazenta feststellen. Weiterhin war die Fläche der Plazenta pro Ferkel bei kleinen
Würfen mit schwereren Ferkeln größer als bei großen Würfen, was daraufhin deutet, dass
Ferkel mit einer großen Plazentafläche ein höheres Geburtsgewicht aufweisen
(ROOTWELT et al. 2013). Auch STONE und CHRISTENSON (1982) beobachteten einen
positiven Zusammenhang zwischen dem Gewicht von Ferkelföten und der
Albuminkonzentration im fetalen Ferkelserum, welcher vor allem in großen Würfen
ausgeprägt war. Da die Sauen der Rohfasergruppe 2 die mit Abstand meisten Ferkel zur
Welt brachten und diese im Vergleich zu den anderen Gruppen das niedrigste
Geburtsgewicht aufwiesen, ist es vor diesem Hintergrund nicht verwunderlich, dass sowohl
diese Ferkel, als auch die jeweils als „leicht“ beurteilten Ferkel eines Wurfes über
vergleichsweise niedrige Albuminkonzentrationen im Serum verfügten.
Ferkel, welche die Säugezeit nicht überlebten, waren zur Geburt mit einem mittleren
Geburtsgewicht von lediglich 1,06 ±0,27 kg ca. 100 g leichter als die jeweils als „klein“
beurteilten Ferkel eines Wurfes (1,14 ±0,17 kg). Obwohl ausschließlich vitalen Ferkeln mit
einem Körpergewicht von > 1 kg Blut entnommen wurde, konnten im Serum dieser Ferkel
im Vergleich zu den überlebenden Ferkeln signifikant niedrigere Konzentrationen aller
gemessenen Parameter im Serum nachgewiesen werden. Dies entspricht den Ergebnissen
diverser anderer Studien (QUESNEL et al. 2012; ROOTWELT et al. 2012; VALLET et al.
2013). Somit scheint eine intensive Optimierung der Kolostrumaufnahme bei diesen
Diskussion
183
Ferkeln keinen Effekt gehabt zu haben. Eine mögliche Ursache für die Mortalität dieser
eigentlich als „vital“ beurteilten Ferkel könnte in einer unbemerkten Asphyxie zur Geburt
mit nachfolgend negativen Konsequenzen für das Überleben dieser Ferkel gesehen werden
(HERPIN et al. 1996). Um diese Vermutung jedoch absichern zu können, müssten weitere
Analysen wie die Messung des Laktatwertes im Serum der Ferkel durchgeführt werden.
In allen Fütterungsgruppen konnte ein signifikanter Abfall des Immunokrits zum Zeitpunkt
des Absetzens (ca. Tag 35) im Vergleich zum Zeitpunkt 48 h nach der Geburt festgestellt
werden. Dies ist darin begründet, dass zum Zeitpunkt des Absetzens die Halbwertszeit der
über das Kolostrum aufgenommenen IgG überschritten ist, jedoch die Eigensynthese von
IgG erst gerade beginnt (CURTIS u. BOURNE 1971; BOURNE 1973): 24 h nach der
Geburt kommt es zu einem langsamen Abfall der IgG-Konzentration im Blut der Ferkel,
welche in der vierten bis fünften Lebenswoche ein Minimum, von ca. 9 g/l erreicht; nach
diesem Zeitpunkt steigen die IgG-Konzentrationen durch die beginnende Eigensynthese
von Immunglobulinen erneut an (FRENYO et al. 1980; SCHAREK et al. 2005). Zwar
zeigten die leichten Ferkel eines Wurfes zum Absetzen einen signifikant niedrigeren
Immunokrit im Vergleich zu den schweren Wurfgeschwistern; dieser Unterscheid betrug
jedoch ebenso wie zum Zeitpunkt 48 h p.p. lediglich 0,01 und war somit nur marginal
niedriger, was keine klinische Relevanz haben sollte.
Gehalt an Clostridium perfringens ssp. im Kot post partum 5.2.9
Während die Anzahl KbE von C. perfringens im unmittelbar post partal entnommenen
Sauenkot in beiden Kontrollgruppen ca. 4,5 log10 KBE/g Kot betrug, war diese im Kot der
beiden Fasergruppen um das 10- bzw. 100-fache reduziert (Rfa 1: 3,02 ±0,76 log10 KBE/g
Kot; Rfa 2: 2,10 ±1,50 log10 KBE/g Kot). Auch in anderen Untersuchungen konnte eine
Reduktion der Clostridien-Anzahl im Schweinekot durch eine rohfaserreiche Fütterung
erreicht werden (PATTERSON et al. 2010; SCHUBBERT et al. 2010; TAN et al. 2015).
Eine Fütterung von beispielweise Topinambur oder Kleegrassilage an tragende Sauen
führte zu einer Reduktion der Clostridien-Anzahl um das Zehnfache (von Ausgangswerten
von 4 bis 5 log10 KBE/g Kot auf Werte von 3 bis 3,5 log10 KBE/g Kot) (SCHUBBERT et al.
2010). Hierbei scheint es jedoch auf den Gehalt an fermentierbarer Faser anzukommen: So
Diskussion
184
wurden diese Effekte insbesondere dann beobachtet, wenn leicht fermentierbare
Polysaccharide wie das Präbiotikum Inulin oder Konjakmehl – der hauptsächlich aus
Glucomannanen bestehende gemahlene Wurzelstock der Teufelszunge – eingesetzt wurden
(PATTERSON et al. 2010; TAN et al. 2015). Wurde dagegen Stroh verfüttert, so war kein
positiver Effekt auf die im Kot befindliche Clostridien-Anzahl festzustellen (SCHUBBERT
et al. 2010). Auch In-vitro-Untersuchungen von MAY et al. (1994) kamen zu ähnlichen
Ergebnissen. Die Autoren der letztgenannten Studie führen die Reduktion der Clostridien-
Anzahl im Sauenkot bei Zufuhr von fermentierbarer Faser auf die vermehrte Bildung von
kurzkettigen Fettsäuren und die daraus folgende pH-Reduktion zurück (MAY et al. 1994).
Da auch in der vorliegenden Studie ein signifikant niedrigerer pH-Wert im Kot der
rohfaserreich gefütterten Tiere festgestellt werden konnte und auch andere Studien auf eine
veränderte mikrobiologische Zusammensetzung der Darmflora bei niedrigen pH-Werten
hinweisen (WENK 2001; LOUIS et al. 2007), könnte das durch die faserreiche Fütterung
veränderte Darmmilieu die Vermehrung von C. perfringens minimiert haben. Dies wäre
auch eine Erklärung für die niedrigere Clostridien-Anzahl im Kot der Rohfasergruppe 2:
Durch die höhere Aufnahme des Rohfaserpellets 2 und folglich auch von bakteriell
fermentierbarer Substanz wurde der pH-Wert im Kot dieser Tiere stärker abgesenkt (6,42
±0,39 vs. 6,35 ±0,53 24 h p.p.), was zu einer deutlicheren Reduktion der Clostridien-
Anzahl führte.
Im Rahmen der stichprobenartig durchgeführten molekularbiologischen Untersuchung der
aus dem Kot isolierten Bakterienkulturen konnte das α-Toxin als Majortoxin nachgewiesen
werden. Somit handelte es sich bei den analysierten Kulturen um Bakterien der Spezies C.
perfringens Typ A. Zwar kommt diese Bakterienspezies auch in gesunden Tieren
regelmäßig vor (CHAN et al. 2012), dennoch ist C. perfingens Typ A durchaus in der Lage
ein Durchfallgeschehen insbesondere bei Saugferkeln auszulösen (SONGER u. UZAL
2005; HEINRITZI 2006).
Trotz der zum Teil um den Faktor 100 höheren Konzentrationen von C. perfringens im Kot
der restriktiv gefütterten Kontrolltiere konnte weder bei den Sauen noch bei den Ferkeln
eine Beeinträchtigung der Gesundheit festgestellt werden. Bei einem Vergleich der
Clostridien-Anzahl mit der aus früher durchgeführten Studien (TSCHIRDEWAHN et al.
Diskussion
185
1991; SCHUBBERT et al. 2010; CHAN et al. 2012) fällt auf, dass eine Anzahl der
Clostridien von 104/g Kot der restriktiv gefütterten Sauen auch bei Mastschweinen oder
tragenden und laktierenden Sauen zu finden sind. Vor dem Hintergrund, dass diese Mengen
auch im Kot der restriktiv gefütterten Sauen nachgewiesen werden konnten, scheint das
Fehlen klinischer Symptome in dieser Studie demnach nicht verwunderlich.
Dennoch verdient eine Keimzahlreduktion um zum Teil zwei Zehnerpotenzen durch Zulage
eines rohfaserreichen Futters insbesondere deshalb besondere Aufmerksamkeit, da die
neugeborenen Ferkel unmittelbar nach der Geburt mit dem Kot der Sau in direkten Kontakt
gelangen. Sauenkot stellt eine wichtige Infektionsquelle für durch C. perfringens Typ A
hervorgerufene Durchfälle bei Saugferkeln dar (SONGER u. UZAL 2005; ALLAART et
al. 2013). Zudem dürfte die Infektionsdosis gerade für untergewichtige Ferkel, welche
meist nur wenig Kolostrum erhalten haben, eine große Rolle spielen. Insbesondere in
Sauenbeständen mit Clostridien-typischen Erkrankungen könnte diese Beobachtung als
Hilfe zur Prävention weiterer Erkrankungsfälle von Nutzen sein.
Zusammensetzung des Mikrobioms 5.2.10
Auf Ebene der Bakterienordnung waren zu allen Zeitpunkten unabhängig von der
Fütterungsgruppe die Ordnungen Clostridiales (mit einem prozentualen Anteil von ca.
50 %) und Bacteroidales (mit einem prozentualen Anteil von ca. 18 %) dominierend. Dies
entspricht vorherigen Untersuchungen (KIM et al. 2012; NIU et al. 2015), in denen ähnlich
hohe Anteile dieser Bakterienordnungen im Kot von 150 Tage alten Schweinen
nachgewiesen wurden. Auf Ebene der Bakterienfamilien dominierten Clostridiaceae (4-
30 %), Lachnospiraceae (5-14 %), Lactobacillaceae (7-19 %), und Ruminococcaceae (15-
24 %). Ähnlich hohe Anteile konnten in einer Studie von GERZOVA et al. (2015) ermittelt
werden, in welcher die mikrobielle Zusammensetzung des Kotes von Endmastschweinen
aus verschiedenen europäischen Ländern verglichen wurde. In insgesamt 468 Ingesta- und
Kotproben wurden in ihren Untersuchungen 17,6 ±9,05 % Ruminococcaceae, 13,0 ±11,0 %
Lactobacillaceae, 11,7 ±11,3 % Clostridiaceae und 10,9 ±4,84 % Lachnospiraceae
nachgewiesen (GERZOVA et al. 2015). Zu ähnlichen Ergebnissen kommt auch eine Studie
von MULDER et al. (2009), in welcher das fäkale Mikrobiom von 12 Sauen bestimmt
wurde.
Diskussion
186
Die Zusammensetzung der bakteriellen Mikroflora des Dickdarms und damit auch das
Vorkommen von Bakterien im Kot wird im Wesentlichen von der Futterzusammensetzung
beeinflusst (ISAACSON u. KIM 2012; AUMILLER et al. 2015; PAßLACK et al. 2015).
Deshalb überrascht es nicht, dass zu den Zeitpunkten der Einstallung sowie zu Beginn der
dritten Laktationswoche, an denen allen Sauen in etwa dieselbe Futterart und –menge
zugeteilt worden waren, keine signifikanten Unterschiede der hauptsächlich
vorkommenden Bakterienordnungen und –familien zwischen den Fütterungsgruppen
festgestellt werden konnten. Zur Geburt und somit maximal 7 Tage nach Beginn der
faserreichen Fütterung wurden hingegen im fäkalen Microbiom deutliche Unterschiede
zwischen den jeweiligen Fütterungsgruppen nachgewiesen.
Im Vergleich zu anderen Studien, in welchen die mikrobielle Zusammensetzung der
Darmflora erst nach einer 15-30-tägigen Adaptationszeit an die jeweilige Ration bestimmt
wurde (PIEPER et al. 2008; HERMES et al. 2010; CHEN et al. 2013), erscheint eine
Adaptationszeit von lediglich maximal 7 Tagen in dieser Studie als sehr kurz. Dass sich die
Darmflora jedoch bereits nach kurzer Zeit an eine veränderte Ernährung anpassen kann,
konnten bereits WU et al. (2011) in einer Studie am Menschen belegen. Wurde eine eher
fettreiche Diät durch eine faserreiche ersetzt, so kam es schon 24 h nach Beginn der
Nahrungsumstellung zu deutlichen Veränderungen im fäkalen Microbiom der betroffenen
Personen, welche insbesondere durch eine Zunahme von Prevotella gekennzeichnet waren.
Aufgrund der Tatsache, dass die beschriebenen Unterschiede im fäkalen Mikrobiom der
verschiedenen Fütterungsgruppen zu Beginn der dritten Laktationswoche nicht mehr
nachweisbar waren, kann davon ausgegangen werden, dass eine Futterumstellung zwar
kurzzeitige, jedoch keinerlei Langzeiteffekte nach sich zieht. Dies kann durch
Untersuchungen von CONLON und BIRD (2014) bestätigt werden, welche bei
Präbiotikagaben nur für die Dauer der Intervention Effekte auf die Darmflora nachweisen
konnten. Somit scheint die Zusammensetzung des Futters einen größeren Einfluss als die
Futtermenge auf die Zusammensetzung des Mikrobioms zu haben.
Im Folgenden werden die wesentlichen Veränderungen der mikrobiellen Zusammensetzung
des Sauenkotes der verschiedenen Fütterungsgruppen im peripartalen Zeitraum
zusammenfassend beschrieben und getrennt nach Bakterienordnungen und -familien
Diskussion
187
diskutiert. Eine Übersicht der prozentualen Anteile der maßgeblichen Bakterienordnungen
im Kot der verschiedenen Fütterungsgruppen zu den drei Zeitpunkten Einstallung, 24-48 h
post partum sowie zu Beginn der dritten Laktationswoche ist in der Tabelle 97 dargestellt.
Tabelle 97: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der im Kot der verschiedenen Fütterungsgruppen hauptsächlich vertretenden Bakterienordnungen (%) zu den drei Zeitpunkten (ZP 1-3) der Probeentnahme
Ordnung ZP 1 ZP 2 ZP 3
Gruppe n x s n x s n x s
Bacteroidales
K1 9 24,9a
±6,87 10 20,9ab
±4,22 9 16,0b
±6,57
Rfa 1 10 25,4ab
±9,95 12 28,6a
±3,72 11 20,9b ±7,37
K 2 12 15,8a
±6,68 12 18,6a
±3,27 13 15,7a
±6,25
Rfa 2 11 17,7ab ±8,95 12 23,2
a ±6,70 10 13,0b ±7,64
Clostridiales
K1 9 40,0a ±4,76 10 53,1
b ±6,75 9 58,2b ±10,2
Rfa 1 10 43,8a ±15,3 12 43,4
a ±4,44 11 52,4a ±16,3
K 2 12 50,5a ±10,5 12 55,8
ab ±7,46 13 59,5b ±12,6
Rfa 2 11 49,7ab
±9,66 12 44,1a
±10,3 10 62,6b
±14,5
Lactobacillales
K 1 9 18,1a
±8,30 10 8,07b
±8,57 9 8,94b
±4,22
Rfa 1 10 15,4a
±12,6 12 10,6a
±3,28 11 9,84a
±11,9
K 2 12 20,0a ±12,2 12 8,23
b ±5,60 13 8,99b ±10,6
Rfa 2 11 16,1ab ±9,32 12 19,6
a ±8,71 10 8,63b ±7,79
a,b,c ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
ZP 1: Einstallung; ZP 2: 24-48h p.p.; ZP 3: Beginn 3. Laktationswoche;
Rfa 1: Rohfasergruppe 1; Rfa 2: Rohfasergruppe 2; K 1: Kontrollgruppe 1; K 2: Kontrollgruppe 2
Eine Darstellung der prozentualen Anteile der maßgeblichen Bakterienfamilien im Kot der
verschiedenen Fütterungsgruppen zu den drei Zeitpunkten Einstallung, 24-48 h post partum
sowie zu Beginn der dritten Laktationswoche findet sich in der Tabelle 98.
Diskussion
188
Tabelle 98: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der im Kot der verschiedenen Fütterungsgruppen hauptsächlich vertretenden Bakterienfamilien (%) zu den drei
Zeitpunkten (ZP 1-3) der Probeentnahme
Familie ZP 1 ZP 2 ZP 3
Gruppe n x s n x s n x s
Clostridiaceae
K 1 9 7,19a ±4,74 10 4,76
a ±2,86 9 21,5b ±9,08
Rfa 1 10 10,9ab ±15,9 12 3,92
a ±4,19 11 15,2b ±17,7
K 2 12 16,0a
±13,9 12 3,36b
±1,59 13 24,9c
±11,9
Rfa 2 11 14,3a
±9,52 12 3,91b
±4,55 10 30,3a
±20,5
Lachnospiraceae
K 1 9 5,81a
±2,53 10 8,27a
±2,74 9 5,29a
±2,63
Rfa 1 10 4,82a ±2,26 12 13,9
b ±2,88 11 5,86a ±2,32
K 2 12 6,62a ±3,01 12 8,11
a ±2,45 13 4,29b ±1,82
Rfa 2 11 5,96a ±1,15 12 12,8
b ±3,99 10 5,28a ±2,19
Ruminococcaceae
K 1 9 15,3a ±4,40 10 23,3
b ±7,48 9 18,9ab ±6,05
Rfa 1 10 15,7a ±5,98 12 13,4
a ±3,42 11 17,0a ±5,05
K 2 12 17,1a
±7,08 12 26,2b
±5,80 13 17,2a
±5,29
Rfa 2 11 16,1a
±4,05 12 14,6a
±3,83 10 16,3a
±7,56
Lactobacillaceae
K 1 9 18,0a
±8,34 10 7,10b
±8,30 9 8,94b
±4,21
Rfa 1 10 14,8a ±13,0 12 10,2
a ±3,15 11 9,77a ±11,9
K 2 12 18,2a ±12,5 12 7,74
ab ±5,61 13 8,92b ±10,7
Rfa 2 11 15,4ab ±9,49 12 19,3
a ±8,78 10 8,53b ±7,81
a,b,c ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
ZP 1: Einstallung; ZP 2: 24-48h p.p.; ZP 3: Beginn 3. Laktationswoche; Rfa 1: Rohfasergruppe 1; Rfa 2: Rohfasergruppe 2; K 1: Kontrollgruppe 1; K 2: Kontrollgruppe 2
5.2.10.1.1 Ordnung Bacteroidales
Mit Ausnahme der Kontrollgruppe 1 stieg der prozentuale Anteil der gram-negativen
Bacteroidales im Kot aller Fütterungsgruppen zur Geburt hin tendenziell an. Zum
Zeitpunkt der Geburt war der prozentuale Anteil dieser Bakterienordnung im Kot beider
Fasergruppen im Vergleich zu den Kontrollgruppen signifikant größer. Eine bekannte
Familie, welche zu der Ordnung der Bacteroidales gehört, ist die Familie der
Prevotellaceae (KRIEG et al. 2010). Prevotellaceae sind mäßig saccharolytisch und
bevorzugen einfache Kohlenhydrate wie Xylane als Substrat (SHAH u. COLLINS 1990;
CONLON u. BIRD 2014; EUZÉBY 2016). Da vor allem Sojabohnenschalen eine leicht
fermentierbare Rohfaserquelle darstellen (NOBLET u. LE GOFF 2001; WENK 2001; DE
LEEUW et al. 2008), könnte die zusätzliche Aufnahme des Rohfaserpellet-/
Laktationsfuttergemisches der beiden Rohfasergruppen am Tag der Geburt zu diesem
Anstieg der Prevotellaceae beigetragen haben. Bei Betrachtung der prozentualen Anteile
der Prevotellaceae fällt jedoch lediglich ein leicht, aber nicht signifikant größerer Anteil
Diskussion
189
dieser Bakterienfamilie in der Gruppe der faserreich gefütterten Tiere auf. Während im Kot
der Kontrolltiere 24 – 48 h post partum ca. 5 % Prevotellaceae nachgewiesen wurden,
waren dies in den Fasergruppen ca. 7 %. Nach einer genaueren Analyse der weiteren
Bakterienfamilien konnte ein signifikant größerer Anteil einer noch unbenannten
Bakterienfamilie, welche momentan als S24-7 bezeichnet wird, im Kot der faserreich
gefütterten Tiere festgestellt werden. Der prozentuale Anteil der S24-7 Bakterien betrug im
Kot der Versuchsgruppen zur Geburt ca. 8-10 % und in dem der Kontrollgruppen weniger
als 5 %. Neueste Untersuchungen zeigten mithilfe genomischer Analysen, dass diese
Familie vor allem an dem Abbau von Hemizellulose und Pektinen beteiligt sein könnte
(ORMEROD et al. 2016). Dementsprechend scheint der höhere Anteil an Bacteroidales im
Kot der Fasergruppen durch die Zufuhr von fermentierbaren Rohfaserträgern bedingt zu
sein. Zu Beginn der dritten Laktationswoche konnte in allen Gruppen eine deutliche und
zum Teil signifikante Reduktion der Bakterienordnung Bacteroidales nachgewiesen
werden. Zwar könnte diese Reduktion insbesondere in den ehemals faserreich gefütterten
Gruppen auf die im Vergleich zur Geburt geringere Zufuhr an fermentierbarer Faser durch
das rohfaserarme Laktationsfutter zurückzuführen sein, jedoch erscheint der weitere Abfall
dieser Bakterienordnung im Kot der Kontrollgruppe in diesem Zusammenhang recht
unerwartet. Da die Ordnung der Bacteroidales jedoch nicht nur aus den beiden zuvor
beschriebenen Familien der Prevotellaceae und S24-7 besteht, sondern viele weitere
Bakterienfamilien mit unterschiedlichen Substratpräferenzen beinhaltet (KRIEG et al.
2010), könnten die Veränderungen im Mikrobiom auch durch diese Bakterien
hervorgerufen worden sein. So konnte beispielsweise gezeigt werden, dass bei Menschen
eine protein- und fettreiche Nahrung das Wachstum von Bacteroides und eine
kohlenhydratreiche Ernährung das Wachstum von Prevotella fördert, welche beide unter
der Ordnung Bacteroidales zusammengefasst sind (WU et al. 2011; CONLON u. BIRD
2014).
5.2.10.1.2 Ordnung Clostridiales
Während der prozentuale Anteil der gram-positiven Clostridiales in beiden
Kontrollgruppen zur Geburt hin anstieg (von 40 bzw. 50 % auf 55 %), blieb dieser im Kot
der faserreich gefütterten Gruppen konstant, bzw. fiel leicht ab. Demnach konnte im Kot
der Versuchsgruppen zu diesem Zeitpunkt ein um ca. 10 % und somit signifikant
Diskussion
190
niedrigerer Anteil Clostridiales nachgewiesen werden. Bei genauer Betrachtung der
wesentlichen Bakterienfamilien der Ordnung Clostridiales, wird deutlich, dass diese
Veränderung vor allem auf Veränderungen innerhalb der Familien Lachnospiraceae und
Ruminococcaceae zurückzuführen sind. Zwar war zur Geburt im Vergleich zur Einstallung
ein Anstieg der Lachnospiraceae in allen vier Gruppen zu erkennen, jedoch war dieser in
beiden Rohfasergruppen deutlich größer, was in einem signifikant höheren Anteil
Lachnospiraceae im Kot der Versuchstiere führte (ca. 8 % im Kot der Kontroll- und ca.
13 % im Kot der Versuchstiere). In der Familie der Ruminococcaceae kam es zwischen den
Fütterungsgruppen zur Geburt zu gegenläufigen Veränderungen: So konnte im Kot beider
Kontrollgruppen ein signifikanter Anstieg dieser Bakterienfamilie von ursprünglich 16 %
auf 25 % festgestellt werden; in den Rohfasergruppen sank der prozentuale Anteil der
Ruminococcaceae hingegen um ca. 2 % auf insgesamt ca. 14 % ab. Der prozentuale Anteil
der Clostridiaceae wurde in allen Gruppen zur Geburt hin kleiner und unterschied sich
nicht zwischen den Fütterungsgruppen.
Sowohl die Familie der Ruminococcaceae als auch die der Lachnospiraceae wird den
fibrolytischen Bakterien zugeordnet, welche eine große Rolle im Abbau von pflanzlichen
Gerüstsubstanzen spielen (BRULC et al. 2009; BIDDLE et al. 2013). Während Bakterien
der Familie der Ruminococcaceae in der Lage sind komplexe Kohlenhydrate wie Zellulose
abzubauen, fermentieren die Bakterien der Familie der Lachnospiraceae insbesondere
leichter verfügbare Kohlenhydrate der NSP-Fraktion, wie beispielsweise Galactose und
Xylose (BIDDLE et al. 2013; APAJALAHTI u. VIENOLA 2016).
Gerste als Hauptbestandteil beider Rohfaserpellets enthält mehr leicht fermentierbares ß-
Glucan als Weizen (42 ±5 g/kg TS vs. 8 ±1 g/kg TS), welcher den Hauptbestandteil des
Laktationspellets ausmachte (KNUDSEN 1997). Zudem wies KNUDSEN (1997) in
mehlförmigen Haferspelzen mit 503 g NSP/kg den höchsten NSP-Gehalt im Vergleich zu
38 anderen getreidehaltigen Futtermitteln nach. Da auch Sojabohnenschalen aus leicht
fermentierbaren Kohlenhydrate bestehen (DE LEEUW et al. 2008), erscheint vor diesem
Hintergrund der signifikant größere Anteil der Lachnospiraceae im Kot der faserreich
gefütterten Tiere nachvollziehbar. Die Beobachtung, dass der Anteil der Lachnospiraceae
im Rahmen einer faserreichen Fütterung ansteigt, konnten auch MULDER et al. (2009) in
Diskussion
191
einer Studie feststellen. Sie verglichen das Mikrobiom im Kot von Sauen, welche entweder
in einem geschlossenen Stall oder draußen auf der Wiese gehalten wurden, und konnten im
Kot der „Outdoor-Sauen“ einen deutlich höheren Anteil Lachnospiraceae nachweisen
(8,87 % vs. 3,84 %). Der Familie der Lachnospiraceae werden in der Humanmedizin,
aufgrund ihrer Eigenschaft die kurzkettige Fettsäure Butyrat zu produzieren, zudem
positive Effekte auf die Darmgesundheit zugeschrieben (MEEHAN u. BEIKO 2014). Somit
könnte vermutet werden, dass durch die Aufnahme beider rohfaserreichen Pellets, welche
zu einem signifikant höheren Anteil Lachnospiraceae im Kot führten, eine positive
Wirkung auf die Darmflora der Sauen erzielt werden kann.
Zu Beginn der dritten Laktationswoche sank der prozentuale Anteil der Lachnospiraceae
im Vergleich zur Geburt insbesondere im Kot der vormals faserreich gefütterten Gruppe
signifikant, sodass im Kot der Sauen aller Fütterungsgruppen ein nahezu identischer Anteil
von ca. 5 % erreicht wurde. Da das Laktationsfutter im Vergleich zu den beiden
Rohfaserpellets deutlich niedrigere Gehalte an NDF und ADF und somit auch an bakteriell
fermentierbarer Substanz aufwies, könnte die Reduktion der Lachnospiraceae in der Mitte
der Laktation durch das Fehlen einer ausreichenden Menge bakteriell fermentierbarer
Kohlenhydrate erklärt werden.
Während die Familie der Ruminococcaceae zur Geburt hin in beiden Versuchsgruppen
geringgradig abnahm, stieg der Anteil dieser Bakterienfamilie in beiden Kontrollgruppen
deutlich an und war zu diesem Zeitpunkt im Kot der restriktiv gefütterten Tiere signifikant
höher (23-26 % in den Kontroll- und ca. 14 % in den Rohfasergruppen). Da ein Großteil
der Unterarten dieser Bakterienfamilie nicht näher bestimmt werden konnte, lässt sich über
die Ursache der Veränderungen zur Geburt lediglich spekulieren. Auf den ersten Blick
erscheint eine Zunahme der vor allem zellolytisch wirkenden Ruminococcaceae im Kot der
Tiere, welche lediglich geringe Mengen eines faserarmen Laktationsfutters zugeteilt
bekamen, eher unlogisch. Einige Autoren berichten sogar von einer deutlichen Reduktion
bis hin zum Verschwinden dieser Bakterienfamilie bei Fütterung einer rohfaserarmen Diät
(GRAHAM u. ÅMAN 1991; KONSTANTINOV et al. 2004; JHA u. BERROCOSO 2015).
Dennoch könnte eine mögliche Erklärung für die in dieser Studie beobachteten
Veränderungen in den zur Geburt signifikant unterschiedlichen pH-Werten im Kot der
Sauen liegen. So betrug der mittlere pH-Wert im Kot der Kontrolltiere 24 h nach der
Diskussion
192
Geburt 7,20 bzw. 7,16; jedoch der im Kot der Rohfaserrguppen 6,42 bzw. 6,35. Da einige
Vertreter der Ruminococcaceae bei einem niedrigen pH-Wert von 6,15 nicht in der Lage
sind zu wachsen und sich zu vermehren (PIEPER et al. 2009; BINDELLE et al. 2010),
könnte der signifikant höhere pH-Wert im Kot der Kontrolltiere einen Wachstumsvorteil
für diese Bakterienfamilie mit sich gebracht haben. Hierfür würden auch die im Rahmen
dieser Studie beobachteten Veränderungen des prozentualen Anteils der Ruminococcaceae
im weiteren Verlauf der Laktation sprechen: Mit steigender Futteraufnahme aller Sauen in
der Laktation und somit höherem Angebot von fermentierbaren Substrat im Dickdarm
konnte im Kot aller Tiere zu Beginn der dritten Laktationswoche ein nahezu identischer
pH-Wert von ca. 6,7 ermittelt werden. Bei diesem im Vergleich zur Abferkelung deutlich
niedrigeren pH-Wert im Kot der Kontrolltiere wurde gleichzeitig eine teils signifikante
Reduktion der Ruminococcaceae auf ca. 18 % beobachtet. Parallel zu dem im Vergleich zur
Abferkelung höheren pH-Wert im Kot der zuvor rohfaserreich gefütterten Sauen wurde ein
geringgradiger Anstieg der Ruminococcaceae festgestellt. Auch Untersuchungen am
Menschen zeigten ein reduziertes Vorkommen von Ruminococcaceae in Darmabschnitten
mit einem niedrigen pH-Wert wie dem terminalen Ileum und Colon (MORGAN et al.
2012). Somit scheint der pH-Wert im Dickdarm ein wichtiges Kriterium für die bakterielle
Zusammensetzung der Darmflora und des Kotes darzustellen.
Zu Beginn der dritten Laktationswoche konnte im Kot aller Sauen ein deutlicher Anstieg
der Bakterienordnung Clostridiales auf nahezu 60 % nachgewiesen werden, welcher im
Wesentlichen auf einen signifikanten Anstieg der Bakterienfamilie Clostridiaceae
zurückzuführen ist. Clostridiaceae bevorzugen im Vergleich zu den Ruminococcaceae und
Lachnospiraceae ein engeres Substratspektrum pflanzlicher Kohlenhydrate, insbesondere
einfache Hexosen wie Glucose oder Cellobiose (BIDDLE et al. 2013). Zudem ist diese
Bakterienfamilie mit Genen ausgestattet, welche am Abbau von Aminosäuren und im
geringen Umfang von Protein beteiligt sind (BIDDLE et al. 2013). Da einige Vertreter der
Familie der Clostridiaceae über ein recht breites pH-Spektrum von pH 4-9 verfügen
(WIEGEL et al. 2006), ist es nicht verwunderlich, dass das Wachstum dieser Bakterien
durch die Veränderungen des pH-Wertes im Kot der faserreich gefütterten Tiere nicht
beeinflusst werden konnte. Aufgrund des bevorzugten Substratspektrums kann vermutet
werden, dass durch die hohe Futteraufnahme des energiereichen Laktationsfutters zu
Diskussion
193
Beginn der dritten Laktationswoche höhere Mengen an einfachen Kohlenhydraten und
Aminosäuren den Dünndarm passierten und in den Dickdarm der Tiere gelangten, wodurch
folglich das Wachstum der Clostridiaceae unterstützt wurde. Dass im Rahmen der
Mikrobiomuntersuchung keine signifikanten Unterschiede der prozentualen Anteile der
Clostridiaceae im post partal entnommenen Kot zwischen den Gruppen festgestellt werden
konnten, – wohl aber in der kulturell bestimmten Anzahl von Clostridium perfringens –
erscheint auf dem ersten Blick nicht schlüssig. Jedoch sollte beachtet werden, dass der
Familie Clostridiaceae insgesamt 30 Genera zugeordnet werden können und selbst das
Genus Clostridium aus weiteren 211 Spezies besteht, wovon Clostridium perfringens
lediglich eine einzige Spezies darstellt (EUZÉBY 2016). Aus diesem Grund erscheint es
schwierig von dem prozentualen Anteil der Clostridiaceae auf das Vorkommen von
Clostridium perfringens zu schließen.
5.2.10.1.3 Ordnung Lactobacillales
Auch innerhalb der Ordnung Lactobacillales und der Familie der Lactobacillaceae wurden
signifikante Unterschiede im fäkalen Mikrobiom zwischen den verschiedenen
Fütterungsgruppen nach ad-libitum-Aufnahme der rohfaserreichen Ration beobachtet. Bei
Betrachtung der prozentualen Anteile dieser Bakterienordnung und –familie wird
ersichtlich, dass die Ordnung der Lactobacillales zu über 96 % aus der Familie
Lactobacillaceae besteht, weshalb im Folgenden lediglich auf die Veränderungen der
Lactobacillaceae näher eingegangen wird. Mit Umstellung des Futters von einem
rohfaserreichen Futter im Wartestall (353g NDF/kg TS) der tragenden Sauen hin zu einem
rohfaserarmen Laktationsfutter (186 g NDF/kg TS), sank der prozentuale Anteil der
Lactobacillaceae im Kot der Kontrollsauen signifikant von ca. 18 % auf ca. 7 %. Durch das
ad-libitum-Angebot des Rohfaserpellets 1 kam es im Kot der Versuchssauen lediglich zu
einer moderaten Reduktion der Lactobacillaceae auf ca. 10 %, während diese bei Fütterung
des Rohfaserpellets 2 sogar auf ca. 19 % anstiegen. Somit hatten die beiden
Rohfasergruppen zur Geburt nicht nur einen signifikant höheren Anteil an Lactobacillaceae
als die Sauen der Kontrollgruppen; im Vergleich beider Rohfasergruppen fiel zudem ein
signifikant höherer Anteil Lactobacillaceae im Kot der Rohfasergruppe 2 auf. Eine
mögliche Erklärung dieser fütterungsbedingten Veränderungen dieser Bakterienfamilie
könnte im Stoffwechsel der Lactobacillaceae liegen. Das bevorzugte Substrat der
Diskussion
194
saccharolytischen Lactobacillaceae sind insbesondere Monosacharide oder Fructo-
Oligosaccharide; als Endprodukt des Kohlenhydratabbaus wird von dieser Bakterienfamilie
hauptsächlich Laktat freigesetzt (LOUIS et al. 2007; SCHLEIFER 2011). Somit scheinen
das Wachstum und die Vermehrung dieser Bakterien von der Zufuhr und Verfügbarkeit
leicht fermentierbarer Kohlenhydrate abzuhängen. So konnte bereits in diversen Studien
der Anteil Lactobacillaceae durch eine Inulin-reiche Fütterung bei Ferkeln, Mastschweinen
und Sauen gesteigert werden (KONSTANTINOV et al. 2004; PATTERSON et al. 2010;
PAßLACK et al. 2015). Da den Lactobacillaceae gesundheitsfördernde Effekte wie eine
Förderung der Verdauung, Stimulation des Immunsystems sowie Unterdrückung von
potentiell pathogenen Darmbakterien nachgesagt werden (GIBSON u. ROBERFROID
1995; WALTER 2008; BINDELS et al. 2015), wird deren Wachstum in der Humanmedizin
gezielt durch die Gabe sogenannter Präbiotika, wie Inulin oder Laktulose gefördert
(GUARNER u. MALAGELADA 2003; LOUIS et al. 2007; CONLON u. BIRD 2014).
Doch auch in Studien am Schwein führte eine höhere Aufnahme von fermentierbarer
Substanz bedingt durch den Einsatz von faserreichen Futtermitteln zu einem Anstieg der
Lactobacillaceae im Darminhalt der Tiere (GARRY et al. 2007; TAN et al. 2015; WEISS
et al. 2015). Zwar wurde dieser Effekt meistens an Absetzferkeln beobachtet, wenn anstelle
einer weizenbasierten Ration eine gerstenreiche Ration verfüttert wurde (DREW et al.
2002; GARRY et al. 2007; AUMILLER et al. 2015), jedoch konnten MULDER et al.
(2009) im Kot von Freilandsauen einen signifikant höheren Anteil der Ordnung
Lactobacillales im Vergleich zu im Stall gehaltenen Sauen nachweisen (49,2 % vs.
14,4 %). Somit wäre der rapide Abfall der Lactobacillaceae im Kot der Kontrolltiere
zeitgleich zur Futterumstellung durch den niedrigen Gehalt von NDF und ADF und folglich
bakteriell fermentierbarer Substanz im Laktationsfutter zu erklären. Durch die Steigerung
der Futtermenge im Laufe der Laktation scheint jedoch auch im Darm dieser Tiere eine
größere Menge leicht verdaulicher Kohlenhydrate angeflutet zu sein, in Folge dessen ein
geringgradiger Anstieg der Lactobacillaceae im Kot der Kontrolltiere zu Beginn der dritten
Laktationswoche beobachtet werden konnte (von ca. 7 % auf ca. 9 %).
Der Gehalt an pflanzlichen Gerüstsubstanzen war in beiden Rohfaserpellets im Vergleich
zum Laktationsfutter deutlich größer (Rfa 1: 426 g NDF/kg TS; 253 g ADF/kg TS, Rfa 2:
431 g NDF/kg TS; 230 g ADF/kg TS), was eine Begründung für den signifikant höheren
Diskussion
195
Anteil der Lactobacillaceae im Kot der Rohfasergruppen darstellen könnte. Der signifikant
höhere Anteil der Lactobacillaceae im Kot der Sauen der Rohfasergruppe 2 im Vergleich
zu der Rohfasergruppe 1 scheint zum einen auf die größere Menge an leicht fermentierbarer
Hemizellulose im Rohfaserpellet 2 (173 g /kg TS vs. 201 g/kg TS) und zum anderen auf die
höhere Futteraufnahme der Sauen dieser Gruppe rund um die Geburt zurückzuführen zu
sein. Zudem könnte der niedrigere pH-Wert des Kotes dieser Gruppe im peripartalen
Zeitraum zu besseren Wachstumsbedingungen der Lactobacillaceae geführt haben
(JOHNSTON et al. 2003). Vor dem Hintergrund, dass die Entwicklung der mikrobiellen
Darmflora der neugeborenen Saugferkel unter anderem durch die mikrobielle
Zusammensetzung des Sauenkotes beeinflusst wird (RICHARDS et al. 2005; PAßLACK et
al. 2015), könnte die Darmflora der Saugferkel durch den höheren Anteil Lactobacillaceae
im Kot der Sauen positiv verändert werden. MACH et al. (2015) konnten bereits
nachweisen, dass das Bakterium Lactobacillus fermentum, welches mit verbesserten
Zunahmen der Ferkel in Verbindung gebracht und aus diesem Grund z.T. als
Futterzusatzstoff eingesetzt wird (YU et al. 2008), auch über den maternalen Kot auf die
Ferkel übertragen wird. Somit wären durch eine faserreiche Fütterung zur Geburt und der
damit verbundenen Zunahme der Lactobacillaceae im Kot der Sauen indirekte Effekte auf
die Gesundheit der Ferkel denkbar. Weitere Studien sind jedoch vonnöten, um diesen
potentiellen Effekt wissenschaftlich näher zu charakterisieren.
Einfluss einer ad-libitum-Fütterung in der Laktation auf die Sauen- 5.3
und Ferkelentwicklung
Futteraufnahme 5.3.1
In der ad libitum gefütterten Sauengruppe konnte in der ersten Laktationswoche eine
signifikant höhere und in den folgenden Wochen, bis auf Woche 2, eine tendenziell höhere
Futteraufnahme im Vergleich zu der restriktiv gefütterten Kontrollgruppe beobachtet
werden. Demnach war die über die gesamte Laktation aufgenommene Futtermenge in der
ad-libitum-Gruppe leicht größer (6,75 ±0,44 kg TS vs. 7,02 ±0,81 kg TS). Dies unterstützt
die Beobachtungen anderer Studien, in welchen ebenfalls von einer höheren
Futteraufnahme ad libitum gefütterter Sauen in der Laktation berichtet wird (STAHLY et
al. 1979; MOSER et al. 1987; NEIL 1996; COOLS et al. 2014). Bei einem Energiegehalt
Diskussion
196
des Laktationsfutters von 14,7 MJ ME je kg TS entspricht die mittlere aufgenommene
Futtermenge in der Laktation einer täglichen Energieaufnahme von ca. 99,2 MJ ME in der
Kontroll- bzw. ca. 103 MJ ME in der ad-libitum-Gruppe. Somit erreichten alle Sauen die
von KIRCHGEßNER (2011) und KAMPHUES et al. (2014) geforderte tägliche
Energiezufuhr laktierender Sauen bei einem Wurfzuwachs von 2-3 kg pro Tag von 90-98
MJ ME. Da der mittlere tägliche Wurfzuwachs beider Gruppen jedoch in beiden Gruppen
im Schnitt mehr als 3 kg betrug, sind hohe Energieaufnahmen zwingend erforderlich, um
einer übermäßigen Einschmelzung von Körpersubstanz entgegen zu wirken.
Die insgesamt niedrigere Futteraufnahme der restriktiv gefütterten Sauen, welche jedoch ab
Tag 10 p.p.nahezu ad libitum gefüttert wurden, zeigt, dass diese nicht mehr in der Lage zu
sein scheinen die fehlenden Futtermengen der ersten Laktationswoche durch eine
kompensatorische höhere Futteraufnahme in den folgenden Laktationswochen aufzuholen.
Diese Feststellung machte neben anderen Autoren (AHERNE u. WILLIAMS 1992;
VIGNOLA 2009) auch NEIL (1996), welcher in seinen Studien nachwies, dass die
Futteraufnahme in der Laktation anstieg, je früher den Sauen eine ad-libitum-Aufnahme
von Laktationsfutter ermöglicht wurde.
Neben dem ad-libitum-Angebot von Laktationsfutter könnte die höhere Futteraufnahme der
ad-libitum-Fütterungsgruppe jedoch auch auf die Tatsache zurückzuführen sein, dass diesen
Tieren im peripartalen Zeitraum zusätzlich eine Ration mit hohen Rohfasergehalten zur
Verfügung stand. Untersuchungen von QUESNEL et al. (2009) belegten eine um 0,94 kg
täglich höhere Futteraufnahme in der Laktation bei den Sauen, welche in der Trächtigkeit
eine Mischung aus Sonnenblumenmehl, Zuckerrübenschnitzeln, Weizenkleie und
Sojabohnenschalen erhalten hatten. Auch andere Autoren beobachteten eine höhere
Futteraufnahme in der Laktation, wenn zuvor rohfaserreiche Rationen zugeteilt wurden
(DANIELSEN u. VESTERGAARD 2001; VEUM et al. 2009). FARMER et al. (1996)
sehen den Grund für dieses Phänomen darin, dass sich der Magen-Darmtrakt dieser Tiere
durch die voluminösen Rohfasermassen bereits an große Futtermengen gewöhnt hat,
während sich dieser bei Tieren ohne Faserzusatz an solche Futtermengen zunächst
adaptieren muss.
Diskussion
197
Bei einer durchschnittlichen TS-Aufnahmekapazität von 3 % der Körpermasse
(KAMPHUES et al. 2014) würde die maximal aufnehmbare Futtermenge in der
Kontrollgruppe im Laufe der Laktation 7,2-7,8 kg TS und in der ad libitum gefütterten
Gruppe 7,8-8,1 kg TS entsprechen. Die Tatsache, dass diese maximalen Mengen in der
Kontrollgruppe schon in der zweiten Laktationswoche nahezu erreicht wurden, zeigt, dass
auch diese Tiere ab diesen Zeitraum ad libitum gefüttert wurden. Dies erklärt auch das
Fehlen signifikanter Unterschiede in der mittleren TS-Aufnahme beider Fütterungsgruppen
ab der zweiten Laktationswoche. Insgesamt wurde somit in beiden Fütterungsgruppen eine
recht hohe TS-Aufnahme, auch von den restriktiv gefütterten Tieren, erreicht. So zeigt ein
Vergleich der Futteraufnahme mit anderen restriktiv angefütterten Sauen, dass diese oft
lediglich zwischen 5,2-5,6 kg TS in der Laktation erhalten (KOKETSU et al. 1996;
DERKING 2015). Die ad libitum gefütterten Tiere in der Studie von COOLS et al. (2014)
zeigten hingegen ähnlich hohe Futteraufnahmen wie die Sauen des vorliegenden
Versuches.
Obwohl die Futteraufnahme der ad-libitum-Gruppe tendenziell höher war als die der
Kontrollgruppe, wurde die zuvor berechnete TS-Aufnahmekapazität von diesen Tieren
nicht erreicht. Ein möglicher Grund für diese Feststellung könnte den hohen Temperaturen
während der Sommermonate im Abferkelstall zuzuschreiben sein. Während der prozentuale
Anteil heißer Tage ab dem dritten Tag der Laktation bei den Tieren der ehemaligen
Kontroll- und Rohfasergruppe 1 ca. 15 % betrug, war dies in der ehemaligen Kontroll- und
Rohfasergruppe 2 lediglich an knapp 5 % der Tage der Fall. Bei Analyse der mittleren
wöchentlichen Futteraufnahmen der ehemaligen Kontroll- und Rohfasergruppe 2, welche
deutlich weniger Hitzetagen ausgesetzt waren, ergeben sich folgende Werte (Tabelle 99):
Tabelle 99: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der täglichen mittleren Futteraufnahme in
kg TS dargestellt in Laktationswochen der ehemaligen Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Zeitraum
Restriktiv (Kontrollgruppe 2) (n=8)
Ad libitum (Rohfaser 2) (n=12)
x s x s
Woche 1 5,21a ±0,59 6,39
b ±0,71
Woche 2 7,43a ±0,57 7,36
a ±0,70
Woche 3 7,50a ±0,50 8,06
a ±0,81
Woche 4 7,53a
±0,42 7,48a
±1,24
Woche 5 7,62a
±0,24 7,80a
±1,03 a,b ungleiche Buchstaben innerhalb einer Zeile kennzeichnen signifikant unterschiedliche Werte (p < 0,05)
Diskussion
198
Wie in der Tabelle 99 ersichtlich, kann bei niedrigeren Temperaturen in beiden Gruppen
bei gleichem Verlauf der Futterkurve eine leichte Steigerung der Futteraufnahme
beobachtet werden. Auffällig ist jedoch, dass nun auch die ad libitum gefütterte Gruppe die
TS-Aufnahmekapazität erreicht. Somit scheint insbesondere bei heißen
Umgebungstemperaturen die Fütterungstechnik einen entscheidenden Einfluss auf die
Futteraufnahme der Tiere zu haben. Wird den Tieren unter diesen Umständen zweimal
täglich eine große Portion Futter zusammen mit Wasser in den Trog gegeben, nehmen diese
mehr Futter auf, als wenn sie es in kleinen Portionen aus dem ad-libitum-
Fütterungsautomaten rütteln müssen. Ein möglicher Grund, weshalb die restriktive
Fütterung oder besser gesagt die „Mahlzeiten-Fütterung“ in dieser Studie so erfolgreich
war, könnte der Tatsache geschuldet sein, dass die erste Fütterung bereits um 06:00
morgens stattfand. So konnten RENAUDEAU et al. (2003) bei ad libitum gefütterten
Tieren feststellen, dass diese bei heißen Temperaturen das Futter bevorzugt in den frühen
Morgenstunden aufnahmen. Insgesamt ist demnach bei heißen Umgebungstemperaturen
das System der Fütterung in wenigen Mahlzeiten zu bevorzugen, wenn diese unter anderem
bereits in den frühen Morgenstunden stattfinden.
Wasserverbrauch 5.3.2
Auch in der Laktation zeigten die Tiere, welche ad libitum gefüttert wurden, einen
tendenziell höheren Wasserverbrauch als die restriktiv gefütterten Tiere. Während in der
ad-libitum-Gruppe Wassermengen zwischen 30 – 40 l pro Sau verbraucht wurden, betrugen
diese Mengen in der restriktiven Gruppe zwischen 27 – 35 l pro Sau. Ein leicht höherer
Wasserverbrauch ad libitum gefütterter Tiere in der Laktation konnte auch von TABELING
et al. (2003) festgestellt werden. Da die Wasseraufnahme jedoch eng mit der
Futteraufnahme verknüpft ist – Schweine nehmen ca. 2-4 l Wasser pro kg TS Futter auf –
(KAMPHUES et al. 2014) und die Tiere der ad-libitum-Gruppe eine etwas höhere
Futteraufnahme im Vergleich zu den Kontrolltieren zeigten, erscheinen diese Unterschiede
plausibel. Zwar wurde in früheren Untersuchungen von Wasserverbräuchen von maximal
25 l pro laktierender Sau berichtet (MROZ et al. 1995), jedoch kann die Wasseraufnahme
von verschiedenen Sauen nicht ohne Berücksichtigung der jeweiligen Futteraufnahme
verglichen werden. Die aufgenommenen Wassermengen entsprechen hingegen aktuellen
Angaben zu Wasseraufnahmen laktierender Sauen mit 15 – 40 l Wasser pro Sau
Diskussion
199
(KAMPHUES et al. 2014). Dass die ermittelten Werte eher den oberen Bedarfsangaben
entsprechen, kann zum einen durch die z.T. hohen Temperaturen im Abferkelstall
hervorgerufen worden sein. Zum anderen könnte dies auch der Tatsache geschuldet sein,
dass lediglich die mittleren Wasserverbräuche und nicht die tatsächliche Aufnahme durch
die Tiere gemessen wurden.
Körpertemperatur 5.3.3
Die mittlere Körpertemperatur beider Fütterungsgruppen betrug in der gesamten
Laktationszeit zwischen 38,3 und 38,8 °C und war somit in beiden Gruppen nahezu
identisch. Dies widerspricht früheren Untersuchungen, in denen eine höhere
Körpertemperatur ad libitum gefütterter Sauen beobachtet wurde (MOSER et al. 1987;
NEIL 1996). Auch PLONAIT (2004) berichtet von einer sogenannten
„Laktationshyperthermie“ ad libitum gefütterter Tiere, welche dadurch zustande kommt,
dass die Temperaturregulation dieser Tiere durch die bei der Verdauung freiwerdende
Stoffwechselenergie überfordert wird. Dass in dieser Studie keine Unterschiede der
mittleren Körpertemperatur zwischen den Gruppen auftraten, mag an der ähnlich hohen
Futteraufnahme aller Tiere in der Laktation liegen. Da in vielen neueren Untersuchungen
zwar nicht explizit die Körpertemperatur gemessen wurde, jedoch auch von keiner
negativen Beeinträchtigung des Gesundheitszustandes ad libitum gefütterter Sauen
berichtet wird, kann gemutmaßt werden, dass Tiere „moderner“ Sauenlinien in der Lage zu
sein scheinen höhere Futtermengen ohne Überforderung der Temperaturregulation des
Körpers aufzunehmen (QUESNEL et al. 2009; COOLS et al. 2014).
Leistungsparameter der Sauen 5.3.4
5.3.4.1 Milchleistung der Sauen
Die mittlere Milchleistung stieg in beiden Fütterungsgruppen im Laufe der Laktation an
und erreichte in der Kontrollgruppe in der 3. und in der ad-libitum-Gruppe in der 4.
Laktationswoche ein Maximum von 14,0 bzw. 13,9 kg, bevor sie in den folgenden
Laktationswochen wieder leicht absank. Ähnliche Laktationsverläufe konnten bereits in
diversen anderen Studien beobachtet werden (KIRCHGEßNER 2011; HANSEN et al.
2012; DERKING 2015). Mit einer durchschnittlichen täglichen Milchmenge von ca. 12,5 l
Diskussion
200
zeigten die Sauen eine höhere Milchleistung im Vergleich zu früher durchgeführten
Studien, in denen von einer täglichen Milchmenge zwischen 8 – 11,4 kg berichtet wurde
(DOURMAD et al. 1998; MCNAMARA u. PETTIGREW 2002; DERKING 2015). Da die
Milchleistung jedoch von vielen unterschiedlichen Faktoren, wie von der Anzahl der
Ferkel, von der Fütterung oder von der Umgebungstemperatur beeinflusst wird (QUINIOU
u. NOBLET 1999; THEIL et al. 2012; QUESNEL et al. 2015), erscheint ein Vergleich
dieses Parameters zwischen verschiedenen Studien schwierig. Vor dem Hintergrund, dass
die Milchleistung von Sauen nicht nur durch die Anzahl der Ferkel (TONER et al. 1996),
sondern auch von deren Körpergewicht und „Nachfrage“ abhängt (KING et al. 1997), ist es
nicht verwunderlich, dass die Tiere der Kontrollgruppe tendenziell mehr Milch gaben: So
säugten diese im Vergleich zu der ad-libitum-Gruppe nach Wurfausgleich nicht nur im
Schnitt 0,4 Ferkel mehr, die Ferkel dieser Gruppe waren zur Geburt und bis zum Tag 14
signifikant schwerer. Dennoch widersprechen diese Ergebnisse den Beobachtungen vieler
anderer Studien, in denen eine höhere Futteraufnahme in der Laktation mit einer höheren
Milchleistung bzw. Absetzgewichten der Ferkel korreliert war (FARMER et al. 1996;
DANIELSEN u. VESTERGAARD 2001; VEUM et al. 2009).
Ein weiterer Grund für die vergleichsweise niedrigere Milchmenge der ad libitum
gefütterten Tiere könnte in den hohen Umgebungstemperaturen in den Sommermonaten
gesehen werden, welche insbesondere in der ad libitum gefütterten Gruppe – wie bereits
diskutiert – zu einer Reduktion der Futteraufnahme führte (vgl. Kapitel 5.3.1). Bei
Gegenüberstellung der Sauen der ehemaligen Kontroll- und Rohfasergruppe 2, welche an
lediglich 5 % der Tage Temperaturen von > 25 °C ausgesetzt waren (Tabelle 100), fällt vor
allem in der Gruppe der ad libitum gefütterten Tier eine tendenziell höhere Milchleistung
auf. Zwar wurde bereits von anderen Autoren von einer deutlichen Reduktion der
Milchleistung bei hohen Temperaturen berichtet (PRUNIER et al. 1997; QUINIOU u.
NOBLET 1999), jedoch scheint dieser Effekt in diesem Versuch lediglich in der Gruppe
der ad libitum gefütterten Sauen aufgetreten zu sein. Auch hier scheint die Umsetzung der
ad-libitum-Fütterung in der ehemaligen Rohfasergruppe 1, bei der jeweils kleine
Mahlzeiten von der Sau aus einem Automaten herausgerüttelt werden mussten, und die
angebrachten Zapfentränken im Inneren des Troges (Troghygiene) eine wesentliche Rolle
gespielt zu haben.
Diskussion
201
Tabelle 100: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der mittleren täglichen Milchleistung (kg) in der Laktation und in Laktationswochen der ehemaligen Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Restriktiv (Kontrollgruppe 2)
(n=8) Ad libitum (Rohfaser 2)
(n=12) p-Wert
x s x s
Gesamte
Laktation 12,44
±2,56 13,50 ±1,56 0,26
Woche 1 8,98 ±2,22 9,36
±1,87 0,69
Woche 2 13,36 ±3,02 13,85 ±1,76 0,65
Woche 3 14,47 ±3,23 14,84 ±1,89 0,75
Woche 4 13,22 ±2,91 14,46 ±2,20 0,29
Woche 5 13,46 ±2,68 15,20 ±2,36 0,14
Während die Laktationskurve an sich in der ehemaligen Kontrollgruppe 2 mit einer
maximalen Milchmenge in der 3. Laktationswoche im Vergleich zu der zuvor
beschriebenen Laktationskurve aller Kontrolltiere (inkl. heißer Tage) nahezu identisch
blieb, konnte bei den Sauen der ehemaligen Rohfasergruppe 2 ein kontinuierlicher Anstieg
der Milchmenge bis zur 5. Laktationswoche beobachtet werden (Tabelle 100). In jeder
Laktationswoche war die Milchleistung der ad libitum gefütterten Tiere im Vergleich zu
den restriktiv gefütterten Sauen tendenziell höher, sodass die tägliche mittlere Milchmenge
in der gesamten Laktation um ca. 1 l höher war. Da die Anzahl der saugenden Ferkel in
beiden Gruppen nahezu identisch (13,5 ±0,76 vs. 13,7 ±0,89 Ferkel) und das
Geburtsgewicht der Ferkel der ad libitum gefütterten Sauen sogar geringgradig niedriger
war (1,46 ±0,18 vs. 1,35 ±0,11), scheint die hohe Milchleistung dieser Tiere nicht allein
durch den stimulierenden Einfluss der Ferkel begründet werden zu können.
Wie bereits von FARMER et al. (1996) vermutet, könnte die um ca. 1 l höhere
Milchleistung in der ersten Laktationswoche mit der signifikant höheren Futteraufnahme in
dieser Zeit in einem Zusammenhang gebracht werden (Tabelle 99). In der 4. und 5.
Laktationswoche war die mittlere Milchleistung der Sauen der ad-libitum-Gruppe
(ehemalige Rohfasergruppe 2 ohne Hitzetage) – trotz nahezu identischer Futteraufnahme
beider Gruppen – dennoch um fast 2 l höher. Somit müssen die zur Milchbildung benötigte
Energie und Nährstoffe aus der Einschmelzung von Körpersubstanz resultiert sein. Bei
Betrachtung der mittleren Rückenspeckdicke dieser Tiere der ursprünglichen Kontroll- und
Rohfasergruppe 2 gegen Ende der Laktation (Tabelle 101), fällt bei allen Tieren ein
deutlicher Rückgang der RSD auf. Obwohl der größte Verlust der RSD bei allen Sauen
Diskussion
202
zwischen Tag 14 und dem Tag des Absetzens auftrat, war dieser in diesem Zeitraum – in
Relation zum Gesamtverlust der jeweiligen Gruppe während der Laktation – in der ad
libitum gefütterten Gruppe größer (70,6 % vs. 79,3 %). Da somit der größte Verlust der
RSD der ad libitum gefütterten Tiere parallel zu der hohen Milchleistung am Ende der
Laktation beobachtet wurde, scheint die Energiebereitstellung für die Milch zum Teil aus
dem Abbau von Körpersubstanz resultiert zu sein. Dennoch wiesen die Tiere der ad-
libitum-Gruppe zum Ende der Laktation eine tendenziell größere RSD auf. Vor dem
Hintergrund, dass eine hohe Futteraufnahme in der Laktation zu einer verringerten
Einschmelzung von Körpersubstanz führt (DOURMAD 1991; COOLS et al. 2014), könnte
die Aufnahme einer insgesamt größeren Futtermenge in der Laktation der ad libitum
gefütterten Tiere den Abbau der Fettauflage verlangsamt und somit zu größeren
Energiereserven zum Ende der Laktation geführt haben.
Tabelle 101: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der mittleren RSD (mm) im Laufe der Laktation der ursprünglichen Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Restriktiv (Kontrollgruppe 2)
(n=8) Ad libitum (Rohfaser 2)
(n=12) p-Wert
x s x s
Einstallung 17,0 ±3,27 16,2 ±3,48 0,65
Tag 1 p.p. 16,5 ±3,56 16,7 ±3,48 0,89
Tag 14 p.p. 15,5 ±3,22 16,1 ±3,10 0,68
Absetzen 13,1 ±3,40 13,8
±2,55 0,60
Diff_Lac -3,35 ±2,17 -2,88 ±2,07 0,62
Diff_Gesamt -3,81 ±1,99 -2,39
±2,15 0,15
5.3.4.2 Wurfzuwachs
Der durchschnittliche tägliche Wurfzuwachs beider Fütterungsgruppen unterschied sich
nicht signifikant und war mit Werten von über 3 kg/Tag deutlich höher als in anderen
Studien, in welchen der Wurf täglich maximal ca. 2,8 kg zunahm (PREIßINGER et al.
2014; DERKING 2015). Jedoch sollte beachtet werden, dass in beiden Fütterungsgruppen
dieses Versuches eine kontinuierliche Zunahme des mittleren täglichen Wurfzuwachses im
Laufe der Laktation beobachtet werden konnte. Bei einer 5-wöchigen Säugezeit könnte dies
zu höheren Zuwächsen im Vergleich zu einer 4-wöchigen Säugezeit in den genannten
anderen Studien geführt haben.
Diskussion
203
Bei einer differenzierten Betrachtung der Wurfzuwächse aus Milch bzw. Beifutter fällt auf,
dass der Zuwachs aus Sauenmilch einen nahezu identischen Verlauf wie die
Laktationskurve der Sauen aufweist. Da der Ferkelzuwachs im Wesentlichen von der
Milchleistung der Sau abhängt (GFE 2006; KIRCHGEßNER 2011), ist dies zwar nicht
verwunderlich, dennoch führte die tendenziell höhere Milchleistung der ad libitum
gefütterten Tiere ab der 4. Laktationswoche zu größeren Ferkelzunahmen aus Milch. Der
resultierende Zuwachs aus der Beifutteraufnahme entspricht im Wesentlichen der
Beifutteraufnahme der Ferkel im Laufe der Laktation (Tabelle 86). Durch die Aufnahme
des Ferkeljoghurts wurden in den ersten beiden Laktationswochen zusätzliche tägliche
Wurfzunahmen von ca. 250 g erreicht. Nach Absetzen des Ferkeljoghurts nach der 2.
Woche kam es zu einer Reduktion der Futteraufnahme und somit auch der Zuwächse aus
Beifutter. Zwar wurde der Prestarter bereits ab der 2. Lebenswoche zugefüttert, jedoch
waren erst ab der 4. Lebenswoche nennenswerte Zunahmen aufgrund der
Prestarteraufnahme zu verzeichnen. Ähnliche Verläufe der Prestarteraufnahme konnten
auch in anderen Studien beobachtet werden (PAJOR et al. 1991; BØE u. JENSEN 1995).
Die Würfe der restriktiv gefütterten Sauen wiesen mit einer durchschnittlichen Zunahme
des Wurfes von ca. 0,5 kg allein durch die Beifutteraufnahme in der 5. Laktationswoche
eine um ca. 100 g täglich höhere Zunahme aus Beifutter im Vergleich zu den Würfen der
ad libitum gefütterten Sauen auf. Somit scheint in erster Linie die Sauenmilch die von den
Ferkeln favorisierte Energiequelle darzustellen; nur wenn diese – aufgrund nicht mehr
steigender Milchleistung –das Wachstum der Ferkel limitiert, wird der zusätzlich benötigte
Energie- und Nährstoffbedarf für das Wachstum der Ferkel über das Beifutter abgedeckt.
So stellten auch CLOWES et al. (2003) fest, dass sich ab Tag 20 der Laktation die
Zunahmen von Ferkeln ohne Beifütterung parallel zu einer sinkenden Milchleitung der
Sauen um bis zu 11 % verringerten. Auch die Feststellung, dass die Beifutteraufnahme der
Ferkel vor allem bei hohen Temperaturen ansteigt, wenn die Sau weniger Milch produziert,
unterstützt diese Hypothese (AZAIN et al. 1996; RENAUDEAU u. NOBLET 2001).
Insgesamt scheint somit das Wachstum der Ferkel primär durch die produzierten
Milchmengen der Sau limitiert zu sein (WILLIAMS et al. 1995; REVELL et al. 1998).
Diskussion
204
Diese Abhängigkeit der Beifutteraufnahme von der Milchleistung der Sauen wird
insbesondere bei den Sauen deutlich, welche weniger Hitzetagen ausgesetzt waren (Tabelle
102). Während sich der tägliche Wurfzuwachs über die gesamte Laktation in der Gruppe
der Kontrolltiere (ehemalige Kontrollgruppe 2) im Vergleich zu dem Wurfzuwachs aller
Kontrolltiere nicht veränderte, zeigten die Würfe der ad libitum gefütterten Tiere
(ehemalige Rohfasergruppe 2) – parallel zu der höheren Futteraufnahme und Milchleistung
dieser Sauen – eine um ca. 200 g/Tag höhere Wurfzunahme. Trotz der um ca. 200 g
höheren Tageszunahmen der Würfe der ehem. Rohfasergruppe 2 in der letzten
Laktationswoche im Vergleich zu allen ad libitum gefütterten Sauen, blieb der Zuwachs
aufgrund von Beifutteraufnahme nahezu identisch, sodass auch hier die Milchaufnahme
oberste Priorität in der Energie- und Nährstoffaufnahme der Ferkel hatte.
Tabelle 102: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) des mittleren täglichen Wurfzuwachses (kg) in der Laktation insgesamt sowie aufgrund von Milch- und Beifutteraufnahme der ehem. Kontroll- und Rohfasergruppe 2
tägl. Zuwachs
Insgesamt
Restriktiv (Kontrollgruppe 2) (n=8)
Ad libitum (Rohfaser 2) (n=12)
p-Wert
x s x s
Laktation 3,32
±0,70 3,47
±0,35 1,00
Woche 1 2,40
±0,53 2,48
±0,44 0,71
Woche 2 3,50 ±0,80 3,60 ±0,43 0,72
Woche 3 3,59 ±0,81 3,66 ±0,46 0,80
Woche 4 3,35 ±0,73 3,64 ±0,54 0,32
Woche 5 3,77 ±0,90 4,05 ±0,53 0,40
tägl. Zuwachs
aus Milch
Woche 1 2,19 ±0,54 2,28 ±0,46 0,69
Woche 2 3,26 ±0,74 3,38 ±0,43 0,65
Woche 3 3,53 ±0,79 3,62 ±0,46 0,75
Woche 4 3,22 ±0,71 3,53 ±0,54 0,29
Woche 5 3,28 ±0,65 3,71 ±0,58 0,14
tägl. Zuwachs
aus Beifutter
Woche 1 0,20 ±0,12 0,20 ±0,10 0,85
Woche 2 0,24 ±0,10 0,22 ±0,08 0,63
Woche 3 0,06 ±0,04 0,04 ±0,03 0,27
Woche 4 0,13 ±0,13 0,12 ±0,11 0,62
Woche 5 0,49 ±0,40 0,34 ±0,21 0,56
Diskussion
205
5.3.4.3 Körpermassenentwicklung der Ferkel
Die Ferkel der ad libitum gefütterten Sauen waren bis zur zweiten Laktationswoche
signifikant leichter im Vergleich zu den Ferkeln der Kontrollgruppe. Dies ist der Tatsache
geschuldet, dass die Gewichte der Ferkel beider Rohfasergruppen bereits zur Geburt um ca.
100 g tendenziell geringer waren. Da zum Wurfausgleich immer die größten Ferkel eines
Wurfes versetzt wurden, führte dies dazu, dass die Ferkelgewichte beider
Fütterungsgruppen sich nach dem Wurfausgleich signifikant unterschieden.
Trotz geringgradig niedrigerer Milchleistung der ad-libitum-Gruppe, wurden nahezu gleich
schwere Ferkel abgesetzt, was vor allem auf höhere Zunahmen dieser Ferkel in den letzten
beiden Laktationswochen zurückzuführen ist. Somit scheint sich eine hohe
Milchproduktion vor allem in den letzten Laktationswochen positiv auf den Ferkelzuwachs
auszuwirken. Dies ist darauf zurückzuführen, dass das Verhältnis von umsetzbarer Energie
zu Bruttoenergie der Milch von 0,95-0,97(LÖHNERT u. OCHRIMENKO 1998; MARION
u. LE DIVIDICH 1999) von einem Beifutter pflanzlicher Herkunft nicht erreicht werden
kann (bei Ferkelergänzungsfutter wird von einen Teilwirkungsgrad der ME für den
Energieansatz von lediglich k=0,7 ausgegangen (GFE 2006)). Somit enthält die Sauenmilch
auf die gleiche Trockensubstanz bezogen etwa zwei Drittel mehr umsetzbare Energie
(MEYER 2008). Das nahezu identische Absetzgewicht bei unterschiedlichen
Geburtsgewichten wiederspricht den Ergebnissen anderer Studien, in welchen Ferkel mit
einem niedrigen Geburtsgewicht auch niedrigere Absetzgewichte zeigten (MILLIGAN et
al. 2002; ANDERSEN et al. 2011). Vor diesem Hintergrund könnte eine ad-libitum-
Fütterung der Sauen insbesondere für kleine Ferkel bei einer langen Säugezeit vorteilhaft
sein.
Selbst ohne Hitzeeinflüsse führte die höhere Milchleistung der Sauen der ehem.
Rohfasergruppe 2 zwar zu größeren Zuwächsen, jedoch nicht dazu, dass das Körpergewicht
der leichteren Ferkel das der schwereren Ferkel der Kontrollgruppen zum Absetzen
überstieg (Tabelle 103). Bezüglich des Einflusses der Futteraufnahme der Sauen auf die
Absetzgewichte der Ferkel gibt es auch in der Literatur widersprüchliche Ergebnisse:
Während in einigen Studien positive Zusammenhänge festgestellt werden konnten (bis zu
500 g schwerere Ferkel zum Zeitpunkt des Absetzens bei Sauen mit einer bis zu 0,8 kg/Tag
Diskussion
206
höheren Futteraufnahme in der Laktation (GUILLEMET et al. 2007; VEUM et al. 2009;
SUN et al. 2015)), waren in anderen Studien keine Effekte zu sehen (MOSER et al. 1987;
COOLS et al. 2014; DERKING 2015). Diese unterschiedlichen Ergebnisse könnten jedoch
auch auf die unterschiedlichen Studiendesigns zurückzuführen sein.
Da die Ferkelgewichte selbst der Ferkel der Kontrolltiere im Vergleich zu anderen Studien
auch in der 3. und 4. Laktationswoche vergleichsweise hoch waren (LOISEL et al. 2013;
DERKING 2015), ist davon auszugehen, dass auch diese Ferkel ein maximales Wachstum
zeigten, sodass ein möglicherweise positiver Effekt der ad-libitum-Fütterung „verdeckt“
wurde. Um den Einfluss der ad-libitum-Fütterung auf die Ferkelentwicklung jedoch exakt
wiedergegeben zu können, wären Untersuchungen mit einem identischen Ausgangsgewicht
der Ferkel vonnöten.
Die signifikant höhere Variation der Ferkelgewichte in den Würfen der ad-libitum-Gruppe
an Tag 7 und 14 ist auf eine größere Schwankungsbreite der Gewichte innerhalb der
ehemaligen Rohfasergruppe 1 zurückzuführen. Zwischen der ehem. Kontroll- und
Rohfasergruppe 2 konnten keine signifikant unterschiedlichen Variationskoeffizienten
nachgewiesen werden. Somit scheint die hohe Umgebungstemperatur zusammen mit den
nachfolgenden Konsequenzen wie niedrigere Futteraufnahme und Milchleistung zu einer
höheren Streuung der Ferkelgewichte innerhalb der Würfe geführt zu haben. Die
Beobachtung, dass eine hohe Variation innerhalb der Würfe mit einer höheren
Mortalitätsrate verbunden ist (MILLIGAN et al. 2002), könnte eine Begründung für die in
dieser Gruppe beobachteten höchsten Ferkelverluste von 19 % darstellen.
Diskussion
207
Tabelle 103: Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (s) der Körpergewichte (kg) der überlebenden Ferkel zu den wöchentlichen Wiegezeitpunkten der ehem. Kontroll- und Rohfasergruppe 2
Zeitpunkt1
Restriktiv (Kontrollgruppe 2) (n=8)
Ad libitum (Rohfaser 2) (n=12)
p-Wert
x s x s
24 h p.p. 1,46
±0,18 1,35
±0,11 0,08
Tag 7 2,73
±0,26 2,64
±0,21 0,43
Tag 14 4,69 ±0,45 4,63 ±0,26 0,68
Tag 21 6,77 ±0,62 6,65 ±0,47 0,63
Tag 28 8,70 ±0,71 8,66 ±0,61 0,89
Tag 34 (Absetzen) 10,6 ±0,84 10,6 ±0,80 0,96
korrigiertes Absetzgewicht
2 10,9 ±0,99 10,9 ±1,04 0,98
1Tage ±24h: 76,5 % der Ferkel der Kontroll- und 73,9 % der Ferkel der ad-libitum-Gruppe 2Gewicht auf 35 Säugetage korrigiert
Körpermasseentwicklung der Sauen 5.3.5
Bei allen Sauen kam es im Laufe der Laktation zu einer Einschmelzung von
Körpersubstanz in Form von Körpermasse und Rückenspeckauflage, sodass trotz der hohen
Futteraufnahmen ein Energiedefizit in der Laktation aufgetreten sein muss. Für diese
Feststellung spricht auch die Tatsache, dass mit fortschreitender Laktation der prozentuale
Anteil der Sauen mit geringgradigen Schulterläsionen anstieg. So konnte auch in anderen
Studien eine Zunahme an Schulterläsionen mit fortschreitenden Körpermasseverlust meist
ab der zweiten Laktationswoche beobachtet werden (DAVIES et al. 1997; HERSKIN et al.
2011). Zwar wiesen die Sauen der ad-libitum-Fütterungsgruppe zur Einstallung in den
Abferkelstall ein tendenziell größeres Körpergewicht und eine tendenziell größere
Rückenspeckdicke auf, dennoch verloren diese Tiere über die gesamte Zeit im Abferkelstall
signifikant weniger Rückenspeck und Körpermasse, sodass sie zum Zeitpunkt des
Absetzens ein signifikant höheres Körpergewicht und einen größeren Body Condition
Score hatten. Dies wiederspricht den Ergebnissen vieler anderer Studien, in denen die
Sauen aufgrund niedriger Futteraufnahme in der Laktation mehr Körpersubstanz verloren,
je fetter sie zur Einstallung waren (DOURMAD 1991; DE RENSIS et al. 2005; VIGNOLA
2009; COOLS et al. 2014). Trotz der größeren RSD zur Einstallung und somit einem
potentiell höheren Risiko einer reduzierten Futteraufnahme in der Laktation, zeigten die
Sauen der ad-libitum-Fütterungsgruppe über die ganze Laktation eine durchgehend hohe
Futteraufnahme von ca. 7 kg TS/Tag. Jedoch scheint die zur Geburt ermittelte Dicke der
Diskussion
208
Speckauflage entscheidend für den weiteren Verlauf der Laktation zu sein: Vor dem
Hintergrund, dass erst ab einer RSD von 22-25 mm über negative Effekte in der Laktation
berichtet wird (WHITTEMORE 1996; COOLS et al. 2014), könnte auch die mittlere RSD
der ad libitum gefütterten Sauen von lediglich ca. 17 mm noch nicht ausgereicht haben, um
negative Einflüsse auf die Futteraufnahme und folglich RSD-Verlust auszuüben.
Während die Sauen der ad libitum gefütterten Gruppe im Zeitraum zwischen der
Einstallung und den ersten Tag p.p. ca. 0,5 mm RSD hinzugewannen, wurde diese Menge
RSD von den restriktiv gefütterten Sauen in diesem Zeitraum bereits eingeschmolzen,
sodass sich die RSD zu Beginn der Laktation zwischen den beiden Fütterungsgruppen um
insgesamt ca. 1,2 mm unterschied. Ähnliche Beobachtungen konnten COOLS et al. (2014)
machen: Bei ad-libitum-Fütterung eines kommerziellen Laktationsfutters ab 7 Tage vor der
Geburt nahmen auch diese Sauen im Schnitt 0,6 ±2,1 mm an RSD zu; gleichzeitig wurde
auch in dieser Studie bei den restriktiv gefütterten Sauen ein Verlust von 0,4 ±1,9 mm
festgestellt. Vor diesem Hintergrund scheint die Energie- und Nährstoffversorgung bei
einer restriktiven Fütterung von Laktationsfutter bereits vor der Geburt nicht ausreichend
zu sein, um den Bedarf der Sauen decken zu können. In Folge dessen kommt es bei diesen
Sauen schon zu Beginn der Laktation zu einem Verlust von Körpersubstanz, wodurch den
Sauen weniger Energie für die Laktation zur Verfügung steht.
Mit einem RSD-Verlust von 3,59 mm verloren die Sauen der restriktiv gefütterten Gruppe
zwar im Vergleich zu der ad-libitum-Gruppe ca. 0,5 mm mehr Rückenspeck, jedoch sollte
beachtet werden, dass ein RSD-Verlust von ca. 3 mm in den meisten Studien bereits bei
einer Säugezeit von lediglich 3-4 Wochen beobachtet wird (KOKETSU et al. 1998;
GUILLEMET et al. 2007; DERKING 2015). Da die Sauen der restriktiv gefütterten Gruppe
nach Wurfausgleich zudem ca. 0,4 Ferkel mehr säugten (13,4 ±1,11 vs. 13,0 ±1,60) und
eine tendenziell höhere Milchleistung über die gesamte Laktation zeigten, ist der
geringgradig höhere RSD-Verlust leicht zu begründen. Dennoch konnte auch bei den
Sauen, welche nicht durch hohe Temperaturen im Abferkelstall beeinflusst waren
(ehemalige Kontroll- und Rohfasergruppe 2) und eine ähnlich hohe Anzahl an Ferkeln
säugten (13,5 ±0,76 vs. 13,7 ±0,89), in der ursprünglichen Kontrollgruppe – trotz
niedrigerer Milchleistung – ein um knapp 0,5 mm höherer RSD-Verlust nachgewiesen
Diskussion
209
werden (Tabelle 101). Da die mittlere Futteraufnahme in beiden Gruppen ab der zweiten
Laktationswoche nahezu identisch war (Tabelle 99), muss die signifikant unterschiedliche
Energie- und Nährstoffaufnahme in der ersten Laktationswoche, zusammen mit der zu
diesem Zeitraum noch niedrigen Milchleistung, nicht nur zu einer Zunahme der RSD
geführt haben, sondern scheint auch einen länger-anhaltenden modulierenden Effekt auf
den Stoffwechsel dieser Sauen gehabt zu haben. Auch andere Autoren konnten eine
Reduktion der Einschmelzung von Körpersubstanz bei steigender Futteraufnahme in der
Laktation beobachten (KOKETSU et al. 1998; MAES et al. 2004; COOLS et al. 2014).
NEIL (1996) stellten zudem weniger RSD-Verluste bei Sauen in der Laktation fest, je
schneller diese nach der Geburt ad libitum gefüttert wurden. Somit scheint die ad-libitum-
Fütterung bereits vor der Geburt die Sauen in der Laktation trotz hoher Milchleistung zu
entlasten.
Der Verlust an Körpermasse in der Laktation kann aufgrund der großen Gewichtszunahme
der faserreich gefütterten Tiere ante partum, wodurch auch das Gewicht am Tag 1 p.p.
überschätzt wurde, von diesen Tieren nicht adäquat ausgewertet werden (vgl. Kapitel
5.1.4). Die restriktiv gefütterten Kontrolltiere verloren im Verlauf der Laktation 23,4
±12,5 kg Körpermasse, was ca. 8,9 % ihres zur Einstallung ermittelten Körpergewichtes
entspricht. Dies übersteigt bereits die von KIRCHGEßNER (2011) empfohlene kritische
Obergrenze für einen Gewichtsverlust von max. 20 kg bzw. 5-7,5 % der Körpermasse.
THAKER und BILKEI (2005) hingegen konnten erst ab einem Körpermasseverlust von
über 10 % des Ausgangsgewichtes negative Auswirkungen auf die folgenden
Reproduktionsleistungen beobachten. Dass die Verluste der Körpermasse bei einer 5-
wöchigen Säugezeit auch bei den restriktiv gefütterten Sauen durch die vergleichsweise
schnelle Anfütterung als moderat bewertet werden müssen, zeigen Untersuchungen von
THINGNES et al. (2012): In ihren Untersuchungen verloren die Sauen bei einer stark
restriktiven Fütterung bis zum Tag 9 p.p. innerhalb einer 5-wöchigen Säugezeit bis zu
39 kg und schmolzen über 5 mm Rückenspeck ein.
Diskussion
210
Leistungsdaten der Sauen im Folgewurf 5.3.6
Die Sauen der ad-libitum-Fütterungsgruppe wiesen ein um mind. 1 Tag reduziertes Absetz-
Beleg-Intervall im Vergleich zu der restriktiv gefütterten Kontrollgruppe auf. Auch die
Anzahl insgesamt und lebend geborener Ferkel war in dieser Gruppe in dem auf den
Versuch folgenden Wurf signifikant um ca. 3 Ferkel/Sau höher. Zu ähnlichen Ergebnissen
kamen bereits andere Autoren, welche bei restriktiv gefütterten Sauen ein längeres Absetz-
Östrus-Intervall und niedrigere Ovulationsraten aufwiesen (ZAK et al. 1997; DERKING
2015). Eine Erklärung hierfür sehen BARB et al. (2005) darin, dass ein Mindestfettanteil in
der Sau nach dem Absetzen notwendig ist, damit ausreichend Leptin gebildet wird. Das
Fettgewebshormon Leptin führt nicht nur über die Hypothalamus-Hypophysen-Achse zu
einer vermehrten Freisetzung von GnRH, sondern scheint auch einen direkten Effekt auf
die LH-Sekretion der Hypophyse auszuüben (BARB 1999). Um negative Einflüsse auf die
weitere Reproduktion bei Sauen zu minimieren, sollen in der Laktation nicht mehr als 10 %
des Körpergewichtes eingeschmolzen bzw. zum Absetzen eine Rückenspeckdicke von
13 mm nicht unterschritten werden (JEROCH et al. 1999; THAKER u. BILKEI 2005). Da
auch die restriktiv gefütterten Sauen dieser Studie ca. 9 % der Körpersubstanz im Laufe der
Laktation verloren und mit einer RSD von 12,9 mm den unteren empfohlenen Grenzwert
der RSD zum Absetzen erreichten, könnte der höhere Körpermasseverlust dieser Tiere zu
einer verminderten Fruchtbarkeit im Vergleich zu den ad libitum gefütterten Tieren geführt
haben. Auch andere Untersuchungen konnten ein längeres Absetz-Beleg-Intervall sowie
eine niedrigere Ovulations- und Trächtigkeitsrate insbesondere bei den Sauen nachweisen,
welche in der Laktation viel RSD bzw. Körpermasse verloren hatten (ZAK et al. 1997; DE
RENSIS et al. 2005; THAKER u. BILKEI 2005).
Andere Autoren sehen die Proteinversorgung der Sauen in der Laktation als entscheidendes
Kriterium für die in der Laktation auftretenden Körpermasseverluste (MCNAMARA u.
PETTIGREW 2002; CLOWES et al. 2003). Bei gleicher energetischer Versorgung verloren
Sauen mit einer sehr niedrigen Proteinversorgung von ca. 491 g Rp/Tag zwar deutlich mehr
Körpermasse im Vergleich zu der Kontrollgruppe (878 g Rp/Tag), die RSD unterschied
sich jedoch nur marginal (CLOWES et al. 2003). Zudem war bei diesen Sauen nicht nur die
Ovulationsrate nach dem Absetzen reduziert, sondern auch die Qualität der ovulierten
Eizellen verringert. Vor diesem Hintergrund könnte auch die – zumindest zu Beginn der
Diskussion
211
Laktation – niedrigere Proteinversorgung der restriktiv gefütterten Tiere eine Rolle in den
größeren Körpermasseverlusten gespielt und somit zu den niedrigeren Ferkelzahlen dieser
Sauen geführt haben. Insgesamt scheint somit die niedrigere Einschmelzung von
Körpersubstanz der ad libitum gefütterten Sauen einen positiven Einfluss auf die
Reproduktionsleistungen der Sauen im Folgewurf ausgeübt zu haben.
Schlussfolgerungen 5.4
In den vorliegenden Untersuchungen konnte gezeigt werden, dass sich ein ad-libitum-
Angebot eines rohfaserreichen Mischfutters im peripartalen Zeitraum (Tag 7 a.p. bis Tag 2
p.p.) zusätzlich zu einem restriktiv zugeteilten Laktationsfutter bzw. ein ad libitum
angebotenes Laktationsfutter (ab Tag 3 p.p.) positiv auf die Sauen- und Ferkelentwicklung
sowie auf deren Gesundheit auswirkt. So zeigten die ad libitum gefütterten Sauen durch das
zusätzliche ad-libitum-Angebot der Rohfaser-/Laktationsfuttermischung bereits ante partum
hohe TS-Aufnahmen von 5-6 kg TS/Tag. Im Gegensatz zu den Beobachtungen früherer
Untersuchungen (NEIL et al. 1996; MAES et al. 2010; PAPADOPOULOS et al. 2010)
wurde durch die hohen TS-Aufnahmen im peripartalen Zeitraum weder der Geburtsprozess
der ad libitum gefütterten Sauen negativ beeinflusst, noch eine höheres Vorkommen von
MMA oder eine temporäre Reduktion der Futteraufnahme im Laufe der Laktation
beobachtet. Vielmehr erreichten die bereits an hohe Futtermengen adaptierten Sauen durch
eine zügige Steigerung der Futtermenge p.p., schon am 3. Laktationstag mit einer TS-
Aufnahme von ca. 7 kg TS/Tag ähnlich hohe Futtermengen wie in der späteren Laktation.
Dies führte zu einer signifikant höheren Futteraufnahme dieser Sauen in der ersten
Laktationswoche und somit zu einer um knapp 300 g täglich höheren Futteraufnahme in der
gesamten Laktation, was sich wiederrum positiv auf die Körpermasseentwicklung der
Sauen auswirkte. So verfügten diese Tiere nicht nur aufgrund der höheren Futteraufnahme
über höhere Mengen an Energie und Nährstoffen, sondern auch – bedingt durch einen
Zuwachs der RSD von ca. 0,5 mm in der Woche vor der Geburt – über größere
Körperfettreserven zu Beginn der Laktation. Zudem waren diese Tiere in der Lage eine
hohe Milchleistung auch in den letzten beiden Laktationswochen aufrecht zu erhalten, was
sich wiederum positiv auf die Zunahmen der Ferkel auswirkte. So konnten am Ende der
Diskussion
212
Laktation in beiden Gruppen gleichschwere Ferkel abgesetzt werden, obwohl das
Körpergewicht der Ferkel der ad libitum gefütterten Sauen zu Beginn der Laktation
signifikant niedriger war. Trotz der vergleichsweise hohen Milchleistung gegen Ende der
Laktation, verloren die ad libitum gefütterten Sauen tendenziell weniger Rückenspeck,
sodass durch diese Art der Fütterung eine Entlastung der Sauen mit gleichzeitig hohem
Wurfzuwachs erreicht werden konnte.
Bedingt durch die hohe Aufnahme der Rohfaser-/Laktationsfuttermischung und folglich
einer hohen Aufnahme von Faser- und Gerüstsubstanzen wurde der Sauenkot im
peripartalen Zeitraum signifikant weicher, was nicht nur das Risiko von Obstipationen und
einer MMA-Erkrankung reduzieren kann (MARTINEAU et al. 1992; KAMPHUES et al.
1998; REINER et al. 2009), sondern auch – zumindest in der Rohfasergruppe 2 – zu einem
signifikant verkürzten Geburtsintervall zwischen den einzelnen Ferkeln führte. Zudem kam
es zu einer signifikanten Reduktion des fäkalen pH-Wertes der Sauen in diesem Zeitraum
und einer positiven Veränderung der mikrobiellen Zusammensetzung des unmittelbar p.p.
ausgeschiedenen Kotes. So wurde in diesem Kot nicht nur die Anzahl pathogener Bakterien
wie C. perfringens gesenkt; vielmehr konnte der prozentuale Anteil potentiell
gesundheitsfördernder Bakterien wie die Familie der Lactobacillaceae durch die
faserreiche Fütterung signifikant erhöht werden. Vor dem Hintergrund, dass die
neugeborenen Ferkel unmittelbar nach der Geburt mit dem Sauenkot in Kontakt kommen,
könnte die veränderte mikrobielle Zusammensetzung dieses Kotes dazu beitragen, das
Risiko früher Durchfallerkrankungen der Saugferkel zu minimieren. Letztendlich führte die
faserreiche Fütterung im peripartalen Zeitraum auch zu einer signifikant niedrigeren
Cortisolkonzentration im Speichel der Sauen 72 h p.p.. Dies könnte als Zeichen eines
reduzierten Stressempfindens der Sauen nach der Geburt und somit eines gesteigerten
Wohlbefindens dieser Tiere gewertet werden.
Insgesamt erwies sich dieses Fütterungssystem bei Temperaturen bis 25 °C als sehr positiv
im Hinblick auf die Sauen- und Ferkelgesundheit sowie deren Entwicklung. Aufgrund der
Tatsache, dass den Sauen durch den Einsatz der zusätzlichen Automaten zwar jederzeit
Futter ad libitum zur Verfügung stand, diese aber technisch nicht auf die Freisetzung großer
Futtermengen in kürzester Zeit ausgelegt waren, kam es insbesondere bei Temperaturen
Diskussion
213
von > 25 °C zu einer niedrigeren Futteraufnahme der ad libitum gefütterten Tiere. Aus
diesem Grund scheint bei hohen Temperaturen eine Mahlzeiten-Fütterung zu bevorzugen
zu sein. Im Laufe der weiteren Laktation wäre ein Einsatz dieser Automaten zudem im
Hinblick einer individuellen Supplementation eines proteinreichen Ergänzungsfuttermittels
besonders hoch leistender Sauen zur Vermeidung überdurchschnittlich großer Verluste von
Körperreserven sehr gut denkbar.
Zusammenfassung
215
Zusammenfassung 6
Leurs, Maria:
Einfluss unterschiedlicher Fütterungskonzepte im peripartalen Zeitraum und der
Laktation auf die Gesundheit und die Körpermassenentwicklung von Sauen und
Ferkeln
In der vorliegenden Studie wurde eine restriktive Fütterung von Sauen im Abferkelstall
durch ein ad libitum angebotenes rohfaserreiches Mischfutter im peripartalen Zeitraum
(Tag 7 a.p. bis Tag 2 p.p.) bzw. ein konventionelles pelletiertes Laktationsfutter ab Tag 3
der Laktation ergänzt, um den Einfluss dieses Fütterungsansatzes auf verschiedene
Parameter der Sauen- und Ferkelgesundheit sowie der Sauen- und Ferkelentwicklung in der
Laktation näher charakterisieren zu können. Von der Einstallung in den Abferkelstall (Tag
7 a.p.) bis zum Tag des Absetzens (Tag 35) wurde einer Gesamtanzahl von 47 Sauen
zweimal täglich ein konventionelles Laktationsfutter nach einem restriktiven
Fütterungsschema (bis Tag 1 p.p. ca. 2,5 kg TS/Tag; danach Anhebung der Futtermenge
um ca. 0,5 kg/Tag bis zu einer nahezu ad-libitum-Fütterung ab Tag 10) zugeteilt. Darüber
hinaus wurde den Sauen der Versuchsgruppe (n=24) über einen kleinen Automaten
zusätzliches Futter zur freien Aufnahme angeboten. Dieser Automat enthielt bis Tag 2 p.p.
eines von zwei ähnlich konzipierten rohfaserreichen pelletierten Mischfuttermitteln
(Rohfaserpellet 1 und 2). Beide Rohfaserpellets wurden zur besseren Akzeptanz der Sauen
mit ca. 15 % Laktationsfutter versetzt. Ab Tag 3 p.p. erfolgte die Befüllung der Automaten
mit dem konventionellen Laktationsfutter. Beide Rohfaserpellets bestanden zu einem
Großteil aus Gerstenschrot zusammen mit druckhydrothermisch aufgeschlossenen
Sojabohnenschalen (Rohfaserpellet 1; pro kg TS: 119 g Rp; 197 g Rfa, 10,1 MJ ME) oder
einer Kombination aus druckhydrothermisch aufgeschlossenen Sojabohnenschalen und
Haferschälkleie (Rohfaserpellet 2; pro kg TS: 125 g Rp, 179 g Rfa; 10,0 MJ ME). Die
Aufteilung der Sauen in die jeweiligen Gruppen erfolgte randomisiert. Es wurde jeweils
eine restriktiv gefütterte Kontrollgruppe zusammen mit einer ad libitum gefütterten
Rohfasergruppe in einem Abferkelabteil aufgestallt. Somit ergaben sich folgende
Kombinationen: Kontrollgruppe 1 (K 1; n=10) und Rohfasergruppe 1 (Rfa 1; n=12) sowie
Kontrollgruppe 2 (K 2; n=13) und Rohfasergruppe 2 (Rfa 2; n=12).
Zusammenfassung
216
Die Dokumentation der Futteraufnahme erfolgte täglich. Zur Geburt wurde die Anzahl
lebend, tot und mumifiziert geborener Ferkel sowie die Geburtslänge und das
Geburtsintervall zwischen zwei Ferkeln erfasst. Innerhalb von 24 h nach Abferkelung der
letzten Sau erfolgte ein Wurfausgleich auf 13,4 ±1,11 Ferkeln bei den restriktiv und 13,0
±1,60 Ferkeln bei den ad libitum gefütterten Sauen. Zur Einschätzung der
Kolostrumaufnahme der Ferkel diente eine Bestimmung des Immunokrits, Protein-,
Albumin- sowie γ-Globulin-Gehalts im Serum von jeweils zwei leichten und schweren
Ferkeln eines Wurfes 48 h post natum. Zudem erfolgte rund um die Geburt (Tag -7, -2, 1,
3) eine Bestimmung der Cortisolkonzentration im Speichel der Sauen. Die Kotkonsistenz
und Kotzusammensetzung (Kotscore, TS-Gehalt, pH-Wert) der Sauen im peripartalen
Zeitraum wurde in zweitägigen Abständen ermittelt. In zur Einstallung sowie 24-48 h p.p.
und zu Beginn der dritten Laktationswoche entnommenen Kotproben wurden mittels 16S
rRNA-Analysen das fäkale Mikrobiom und im Kot unmittelbar p.p. kulturell die Anzahl
von C. perfringens bestimmt. Die Entwicklung der Körpermasse der Sauen wurde durch
Wiegungen und Messungen der Rückenspeckdicke (RSD) (Tag -7, 1, 14, 35) und die der
Ferkel durch wöchentliche individuelle Wiegungen ermittelt. Mithilfe des Wurfzuwachses
wurde unter Berücksichtigung der Beifutteraufnahme der Ferkel zudem die tägliche
Milchleistung der Sauen errechnet. Die wesentlichen Ergebnisse dieser Arbeit werden
nachfolgend zusammengefasst:
Einfluss eines ad libitum angebotenen rohfaserreichen Mischfutters ergänzend zu
einer restriktiven Gabe eines Alleinfutters für laktierende Sauen im peripartalen
Zeitraum auf die Sauen- und Ferkelgesundheit
Die zusätzlich zum restriktiv zugeteilten Laktationsfutter durchschnittlich täglich
aufgenommene Menge des Rohfaser-/ Laktationsfuttergemisches betrug in den Tagen vor
der Geburt 2,13 ±1,15 kg TS (Rohfasergruppe 1) und 3,14 ±0,68 kg TS (Rohfasergruppe 2).
Somit erreichten die ad libitum gefütterten Sauen durch das zusätzliche Angebot der
Rohfaser-/Laktationsfuttermischung bereits ante partum hohe TS-Aufnahmen von 5-6 kg
TS/Tag. Ad libitum gefütterte Sauen, welche zeitweise einer Temperatur von >25 °C
ausgesetzt waren, zeigten eine um ca. 1 kg reduzierte Futteraufnahme. Sowohl die Anzahl
lebend, tot und mumifiziert geborener Ferkel als auch die untersuchten Blutparameter im
Ferkelserum unterschieden sich zwischen den Fütterungsgruppen nicht signifikant. Im
Zusammenfassung
217
Vergleich zur Kontrollgruppe war das Geburtsintervall in der Rohfasergruppe 2 signifikant
kürzer (16,3 ±6,74 Min vs. 11,0 ±3,49 Min; p=0,04). Die saliväre Cortisolkonzentration
aller Sauen stieg zur Geburt hin signifikant an (von 1-2 ng/ml auf 6-8 ng/ml) und war 72 h
p.p. bei den Tieren der Kontrollgruppe signifikant höher als bei den Sauen beider
Rohfasergruppen (7,31 bzw.10,3 [K 1 bzw. K2]/ 3,25 ±1,90[Rfa 1]/ 3,42 ±1,82 ng/ml [Rfa
2]; p=0,01). Die hohen Aufnahmen von Faser- und Gerüstsubstanzen führten zu einem
signifikant weicheren Kot mit signifikant niedrigeren pH-Werten der Sauen beider
Versuchsgruppen im peripartalen Zeitraum. Die Anzahl KbE von C. perfringens im
unmittelbar nach der Geburt entnommenen Sauenkot war im Vergleich zu den jeweiligen
Kontrollgruppen in der Rohfasergruppe 1 um das 10-fache (p=0,01) und in der
Rohfasergruppe 2 sogar um das 100-fache reduziert (p<0,0001) (ca. 4,5 [K 1 und 2]/ 3,02
±0,76 [Rfa 1]/ 2,10 ±1,50 [Rfa 2] log10 KbE/g Kot). Zudem führte die faserreiche Fütterung
zu einer veränderten Zusammensetzung des fäkalen Mikrobioms: Während zur Einstallung
sowie zwei Wochen nach Ende der Rohfaser-Supplementation keine signifikanten
Differenzen der wesentlichen Bakterienfamilien zwischen den Gruppen nachweisbar waren,
wurden nach 7-tägiger Rohfasersupplementation zum Zeitpunkt der Geburt im Kot der
Versuchsgruppen signifikant weniger Ruminococcaceae (25 % [K 1 und 2]/ 13 % [Rfa 1]/
15 % [Rfa 2]; p<0,0001) und mehr Lachnospiraceae (8/ 14/ 13 %; p=0,0002) und
Lactobacillaceae (7,5/ 10/ 19 %; p=0,0009) nachgewiesen.
Einfluss einer ad-libitum-Fütterung in der Laktation auf die Sauen- und
Ferkelentwicklung
Die bereits an hohe Futtermengen adaptierten Sauen der ad libitum gefütterten Gruppe
erreichten durch eine zügige Steigerung der Futtermenge p.p., bereits am 3. Laktationstag
mit einer TS-Aufnahme von ca. 7 kg TS/Tag ähnlich hohe Futtermengen wie in der
späteren Laktation. Dies führte zu einer signifikant höheren Futteraufnahme dieser Sauen in
der ersten Laktationswoche (5,08 ±0,52 kg TS vs. 5,93 ±0,77 kg TS; p=0,0004) und somit
zu einer tendenziell höheren täglichen Futteraufnahme in der gesamten Laktation (6,75
±0,44 kg TS vs. 7,02 ±0,81 kg TS). Zudem verloren die ad libitum gefütterten Sauen
während der Zeit im Abferkelstall bei vergleichbaren Einstallgewichten (279 ±36,3 kg vs.
288 ±27,8 kg) und RSD (16,9 ±3,24 mm vs. 17,1 ±4,21 mm) signifikant weniger
Körpermasse (-39,1 ±15,5 kg vs. -26,3 ±13,2 kg; p=0,01) und RSD (-4,04 ±1,74 mm vs. -
Zusammenfassung
218
2,52 ±2,04 mm; p=0,017) als die Kontrolltiere. Dies hatte zur Folge, dass diese Tiere am
Ende der Laktation im Vergleich zu den restriktiv gefütterten Sauen signifikant schwerer
waren (240 ±31,9 kg vs. 261 ±35,0 kg; p=0,049) und eine tendenziell größere RSD
aufwiesen (12,9 ±3,29 mm vs. 14,5 ±3,33 mm). Obwohl die Ferkel zu Beginn der Laktation
in der ad-libitum-Gruppe signifikant leichter waren (1,49 ±0,17 kg vs. 1,36 ±0,14 kg;
p=0,012), wiesen alle Ferkel am Ende der Laktation vergleichbare Körpergewichte auf
(11,1 ±0,99 kg vs. 11,0 ±1,28 kg). Die mittlere tägliche Milchleistung unterschied sich
nicht zwischen den Gruppen (12,5 ±2,34 kg vs. 12,5 ±1,90 kg), was insbesondere auf die
vergleichsweise niedrige Milchleistung der unter hohen Temperaturen gehaltenen Tiere der
Versuchsgruppe zurückzuführen war. Jedoch produzierten die ad libitum gefütterten Sauen
tendenziell größere Milchmengen in den letzten beiden Laktationswochen.
Insgesamt lässt sich festhalten, dass die hohen TS-Aufnahmen der ad libitum gefütterten
Sauen bereits im peripartalen Zeitraum im Gegensatz zu den Beobachtungen früherer
Untersuchungen (NEIL et al. 1996; MAES et al. 2010; PAPADOPOULOS et al. 2010),
weder zu Störungen des Geburtsprozesses führten, noch ein höheres Vorkommen von
MMA oder eine temporäre Reduktion der Futteraufnahme im Laufe der Laktation
induzierten. Durch diese Art der Fütterung wurden höhere TS-Aufnahmen auch in der
Laktation erreicht, welche sich positiv auf die Entwicklung der Körpersubstanz von Sauen
und Ferkeln auswirkten. Zudem könnten die faserbedingten Veränderungen der
mikrobiellen Kotzusammensetzung dazu beitragen, das Risiko früher
Durchfallerkrankungen von Saugferkeln zu senken. Insgesamt erwies sich dieses
Fütterungssystem bei Temperaturen bis 25 °C somit als empfehlenswert im Hinblick auf
die Gesundheit und Entwicklung von Sauen- und Ferkeln. Bei Temperaturen von > 25 °C
scheint jedoch eine aus wenigen Mahlzeiten bestehende Fütterung eher empfehlenswert zu
sein. Im Laufe der weiteren Laktation wäre ein Einsatz dieser ad-libitum-Automaten zudem
im Hinblick einer individuellen Supplementation eines proteinreichen
Ergänzungsfuttermittels besonders für hoch leistende Sauen zur Vermeidung
überdurchschnittlich großer Verluste von Körperreserven sehr gut denkbar.
Summary
219
Summary 7
Maria Leurs:
Influence of different feeding concepts during parturition and lactation on health and
performance of sows and piglets
A manually restricted feeding regime of sows in farrowing pens was supplemented with a
separate allocation of a high fiber diet (d-7 – d2 p.p.) or lactation diet (d3 onwards) to
examine if this feeding concept leads to beneficial effects for sows and piglets.
From day 109 (d-7) of gestation, a total of 47 sows were fed daily two portions of a
commercial lactation diet until d35 of lactation following a manually controlled restricted
feeding scheme (up to d1 p.p. 2.5 kg DM/d, afterwards increasing food supply of 0.5 kg
DM/d until near ad libitum feeding from d 10 p.p. onwards). Furthermore a number of
24 sows (ad libitum fed group) had the possibility to get additional feed out of an extra
feeding dispenser containing from d-7 until d2 one of two slightly different high fibre
pellets (high fibre pellet 1 and 2). To improve the acceptance of pellet 1 and 2 by the sows,
both were mixed with 15 % of the commercial lactation feed. From d3 p.p. onwards
lactation diet was filled into the extra feeding dispensers. Both high fibre pellets consisted
mainly of barley in addition to hydrolyzed soybean hulls (high fibre pellet 1; per kg DM:
119 g XP; 197 g XF, 10,1 MJ ME)) or alternatively a combination of hydrolyzed soybean
hulls and oat bran (high fibre pellet 2; per kg DM: 125 g XP, 179 g XF; 10,0 MJ ME).
Sows were randomly divided into groups. Sows of both of the high fibre group and
restricted fed control group were housed in one farrowing room side by side, so that high
fibre group 1 (HFG 1; n=12) was compared to control group 1 (C 1; n=10) and high fibre
group 2 (HFG 2; n=12) was compared to control group 2 (C 2; n=13).
Feed intake of sows was measured daily. Furthermore not only the number of total born,
live-born and stillborn piglets but also the duration of farrowing and birth interval of the
piglets was determined. Within 24h after parturition of the last sow, litters were
standardized (ad libitum fed sows n=13.0 ±1.60, restrictive fed sows n=13.4 ±1.11) by
cross-fostering piglets. In order to evaluate the colostrum intake of the piglets, blood was
taken from two small and heavy piglets of each litter 48 h post natum. In the obtained
Summary
220
serum the immunocrit-ratio and concentration of protein, albumin and γ-globulin were
analyzed. Around farrowing (d-7, -2, 1, 3) salivary samples of all sows were taken for
cortisol determination. Faecal samples were used to record their texture and composition
(scoring, DM-content, pH value). Furthermore in sow’s faeces the microbiome was
analyzed on d-7, 24-48 h p.p. and d 16 p.p. using a 16S rRNA analysis and the bacterial
count of C. perfringens was culturally determined in faeces directly after parturition. On d-
7, d1, d14 and d35 body weight and back fat thickness of each sow were assessed; each
piglet was weighed weekly. By means of litter weight gain and creep feed intake of the
piglets, daily milk production of the sows could be calculated. The essential results are
summarized below:
Influence of an ad libitum supplementation of a high fibre diet during parturition in
addition to a restrictive feeding regime on the health of sows and piglets
The voluntary feed intake in DM of the fibre-lactation-diet mixture a. p. was 2.13 ±1.15 kg
in HFG 1 and 3.14±0.68 kg in HFG 2. This led to a higher DM intake ante partum in the ad
libitum fed-groups about 5-6 kg DM/d. Ad libitum fed sows, which were housed
temporarily under high ambient temperatures >25 °C showed a reduced feed intake by 1 kg
DM. There weren’t any significant differences concerning both, the number of total born,
live-born and stillborn piglets and the analyzed piglets’ serum parameters. Birth interval
between piglets was significantly reduced in the HFG 2 compared to C 2 (16.3 ±6,74 min
vs. 11.0 ±3.49 min; p=0.04). A rise in salivary cortisol concentrations could be seen in all
groups 24 h p.p. compared to d -2 (Increase from 1-2 ng/ml up to 6-8 ng/ml). While the
cortisol concentration of the ad libitum fed sows decreased thereafter, the cortisol
concentration of both control groups was still increasing and significantly higher 72 h p.p.
(7.31-10.3 ng/ml [C1 and C2] vs. 3.25 ±1.90 ng/ml [HFG 1], 3.42 ±1.82 ng/ml [HFG 2];
p=0.01). Due to the high fibre intake the dry matter content and pH value in faecal samples
were significantly lower around parturition in both high fibre groups. Bacterial counts of C.
perfingens in the faeces directly p.p. were 10 times lower in the HFG 1 (p=0.01) and 100
times lower in HFG 2 (p<0.0001) compared to C 1 and C 2 (C 1 and C 2/HFG 1/HFG 2:
about 4.5/ 3.02 ±0.76/ 2.10 ±1.50 log10 CFU/g faeces). Furthermore a change of the
microbiome of the sow’s faeces could be noticed: While there weren’t any significant
differences in the microbiome at d-7 and d16 p.p., significantly differences could be
Summary
221
detected 7 days after introducing the high fibre diet. In HGF 1 and 2 a lower percentage of
Ruminococcaceae (25 % [C1 and 2]/ 13 % [HFG 1]/ 15 % [HFG 2]; p<0.0001) and higher
percentages of Lachnospiraceae (8/ 14/ 13 %; p=0.0002) and Lactobacillaceae (7.5/ 10/
19 %; p=0.0009) were analyzed.
Influence of an ad libitum feeding regime during lactation on the performance of sows
and piglets
The sows of the ad libitum fed groups, which were already adapted to high feed amounts,
showed a rapid increase in DM intake p.p., so that they reached nearly the average daily
feed intake of the lactation period already on d3 p.p (about 7 kg DM/d). This resulted in a
significantly higher DM intake in the first week of lactation (5.08 ±0.52 kg DM vs. 5.93
±0.77 kg DM; p=0.0004) and a slightly higher DM intake during lactation (6.75 ±0.44 kg
DM vs. 7.02 ±0.81 kg DM). Although all sows had similar weights (279 ±36.3 kg vs. 288
±27.8 kg) and back fat thickness (16.9 ±3.24 mm vs. 17.1 ±4.21 mm) at the beginning of
the trial, both, the loss of weight (-39.1 ±15.5 kg vs. -26.3 ±13.2 kg; p=0.01) and back fat
thickness was significantly lower (-4.04 ±1.74 mm vs. -2.52 ±2.04 mm; p=0.017) in the ad
libitum fed group from d-7 until d35. This is the reason why these sows were significantly
heavier at weaning (240 ±31.9 kg vs. 261 ±35.0 kg; p=0.049) and had slightly higher
backfat depths (12.9 ±3.29 mm vs. 14.5 ±3.33 mm). Although the piglets of the ad libitum
fed sows showed a significantly reduced body weight at birth (1.49 ±0.17 kg vs. 1.36 ±0.14
kg; p=0.012), average body weight of all piglets was nearly the same at the end of lactation
(11.1 ±0.99 kg vs. 11.0 ±1.28 kg). Average daily milk yield did not differ between the
groups (12.5 ±2.34 kg vs. 12.5 ±1.90 kg), which could be related to the comparatively low
milk yield of the ad libitum fed sows during high ambient temperatures. However, the milk
yield in week 4 and 5 of lactation was in tendency higher in the ad libitum fed group.
In conclusion a higher feed intake a. p. did not interfere with the farrowing process, nor
increased the incidence of MMA or led to a temporally reduced feed intake in lactation,
which is in contrast to what was reported earlier (NEIL et al. 1996; MAES et al. 2010;
PAPADOPOULOS et al. 2010). Furthermore ad libitum fed sows showed a higher DM
intake throughout lactation, which had beneficial effects on body condition of sows and
weight gain of piglets. Due to the high fibre intake the sow’s microbiota of the faeces at
Summary
222
parturition changed, which could be a helpful tool in reducing the risk of early neonatal
diarrhea of the suckling piglets. Therefore the tested feeding concept improved health and
performance of sows and piglets provided that the ambient temperature does not exceed
25 °C. If the temperature exceeds 25 °C, a feeding regime with only a few meals per day
seems to be preferable. Henceforth it could be also conceivable using the individual feeding
dispenser for supplementation of a protein rich diet for high producing sows during
lactation.
Literatur
223
Literatur 8
AHERNE, F., u. I. H. WILLIAMS (1992):
Nutrition for optimizing breeding herd performance.
Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 8, 589-608
ALGERS, B., u. P. JENSEN (1991):
Teat stimulation and milk production during early lactation in sows: Effects of continuous
noise.
Can. J. Anim. Sci. 71, 51-60
ALLAART, J. G., A. J. VAN ASTEN u. A. GRÖNE (2013):
Predisposing factors and prevention of Clostridium perfringens-associated enteritis.
Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 36, 449-464
ANDERSEN, I. L., E. NÆVDAL u. K. E. BØE (2011):
Maternal investment, sibling competition, and offspring survival with increasing litter size
and parity in pigs (Sus scrofa). Behav. Ecol. Sociobiol. 65, 1159-1167
APAJALAHTI, J., u. K. VIENOLA (2016):
Interaction between chicken intestinal microbiota and protein digestion.
Anim. Feed Sci. Tech. (im Druck), http://dx.doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2016.1005.1004
AUMILLER, T., R. MOSENTHIN u. E. WEISS (2015):
Potential of cereal grains and grain legumes in modulating pigs׳ intestinal microbiota–A
review.
Livest. Sci. 172, 16-32
AZAIN, M., T. TOMKINS, J. SOWINSKI, R. ARENTSON u. D. JEWELL (1996):
Effect of supplemental pig milk replacer on litter performance: Seasonal variation in
response.
J. Anim. Sci. 74, 2195-2202
BÄCKSTRÖM, L., A. MORKOC, J. CONNOR, R. LARSON u. W. PRICE (1984):
Clinical study of mastitis-metritis-agalactia in sows in Illinois.
J. Am. Vet. Med. Assoc. 185, 70-73
BAKER, A., E. DAVIS, J. SPENCER, R. MOSER u. T. REHBERGER (2013):
The effect of a-based direct-fed microbial supplemented to sows on the gastrointestinal
microbiota of their neonatal piglets.
J. Anim. Sci. 91, 3390-3399
BARB, C. (1999):
The brain-pituitary-adipocyte axis: role of leptin in modulating neuroendocrine function.
J. Anim. Sci. 77, 1249-1257
Literatur
224
BARB, C., G. HAUSMAN u. K. CZAJA (2005):
Leptin: A metabolic signal affecting central regulation of reproduction in the pig.
Domest. Anim. Endocrinol. 29, 186-192
BARDEHLE, D., R. PREIßLER, J. LEHMANN, H. LOOFT u. N. KEMPER (2012):
Fruchtbarkeits-und Leistungs-Parameter in der Ferkelproduktion unter Berücksichtigung
des Geburts-Managements und dem Auftreten von Mastitis-Metritis-Agalaktie (MMA).
Züchtungskunde 84, 293-306
BAST, E. (2001):
Mikrobiologische Methoden: eine Einführung in grundlegende Arbeitstechniken.
2. Aufl., Spektrum, Akademischer Verlag, Heidelberg
BAXTER, E., S. JARVIS, R. D’EATH, D. ROSS, S. ROBSON, M. FARISH, I. NEVISON, A. LAWRENCE u. S. EDWARDS (2008):
Investigating the behavioural and physiological indicators of neonatal survival in pigs.
Theriogenology 69, 773-783
BEENING, J.-G. (1999):
Der Einfluß verschiedener peripartaler Fütterungsmaßnahmen (Zulage von Glaubersalz,
Haferspelzen sowie eines milchsäurehaltigen Fermentationsproduktes) auf den Verlauf von
Geburt und Puerperium bei Sauen.
Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.
BERGERON, R., J. BOLDUC, Y. RAMONET, M. MEUNIER-SALAÜN u. S. ROBERT
(2000):
Feeding motivation and stereotypies in pregnant sows fed increasing levels of fibre and/or
food.
Appl. Anim. Behav. Sci. 70, 27-40
BERGMAN, E. (1990):
Energy contributions of volatile fatty acids from the gastrointestinal tract in various species.
Physiol. Rev. 70, 567-590
BERTSCHINGER, H., V. ENG, P. WEGMANN u. E. BUERGI (1990):
Senkung der Inzidenz von puerperaler Mastitis bei der Sau druch Schutz des Gesaeuges vor
Verschmutzung.
Schweiz. Arch. Tierheilk. 132, 557-566
BERTSCHINGER, H., J. POHLENZ u. D. MIDDLETON-WILLIAMS (1977):
Untersuchungen über das Mastitis-Metritis-Agalaktie-Syndrom (Milchfieber) der Sau III.
Galaktogene Erzeugung von Klebsiellen Mastitis.
Schweiz. Arch. Tierheilk. 119, 265-275
Literatur
225
BICKNELL, R., u. G. LENG (1982):
Endogenous opiates regulate oxytocin but not vasopressin secretion from the
neurohypophysis.
Nature 198, 161-162
BIDDLE, A., L. STEWART, J. BLANCHARD u. S. LESCHINE (2013):
Untangling the genetic basis of fibrolytic specialization by Lachnospiraceae and
Ruminococcaceae in diverse gut communities.
Diversity 5, 627-640
BILKEI, G. (1990):
Einfache, praxisreife Methode für die Früherkennung des Metritis-Mastitis-Agalaktie-
Komplexes in Schweinegrossbeständen.
Monatsh. Veterinarmed. 45, 882-884
BINDELLE, J., R. PIEPER, P. LETERME, B. ROSSNAGEL u. A. VAN KESSEL (2010):
Changes in intestinal microbial ecophysiology as related to the carbohydrate composition
of barleys and oats cultivars in an in vitro model of the pig gastrointestinal tract.
Livest. Sci. 133, 151-153
BINDELS, L. B., N. M. DELZENNE, P. D. CANI u. J. WALTER (2015):
Towards a more comprehensive concept for prebiotics.
Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 12, 303-310
BLACK, J., B. MULLAN, M. LORSCHY u. L. GILES (1993):
Lactation in the sow during heat stress.
Livest. Prod. Sci. 35, 153-170
BØE, K., u. P. JENSEN (1995):
Individual differences in suckling and solid food intake by piglets.
Appl. Anim. Behav. Sci. 42, 183-192
BOURNE, F. (1973):
The immunoglobulin system of the suckling pig.
Proc. Nutr. Soc. 32, 205-215
BRADFORD, M., u. R. GOUS (1991):
The response of growing pigs to a choice of diets differing in protein content.
Anim. Prod. 52, 185-192
BROUNS, F., S. EDWARDS u. P. ENGLISH (1994):
Effect of dietary fibre and feeding system on activity and oral behaviour of group housed
gilts.
Appl. Anim. Behav. Sci. 39, 215-223
Literatur
226
BRULC, J. M., D. A. ANTONOPOULOS, M. E. B. MILLER, M. K. WILSON, A. C.
YANNARELL, E. A. DINSDALE, R. E. EDWARDS, E. D. FRANK, J. B. EMERSON, P.
WACKLIN, P. M. COUTINHO, B. HENRISSAT, K. E. NELSON u. B. A. WHITE
(2009):
Gene-centric metagenomics of the fiber-adherent bovine rumen microbiome reveals forage
specific glycoside hydrolases.
Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 106, 1948-1953
CAMPOS, P. H., E. MERLOT, M. DAMON, J. NOBLET u. N. LE FLOC'H (2014):
High ambient temperature alleviates the inflammatory response and growth depression in
pigs challenged with Escherichia coli lipopolysaccharide.
Vet. J. 200, 404-409
CHABEAUTI, E., J. NOBLET u. B. CARRÉ (1991):
Digestion of plant cell walls from four different sources in growing pigs.
Anim. Feed Sci. Technol. 32, 207-213
CHAN, G., A. FARZAN, G. SOLTES, V. M. NICHOLSON, Y. PEI, R. FRIENDSHIP u.
J. F. PRESCOTT (2012):
The epidemiology of Clostridium perfringens type A on Ontario swine farms, with special
reference to cpb2-positive isolates.
BMC Vet. Res. 8, 156
CHEN, H., X. MAO, J. HE, B. YU, Z. HUANG, J. YU, P. ZHENG u. D. CHEN (2013):
Dietary fibre affects intestinal mucosal barrier function and regulates intestinal bacteria in
weaning piglets.
Br. J. Nutr. 110, 1837-1848
CHRISTIE, R., N. ATKINS u. E. MUNCH-PETERSEN (1944):
A note on a lytic phenomenon shown by group B streptococci.
Aust. J. Exp. Biol. Med. Sci. 22, 197-200
CHROUSOS, G. P. (2009):
Stress and disorders of the stress system.
Nat. Rev. Endocrinol. 5, 374-381
CLOWES, E., F. AHERNE, G. FOXCROFT u. V. BARACOS (2003):
Selective protein loss in lactating sows is associated with reduced litter growth and ovarian
function.
J. Anim. Sci. 81, 753-764
CONLON, M. A., u. A. R. BIRD (2014):
The impact of diet and lifestyle on gut microbiota and human health.
Nutrients 7, 17-44
Literatur
227
CONWAY, P. (1994):
Function and regulation of the gastrointestinal microbiota of the pig.
In: W. B. SOUFFRANT und H. HAGEMEISTER (Hrsg.): Proceedings of the VIth
International Symposium of Digestive Physiology in Pigs.
EAAP Publication no. 80, Dummerstorf, S. 231-240
COOLS, A., D. MAES, R. DECALUWÉ, J. BUYSE, T. A. VAN KEMPEN, A.
LIESEGANG u. G. JANSSENS (2014):
Ad libitum feeding during the peripartal period affects body condition, reproduction results
and metabolism of sows.
Anim. Reprod. Sci. 145, 130-140
CORT, N., S. EINARSSON u. S. VIRING (1979):
Actions of oxytocin and a long-acting carba oxytocin analog on the porcine myometrium in
vitro and in vivo.
Am. J. Vet. Res. 40, 430-432
COWART, R. (2007):
Parturition and dystocia in swine.
In: R. S. YOUNGQUIST und W. R. THRELFALL (Hrsg.): Large Animal Theriogenology.
Saunders, St. Louis, MI, USA, S. 778-784
CRENSHAW, J. (2005):
Dietary fiber for sows.
In: Midwest Swine Nutr. Conf. , Indianapolis, Indiana 2005, Proc., S. 59-66
CUMMINGS, D. E., u. J. OVERDUIN (2007):
Gastrointestinal regulation of food intake.
J. Clin. Invest. 117, 13-23
CURTIS, J., u. F. BOURNE (1971):
Immunoglobulin quantitation in sow serum, colostrum and milk and the serum of young
pigs.
Biochim. Biophys. Acta 236, 319-332
DANIELSEN, V., u. E.-M. VESTERGAARD (2001):
Dietary fibre for pregnant sows: effect on performance and behaviour.
Anim. Feed Sci. Technol. 90, 71-80
DARRAGH, A. J., u. P. J. MOUGHAN (1995):
The three-week-old piglet as a model animal for studying protein digestion in human
infants.
J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 21, 387-393
DAVIES, P., W. MORROW, W. ROUNTREE u. D. MILLER (1997):
Epidemiologic evaluation of decubital ulcers in farrowing sows.
J. Am. Vet. Med. Assoc. 210, 1173-1178
Literatur
228
DE BRAGANCA, M. M., A.-M. MOUNIER, J. HULIN u. A. PRUNIER (1997):
La sous-nutrition explique-t-elle les effets d'une temperature ambiante elevee sur les
performances des truies?
Journées Rech. Porcine en France 29, 81-88
DE LEEUW, J., J. BOLHUIS, G. BOSCH u. W. GERRITS (2008):
Effects of dietary fibre on behaviour and satiety in pigs.
Proc. Nutr. Soc. 67, 334-342
DE LEEUW, J. A., A. W. JONGBLOED u. M. W. VERSTEGEN (2004):
Dietary fiber stabilizes blood glucose and insulin levels and reduces physical activity in
sows (Sus scrofa).
J. Nutr. 134, 1481-1486
DE PASSILLÉ, A. M. B., u. J. RUSHEN (1989):
Using early suckling behavior and weight gain to identify piglets at risk.
Can. J. Anim. Sci. 69, 535-544
DE RENSIS, F., M. GHERPELLI, P. SUPERCHI u. R. KIRKWOOD (2005):
Relationships between backfat depth and plasma leptin during lactation and sow
reproductive performance after weaning.
Anim. Reprod. Sci. 90, 95-100
DEE, S. A. (1992):
Porcine urogenital disease.
Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 8, 641-660
DEITCH, E. A. (1990):
Bacterial translocation of the gut flora.
J. Trauma Acute Care Surg. 30, 184
DERKING, S. (2015):
Feldstudie an hochproduktiven Sauen zu Fütterungseinflüssen auf die Entwicklung der Körpermasse und Rückenspeckdicke in der Laktation sowie auf die Leistung der Ferkel (Wurfzuwachs).
Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.
DEROUCHERY, J. M., S. S. DRITZ, R. D. GOODBAND, J. L. NELSSEN u. M. D.
TOKACH (2007):
Breeding Herd Recommendations for Swine, KSU Swine Nutrition Guide.
Kansas State University, Manhatten, KS, USA
DETHLEFSEN, L., S. HUSE, M. L. SOGIN u. D. A. RELMAN (2008):
The pervasive effects of an antibiotic on the human gut microbiota, as revealed by deep 16S
rRNA sequencing.
PLoS Biol. 6, e280
Literatur
229
DEVILLERS, N., C. FARMER, J. LE DIVIDICH u. A. PRUNIER (2007):
Variability of colostrum yield and colostrum intake in pigs.
Animal 1, 1033-1041
DEVILLERS, N., J. LE DIVIDICH u. A. PRUNIER (2011):
Influence of colostrum intake on piglet survival and immunity.
Animal 5, 1605-1612
DEWEY, C., u. B. STRAW (2006):
Herd examination.
In: B. STRAW, J. J. ZIMMERMAN, S. D'ALLAIRE und D. TAYLOR (Hrsg.): Dieseases
of Swine; 9th Edition
Wiley-Blackwell, West Sussex, UK, S. 3-14
DLG (2014):
DLG-Futterwerttabellen–Schweine, 7. Auflage.
DLG-Verlag, Frankfurt am Main
DONGOWSKI, G., u. R. EHWALD (1999):
Binding of water, oil, and bile acids to dietary fibers of the cellan type.
Biotechnol. Prog. 15, 250-258
DOURMAD, J. (1991):
Effect of feeding level in the gilt during pregnancy on voluntary feed intake during
lactation and changes in body composition during gestation and lactation.
Livest. Prod. Sci. 27, 309-319
DOURMAD, J. (1993):
Standing and feeding behaviour of the lactating sow: effect of feeding level during
pregnancy.
Appl. Anim. Behav. Sci. 37, 311-319
DOURMAD, J., J. NOBLET u. M. ETIENNE (1998):
Effect of protein and lysine supply on performance, nitrogen balance, and body
composition changes of sows during lactation.
J. Anim. Sci. 76, 542-550
DREW, M., A. VAN KESSEL, A. ESTRADA, E. EKPE u. R. ZIJLSTRA (2002):
Effect of dietary cereal on intestinal bacterial populations in weaned pigs.
Can. J. Anim. Sci. 82, 607-609
DU CLOS, T. W. (2000):
Function of C-reactive protein.
Ann. Med. 32, 274-278
Literatur
230
DUNSHEA, F., D. KERTON, P. EASON u. R. KING (1999):
Supplemental skim milk before and after weaning improves growth performance of pigs.
Aust. J. Agric. Res. 50, 1165-1170
DUZGUN, A. P., B. GULGEZ, A. ÖZMUTLU, D. ERTORUL, G. BUGDAYCI, N.
AKYUREK u. F. COSKUN (2006):
The relationship between intestinal hypoperfusion and serum D-lactate levels during
experimental intra-abdominal hypertension.
Dig. Dis. Sci. 51, 2400-2403
EASTWOOD, M. A., u. E. R. MORRIS (1992):
Physical properties of dietary fiber that influence physiological function: a model for
polymers along the gastrointestinal tract.
Am. J. Clin. Nutr. 55, 436-442
ECKERSALL, P., P. SAINI u. C. MCCOMB (1996):
The acute phase response of acid soluble glycoprotein, α 1-acid glycoprotein,
ceruloplasmin, haptoglobin and C-reactive protein, in the pig.
Vet. Immunol. Immunopathol. 51, 377-385
ECKERSALL, P. D. (2008):
Proteins, proteomics, and the dysproteinemias.
In: J. J. KANEKO, J. W. HARVEY und M. L. BRUSS (Hrsg.): Clinical biochemistry of
domestic animals
Elsevier, London, UK, S. 114-155
EDGAR, R. C. (2010):
Search and clustering orders of magnitude faster than BLAST.
Bioinformatics 26, 2460-2461
EISSEN, J., E. KANIS u. B. KEMP (2000):
Sow factors affecting voluntary feed intake during lactation.
Livest. Prod. Sci. 64, 147-165
ELMORE, R., C. MARTIN, J. RILEY u. T. LITTLEDIKE (1979):
Body temperatures of farrowing swine.
J. Am. Vet. Med. Assoc. 174, 620
ESCRIBANO, D., P. H. CAMPOS, A. M. GUTIÉRREZ, N. LE FLOC'H, J. J. CERÓN u.
E. MERLOT (2014):
Effect of repeated administration of lipopolysaccharide on inflammatory and stress markers
in saliva of growing pigs.
Vet. J. 200, 393-397
Literatur
231
ESCRIBANO, D., A. GUTIÉRREZ, F. TECLES u. J. CERÓN (2015):
Changes in saliva biomarkers of stress and immunity in domestic pigs exposed to a
psychosocial stressor.
Res. Vet. Sci. 102, 38-44
EUZÉBY, J. P. (2016)
LPSN-List of prokaryotic names with standing in nomenclature
http://www.bacterio.net/prevotellaceae.html
Abrufdatum: 01.09.2016.
EWASCHUK, J. B., J. M. NAYLOR, R. PALMER, S. J. WHITING u. G. A. ZELLO
(2004):
D-lactate production and excretion in diarrheic calves.
J. Vet. Intern. Med. 18, 744-747
EWASCHUK, J. B., J. M. NAYLOR u. G. A. ZELLO (2005):
D-lactate in human and ruminant metabolism.
J. Nutr. 135, 1619-1625
FARMER, C., S. ROBERT u. J. MATTE (1996):
Lactation performance of sows fed a bulky diet during gestation and receiving growth
hormone-releasing factor during lactation.
J. Anim. Sci. 74, 1298-1306
FINKENSIEP, A. (1993):
Untersuchungen über den Einfluss des Harnstatus auf das Puerperalsyndrom der Sau unter
Berücksichtigung der Fütterung und des peripartalen Trinkwasserverbrauches.
Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.
FOISNET, A., C. FARMER, C. DAVID u. H. QUESNEL (2010):
Relationships between colostrum production by primiparous sows and sow physiology
around parturition.
J. Anim. Sci. 88, 1672-1683
FORBES, J. M. (2007):
Voluntary Food Intake and Diet Selection in Farm Animals 2nd Edition.
CABI, Oxfordshire, UK
FRASER, D., J. PATIENCE, P. PHILLIPS u. J. MCLEESE (1990):
Water for piglets and lactating sows: quantity, quality and quandaries.
In: H. W. und D. COLE (Hrsg.): Recent Advances in Animal Nutrition
Butterworths London, UK, S. 137-160
FRASER, D., u. P. PHILLIPS (1989):
Lethargy and low water intake by sows during early lactation: a cause of low piglet weight
gains and survival?
Appl. Anim. Behav. Sci. 24, 13-22
Literatur
232
FRENYO, V., G. PETHES, T. ANTAL u. I. SZABO (1980):
Changes in colostral and serum IgG content in swine in relation to time.
Vet. Res. Commun. 4, 275-282
FRESE, S. A., K. PARKER, C. C. CALVERT u. D. A. MILLS (2015):
Diet shapes the gut microbiome of pigs during nursing and weaning.
Microbiome 3, 28-38
FRIEND, D., H. CUNNINGHAM u. J. NICHOLSON (1963):
The production of organic acids in the pig; II. The effect of diet on the levels of volatile
fatty acids and lactic acid in sections of the alimentary tract.
Can. J. Anim. Sci. 43, 156-168
GAD, W., R. HAUCK, M. KRÜGER u. H. HAFEZ (2011):
Prevalence of Clostridium perfringens in commercial turkey and layer flocks.
Arch. Geflügelk. 75, 74-79
GARRY, B., M. FOGARTY, T. CURRAN, M. O'CONNELL u. J. O'DOHERTY (2007):
The effect of cereal type and enzyme addition on pig performance, intestinal microflora,
and ammonia and odour emissions.
Animal 1, 751-757
GERICKE, S., u. B. KURMIES (1952):
Die kolorimetrische Phosphorsäurebestimmung mit Ammonium-Vanadat-Molybdat und
ihre Anwendung in der Pflanzenanalyse.
Z. Pflanzenernähr., Düngung und Bodenkunde 59, 235-247
GERZOVA, L., V. BABAK, K. SEDLAR, M. FALDYNOVA, P. VIDENSKA, D.
CEJKOVA, A. N. JENSEN, M. DENIS, A. KEROUANTON u. A. RICCI (2015):
Characterization of antibiotic resistance gene abundance and microbiota composition in
feces of organic and conventional pigs from four EU countries.
PLoS One 10, e0132892
GFE (2006):
Ausschuss für Bedarfsnormen der Gesellschaft für Ernährungsphysiologie: Empfehlungen
zur Energie-und Nährstoffversorgung bei Schweinen.
DLG-Verlag, Frankfurt am Main
(Energie- und Nährstoffbedarf landwirtschaftlicher Nutztiere Nr. 10)
GFE (2008):
Prediction of Metabolisable Energy of compound feeds for pigs.
Proc. Soc. Nutr. Physiol. 17, 199-204
GIBSON, G., u. M. ROBERFROID (1995):
Dietary modulation of the human colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics.
J. Nutr. 125, 1401-1412
Literatur
233
GONDRET, F., L. LEFAUCHEUR, I. LOUVEAU, B. LEBRET, X. PICHODO u. Y. LE
COZLER (2005):
Influence of piglet birth weight on postnatal growth performance, tissue lipogenic capacity
and muscle histological traits at market weight.
Livest. Prod. Sci. 93, 137-146
GÖRANSSON, L. (1989):
The effect of feed allowance in late pregnancy on the occurrence of agalactia post partum in
the sow.
J. Vet. Med. A Physiol. Pathol. Clin. Med. 36, 505-513
GORNALL, A. G., C. J. BARDAWILL u. M. M. DAVID (1949):
Determination of serum proteins by means of the biuret reaction.
J. Biol. Chem 177, 751-766
GRAHAM, H., u. P. ÅMAN (1991):
Nutritional aspects of dietary fibres.
Anim. Feed Sci. Technol. 32, 143-158
GRAM, H. C. J., u. C. FRIEDLAENDER (1884):
Über die isolierte Färbung der Schizomyceten: in Schnitt-und Trockenpräparaten.
Fortschr. Med. 2, 185-189
GRIGELMO-MIGUEL, N., u. O. MARTıN-BELLOSO (1999):
Comparison of dietary fibre from by-products of processing fruits and greens and from
cereals.
Lebensm. -Wiss. u. -Technol. 32, 503-508
GUARNER, F., u. J.-R. MALAGELADA (2003):
Gut flora in health and disease.
Lancet 361, 512-519
GUILLEMET, R., A. HAMARD, H. QUESNEL, M. PÈRE, M. ETIENNE, J. DOURMAD
u. M. MEUNIER-SALAÜN (2007):
Dietary fibre for gestating sows: effects on parturition progress, behaviour, litter and sow
performance.
Animal 1, 872-880
HAGE, F. G., u. A. J. SZALAI (2007):
C-reactive protein gene polymorphisms, C-reactive protein blood levels, and cardiovascular
disease risk.
J. Am. Coll. Cardiol. 50, 1115-1122
HAMER, C. (1962):
Bestimmung von D-Laktat.
In: H. BERGMEYER (Hrsg.): Methoden der enzymatischen Analyse.
Verlag Chemie, Weinheim, S. 278-282
Literatur
234
HANSEN, A., A. STRATHE, E. KEBREAB, J. FRANCE u. P. THEIL (2012):
Predicting milk yield and composition in lactating sows: A Bayesian approach.
J. Anim. Sci. 90, 2285-2298
HEEGAARD, P. M., J. KLAUSEN, J. P. NIELSEN, N. GONZÁLEZ-RAMÓN, M.
PIÑEIRO, F. LAMPREAVE u. M. A. ALAVA (1998):
The porcine acute phase response to infection with Actinobacillus pleuropneumoniae.
Haptoglobin, C-reactive protein, major acute phase protein and serum amyloid A protein
are sensitive indicators of infection.
Comp. Biochem. Physiol. 119B, 365-373
HEINRITZI, K. (2006):
Krankheiten des Verdauungstraktes.
In: K. HEINRITZI, H. R. GINDELE, G. REINER und U. SCHNURRBUSCH (Hrsg.):
Schweinekrankheiten.
Eugen Ulmer Verlag, Stuttgart, S. 147-161
HERMANSSON, I., S. EINARSSON, K. LARSSON u. L. BÄCKSTRÖM (1978):
On the agalactia post partum in the sow. A clinical study.
Nord. Vet. Med. 30, 465-473
HERMES, R., F. MOLIST, M. YWAZAKI, A. G. DE SEGURA, J. GASA, D.
TORRALLARDONA u. J. PÉREZ (2010):
Effects of type of cereal and fibre level on growth and parameters of the gastrointestinal
tract in young pigs.
Livest. Sci. 133, 225-228
HERPIN, P., J. LE DIVIDICH, J. C. HULIN, M. FILLAUT, F. DE MARCO u. R.
BERTIN (1996):
Effects of the level of asphyxia during delivery on viability at birth and early postnatal
vitality of newborn pigs.
J. Anim. Sci. 74, 2067-2075
HERSKIN, M. S., M. BONDE, E. JØRGENSEN u. K. H. JENSEN (2011):
Decubital shoulder ulcers in sows: a review of classification, pain and welfare
consequences.
Animal 5, 757-766
HILL, J. E., S. M. HEMMINGSEN, B. G. GOLDADE, T. J. DUMONCEAUX, J.
KLASSEN, R. T. ZIJLSTRA, S. H. GOH u. A. G. VAN KESSEL (2005):
Comparison of ileum microflora of pigs fed corn-, wheat-, or barley-based diets by
chaperonin-60 sequencing and quantitative PCR.
Appl. Environ. Microbiol. 71, 867-875
Literatur
235
HIRSCH, A., H. PHILIPP u. R. KLEEMANN (2003):
Investigation on the efficacy of meloxicam in sows with mastitis–metritis–agalactia
syndrome.
J. Vet. Pharmacol. Ther. 26, 355-360
HOY, S. (2006):
The impact of puerperal diseases in sows on their fertility and health up to next farrowing.
Anim. Sci. 82, 701-704
HÜHN, U., T. UDLUFT, A. WEHREND u. W. ZAREMBA (2004):
Vergleichende Untersuchungen zur subpartalen Anwendung von Oxytocinpräparaten bei
Sauen.
Arch. Tierz. 47, 575-584
HUMAN MICROBIOME PROJECT CONSORTIUM, T. (2012):
A framework for human microbiome research.
Nature 486, 215-221
ILLMANN, G., H. CHALOUPKOVÁ u. K. NEUHAUSEROVÁ (2015):
Effect of pre-and post-partum sow activity on maternal behaviour and piglet weight gain
24h after birth.
Appl. Anim. Behav. Sci. 163, 80-88
ISAACSON, R., u. H. B. KIM (2012):
The intestinal microbiome of the pig.
Anim. Health Res. Rev. 13, 100-109
ISO (2006):
Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for detection and
enumeration of Campylobacter spp.: Part 2: Colony-count technique.
ISO 10272-10272:12006
JENNY, B. (2015):
Erhebung von Risikofaktoren für Mastitis-Metritis-Agalaktie in Schweinebetrieben in der
Schweiz.
Schweiz. Arch. Tierheilk. 157, 689-696
JENSEN, B. B. (2001):
Possible ways of modifying type and amount of products from microbial fermentation in
the gut.
In: A. PIVA, K. BACH KNUDSEN und J. LINDBERG (Hrsg.): Gut Environment of Pigs.
Nottingham University Press, Nottingham, S. 181-200
JEROCH, H., W. DROCHNER u. O. SIMON (1999):
Ernährung landwirtschaftlicher Nutztiere
Eugen Ulmer Verlag, Stuttgart (Hohenheim)
Literatur
236
JHA, R., u. J. BERROCOSO (2015):
Review: dietary fiber utilization and its effects on physiological functions and gut health of
swine.
Animal 9, 1441-1452
JIN, L., L. REYNOLDS, D. REDMER, J. CATON u. J. CRENSHAW (1994):
Effects of dietary fiber on intestinal growth, cell proliferation, and morphology in growing
pigs.
J. Anim. Sci. 72, 2270-2278
JOHNSTON, L. J., S. NOLL, A. RENTERIA u. J. SHURSON (2003):
Feeding by-products high in concentration of fiber to nonruminants; Third National
Symposium on Alternative feeds for livestock and poultry Kansas City, MO, USA, Proc.
78-85
JONES, A. B., u. K. S. CURTIS (2009):
Differential effects of estradiol on drinking by ovariectomized rats in response to
hypertonic NaCl or isoproterenol: implications for hyper-vs. hypo-osmotic stimuli for water
intake.
Physiol. Behav. 98, 421-426
JØRGENSEN, H., T. LARSEN, X.-Q. ZHAO u. B. O. EGGUM (1997):
The energy value of short-chain fatty acids infused into the caecum of pigs.
Br. J. Nutr. 77, 745-756
JØRGENSEN, H., X.-Q. ZHAO u. B. O. EGGUM (1996):
The influence of dietary fibre and environmental temperature on the development of the
gastrointestinal tract, digestibility, degree of fermentation in the hind-gut and energy
metabolism in pigs.
Br. J. Nutr. 75, 365-378
KADIS, S., F. UDEZE, J. POLANCO u. D. DREESEN (1984):
Relationship of iron administration to susceptibility of newborn pigs to enterotoxic
colibacillosis.
Am. J. Vet. Res. 45, 255-259
KALLABIS, K. E., u. O. KAUFMANN (2012):
Effect of a high-fibre diet on the feeding behaviour of fattening pigs.
Arch. Tierz. 55, 272-284
KAMPHUES, J. (2002):
Praxisrelevante Aspekte der Wasserversorgung von Nutz- und Liebhabertieren.
Übers. Tierernährg. 31, 65-107
Literatur
237
KAMPHUES, J., D. HEBELER u. C. RADE (1998):
Der Verdauungskanal als Quelle einer forcierten Endotoxin-/LPS Belastung von
Schweinen.
Dtsch. tierärztl. Wschr. 105, 359-360
KAMPHUES, J., R. TABELING u. S. SCHWIER (2000):
Die Kotqualität von Sauen unter dem Einfluss verschiedener Fütterungs- und
Haltungsbedingungen.
Dtsch. tierärztl. Wschr. 107, 380
KAMPHUES, J., P. WOLF, M. COENEN, K. EDER, C. IBEN, E. KIENZLE, A.
LIESEGANG, K. MÄNNER, Q. ZEBELI u. J. ZENTEK (2014):
Supplemente zur Tierernährung: Für Studium und Praxis, 12.überarbeitete Aufl. .
Verlag Schlütersche, Hannover
KEMPER, N., u. I. GERJETS (2009):
Bacteria in milk from anterior and posterior mammary glands in sows affected and
unaffected by postpartum dysgalactia syndrome (PPDS).
Acta Vet. Scand. 51, 26
KIM, H. B., K. BOREWICZ, B. A. WHITE, R. S. SINGER, S. SREEVATSAN, Z. J. TU
u. R. E. ISAACSON (2012):
Microbial shifts in the swine distal gut in response to the treatment with antimicrobial
growth promoter, tylosin.
Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109, 15485-15490
KIM, H. B., u. R. E. ISAACSON (2015):
The pig gut microbial diversity: understanding the pig gut microbial ecology through the
next generation high throughput sequencing.
Vet. Microbiol. 177, 242-251
KING, R., B. MULLAN, F. DUNSHEA u. H. DOVE (1997):
The influence of piglet body weight on milk production of sows.
Livest. Prod. Sci. 47, 169-174
KIRCHGEßNER, M. (2011):
Tierernährung. Leitfaden für Studium, Beratung und Praxis.
13. Aufl., DLG-Verlag, Frankfurt am Main
KIRCHGESSNER, M., u. F. ROTH (1983):
Schätzgleichungen zur Ermittlung des energetischen Futterwertes von Mischfuttermitteln
für Schweine.
Z. Tierphysiol. 50, 270-275
Literatur
238
KIRCHGESSNER, M., R. SCHNEIDER, F. SCHWARZ u. B. R. PAULICKS (1992):
Milchleistung sowie Milchfett-und-energiegehalte bei Sauen mit unterschiedlicher
Methioninversorgung.
J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 68, 244-253
KNEES, M., u. S. REINECKE (2016):
Schweine aktuell: Wirtschaftsjahr 2014/2015 Daten, Fakten, Hintergründe.
Bauernblatt Schleswig Holstein 47-48
KNUDSEN, K. B. (2001):
The nutritional significance of “dietary fibre” analysis. Anim. Feed Sci. Technol. 90, 3-20
KNUDSEN, K. E. B. (1997):
Carbohydrate and lignin contents of plant materials used in animal feeding.
Anim. Feed Sci. Technol. 67, 319-338
KOKETSU, Y., G. D. DIAL, J. E. PETTIGREW, W. E. MARSH u. V. L. KING (1996):
Characterization of feed intake patterns during lactation in commercial swine herds.
J. Anim. Sci. 74, 1202-1210
KOKETSU, Y., G. D. DIAL, J. E. PETTIGREW, J. XUE, H. YANG u. T. LUCIA (1998):
Influence of lactation length and feed intake on reproductive performance and blood
concentrations of glucose, insulin and luteinizing hormone in primiparous sows.
Anim. Reprod. Sci. 52, 153-163
KONSTANTINOV, S. R., A. AWATI, H. SMIDT, B. A. WILLIAMS, A. D.
AKKERMANS u. W. M. DE VOS (2004):
Specific response of a novel and abundant Lactobacillus amylovorus-like phylotype to
dietary prebiotics in the guts of weaning piglets.
Appl. Environ. Microbiol. 70, 3821-3830
KOSTRO, K., W. WAWRON, M. SZCZUBIAŁ, D. LUFT-DEPTULA u. Z. GLIŃSKI (2002):
C-reactive protein in monitoring and evaluation of effects of therapy of the MMA
syndrome of sows.
Pol. J. Vet. Sci. 6, 235-238
KOVÁČ, G., C. TOTHOVA, O. NAGY u. H. SEIDEL (2008): Acute phase proteins during the reproductive cycle of sows.
Acta Vet. Brno. 58, 459-466
KRAUSE, E. G., K. S. CURTIS, L. M. DAVIS, J. R. STOWE u. R. J. CONTRERAS
(2003):
Estrogen influences stimulated water intake by ovariectomized female rats.
Physiol. Behav. 79, 267-274
Literatur
239
KRIEG, N. R., J. T. STALEY, D. R. BROWN, B. P. HEDLUND, B. J. PASTER, N. L.
WARD, W. LUDWIG u. W. WHITMAN (2010):
Bergey's Manual of Systematic Bacteriology Volume 4: The Bacteroidetes, Spirochaetes,
Tenericutes (Mollicutes), Acidobacteria, Fibrobacteres, Fusobacteria, Dictyoglomi,
Gemmatimonadetes, Lentisphaerae, Verrucomicrobia, Chlamydiae, and Planctomycetes.
Springer Science & Business Media, New York, USA
KŘÍŽENECKÝ, J. (1941): Die Unabhängigkeit des durchschnittlichen Ferkelgewichtes von der Wurfnummer.
Z. Tierzuecht. Zuechtungsbiol. 50, 208-225
KRUSE, S., I. TRAULSEN u. J. KRIETER (2011):
Analysis of water, feed intake and performance of lactating sows.
Livest. Sci. 135, 177-183
KYRIAZAKIS, I., u. G. EMMANS (1995):
The voluntary feed intake of pigs given feeds based on wheat bran, dried citrus pulp and
grass meal, in relation to measurements of feed bulk.
Br. J. Nutr. 73, 191-207
KYRIAZAKIS, I., G. EMMANS u. C. WHITTEMORE (1990):
Diet selection in pigs: choices made by growing pigs given foods of different protein
concentrations.
Anim. Prod. 51, 189-199
LAWRENCE, A. B., J. PETHERICK, K. MCLEAN, L. DEANS, J. CHIRNSIDE, A.
GAUGHAN, E. CLUTTON u. E. TERLOUW (1994):
The effect of environment on behaviour, plasma cortisol and prolactin in parturient sows.
Appl. Anim. Behav. Sci. 39, 313-330
LAY, D., R. MATTERI, J. CARROLL, T. FANGMAN u. T. SAFRANSKI (2002):
Preweaning survival in swine.
J. Anim. Sci. 80, E74-E86
LE DIVIDICH, J., J. ROOKE u. P. HERPIN (2005):
Nutritional and immunological importance of colostrum for the new-born pig.
J. Agric. Sci. 143, 469-485
LEONARD, S., T. SWEENEY, B. BAHAR u. J. O’DOHERTY (2012): Effect of maternal seaweed extract supplementation on suckling piglet growth, humoral
immunity, selected microflora, and immune response after an ex vivo lipopolysaccharide
challenge.
J. Anim. Sci. 90, 505-514
Literatur
240
LESER, T. D., J. Z. AMENUVOR, T. K. JENSEN, R. H. LINDECRONA, M. BOYE u. K.
MØLLER (2002):
Culture-independent analysis of gut bacteria: the pig gastrointestinal tract microbiota
revisited.
Appl. Environ. Microbiol. 68, 673-690
LIEN, K., W. SAUER u. J. HE (2001):
Dietary influences on the secretion into and degradation of mucin in the digestive tract of
monogastric animals and humans.
J. Anim. Feed Sci. 10, 223-245
LINDBERG, J., M. NEIL u. M. CIDH (1997):
Effect of ad libitum access to milk replacer to piglets on performance of piglets, slaughter
pigs and sows.
In: Proc. Brit. Soc. Anim. Sci., Scarborough, U.K. 1997, S. 58
LÖHNERT, H. J., u. W. I. OCHRIMENKO (1998):
Untersuchungen zur Verdaulichkeit von Milchaustauschern bei Kälbern.
Proc. Soc. Nutr. Physiol. 7, 75
LOISEL, F., C. FARMER, P. RAMAEKERS u. H. QUESNEL (2013):
Effects of high fiber intake during late pregnancy on sow physiology, colostrum
production, and piglet performance.
J. Anim. Sci. 91, 5269-5279
LOISEL, F., C. FARMER, H. VAN HEES u. H. QUESNEL (2015):
Relative prolactin-to-progesterone concentrations around farrowing influence colostrum
yield in primiparous sows.
Domest. Anim. Endocrinol. 53, 35-41
LORZ, A. (1973):
Tierschutzgesetz, Kommentar.
Verlag C.H.Beck, München
LOUIS, P., K. P. SCOTT, S. H. DUNCAN u. H. J. FLINT (2007):
Understanding the effects of diet on bacterial metabolism in the large intestine.
J. Appl. Microbiol. 102, 1197-1208
MACH, N., M. BERRI, J. ESTELLÉ, F. LEVENEZ, G. LEMONNIER, C. DENIS, J. J.
LEPLAT, C. CHEVALEYRE, Y. BILLON u. J. DORÉ (2015):
Early-life establishment of the swine gut microbiome and impact on host phenotypes.
Environ. Microbiol. Rep. 7, 554-569
MAES, D., G. JANSSENS, P. DELPUTTE, A. LAMMERTYN u. A. DE KRUIF (2004):
Back fat measurements in sows from three commercial pig herds: relationship with
reproductive efficiency and correlation with visual body condition scores.
Livest. Prod. Sci. 91, 57-67
Literatur
241
MAES, D., G. PAPADOPOULOS, A. COOLS u. G. JANSSENS (2010):
Postpartum dysgalactia in sows: pathophysiology and risk factors.
Tierarztl. Prax. 38, 15-20
MAGNUSSON, U., A. P. MÖRNER, A. PERSSON, E. KARLSTAM, S. STERNBERG u.
H. KINDAHL (2001):
Sows intramammarily inoculated with Escherichia coli: Influence of time of infection,
hormone concentrations and leucocyte numbers on development of disease.
J. Vet. Med. B 48, 501-512
MALMKVIST, J., L. J. PEDERSEN, T. S. KAMMERSGAARD u. E. JØRGENSEN
(2012):
Influence of thermal environment on sows around farrowing and during the lactation
period.
J. Anim. Sci. 90, 3186-3199
MARION, J., u. J. LE DIVIDICH (1999):
Utilization of the energy in sow's milk by the piglet.
In: P. D. CRANWELL (Hrsg.): Manipulating pig production.
VII. Bienn. Conf. Australasian Pig Science Association
Werribee, Australia, S. 254
MARTINEAU, G.-P., C. FARMER u. O. PELTONIEMI (2012):
Mammary System.
In: J. J. ZIMMERMAN, L. A. KARRIKER, A. RAMIREZ, K. J. SCHWARTZ und G. W.
STEVENSON (Hrsg.): Diseases of Swine.
10th Edition, Wiley-Blackwell, West Sussex, UK, S. 270-293
MARTINEAU, G.-P., Y. LE TREUT, D. GUILLOU u. A. WARET-SZKUTA (2013):
Postpartum dysgalactia syndrome: A simple change in homeorhesis.
J. Swine Health Prod. 21, 85-93
MARTINEAU, G.-P., B. B. SMITH u. B. DOIZÉ (1992):
Pathogenesis, prevention, and treatment of lactational insufficiency in sows.
Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 8, 661-684
MARTINEZ-PUIG, D., J. F. PÉREZ, M. CASTILLO, A. ANDALUZ, M. ANGUITA, J.
MORALES u. J. GASA (2003):
Consumption of raw potato starch increases colon length and fecal excretion of purine
bases in growing pigs.
J. Nutr. 133, 134-139
MATHERS, J. (1991):
Digestion of non-starch polysaccharides by non-ruminant omnivores.
Proc. Nutr. Soc. 50, 161-172
Literatur
242
MATTE, J., S. ROBERT, C. GIRARD, C. FARMER u. G. MARTINEAU (1994):
Effect of bulky diets based on wheat bran or oat hulls on reproductive performance of sows
during their first two parities.
J. Anim. Sci. 72, 1754-1760
MAY, T., R. MACKIE, G. FAHEY, J. CREMIN u. K. GARLEB (1994):
Effect of fiber source on short-chain fatty acid production and on the growth and toxin
production by Clostridium difficile.
Scand. J. Gastroenterol. 29, 916-922
MCMURDIE, P. J., u. S. HOLMES (2013):
Phyloseq: an R package for reproducible interactive analysis and graphics of microbiome
census data.
PLoS One 8, e61217
MCNAMARA, J., u. J. PETTIGREW (2002):
Protein and fat utilization in lactating sows: I. Effects on milk production and body
composition.
J. Anim. Sci. 80, 2442-2451
MEEHAN, C. J., u. R. G. BEIKO (2014):
A phylogenomic view of ecological specialization in the Lachnospiraceae, a family of
digestive tract-associated bacteria.
Genome Biol. Evol. 6, 703-713
MEINECKE, B. (2015):
Reproduktion bei weiblichen Haussäugetieren.
In: W. VON ENGELHARDT, G. BREVES, M. DIENER und G. GÄBEL (Hrsg.):
Physiologie der Haussäugetiere
Enke-Verlag, Stuttgart, S. 551-574
MELLOR, D., u. F. COCKBURN (1986):
A comparison of energy metabolism in the new-born infant, piglet and lamb.
Q. J. Exp. Physiol. 71, 361-379
METZLER-ZEBELI, B., J. LANGE, R. ZIJLSTRA u. M. GÄNZLE (2013):
Dietary non-starch polysaccharides alter the abundance of pathogenic clostridia in pigs.
Livest. Sci. 152, 31-35
METZLER, B., u. R. MOSENTHIN (2008):
A review of interactions between dietary fiber and the gastrointestinal microbiota and their
consequences on intestinal phosphorus metabolism in growing pigs.
Asian-Aust. J. Anim. Sci. 21, 603-615
MEUNIER-SALAÜN, M., S. EDWARDS u. S. ROBERT (2001):
Effect of dietary fibre on the behaviour and health of the restricted fed sow.
Anim. Feed Sci. Technol. 90, 53-69
Literatur
243
MEUNIER-SALAÜN, M., F. GORT, A. PRUNIER u. W. SCHOUTEN (1991):
Behavioural patterns and progesterone, cortisol and prolactin levels around parturition in
European (Large-White) and Chinese (Meishan) sows.
Appl. Anim. Behav. Sci. 31, 43-59
MEYER, E. (2008):
Die Bedeutung der Beifütterung während der Säugezeit auf die Leistungen in der
Ferkelaufzucht bei unterschiedlicher Fütterungstechnik und Körperkondition der Ferkel.
Züchtungskunde 80, 224-232
MILLER, E., u. D. ULLREY (1987):
The pig as a model for human nutrition.
Annu. Rev. Nutr. 7, 361-382
MILLIGAN, B. N., D. FRASER u. D. L. KRAMER (2002):
Within-litter birth weight variation in the domestic pig and its relation to pre-weaning
survival, weight gain, and variation in weaning weights.
Livest. Prod. Sci. 76, 181-191
MIRKO, C., u. G. BILKEI (2004):
Acute phase proteins, serum cortisol and preweaning litter performance in sows suffering
from periparturient disease.
Acta Vet. Brno. 54, 153-161
MONTAGNE, L., J. PLUSKE u. D. HAMPSON (2003):
A review of interactions between dietary fibre and the intestinal mucosa, and their
consequences on digestive health in young non-ruminant animals.
Anim. Feed Sci. Technol. 108, 95-117
MORGAN, X. C., T. L. TICKLE, H. SOKOL, D. GEVERS, K. L. DEVANEY, D. V.
WARD, J. A. REYES, S. A. SHAH, N. LELEIKO, S. B. SNAPPER, A. BOUSVAROS, J.
KORZENIK, B. E. SANDS, R. J. XAVIER u. C. HUTTENHOWER (2012):
Dysfunction of the intestinal microbiome in inflammatory bowel disease and treatment.
Genome Biol. 13, 1
MORGENTHUM, R., u. G. BOLDUAN (1987):
Zur Beeinflussung der Dauer des Geburtsvorganges durch Lebendmasse und Diätfaktoren
bei Sauen.
Monatsh. Veterinarmed. 43, 194-196
MORKOC, A., L. BÄCKSTRÖM, L. LUND u. A. SMITH (1983):
Bacterial endotoxin in blood of dysgalactic sows in relation to microbial status of uterus,
milk, and intestine.
J. Am. Vet. Med. Assoc. 183, 786-789
Literatur
244
MOSER, R., S. CORNELIUS, J. PETTIGREW, H. HANKE, T. HEEG u. K. MILLER
(1987):
Influence of postpartum feeding method on performance of the lactating sow.
Livest. Prod. Sci. 16, 91-99
MROZ, Z., A. W. JONGBLOED, N. P. LENIS u. K. VREMAN (1995):
Water in pig nutrition: physiology, allowances and environmental implications.
Nutr. Res. Rev. 8, 137-164
MROZ, Z., I. G. PARTRIDGE, G. MITCHELL u. H. D. KEAL (1986):
The effect of oat hulls, added to the basal ration for pregnant sows, on reproductive
performance, apparent digestibility, rate of passage and plasma parameters.
J. Sci. Food Agric. 37, 239-247
MULDER, I. E., B. SCHMIDT, C. R. STOKES, M. LEWIS, M. BAILEY, R. I. AMINOV,
J. I. PROSSER, B. P. GILL, J. R. PLUSKE, C.-D. MAYER, C. C. MUSK u. D. KELLY
(2009):
Environmentally-acquired bacteria influence microbial diversity and natural innate immune
responses at gut surfaces.
BMC Biol. 7, 79
MÜLLER, S., u. S. POLTEN (2004):
Vergleichsuntersuchungen zur Ultraschall-Speckdickenmessung beim Schwein im Rahmen
der Eigenleistungsprüfung.
Arch. Tierz. 47, 249-263
MUNS, R., M. NUNTAPAITOON u. P. TUMMARUK (2016):
Non-infectious causes of pre-weaning mortality in piglets.
Livest. Sci. 184, 46-57
MURATA, H., N. SHIMADA u. M. YOSHIOKA (2004):
Current research on acute phase proteins in veterinary diagnosis: an overview.
Vet. J. 168, 28-40
NACHREINER, R., u. O. GINTHER (1974):
Induction of agalactia by administration of endotoxin (Escherichia coli) in swine.
Am. J. Vet. Res. 35, 619-622
NAUMANN, C., u. R. BASSLER (1976):
Methoden der landwirtschaftlichen Forschungs-und Untersuchungsanstalt, Biochemische
Untersuchung von Futtermitteln. Methodenbuch III (einschließlich der achten Ergänzungen
bis 2012).
VDLUFA, Darmstadt, Germany
NEIL, M. (1996):
Ad libitum lactation feeding of sows introduced immediately before, at, or after farrowing.
Anim. Sci. 63, 497-505
Literatur
245
NEIL, M., B. OGLE u. K. ANNER (1996):
A two-diet system and ad libitum lactation feeding of the sow 1. Sow performance.
Anim. Sci. 62, 337-347
NELSON, D., M. HOGBERG, E. MILLER u. M. ALLEN (1992):
Wheat straw and soybean hull additions to sow gestation diets during two consective
parities.
In: Research report from the Michigan State University Agricultural Experiment Station,
East Lansing, 91
NELSSEN, J., A. LEWIS, E. PEO u. J. CRENSHAW (1985):
Effect of dietary energy intake during lactation on performance of primiparous sows and
their litters.
J. Anim. Sci. 61, 1164-1171
NIU, Q., P. LI, S. HAO, Y. ZHANG, S. W. KIM, H. LI, X. MA, S. GAO, L. HE u. W. WU
(2015):
Dynamic distribution of the gut microbiota and the relationship with apparent crude fiber
digestibility and growth stages in pigs.
Sci. Rep. 5, 1-7
NOBLET, J., W. CLOSE, R. HEAVENS u. D. BROWN (1985):
Studies on the energy metabolism of the pregnant sow.
Br. J. Nutr. 53, 251-265
NOBLET, J., J. DOURMAD u. M. ETIENNE (1990):
Energy utilization in pregnant and lactating sows: modeling of energy requirements.
J. Anim. Sci. 68, 562-572
NOBLET, J., J. DOURMAD, M. ETIENNE u. J. LE DIVIDICH (1997):
Energy metabolism in pregnant sows and newborn pigs.
J. Anim. Sci. 75, 2708-2714
NOBLET, J., u. G. LE GOFF (2001):
Effect of dietary fibre on the energy value of feeds for pigs.
Anim. Feed Sci. Technol. 90, 35-52
O'CONNELL, J., T. SWEENEY, J. CALLAN u. J. O'DOHERTY (2005):
The effect of cereal type and exogenous enzyme supplementation in pig diets on nutrient
digestibility, intestinal microflora, volatile fatty acid concentration and manure ammonia
emissions from finisher pigs.
Anim. Sci. 81, 357-364
O'GRADY, J., P. LYNCH u. P. KEARNEY (1985):
Voluntary feed intake by lactating sows.
Livest. Prod. Sci. 12, 355-365
Literatur
246
OLIVIERO, C., M. HEINONEN, A. VALROS, O. HÄLLI u. O. PELTONIEMI (2008):
Effect of the environment on the physiology of the sow during late pregnancy, farrowing
and early lactation.
Anim. Reprod. Sci. 105, 365-377
OLIVIERO, C., M. HEINONEN, A. VALROS u. O. PELTONIEMI (2010):
Environmental and sow-related factors affecting the duration of farrowing.
Anim. Reprod. Sci. 119, 85-91
OLIVIERO, C., T. KOKKONEN, M. HEINONEN, S. SANKARI u. O. PELTONIEMI
(2009):
Feeding sows with high fibre diet around farrowing and early lactation: impact on intestinal
activity, energy balance related parameters and litter performance.
Res. Vet. Sci. 86, 314-319
ORMEROD, K. L., D. L. WOOD, N. LACHNER, S. L. GELLATLY, J. N. DALY, J. D.
PARSONS, C. G. DAL’MOLIN, R. W. PALFREYMAN, L. K. NIELSEN u. M. A. COOPER (2016):
Genomic characterization of the uncultured Bacteroidales family S24-7 inhabiting the guts
of homeothermic animals.
Microbiome 4, 36
OSTERLUNDH, I., H. HOLST u. U. MAGNUSSON (1998):
Hormonal and immunological changes in blood and mammary secretion in the sow at
parturition.
Theriogenology 50, 465-477
PAJOR, E. A., D. FRASER u. D. L. KRAMER (1991):
Consumption of solid food by suckling pigs: individual variation and relation to weight
gain.
Appl. Anim. Behav. Sci. 32, 139-155
PAPADOPOULOS, G. A., C. VANDERHAEGHE, G. P. JANSSENS, J. DEWULF u. D.
G. MAES (2010):
Risk factors associated with postpartum dysgalactia syndrome in sows.
Vet. J. 184, 167-171
PAßLACK, N., W. VAHJEN u. J. ZENTEK (2015):
Dietary inulin affects the intestinal microbiota in sows and their suckling piglets.
BMC Vet. Res. 11, 1
PATTERSON, J. K., K. YASUDA, R. M. WELCH, D. D. MILLER u. X. G. LEI (2010):
Supplemental dietary inulin of variable chain lengths alters intestinal bacterial populations
in young pigs.
J. Nutr. 140, 2158-2161
Literatur
247
PAYNE, L., u. C. MARSH (1962):
Gamma globulin absorption in the baby pig: the nonselective absorption of heterologous
globulins and factors influencing absorption time.
J. Nutr. 76, 151-158
PEDERSEN, T. F., T. S. BRUUN, T. FEYERA, U. K. LARSEN u. P. K. THEIL (2016):
A two-diet feeding regime for lactating sows reduced nutrient deficiency in early lactation
and improved milk yield.
Livest. Sci. 191, 165-173
PELTONIEMI, O., u. C. OLIVIERO (2015):
Housing, management and enivronment during farrowing and early lactation.
In: C. FARMER (Hrsg.): The Gestating and Lactating Sow.
Wageningen Academic Publishers, Wageningen, S. 231-252
PIEPER, R., J. BINDELLE, G. MALIK, J. MARSHALL, B. G. ROSSNAGEL, P.
LETERME u. A. G. VAN KESSEL (2012):
Influence of different carbohydrate composition in barley varieties on Salmonella Typhimurium var. Copenhagen colonisation in a “Trojan” challenge model in pigs. Arch. Anim. Nutr. 66, 163-179
PIEPER, R., J. BINDELLE, B. ROSSNAGEL, A. VAN KESSEL u. P. LETERME (2009):
Effect of carbohydrate composition in barley and oat cultivars on microbial ecophysiology
and proliferation of Salmonella enterica in an in vitro model of the porcine gastrointestinal
tract.
Appl. Environ. Microbiol. 75, 7006-7016
PIEPER, R., R. JHA, B. ROSSNAGEL, A. G. VAN KESSEL, W. B. SOUFFRANT u. P.
LETERME (2008):
Effect of barley and oat cultivars with different carbohydrate compositions on the intestinal
bacterial communities in weaned piglets.
FEMS Microbiol. Ecol. 66, 556-566
PINEIRO, M., C. PINEIRO, R. CARPINTERO, J. MORALES, F. M. CAMPBELL, P. D.
ECKERSALL, M. J. TOUSSAINT u. F. LAMPREAVE (2007):
Characterisation of the pig acute phase protein response to road transport.
Vet. J. 173, 669-674
PLONAIT, H. (2004):
Geburt, Puerperium und perinatale Verluste.
In: K.-H. WALDMANN und M. WENDT (Hrsg.): Lehrbuch der Schweinekrankheiten.
Parey Verlag, Stuttgart, S. 471-512
PLUSKE, J., J. KIM, D. MCDONALD, D. PETHICK u. D. HAMPSON (2001):
Non-starch polysaccharides in the diets of young weaned piglets.
In: M. A. VARLEY und J. WISEMAN (Hrsg.): The weaner pig: nutrition and management.
CABI Publishing, Wallingford, Oxon; UK, S. 81-112
Literatur
248
POMORSKA-MÓL, M., I. MARKOWSKA-DANIEL, K. KWIT, K. STĘPNIEWSKA u. Z. PEJSAK (2013):
C-reactive protein, haptoglobin, serum amyloid A and pig major acute phase protein
response in pigs simultaneously infected with H1N1 swine influenza virus and Pasteurella multocida.
BMC Vet. Res. 9, 1
PREIßINGER, W., H. LINDERMAYER u. G. PROPSTMEIER (2014)
Versuchsbericht S 31: Einsatz von Rapsextraktionsschrot bei tragenden und säugenden
Sauen: Langzeitstudie zur Beobachtung der Leistungen, der Tiergesundheit, der
Umweltwirkungen und der Wirtschaftlichkeit;
https://www.lfl.bayern.de/mam/cms07/ite/dateien/versuchsbericht_074397.pdf
Abrufdatum: 07.09.2016.
PRICE, M. N., P. S. DEHAL u. A. P. ARKIN (2010):
FastTree 2 – Approximately Maximum-Likelihood Trees for Large Alignments.
PLoS One 5, e9490
PRUNIER, A., M. M. DE BRAGANÇA u. J. LE DIVIDICH (1997):
Influence of high ambient temperature on performance of reproductive sows.
Livest. Prod. Sci. 52, 123-133
PRUNIER, A., C. A. M. GUADARRAMA, J. MOUROT u. H. QUESNEL (2001):
Influence of feed intake during pregnancy and lactation on fat body reserve mobilisation,
plasma leptin and reproductive function of primiparous lactating sows.
Reprod. Nutr. Dev. 41, 333-347
PUSTAL, A. J. (2014):
Beifütterung von Ferkelmilch in der Abferkelbucht: Einflüsse auf die Leistung und
Gesundheit von Sauen und ihren Ferkeln.
Leipzig, Veterinärmedizinische Fakultät der Universität Leipzig, Diss.
QUESNEL, H., L. BROSSARD, A. VALANCOGNE u. N. QUINIOU (2008):
Influence of some sow characteristics on within-litter variation of piglet birth weight.
Animal 2, 1842-1849
QUESNEL, H., C. FARMER u. N. DEVILLERS (2012):
Colostrum intake: Influence on piglet performance and factors of variation.
Livest. Sci. 146, 105-114
QUESNEL, H., C. FARMER u. P. K. THEIL (2015):
Colostrum and milk production.
In: C. FARMER (Hrsg.): The Gestating and Lactating Sow.
Wageningen Academic Publishers, Wageningen, S. 173-192
Literatur
249
QUESNEL, H., M.-C. MEUNIER-SALAÜN, A. HAMARD, R. GUILLEMET, M.
ETIENNE, C. FARMER, J.-Y. DOURMAD u. M.-C. PÈRE (2009):
Dietary fiber for pregnant sows: Influence on sow physiology and performance during
lactation.
J. Anim. Sci. 87, 532-543
QUINIOU, N., u. J. NOBLET (1999):
Influence of high ambient temperatures on performance of multiparous lactating sows.
J. Anim. Sci. 77, 2124-2134
RAMONET, Y., M. MEUNIER-SALAÜN u. J. DOURMAD (1999):
High-fiber diets in pregnant sows: digestive utilization and effects on the behavior of the
animals.
J. Anim. Sci. 77, 591-599
REESE, D. (1997):
Dietary fiber in sow gestation diets--A review.
Nebraska Swine Reports 229, 23-25
REINER, G., B. HERTRAMPF u. H. RICHARD (2009):
Postpartales Dysgalaktiesyndrom der Sau–eine Übersicht mit besonderer Berücksichtigung
der Pathogenese.
Tierarztl. Prax. 37, 305-318
REMPEL, L., J. VALLET, C. LENTS u. D. NONNEMAN (2015):
Measurements of body composition during late gestation and lactation in first and second
parity sows and its relationship to piglet production and post-weaning reproductive
performance.
Livest. Sci. 178, 289-295
RENAUDEAU, D., u. J. NOBLET (2001):
Effects of exposure to high ambient temperature and dietary protein level on sow milk
production and performance of piglets.
J. Anim. Sci. 79, 1540-1548
RENAUDEAU, D., J.-L. WEISBECKER u. J. NOBLET (2003):
Effect of season and dietary fibre on feeding behaviour of lactating sows in a tropical
climate.
Anim. Sci. 77, 429-437
RENTERIA-FLORES, J., L. JOHNSTON, G. SHURSON u. D. GALLAHER (2008):
Effect of soluble and insoluble fiber on energy digestibility, nitrogen retention, and fiber
digestibility of diets fed to gestating sows.
J. Anim. Sci. 86, 2568-2575
Literatur
250
REVELL, D., I. WILLIAMS, B. MULLAN, J. RANFORD u. R. SMITS (1998):
Body composition at farrowing and nutrition during lactation affect the performance of
primiparous sows: II. Milk composition, milk yield, and pig growth.
J. Anim. Sci. 76, 1738-1743
RICHARDS, J., J. GONG u. C. DE LANGE (2005):
The gastrointestinal microbiota and its role in monogastric nutrition and health with an
emphasis on pigs: Current understanding, possible modulations, and new technologies for
ecological studies.
Can. J. Anim. Sci. 85, 421-435
RIXEN, D., M. RAUM, B. HOLZGRAEFE, U. SCHÄFER, S. HE, J. TENHUNEN, L.
TUOMISTO, E. A. NEUGEBAUER, SHOCK u. T. S. GROUP (2002):
Local lactate and histamine changes in small bowel circulation measured by microdialysis
in pig hemorrhagic shock.
Shock 18, 355-359
ROEHE, R., u. E. KALM (2000):
Estimation of genetic and environmental risk factors associated with pre-weaning mortality
in piglets using generalized linear mixed models.
Anim. Sci. 70, 227-240
ROOKE, J., u. I. BLAND (2002):
The acquisition of passive immunity in the new-born piglet.
Livest. Prod. Sci. 78, 13-23
ROOTWELT, V., O. REKSEN, W. FARSTAD u. T. FRAMSTAD (2012):
Blood variables and body weight gain on the first day of life in crossbred pigs and
importance for survival.
J. Anim. Sci. 90, 1134-1141
ROOTWELT, V., O. REKSEN, W. FARSTAD u. T. FRAMSTAD (2013):
Postpartum deaths: Piglet, placental, and umbilical characteristics.
J. Anim. Sci. 91, 2647-2656
ROSENBAUM, S., R. RINGSEIS, S. HILLEN, S. BECKER, G. ERHARDT, G. REINER
u. K. EDER (2012):
The stress signalling pathway nuclear factor E2-related factor 2 is activated in the liver of
sows during lactation.
Acta Vet. Scand. 54, 1
RUSHEN, J., S. ROBERT u. C. FARMER (1999):
Effects of an oat-based high-fibre diet on insulin, glucose, cortisol and free fatty acid
concentrations in gilts.
Anim. Sci. 69, 395-401
Literatur
251
RUTHERFORD, K., E. BAXTER, R. D'EATH, S. TURNER, G. ARNOTT, R. ROEHE, B.
ASK, P. SANDØE, V. MOUSTSEN u. F. THORUP (2013):
The welfare implications of large litter size in the domestic pig I: biological factors.
Anim. Welf. 22, 199-218
SALAMANO, G., E. MELLIA, D. CANDIANI, F. INGRAVALLE, R. BRUNO, G. RU u.
L. DOGLIONE (2008):
Changes in haptoglobin, C-reactive protein and pig-MAP during a housing period
following long distance transport in swine.
Vet. J. 177, 110-115
SATTLER, V., K. BAYER, G. SCHATZMAYR, A. HASLBERGER u. V. KLOSE (2015):
Impact of a probiotic, inulin, or their combination on the piglets’ microbiota at different intestinal locations.
Benef. Microbes 6, 473-483
SAVAGE, D. C. (1977):
Microbial ecology of the gastrointestinal tract.
Ann. Rev. Microbiol. 31, 107-133
SCHÄFFER, D., N. SCHMIDT u. E. VON BORELL (2014):
Tierschutzrelevante Integumentschäden bei Zuchtsauen bei On-Farm Erhebungen
18. Internationale Fachtagung zum Thema Tierschutz, Nürtingen 2014
DVG Service GmbH S. 221-232
SCHAREK, L., J. GUTH, K. REITER, K. WEYRAUCH, D. TARAS, P. SCHWERK, P.
SCHIERACK, M. SCHMIDT, L. WIELER u. K. TEDIN (2005):
Influence of a probiotic Enterococcus faecium strain on development of the immune system
of sows and piglets.
Vet. Immunol. Immunopathol. 105, 151-161
SCHARRER, E., u. N. GEARY (1977):
Regulation der Futteraufnahme bei Monogastriden.
Übers. Tierernährg. 5, 103-122
SCHIRARDIN, H., u. J. NEY (1972):
Eine vereinfachte Mikromethode zur Bestimmung von Serumalbumin mit Hilfe von
Bromkresolgrün.
Clin. Chem. Lab. Med. 10, 338-344
SCHLEIFER, K.-H. (2011):
Lactobacillaceae.
In: P. VOS, G. GARRITY, D. JONES, N. R. KRIEG, W. LUDWIG, F. A. RAINEY, K.-H.
SCHLEIFER und W. WHITMAN (Hrsg.): Bergey's Manual of Systematic Bacteriology:
Volume 3: The Firmicutes.
Springer Science & Business Media, New York, USA, S. 465-513
Literatur
252
SCHNABEL, E., M. BECK u. G. BOLDUAN (1990):
Umfang und Wirkungen von Fermentierungen im Dickdarm beim Schwein.
Arch. Anim. Nutr. 40, 1037-1045
SCHNURRBUSCH, U. (2006):
Physiologie und Pathologie der Fortpflanzung weiblicher Tiere.
In: K. HEINRITZI, H. R. GINDELE, G. REINER und U. SCHNURRBUSCH (Hrsg.):
Schweinekrankheiten.
Eugen Ulmer Verlag, Stuttgart, S. 179-305
SCHUBBERT, A., C. WERNER u. A. SUNDRUM (2010):
Raufuttergabe an Sauen als Präventivmaßnahme gegen Sauen- und Ferkelerkrankungen.
BLE-Forschungsbericht 07 OE 026.
Bundesanstalt für Ernährung und Landwirtschaft, Bonn
SCHULZ, J. (1987):
Puerperale Septikämie.
In: P. KIELSTEIN und E. WOHLFAHRTH (Hrsg.): Schweinekrankheiten.
Ferdinand Enke Verlag, Stuttgart, S. 249-251
SERENA, A., H. JØRGENSEN u. K. BACH KNUDSEN (2009):
Absorption of carbohydrate-derived nutrients in sows as influenced by types and contents
of dietary fiber.
J. Anim. Sci. 87, 136-147
SEYNAEVE, M., R. DE WILDE, G. JANSSENS u. B. DE SMET (1996):
The influence of dietary salt level on water consumption, farrowing, and reproductive
performance of lactating sows.
J. Anim. Sci. 74, 1047-1055
SHAH, H. N., u. D. M. COLLINS (1990):
Prevotella, a new genus to include Bacteroides melaninogenicus and related species
formerly classified in the genus Bacteroides.
Int. J. Syst. Bacteriol. 40, 205-208
SILVA, B., R. OLIVEIRA, J. DONZELE, H. FERNANDES, M. ABREU, J. NOBLET u.
C. NUNES (2006):
Effect of floor cooling on performance of lactating sows during summer.
Livest. Sci. 105, 176-184
SIMON, O. (2001):
The influence of feed composition on protein metabolism in the gut.
In: A. PIVA, K. BACH KNUDSEN und J. LINDBERG (Hrsg.): Gut Environment of Pigs.
Nottingham University Press, Nottingham, S. 63-84
Literatur
253
SIMPSON, J. W. (1998):
Diet and large intestinal disease in dogs and cats.
J. Nutr. 128, 2717-2722
SMITH, B. B., u. W. WAGNER (1984):
Suppression of prolactin in pigs by Escherichia coli endotoxin.
Science 224, 605-607
SMITS, C. H., A. VELDMAN, M. W. VERSTEGEN u. A. C. BEYNEN (1997):
Dietary carboxymethylcellulose with high instead of low viscosity reduces macronutrient
digestion in broiler chickens.
J. Nutr. 127, 483-487
SOMMER, T. (2007):
Die Regulation der Futteraufnahme beim Schwein.
Hohenheim, Fakultät Agrarwissenschaften, Diss.
SONGER, J. G., u. F. A. UZAL (2005):
Clostridial enteric infections in pigs.
J. Vet. Diagn. Invest. 17, 528-536
SORENSEN, N., C. TEGTMEIER, L. O. ANDRESEN, M. PINEIRO, M. TOUSSAINT, F.
CAMPBELL, F. LAMPREAVE u. P. M. HEEGAARD (2006):
The porcine acute phase protein response to acute clinical and subclinical experimental
infection with Streptococcus suis.
Vet. Immunol. Immunopathol. 113, 157-168
SPECIAN, R. D., u. M. G. OLIVER (1991):
Functional biology of intestinal goblet cells.
Am. J. Physiol. 260, 183-193
STAHLY, T., G. CROMWELL u. W. SIMPSON (1979):
Effects of full restricted feeding of the sow immediately postpartum on lactation
performance.
J. Anim. Sci. 49, 50-54
STARKE, I., R. PIEPER, K. NEUMANN, J. ZENTEK u. W. VAHJEN (2013):
Individual responses of mother sows to a probiotic Enterococcus faecium strain lead to
different microbiota composition in their offspring.
Benef. Microbes 4, 345-356
STARKENSTEIN, E. (1934):
Eisen.
In: A. HEFFTER und W. HEUBNER (Hrsg.): Handbuch der experimentellen
Pharmakologie; Allgemeines zur Pharmakologie der Metalle; Eisen-Mangan-Kobalt-Nickel
Springer-Verlag Berlin Heidelberg GmbH, Berlin, S. 682-1284
Literatur
254
STEFFENS, R. (2005):
Gesundheit und Leistung von Sauen nach unterschiedlicher Fütterung in der
Trächtigkeit:(übliches Alleinfutter restriktiv im Vergleich zu trockenschnitzelreichem
Mischfutter ad libitum).
Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.
STIEHLER, T. (2015):
Rectal and vaginal body temperature in early postpartum sows and its relation to serum
concentration of acute phase proteins.
Freie Universität Berlin, Diss.
STONE, R., u. R. CHRISTENSON (1982):
The relationship of fetal weight to serum albumin and alpha-fetoprotein in swine.
J. Anim. Sci. 55, 818-825
STRAMPRAAD, W. (2015):
The use of oxytocin and carbetocin in farrowing sows and its effect on the duration of
parturition.
Utrecht University, Faculty of Veterinary Medicine (Master Thesis), Diss.
SUN, H., C. TAN, H. WEI, Y. ZOU, G. LONG, J. AO, H. XUE, S. JIANG u. J. PENG
(2015):
Effects of different amounts of konjac flour inclusion in gestation diets on physio-chemical
properties of diets, postprandial satiety in pregnant sows, lactation feed intake of sows and
piglet performance.
Anim. Reprod. Sci. 152, 55-64
SUSENBETH, A. (2015):
Zur Energie- und Proteinversorgung der laktierenden Zuchtsau.
Proc. Soc. Nutr. Physiol. 24, 187
TABELING, R., S. SCHWIER u. J. KAMPHUES (2003):
Effects of different feeding and housing conditions on dry matter content and consistency
of faeces in sows.
J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 87, 116-121
TAN, C., H. WEI, H. SUN, G. LONG, J. AO, S. JIANG u. J. PENG (2015):
Effects of supplementing sow diets during two gestations with konjac flour and
Saccharomyces boulardii on constipation in peripartal period, lactation feed intake and
piglet performance.
Anim. Feed Sci. Technol. 210, 254-262
TANTASUPARUK, W., A.-M. DALIN, N. LUNDEHEIM, A. KUNAVONGKRIT u. S.
EINARSSON (2001):
Body weight loss during lactation and its influence on weaning-to-service interval and
ovulation rate in Landrace and Yorkshire sows in the tropical environment of Thailand.
Anim. Reprod. Sci. 65, 273-281
Literatur
255
TECLES, F., P. FUENTES, S. M. SUBIELA, M. PARRA, A. MUNOZ u. J. CERON
(2007):
Analytical validation of commercially available methods for acute phase proteins
quantification in pigs.
Res. Vet. Sci. 83, 133-139
TERLOUW, E. C., A. WIERSMA, A. B. LAWRENCE u. H. A. MACLEOD (1993):
Ingestion of food facilitates the performance of stereotypies in sows.
Anim. Behav. 46, 939-950
THAKER, M., u. G. BILKEI (2005):
Lactation weight loss influences subsequent reproductive performance of sows.
Anim. Reprod. Sci. 88, 309-318
THEIL, P., M. NIELSEN, M. SØRENSEN u. C. LAURIDSEN (2012):
Lactation, milk and suckling.
In: K. BACH KNUDSEN, N. KJELDSEN, H. POULSEN und B. B. JENSEN (Hrsg.):
Nutritional physiology of pigs.
Danish Pig Research Centre, Kopenhagen, Dänemark, S. 1-47
THEIL, P. K. (2015):
Transition feeding of sows.
In: C. FARMER (Hrsg.): The Gestating and Lactating Sow.
Wageningen Academic Publishers, Wageningen, NL, S. 147-172
THEIL, P. K., C. FLUMMER, W. HURLEY, N. B. KRISTENSEN, R. LABOURIAU u.
M. T. SØRENSEN (2014):
Mechanistic model to predict colostrum intake based on deuterium oxide dilution technique
data and impact of gestation and prefarrowing diets on piglet intake and sow yield of
colostrum.
J. Anim. Sci. 92, 5507-5519
THINGNES, S. L., A. S. EKKER, A. H. GAUSTAD u. T. FRAMSTAD (2012):
Ad libitum versus step-up feeding during late lactation: The effect on feed consumption,
body composition and production performance in dry fed loose housed sows.
Livest. Sci. 149, 250-259
TIZARD, I. (2008):
Sickness behavior, its mechanisms and significance.
Anim. Health Res. Rev. 9, 87-99
TIZARD, I. R. (2013):
Veterinary Immunology (9th Edition).
Elsevier Health Sciences, St. Louis, Missouri, USA
Literatur
256
TOKACH, M. D., u. G. D. DIAL (1992):
Managing the lactating sow for optimal weaning and rebreeding performance.
Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 8, 559-573
TONER, M., R. KING, F. DUNSHEA, H. DOVE u. C. ATWOOD (1996):
The effect of exogenous somatotropin on lactation performance of first-litter sows.
J. Anim. Sci. 74, 167-172
TOPPING, D. L., J. M. GOODEN, I. L. BROWN, D. A. BIEBRICK, L. MCGRATH, R. P.
TRIMBLE, M. CHOCT u. R. J. ILLMAN (1997):
A high amylose (amylomaize) starch raises proximal large bowel starch and increases colon
length in pigs.
J. Nutr. 127, 615-622
TRAUSCHKE, K. (2008):
Untersuchung zu Effekten von Menge und Zusammensetzung des Milchaustauschers in den
ersten sieben Lebenswochen auf die Futteraufnahme und metabolische Parameter von
Kälbern bis zum Alter von acht Monaten.
Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.
TROOST, S. (2014):
Untersuchungen zu den Auswirkungen unterschiedlicher Tränkemengen und
Rohproteingehalte im Milchaustauscher auf Gesundheit und Leistung von Aufzuchtkälbern.
Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.
TROTTIER, N. L., L. J. JOHNSTON u. C. F. M. DE LANGE (2015):
Applied amino acid and energy feeding of sows.
In: C. FARMER (Hrsg.): The Gestating and Lactating Sow.
1st Edition, Wageningen Academic Publishers, Wageningen, NL, S. 117-145
TROWELL, H., D. T. SOUTHGATE, T. S. WOLEVER, A. LEEDS, M. GASSULL u. D.
A. JENKINS (1976):
Dietary fibre redefined.
Lancet 307, 967
TSCHIRDEWAHN, B., S. NOTERMANS, K. WERNARS u. F. UNTERMANN (1991):
The presence of enterotoxigenic Clostridium perfringens strains in faeces of various
animals.
Int. J. Food Microbiol. 14, 175-178
TUCHSCHERER, M., B. PUPPE, A. TUCHSCHERER u. U. TIEMANN (2000):
Early identification of neonates at risk: traits of newborn piglets with respect to survival.
Theriogenology 54, 371-388
Literatur
257
TUMMARUK, P., u. K. SANG-GASSANEE (2013):
Effect of farrowing duration, parity number and the type of anti-inflammatory drug on
postparturient disorders in sows: a clinical study.
Trop. Anim. Health Prod. 45, 1071-1077
VALLET, J., J. MILES u. L. REMPEL (2013):
A simple novel measure of passive transfer of maternal immunoglobulin is predictive of
preweaning mortality in piglets.
Vet. J. 195, 91-97
VALLET, J., J. MILES, L. REMPEL, D. NONNEMAN u. C. LENTS (2015):
Relationships between day one piglet serum immunoglobulin immunocrit and subsequent
growth, puberty attainment, litter size, and lactation performance.
J. Anim. Sci. 93, 2722-2729
VAN DER WAAIJ, D., J. BERGHUIS-DE VRIES u. J. LEKKERKERK-VAN DER
WEES (1971):
Colonization resistance of the digestive tract in conventional and antibiotic-treated mice.
J. Hyg. (Lond.) 69, 405-411
VAN DIJK, A., B. VAN RENS, T. VAN DER LENDE u. M. TAVERNE (2005):
Factors affecting duration of the expulsive stage of parturition and piglet birth intervals in
sows with uncomplicated, spontaneous farrowings.
Theriogenology 64, 1573-1590
VANDENHEEDE, M., u. B. NICKS (1991):
Water requirements and drinking water systems for pigs.
Ann. Med. Vet. 135, 123-128
VANDERHAEGHE, C., J. DEWULF, S. DE VLIEGHER, G. PAPADOPOULOS, A. DE
KRUIF u. D. MAES (2010):
Longitudinal field study to assess sow level risk factors associated with stillborn piglets.
Anim. Reprod. Sci. 120, 78-83
VANDERHAEGHE, C., J. DEWULF, J. JOURQUIN, A. DE KRUIF u. D. MAES (2011):
Incidence and prevention of early parturition in sows.
Reprod. Dom. Anim. 46, 428-433
VAREL, V., A. RICHARDSON u. C. STEWART (1989):
Degradation of barley straw, ryegrass, and alfalfa cell walls by Clostridium longisporum
and Ruminococcus albus.
Appl. Environ. Microbiol. 55, 3080-3084
Literatur
258
VEUM, T., J. CRENSHAW, T. CRENSHAW, G. CROMWELL, R. EASTER, R. EWAN,
J. NELSSEN, E. MILLER, J. PETTIGREW u. M. ELLERSIECK (2009):
The addition of ground wheat straw as a fiber source in the gestation diet of sows and the
effect on sow and litter performance for three successive parities.
J. Anim. Sci. 87, 1003-1012
VIGNOLA, M. (2009):
Sow Feeding Management during Lactation.
In: London Swine Conference -Tools of the Trade, 1-2 April 2009, Proc., S.107-117
WALTER, J. (2008):
Ecological role of lactobacilli in the gastrointestinal tract: implications for fundamental and
biomedical research.
Appl. Environ. Microbiol. 74, 4985-4996
WANG, Q., G. M. GARRITY, J. M. TIEDJE u. J. R. COLE (2007):
Naive Bayesian classifier for rapid assignment of rRNA sequences into the new bacterial
taxonomy.
Appl. Environ. Microbiol. 73, 5261-5267
WARZECHA, A. C. (2006):
Untersuchungen zu Fütterungseinflüssen (Einsatz von Trockenschnitzeln bzw.
Lignocellulose sowie unterschiedliche Vermahlungsgrade der Mischfutterkomponenten)
auf die Kotbeschaffenheit und -zusammensetzung bei Sauen.
Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.
WEISS, E., T. AUMILLER, H. K. SPINDLER, P. ROSENFELDER, M. EKLUND, M.
WITZIG, H. JØRGENSEN, K. E. BACH KNUDSEN u. R. MOSENTHIN (2015):
Wheat and barley differently affect porcine intestinal microbiota.
J. Sci. Food Agric. 96, 2230-2239
WENDT, M., u. H. PLONAIT (2004):
Erkrankungen der Harnorgane.
In: K.-H. WALDMANN und M. WENDT (Hrsg.): Lehrbuch der Schweinekrankheiten
Parey-Verlag, Stuttgart, S. 387-398
WENK, C. (2001):
The role of dietary fibre in the digestive physiology of the pig.
Anim. Feed Sci. Technol. 90, 21-33
WHITTEMORE, C. (1996):
Nutrition reproduction interactions in primiparous sows.
Livest. Prod. Sci. 46, 65-83
Literatur
259
WIEGEL, J., R. TANNER u. F. A. RAINEY (2006):
An Introduction to the Family Clostridiaceae.
In: M. DWORKIN, S. FALKOW, E. ROSENBERG, K.-H. SCHLEIFER und E.
STACKEBRANDT (Hrsg.): The Prokaryotes: Vol. 4: Bacteria: Firmicutes, Cyanobacteria.
Springer Science & Business Media, New York, USA, S. 654-478
WILLIAMS, I. (1998):
Nutritional effects during lactation and during the interval from weaning to oestrus.
In: M. VERSTEGEN, P. J. MOUGHAN und J. W. SCHRAMA (Hrsg.): The Lactating
Sow.
Wageningen Pers, Wageningen, S. 159-181
WILLIAMS, I., D. HENNESSY u. P. CRANWELL (1995):
Sow's milk as a major nutrient source before weaning.
In: Manipulating pig production
Fifth Biennial Conference of the Australasian Pig Science Association (APSA), Canberra,
ACT, 1995, Proc. , 107-113
WILSON, R., u. J. LEIBHOLZ (1981):
Digestion in the pig between 7 and 35 d of age.
Br. J. Nutr. 45, 301-319
WU, G. D., J. CHEN, C. HOFFMANN, K. BITTINGER, Y.-Y. CHEN, S. A.
KEILBAUGH, M. BEWTRA, D. KNIGHTS, W. A. WALTERS u. R. KNIGHT (2011):
Linking long-term dietary patterns with gut microbial enterotypes.
Science 334, 105-108
WU, M., H. XIAO, W. REN, J. YIN, B. TAN, G. LIU, L. LI, C. M. NYACHOTI, X.
XIONG u. G. WU (2014):
Therapeutic effects of glutamic acid in piglets challenged with deoxynivalenol.
PLoS One 9, e100591
YAMASHITA, K., T. FUJINAGA, M. OKUMURA, M. TAKIGUCHI, N. TSUNODA u.
S. MIZUNO (1991):
Serum C-reactive protein (CRP) in horses: the effect of aging, sex, delivery and
inflammations on its concentration.
J. Vet. Med. Sci. 53, 1019-1024
YU, H., A. WANG, X. LI u. S. QIAO (2008):
Effect of viable Lactobacillus fermentum on the growth performance, nutrient digestibility
and immunity of weaned pigs.
J. Anim. Feed Sci. 17, 61-69
ZAK, L., J. COSGROVE, F. AHERNE u. G. FOXCROFT (1997):
Pattern of feed intake and associated metabolic and endocrine changes differentially affect
postweaning fertility in primiparous lactating sows.
J. Anim. Sci. 75, 208-216
Literatur
260
ZALESKI, H. M., u. R. R. HACKER (1993):
Variables related to the progress of parturition and probability of stillbirth in swine.
Can. Vet. J. 34, 109-113
ZAREMBA, W., T. UDLUFT u. H. BOSTEDT (2015):
Effects of various procedures for synchronisation of parturition in sows.
Tierarztl. Prax. 43, 269-277
ZYCZKO, K., u. M. LASZYN (2010):
The relationship between variability in serum C-reactive protein levels in sows and their
offspring and the values of selected blood indices.
Pol. J. Vet. Sci. 13, 395-397
Anhang
261
Anhang 9
Futteraufnahme 9.1
Tabelle 104: Tägliche Futteraufnahme der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) in kg TS im peripartalen Zeitraum
Sau Gruppe Tag
-6
Tag
-5
Tag
-4
Tag
-3
Tag
-2
Tag
-1
Tag
0
Tag
1
Tag
2
Tag
3
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 7,93 5,07 6,56 5,33 4,87 4,66 3,92 1,37 4,71 4,43
46 Rfa 1 5,25 5,23 4,70 3,71 2,79 3,27 4,73 1,96 4,54 6,03
61 Rfa 1 5,67 6,72 5,47 3,72 5,57 6,29 4,73 4,12 5,07 6,93
63 Rfa 1 − 6,82 5,69 3,98 4,15 4,27 7,50 4,14 5,21 5,98
59 Rfa 1 − − 3,82 4,62 3,62 5,49 3,67 3,24 3,24 4,94
73 Rfa 1 4,31 4,51 4,99 3,83 3,64 3,80 3,34 3,34 4,14 6,49
74 Rfa 1 − 3,56 4,12 4,69 4,02 3,24 2,80 2,58 2,79 5,89
107 Rfa 1 4,22 4,58 3,97 5,19 4,37 4,02 3,49 3,50 4,41 5,54
78 Rfa 1 − 4,21 5,18 4,06 5,79 4,72 1,55 2,91 3,35 4,85
24 Rfa 1 4,00 6,60 3,09 6,79 4,02 4,74 2,65 2,80 3,76 4,69
128 Rfa 1 4,92 5,08 4,26 3,58 3,73 4,51 3,08 2,86 2,86 5,50
72 Rfa 1 8,35 7,97 5,82 8,50 8,15 4,03 2,61 2,66 4,46 5,43
95 Rfa 2 − 5,13 6,91 5,95 6,14 6,87 3,40 4,36 6,21 7,86
92 Rfa 2 − − 4,61 8,50 6,27 5,67 4,33 5,49 5,26 7,69
81 Rfa 2 − − 3,33 5,93 6,49 6,05 4,22 3,29 4,99 7,54
60 Rfa 2 6,36 5,27 8,44 4,23 3,14 3,10 2,88 5,28 4,12 7,74
100 Rfa 2 − − 7,99 5,75 6,86 5,73 5,88 4,53 4,01 7,60
121 Rfa 2 6,29 6,15 5,85 5,78 5,86 5,58 2,76 4,47 6,71 7,80
119 Rfa 2 − − 7,88 6,41 5,80 5,71 3,30 3,64 5,75 7,25
105 Rfa 2 − 4,90 5,06 3,88 5,04 5,52 3,02 4,11 5,51 10,1
101 Rfa 2 − − − 7,71 4,43 4,97 2,75 2,71 4,80 6,40
98 Rfa 2 4,71 6,10 6,38 5,94 7,41 4,89 0,01 0,49 3,26 6,44
41 Rfa 2 3,73 7,41 5,89 5,48 6,77 3,70 2,84 4,44 5,34 9,55
32 Rfa 2 7,18 5,04 9,03 8,35 7,09 5,76 7,04 2,71 5,83 9,11
rest
rik
tiv
41 K 1 2,37 2,37 2,37 2,37 2,37 2,37 2,37 4,16 4,11 5,45
48 K 1 − 2,18 2,18 2,18 2,18 2,18 2,18 3,14 4,59 5,83
64 K 1 2,17 2,17 2,17 2,17 2,17 2,17 2,17 3,79 5,63 6,15
98 K 1 − − 2,36 2,36 2,36 2,36 2,36 3,10 4,51 5,19
54 K 2 − − 2,72 2,72 2,72 2,72 2,72 2,72 3,30 4,55
94 K 2 2,55 2,55 2,55 2,55 2,55 2,55 2,55 3,44 5,49 6,65
51 K 1 − 2,86 2,86 2,86 2,86 2,86 2,86 2,86 1,45 3,76
55 K 1 2,77 2,77 2,77 2,77 2,77 2,77 2,77 2,77 3,69 4,62
62 K 1 3,06 3,06 3,06 3,06 3,06 3,06 3,06 3,06 3,97 4,87
75 K 1 2,70 2,70 2,70 2,70 2,70 2,70 2,70 2,70 3,70 4,69
35 K 2 2,54 2,54 2,54 2,54 2,54 2,54 2,54 2,54 3,49 4,43
122 K 2 2,62 2,62 2,62 2,62 2,62 2,62 2,62 2,62 3,54 4,47
76 K 2 2,61 2,61 2,61 2,61 2,61 2,61 2,61 2,61 3,54 4,47
104 K 2 − 2,41 2,41 2,41 2,41 2,41 2,41 3,25 4,78 5,47
80 K 2 − − 2,47 2,47 2,47 2,47 2,47 2,47 3,40 5,03
123 K 2 − 2,68 2,68 2,68 2,68 2,68 2,68 3,59 5,04 5,59
118 K 2 − 2,33 2,33 2,33 2,33 2,33 2,33 3,20 4,79 5,51
70 K 1 − − − − 2,81 2,81 2,81 2,81 2,81 3,99
Anhang
262
Fortsetzung Tabelle 104
Sau Gruppe Tag
-6
Tag
-5
Tag
-4
Tag
-3
Tag
-2
Tag
-1
Tag
0
Tag
1
Tag
2
Tag
3
rest
rik
tiv 129 K 1 2,51 2,51 2,51 2,51 2,51 2,51 2,51 2,51 3,92 5,11
22 K 2 − 2,54 2,54 2,54 2,54 2,54 2,54 2,54 2,54 3,11
46 K 2 − 3,11 3,11 3,11 3,11 3,11 3,11 3,11 3,11 3,43
113 K 2 − 3,06 3,06 3,06 3,06 3,06 3,06 3,06 3,06 3,47
64 K 2 2,50 2,50 2,50 2,50 2,50 2,50 2,50 2,50 2,97 4,04
Anhang
263
Tabelle 105: Mittlere tägliche Futteraufnahme der restriktiv und ad libitum gefütterten Sauen der verschiedenen Fütterungsgruppen in kg TS in den einzelnen Laktationswochen
Fütterung Sau Gruppe Woche 1 Woche 2 Woche 3 Woche 4 Woche 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 5,58 7,02 8,11 6,94 5,48
46 Rfa 1 5,11 6,31 6,20 5,41 4,86
61 Rfa 1 6,40 8,01 8,36 8,96 6,70
63 Rfa 1 5,64 6,41 7,21 6,77 5,38
59 Rfa 1 5,00 5,49 6,47 7,09 7,33
73 Rfa 1 5,77 7,13 6,82 6,08 5,87
74 Rfa 1 5,25 5,72 6,40 6,01 7,31
107 Rfa 1 5,62 6,63 7,13 9,03 8,81
24 Rfa 1 4,67 6,26 5,83 6,70 7,28
72 Rfa 1 5,58 6,44 6,77 7,56 8,25
78 Rfa 1 5,00 8,31 8,60 10,21 9,57
92 Rfa 2 6,79 7,81 8,65 7,52 6,79
95 Rfa 2 6,46 7,75 7,96 6,56 6,54
60 Rfa 2 6,31 7,47 8,50 7,44 8,46
81 Rfa 2 6,20 7,18 8,36 8,06 7,81
100 Rfa 2 5,82 7,12 7,10 7,80 9,48
101 Rfa 2 5,62 7,38 7,18 7,07 7,00
105 Rfa 2 8,05 8,02 7,95 6,88 8,14
119 Rfa 2 5,58 6,39 7,43 6,41 7,98
121 Rfa 2 6,05 5,98 6,67 5,74 6,13
32 Rfa 2 6,92 8,01 9,23 9,84 8,81
41 Rfa 2 6,95 6,85 8,84 6,75 7,59
98 Rfa 2 5,90 8,34 8,83 9,69 8,92
rest
rik
tiv
41 K1 5,08 6,67 6,88 6,88 6,88
64 K1 5,74 6,94 7,08 7,08 7,08
98 K1 5,48 6,56 6,56 6,56 6,56
51 K1 4,14 6,14 6,78 7,15 7,16
55 K1 4,80 7,52 7,82 7,80 7,80
62 K1 5,06 7,72 8,14 7,80 7,80
75 K1 4,86 7,62 8,05 7,62 7,62
70 K1 4,62 6,55 6,77 6,77 6,77
129 K1 4,89 6,36 6,46 6,46 6,46
54 K2 5,06 7,19 7,53 7,53 7,53
94 K2 6,03 7,42 7,42 7,42 7,42
122 K2 4,92 6,56 6,40 6,67 7,42
80 K2 5,20 7,99 8,15 8,15 8,15
104 K2 5,57 8,09 7,60 7,60 7,60
123 K2 5,89 8,02 7,54 7,54 7,54
46 K2 4,37 6,87 7,53 7,53 7,53
64 K2 4,61 7,27 7,80 7,80 7,80
Anhang
264
Wasserverbrauch 9.2
Tabelle 106: Mittlere täglich verbrauchte Wassermenge in l/Sau der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im peripartalen Zeitraum
Gruppe Tag -6 Tag -5 Tag -4 Tag -3 Tag -2 Tag -1 Tag 0 Tag 1 Tag 2 Tag 3
ad
lib
itu
m
Rfa 1 18,3 20,8 17,8 19,8 19,0 30,8 7,5 26,3 31,8 29,0
Rfa 1 25,5 16,3 28,8 21,3 16,3 24,3 25,0 22,8 30,0 36,5
Rfa 1 21,8 26,8 23,8 25,5 28,3 23,8 17,0 18,0 21,5 23,3
Rfa 2 14,3 21,0 19,0 23,3 21,7 14,7 21,3 22,7 32,3 31,0
Rfa 2 22,5 23,5 24,3 25,3 27,0 28,3 32,0 39,8 35,3 35,7
Rfa 2 14,3 17,5 13,5 15,0 16,3 21,8 19,3 24,3 33,8 28,8
Rfa 2 18,0 13,7 21,0 19,3 20,7 18,7 6,00 14,3 24,0 30,7
rest
rik
tiv
K 1 7,50 9,25 10,8 34,8 14,0 13,0 12,8 13,0 19,8 16,5
K 2 18,5 19,0 19,0 22,5 17,0 32,0 29,5 27,0 39,5 43,5
K 1 9,50 32,3 28,0 13,0 27,3 29,3 24,3 30,0 34,0 34,0
K 2 26,0 12,7 9,67 11,7 15,0 17,3 13,0 17,0 21,7 26,0
K 2 12,8 16,3 9,3 21,5 15,3 34,0 23,0 25,0 29,5 29,3
K 1 7,25 8,75 5,75 11,5 14,3 16,0 15,3 13,3 7,50 7,75
K 2 18,5 14,3 21,5 19,0 25,3 20,3 12,3 17,8 25,3 20,0
Tabelle 107: Mittlere verbrauchte Wassermenge in l/Sau der restriktiv und ad libitum gefütterten Sauen in den einzelnen Laktationswochen
Fütterung Gruppe Woche 1 Woche 2 Woche 3 Woche 4 Woche 5
ad
lib
itu
m
Rfa 1 33,1 34,4 39,2 46,5 40,4
Rfa 1 36,5 40,5 34,9 34,7 43,7
Rfa 1 24,8 35,4 41,9 35,6 41,7
Rfa 2 31,5 33,3 43,5 42,9 40,2
Rfa 2 36,9 42,4 43,3 50,2 48,3
Rfa 2 31,7 31,6 35,1 36,7 34,9
Rfa 2 26,4 33,7 35,1 38,0 39,9
rest
rik
tiv
K 1 22,3 27,3 28,3 27,1 24,0
K 2 40,3 39,7 46,6 52,2 46,3
K 1 34,6 44,9 − − −
K 2 24,7 35,1 32,7 31,9 39,3
K 2 31,4 35,6 36,4 41,8 37,8
K 1 13,6 15,9 19,9 17,2 18,4
K 2 24,7 34,9 35,5 37,5 34,8
Anhang
265
Körpertemperatur 9.3
Tabelle 108: Tägliche Körpertemperatur (°C) der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im peripartalen Zeitraum
Sau Gruppe Tag -2 Tag -1 Tag 0 Tag 1 Tag 2 Tag 3 Tag 4
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 38,1 38,1 39,2 38,7 38,0 38,8 38,3
46 Rfa 1 37,9 38,0 39,3 39,4 38,0 38,5 38,5
61 Rfa 1 38,2 38,1 39,2 39,5 38,8 39,0 38,7
63 Rfa 1 − 38,5 38,3 39,5 40,1 38,4 39,2
59 Rfa 1 38,1 − 37,7 38,8 38,4 38,6 38,8
73 Rfa 1 38,0 38,3 39,9 39,6 39,4 39,2 −
74 Rfa 1 − 37,6 38,3 40,0 38,5 38,6 38,6
107 Rfa 1 37,8 38,3 39,4 39,7 39,1 38,9 −
78 Rfa 1 37,9 38,1 37,9 38,7 38,5 38,9 38,6
24 Rfa 1 38,0 38,1 38,6 38,6 38,4 37,9 38,4
128 Rfa 1 38,1 38,1 39,6 39,1 39,1 38,7 39,2
72 Rfa 1 37,6 37,8 37,9 38,0 37,9 37,8 37,8
95 Rfa 2 − 38,6 38,2 39,3 39,6 38,8 39,7
92 Rfa 2 38,1 − 38,1 38,9 39,3 39,5 38,7
81 Rfa 2 37,6 − 37,7 39,1 39,5 38,6 39,1
60 Rfa 2 37,9 38,2 38,4 38,9 38,5 38,6 −
100 Rfa 2 37,4 − 37,6 38,9 38,8 38,4 38,7
121 Rfa 2 38,1 38,6 38,8 38,7 38,5 39,2 38,5
119 Rfa 2 37,2 38,2 38,0 38,4 39,0 38,2 38,6
105 Rfa 2 37,9 38,2 38,5 38,4 38,4 38,6 38,5
101 Rfa 2 − 38,4 − 38,3 38,7 38,7 38,6
98 Rfa 2 38,5 38,3 39,3 39,2 38,7 38,9 39,0
41 Rfa 2 37,8 37,8 38,3 38,8 38,2 38,1 38,4
32 Rfa 2 38,3 38,4 38,5 38,6 38,2 38,8 38,6
rest
rik
tiv
41 K 1 − 38,5 38,3 39,5 40,1 38,4 39,2
48 K 1 − 38,2 38,2 39,0 39,2 38,3 39,1
64 K 1 37,9 37,7 39,2 38,9 38,2 38,4 38,8
98 K 1 37,9 − 38,4 39,1 39,1 39,8 38,6
51 K 1 − 37,9 38,3 39,4 38,8 38,3 38,5
55 K 1 38,2 38,8 40,0 39,3 39,0 38,3 −
62 K 1 37,9 38,1 39,7 38,7 39,1 38,6 −
75 K 1 38,0 38,0 39,2 38,6 38,4 38,2 −
70 K 1 − − 38,0 38,6 39,1 38,2 38,5
129 K 1 37,7 37,4 37,4 38,7 38,7 38,8 38,6
54 K 2 37,8 − 38,0 38,9 39,8 39,6 38,7
94 K 2 38,0 37,9 38,0 39,6 38,8 39,1 −
35 K 2 38,1 38,1 38,6 39,5 39,5 38,8 −
122 K 2 38,4 38,3 38,8 38,7 38,8 38,9 −
76 K 2 38,1 37,8 38,9 38,5 38,3 37,7 −
104 K 2 38,3 38,0 38,4 39,7 39,4 38,6 38,7
80 K 2 37,5 37,7 38,7 38,5 38,9 38,3 38,0
123 K 2 37,8 37,8 37,8 39,3 38,8 38,6 38,6
118 K 2 37,9 37,8 38,8 38,2 38,1 38,6 39,0
22 K 2 37,9 37,8 39,3 38,2 38,7 38,4 38,1
46 K 2 37,8 37,1 38,3 38,0 38,2 38,5 39,0
113 K 2 37,9 37,8 37,7 38,6 38,6 38,3 38,2
64 K 2 37,3 37,6 38,4 38,8 38,5 38,2 38,4
Anhang
266
Tabelle 109: Tägliche Körpertemperatur (°C) der restriktiv und ad libitum gefütterten Sauen zu verschiedenen Tagen der Laktation
Sau Gruppe Tag
5
Tag
7
Tag
10
Tag
14
Tag
17
Tag
21
Tag
24
Tag
28
Tag
31
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 37,8 38,5 38,2 38,1 37,3 38,7 38,7 39,0 38,5
46 Rfa 1 38,6 38,6 37,7 38,5 36,8 38,5 38,6 39,4 38,4
61 Rfa 1 38,8 39,1 39,2 38,7 38,1 38,7 39,3 39,4 39,3
63 Rfa 1 38,8 38,6 38,3 38,6 38,0 39,0 38,7 39,4 38,9
59 Rfa 1 38,5 38,4 38,1 38,0 38,1 38,3 38,6 − 38,4
73 Rfa 1 38,8 39,2 39,0 38,6 39,3 38,3 38,4 − 38,7
74 Rfa 1 37,7 38,8 39,0 38,8 39,7 39,2 38,4 − 38,1
107 Rfa 1 38,8 39,3 39,4 38,8 39,6 38,7 38,5 − 39,5
78 Rfa 1 38,1 38,4 37,8 38,3 38,8 38,9 38,4 38,3 38,3
24 Rfa 1 38,2 38,3 38,0 38,3 38,4 37,9 38,3 38,7 38,0
72 Rfa 1 38,2 38,6 37,9 37,9 37,9 37,7 38,4 38,4 37,6
95 Rfa 2 39,3 39,6 38,8 38,6 39,1 38,7 39,5 38,9 39,3
92 Rfa 2 39,0 39,0 39,0 37,5 38,7 39,6 39,2 39,1 38,9
81 Rfa 2 39,4 38,8 38,9 38,5 38,7 38,5 38,3 39,3 38,7
60 Rfa 2 38,6 38,0 37,8 38,2 38,2 38,1 38,4 38,6 37,8
100 Rfa 2 39,0 38,7 38,9 38,3 38,8 38,3 37,9 38,4 38,2
121 Rfa 2 39,2 39,4 39,1 38,9 39,1 39,4 39,7 39,4 39,1
119 Rfa 2 38,1 38,5 38,1 38,6 38,3 38,8 38,4 38,5 37,4
105 Rfa 2 38,4 38,6 38,6 38,9 38,3 39,6 38,7 39,1 38,9
101 Rfa 2 38,3 37,8 38,2 38,6 38,0 38,6 38,1 38,3 38,4
98 Rfa 2 38,9 38,5 38,7 38,9 38,6 38,6 38,8 38,6 39,3
41 Rfa 2 38,3 38,0 38,3 38,1 37,8 38,1 38,2 38,4 38,0
32 Rfa 2 38,7 38,1 38,4 37,9 37,7 38,4 38,2 37,9 38,2
rest
rik
tiv
41 K 1 38,8 38,6 38,3 38,6 38,0 39,0 38,7 39,4 38,9
64 K 1 38,9 38,5 38,9 38,7 37,0 38,4 39,5 39,3 39,9
98 K 1 39,0 39,0 38,9 38,6 37,7 38,5 38,8 40,0 39,2
54 K 2 39,0 38,4 38,4 38,2 38,5 39,0 38,9 38,5 38,7
94 K 2 38,7 38,9 39,0 38,5 38,7 39,7 39,2 39,4 39,2
51 K 1 38,7 38,7 38,9 37,7 39,1 38,2 38,6 − 39,0
55 K 1 39,0 38,7 39,2 38,6 39,6 38,3 39,0 − 39,2
62 K 1 38,6 38,8 38,9 37,9 38,4 38,0 38,6 − 38,3
75 K 1 38,3 38,2 38,8 37,9 39,2 38,2 38,3 − 38,7
122 K 2 39,1 39,6 39,7 38,6 38,9 38,4 38,1 38,3 38,8
104 K 2 38,4 38,7 39,3 39,1 38,9 39,0 39,0 38,9 39,1
80 K 2 38,1 39,0 38,0 38,1 38,4 39,8 39,0 39,3 38,6
123 K 2 38,5 38,7 38,6 38,2 38,5 39,3 38,8 38,7 38,7
70 K 1 38,6 38,6 38,0 38,2 38,9 38,7 38,3 38,3 38,1
129 K 1 38,8 38,9 38,7 37,9 38,6 37,6 38,1 38,4 38,4
46 K 2 38,6 40,0 38,8 39,1 38,9 39,0 38,5 37,9 39,1
64 K 2 38,3 38,1 38,8 38,9 38,5 38,3 38,3 38,3 38,4
Anhang
267
Geburtsparameter 9.4
Tabelle 110: Geburtsverlauf der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2): nötige Eingriffe, MMA-Erkrankungen; Geburtslänge und -intervalle (Min.)
Sau Gruppe Wurfnr. Amme
Geb.-
Einleitu
ng
Geb.-
Länge
(Min.)
Geb.-
Intervall
(Min.)
Geb.-
Hilfe MMA
ad
lib
itu
m
59 Rfa 1 5 nein nein 140 12,7 nein nein
74 Rfa 1 4 nein nein 270 14,2 nein nein
32 Rfa 1 5 nein ja 290 17,1 nein nein
46 Rfa 1 5 nein ja − − nein nein
61 Rfa 1 4 nein ja 101 5,32 nein nein
63 Rfa 1 4 nein ja 240 10,0 ja nein
73 Rfa 1 4 nein ja 133 6,05 nein nein
107 Rfa 1 2 nein ja 165 9,17 nein ja
24 Rfa 1 8 nein ja − − nein nein
72 Rfa 1 4 nein ja 215 53,8 ja nein
78 Rfa 1 4 nein ja 307 16,2 nein nein
128 Rfa 1 1 ja ja 435 25,6 ja nein
92 Rfa 2 3 nein nein 197 8,95 nein nein
81 Rfa 2 4 nein nein 282 11,8 nein ja
100 Rfa 2 3 nein nein − − nein nein
101 Rfa 2 3 nein nein 214 8,92 nein nein
119 Rfa 2 2 nein nein 112 6,59 nein nein
95 Rfa 2 3 nein ja 320 16,8 nein nein
60 Rfa 2 5 nein ja 233 8,32 ja nein
105 Rfa 2 3 nein ja 268 14,9 nein nein
121 Rfa 2 2 nein ja 253 14,9 nein nein
32 Rfa 2 6 nein ja 190 11,2 nein nein
41 Rfa 2 6 nein ja 150 7,89 nein nein
98 Rfa 2 3 nein ja − − nein nein
rest
rik
tiv
98 K 1 2 nein nein 164 12,6 nein nein
51 K 1 5 nein nein 271 15,9 nein nein
70 K 1 4 nein nein 480 25,3 ja nein
41 K 1 5 nein ja 260 12,4 ja nein
64 K 1 4 nein ja 95 7,92 nein nein
55 K 1 5 nein ja 168 8,40 nein nein
62 K 1 4 nein ja 180 10,6 ja nein
75 K 1 4 nein ja 150 8,33 nein nein
48 K 1 5 ja ja 155 9,69 nein nein
54 K 2 5 nein nein 515 21,5 nein nein
80 K 2 4 nein nein 321 16,9 nein nein
22 K 2 8 ja nein − − nein nein
94 K 2 3 nein ja 171 14,3 nein nein
122 K 2 2 nein ja 300 30,0 nein nein
104 K 2 3 nein ja 222 10,6 nein ja
123 K 2 2 nein ja − − nein nein
46 K 2 6 nein ja 150 13,6 nein nein
64 K 2 5 nein ja 150 10,7 nein nein
35 K 2 6 ja ja 540 23,5 ja ja
76 K 2 4 ja ja 315 13,7 nein nein
Anhang
268
Fortsetzung Tabelle 110
Sau Gruppe Wurfnr. Amme
Geb.-
Einleitu
ng
Geb.-
Länge
(Min.)
Geb.-
Intervall
(Min.)
Geb.-
Hilfe MMA
118 K 2 2 ja ja − − nein nein
113 K 2 2 ja ja 188 8,55 nein nein
Anhang
269
Tabelle 111: Wurfdaten der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2): Anzahl geborener, lebend und tot geborener Ferkel; Ferkel nach Wurfausgleich (WAG)
sowie Anzahl abgesetzter Ferkel
Sau Gruppe geb. Ferkel leb. geb.
Ferkel
tot geb.
Ferkel nach WAG
abges.
Ferkel
ad
lib
itu
m
59 Rfa 1 11 11 0 14 13
74 Rfa 1 19 19 0 14 13
32 Rfa 1 17 16 0 12 10
46 Rfa 1 21 21 0 12 10
61 Rfa 1 19 16 2 14 11
63 Rfa 1 24 17 2 13 9
73 Rfa 1 22 17 3 14 13
107 Rfa 1 18 18 0 14 14
24 Rfa 1 15 15 0 9 8
72 Rfa 1 4 4 0 10 10
78 Rfa 1 19 19 0 10 10
128 Rfa 1 17 16 1 13 13
92 Rfa 2 22 21 1 13 10
81 Rfa 2 24 18 4 14 14
100 Rfa 2 20 18 1 14 14
101 Rfa 2 24 20 1 15 14
119 Rfa 2 17 17 0 14 14
95 Rfa 2 19 16 1 14 14
60 Rfa 2 28 19 1 13 12
105 Rfa 2 18 17 1 15 14
121 Rfa 2 17 16 0 14 11
32 Rfa 2 17 16 1 13 12
41 Rfa 2 19 17 2 12 11
98 Rfa 2 18 16 1 13 13
rest
rik
tiv
98 K 1 13 13 0 14 14
51 K 1 17 17 0 14 13
70 K 1 19 18 0 10 9
41 K 1 21 18 2 13 11
64 K 1 12 12 0 14 14
55 K 1 20 17 3 14 13
62 K 1 17 14 1 14 14
75 K 1 18 17 1 14 14
48 K 1 16 14 2 14 14
54 K 2 24 20 3 12 6
80 K 2 19 18 1 14 13
22 K 2 10 9 1 13 12
94 K 2 12 12 0 14 14
122 K 2 10 10 0 14 14
104 K 2 21 17 2 14 14
123 K 2 20 19 0 14 12
46 K 2 11 10 0 13 13
64 K 2 14 14 0 13 12
35 K 2 23 20 2 14 13
76 K 2 23 19 4 15 15
118 K 2 16 15 0 15 15
113 K 2 22 20 2 13 12
Anhang
270
Tabelle 112: Ferkelverluste der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im peripartalen Zeitraum
Sau Gruppe Tag 1 Tag 2 Tag 3 Tag ≥4 Gesamt
ad
lib
itu
m
59 Rfa 1 1 0 0 1 2
74 Rfa 1 2 0 0 1 3
32 Rfa 1 1 2 0 2 5
46 Rfa 1 2 4 0 2 8
61 Rfa 1 2 0 1 2 5
63 Rfa 1 2 2 0 4 8
73 Rfa 1 0 0 0 1 1
107 Rfa 1 3 0 0 0 3
24 Rfa 1 1 0 1 0 2
72 Rfa 1 0 0 0 0 0
78 Rfa 1 1 1 0 0 2
128 Rfa 1 0 0 0 0 0
92 Rfa 2 2 1 1 3 7
81 Rfa 2 0 0 0 0 0
100 Rfa 2 0 0 1 0 1
101 Rfa 2 1 1 1 1 4
119 Rfa 2 1 0 0 0 1
95 Rfa 2 0 0 0 0 0
60 Rfa 2 3 0 0 1 4
105 Rfa 2 0 0 0 1 1
121 Rfa 2 1 2 1 3 7
32 Rfa 2 3 0 0 1 4
41 Rfa 2 1 3 0 1 5
98 Rfa 2 1 0 0 0 1
rest
rik
tiv
98 K 1 0 0 0 0 0
51 K 1 0 1 0 1 2
70 K 1 3 2 0 2 7
41 K 1 3 2 0 2 7
64 K 1 0 0 0 0 0
55 K 1 0 0 0 1 1
62 K 1 0 2 0 0 2
75 K 1 2 0 0 0 2
48 K 1 0 1 0 0 1
54 K 2 2 1 1 6 10
80 K 2 0 2 0 1 3
22 K 2 1 0 0 1 2
94 K 2 0 0 0 0 0
122 K 2 0 0 0 0 0
104 K 2 0 0 0 0 0
123 K 2 1 1 0 2 4
46 K 2 1 1 0 0 2
64 K 2 0 0 0 1 1
35 K 2 1 2 0 1 4
76 K 2 2 0 0 0 2
118 K 2 1 0 1 0 2
113 K 2 0 1 0 1 2
Anhang
271
Tabelle 113: Ferkelverluste der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im peripartalen Zeitraum nach Ursachen sortiert
Sau Grupp
e Erdrückt
Lebens-
schwäche Verletzung Durchfall Sonstiges Unbekannt
ad
lib
itu
m
59 Rfa 1 1 1 0 0 0 0
74 Rfa 1 3 0 0 0 0 0
32 Rfa 1 4 0 0 0 0 1
46 Rfa 1 4 2 1 0 0 1
61 Rfa 1 5 0 0 0 0 0
63 Rfa 1 7 0 0 0 1 0
73 Rfa 1 0 0 0 0 1 0
107 Rfa 1 3 0 0 0 0 0
24 Rfa 1 0 1 1 0 0 0
72 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
78 Rfa 1 1 0 1 0 0 0
128 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
92 Rfa 2 6 1 0 0 0 0
81 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
100 Rfa 2 0 1 0 0 0 0
101 Rfa 2 2 2 0 0 0 0
119 Rfa 2 1 0 0 0 0 0
95 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
60 Rfa 2 2 2 0 0 0 0
105 Rfa 2 1 0 0 0 0 0
121 Rfa 2 5 1 0 0 0 0
32 Rfa 2 4 0 0 0 0 0
41 Rfa 2 4 0 1 0 0 0
98 Rfa 2 0 1 0 0 0 0
rest
rik
tiv
98 K 1 0 0 0 0 0 0
51 K 1 1 1 0 0 0 0
70 K 1 3 4 0 0 0 0
41 K 1 5 1 1 0 0 0
64 K 1 0 0 0 0 0 0
55 K 1 0 0 0 0 0 1
62 K 1 2 0 0 0 0 0
75 K 1 2 0 0 0 0 0
48 K 1 0 0 0 0 1 0
54 K 2 8 0 0 1 1 0
80 K 2 3 0 0 0 0 0
22 K 2 0 0 1 0 1 0
94 K 2 0 0 0 0 0 0
122 K 2 0 0 0 0 0 0
104 K 2 0 0 0 0 0 0
123 K 2 3 1 0 0 0 0
46 K 2 2 0 0 0 0 0
64 K 2 0 0 0 0 0 1
35 K 2 4 0 0 0 0 0
76 K 2 2 0 0 0 0 0
118 K 2 2 0 0 0 0 0
113 K 2 2 0 0 0 0 0
Anhang
272
Leistungsparameter der Sauen 9.5
Tabelle 114: Wöchentlicher Wurfzuwachs (kg) der restriktiv und ad libitum gefütterten Sauen in der Laktation
Fütterung Sau Gruppe Woche 1 Woche 2 Woche 3 Woche 4 Woche 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 13,4 20,9 22,2 23,7 17,1
46 Rfa 1 10,7 18,3 23,9 21,1 16,5
61 Rfa 1 15,4 23,9 25,9 25,6 18,4
63 Rfa 1 14,1 20,2 22,1 25,6 18,5
59 Rfa 1 18,4 23,8 21,4 23,9 27,7
73 Rfa 1 9,79 18,6 17,4 19,9 24,1
74 Rfa 1 19,2 25,8 25,3 25,7 22,9
107 Rfa 1 17,0 21,1 21,4 25,1 12,4
24 Rfa 1 10,0 16,2 13,2 20,7 17,8
72 Rfa 1 8,23 20,4 18,5 25,4 22,5
78 Rfa 1 13,5 23,8 25,6 29,7 25,5
92 Rfa 2 15,8 22,9 23,2 22,5 19,0
95 Rfa 2 19,9 23,8 21,0 19,8 20,9
60 Rfa 2 14,6 22,7 24,5 27,6 25,9
81 Rfa 2 20,5 24,6 20,6 29,2 26,8
100 Rfa 2 21,6 29,6 29,2 28,5 27,1
101 Rfa 2 24,8 23,8 26,9 27,2 22,0
105 Rfa 2 22,9 26,3 27,2 24,3 25,7
119 Rfa 2 19,8 29,6 29,6 25,6 21,4
121 Rfa 2 10,4 19,9 22,4 22,1 22,1
32 Rfa 2 11,3 25,2 27,3 28,2 25,7
41 Rfa 2 14,0 24,8 26,6 19,9 24,8
98 Rfa 2 16,5 29,0 28,9 31,2 29,9
rest
rik
tiv
41 K 1 11,6 22,0 25,2 24,2 21,8
64 K 1 22,4 29,6 30,4 28,4 22,6
98 K 1 24,8 28,2 29,0 30,1 21,2
54 K 2 10,3 13,7 14,3 12,6 12,4
94 K 2 17,5 30,3 30,6 21,6 31,1
51 K 1 21,1 27,2 21,9 29,6 26,6
55 K 1 12,4 21,3 21,6 26,4 22,7
62 K 1 15,4 22,4 20,3 24,6 23,5
75 K 1 17,8 30,2 27,7 26,9 27,1
122 K 2 16,3 31,5 26,8 29,2 26,9
80 K 2 21,9 25,2 21,7 23,3 22,4
104 K 2 16,3 22,5 25,4 25,4 21,2
123 K 2 13,9 20,9 22,0 22,6 21,4
70 K 1 18,5 17,1 21,0 24,4 14,3
129 K 1 12,3 13,1 14,0 17,8 15,6
46 K 2 17,7 26,2 28,7 28,4 24,3
64 K 2 16,0 25,5 31,3 24,8 21,5
Anhang
273
Tabelle 115: Körpermassen (kg) der Ferkel der Sauen der restriktiv und ad libitum gefütterten Sauen in den verschiedenen Laktationswochen
Fütterung Sau Gruppe 24 h
p.p.
Woche
1
Woche
2
Woche
3
Woche
4
Woche
5
Tag 35
p.p.
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 1,36 2,55 4,48 6,69 9,06 10,8 11,3
46 Rfa 1 0,93 1,97 3,73 6,05 8,16 9,81 10,4
61 Rfa 1 1,32 2,63 4,67 7,02 9,34 11,0 11,6
63 Rfa 1 1,49 2,81 4,95 7,41 10,3 12,3 12,7
59 Rfa 1 1,45 2,94 4,74 6,39 8,23 10,4 10,4
73 Rfa 1 1,40 2,14 3,56 4,89 6,42 8,28 8,90
74 Rfa 1 1,32 2,67 4,60 6,54 8,52 10,3 10,6
107 Rfa 1 1,40 2,60 4,11 5,64 7,43 8,32 8,61
78 Rfa 1 1,56 2,81 5,19 7,75 10,7 13,3 13,7
24 Rfa 1 1,33 2,57 4,59 6,24 8,83 11,0 11,8
72 Rfa 1 1,53 3,02 5,07 6,92 9,46 11,7 12,5
95 Rfa 2 1,40 2,79 4,49 5,99 7,40 8,90 9,15
92 Rfa 2 1,32 2,69 4,95 7,20 9,43 11,3 11,3
81 Rfa 2 1,30 2,63 4,39 5,85 7,94 9,85 9,85
60 Rfa 2 1,17 2,28 4,17 6,21 8,51 10,7 11,4
100 Rfa 2 1,20 2,61 4,73 6,81 8,84 10,8 10,8
121 Rfa 2 1,52 2,47 4,28 6,32 8,32 10,3 11,0
119 Rfa 2 1,26 2,58 4,69 6,81 8,64 10,2 10,2
105 Rfa 2 1,46 2,99 4,87 6,81 8,55 10,4 10,7
101 Rfa 2 1,36 2,97 4,67 6,59 8,53 10,1 9,8
98 Rfa 2 1,39 2,66 4,89 7,11 9,52 11,8 12,6
41 Rfa 2 1,31 2,63 4,88 7,30 9,11 11,4 12,1
32 Rfa 2 1,47 2,41 4,51 6,79 9,14 11,3 12,0
rest
rik
tiv
41 K 1 1,24 2,30 4,30 6,59 8,79 10,8 11,4
64 K 1 1,60 3,17 5,28 7,45 9,48 11,1 11,6
98 K 1 1,59 3,36 5,37 7,44 9,59 11,1 11,1
51 K 1 1,54 3,09 5,18 6,87 9,14 11,2 11,5
55 K 1 1,23 2,11 3,75 5,41 7,44 9,18 9,47
62 K 1 1,64 2,81 4,41 5,86 7,62 9,30 9,86
75 K 1 1,67 2,93 5,09 7,07 8,99 10,9 11,6
70 K 1 1,43 3,28 5,18 7,51 10,2 11,8 11,3
129 K 1 1,66 3,59 5,46 7,46 10,0 12,2 13,0
54 K 2 1,34 2,58 4,55 6,94 9,03 11,1 11,1
94 K 2 1,61 2,89 5,06 7,24 8,79 11,0 11,7
122 K 2 1,74 2,97 5,22 7,14 9,22 11,1 11,8
104 K 2 1,52 2,64 4,25 6,06 7,87 9,38 9,64
80 K 2 1,32 2,90 4,83 6,50 8,29 10,0 10,0
123 K 2 1,19 2,19 3,86 5,69 7,57 9,36 9,65
46 K 2 1,51 2,94 4,96 7,17 9,35 11,2 11,5
64 K 2 1,46 2,72 4,81 7,42 9,49 11,3 11,9
Anhang
274
Beifutteraufnahme 9.6
Tabelle 116: TS-Aufnahme (g)/ Wurf (= Summe TS aus Ferkeljoghurt und Prestarter) der restriktiv und ad libitum gefütterten Sauen in den verschiedenen Laktationswochen
Fütterung Sau Gruppe Woche 1 Woche 2 Woche 3 Woche 4 Woche 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 2541 3403 486 2463 3491
46 Rfa 1 1878 3074 501 2003 6006
61 Rfa 1 2299 3233 355 1071 1158
63 Rfa 1 1581 1582 693 4147 5325
59 Rfa 1 1524 3736 1036 3109 7626
73 Rfa 1 2326 5627 2425 1395 5542
74 Rfa 1 1336 2623 559 307 1112
107 Rfa 1 1304 2430 660 878 1389
78 Rfa 1 1167 1167 253 819 1092
24 Rfa 1 940 799 269 1078 1337
72 Rfa 1 1415 1380 178 200 474
95 Rfa 2 1629 1313 259 2173 5091
92 Rfa 2 3425 2431 939 1353 3294
81 Rfa 2 2329 2816 474 3303 5635
60 Rfa 2 2143 2082 301 496 1591
100 Rfa 2 1889 2370 290 424 813
121 Rfa 2 1242 1190 59 311 1561
119 Rfa 2 1418 1560 86 470 1240
105 Rfa 2 1560 1587 88 425 2312
101 Rfa 2 1531 1699 337 523 1196
98 Rfa 2 726 1362 593 955 2540
41 Rfa 2 294 893 130 314 2242
32 Rfa 2 457 1194 345 1250 2366
rest
rik
tiv
41 K 1 2326 1612 280 1207 2794
64 K 1 2113 3213 683 4432 4722
98 K 1 1491 2017 363 2826 6049
51 K 1 2084 3141 465 631 3385
55 K 1 2554 3465 736 1022 2881
62 K 1 2016 3764 1103 2248 5248
75 K 1 1617 2597 403 451 3326
70 K 1 2353 1459 203 881 1067
129 K 1 504 558 127 57 999
54 K 2 2506 1428 424 779 1565
94 K 2 2495 2899 739 2294 7877
122 K 2 1912 3077 997 3439 8760
104 K 2 1832 1922 162 426 2097
80 K 2 2135 1863 158 599 2984
123 K 2 815 938 65 86 1831
46 K 2 417 1363 679 639 2029
64 K 2 263 1423 560 555 1787
Anhang
275
Körpermasseentwicklung der Sauen 9.7
Tabelle 117: Körpermasse (KM;kg); Rückenspeckdicke (RSD;mm) und Body Condition Score (BCS) der restriktiv und ad libitum gefütterten Sauen zur Einstallung, 24 h p.p., Tag 14 p.p. sowie zum Absetzen
Einstallung (Tag -7) 24h p.p. Tag 14p.p. Absetzen (Tag 35)
Sau Gruppe KM RSD BCS KM RSD KM RSD KM RSD BCS
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 281 12,7 3,75 267 13,3 − 13,2 268 12,5 3,25
46 Rfa 1 277 12,2 4,00 259 12,3 − 11,8 249 10,8 3,25
61 Rfa 1 280 14,0 4,25 289 15,5 − 14,5 276 12,5 3,50
63 Rfa 1 278 14,7 4,50 271 15,8 − 15,2 231 14,3 2,75
59 Rfa 1 295 17,2 3,75 297 18,0 273 17,2 268 14,3 2,75
73 Rfa 1 319 18,5 4,00 292 18,5 290 17,5 288 14,8 3,25
74 Rfa 1 293 16,5 4,00 283 16,2 280 15,3 262 10,8 2,25
107 Rfa 1 271 19,0 4,00 262 20,0 250 19,0 241 15,8 3,25
78 Rfa 1 311 20,3 4,00 296 19,2 − 19,5 287 17,7 3,00
24 Rfa 1 340 24,3 4,25 343 26,8 − 25,7 325 22,8 3,75
72 Rfa 1 327 28,0 4,00 348 29,0 − 25,5 316 21,7 3,25
95 Rfa 2 266 16,5 3,50 261 17,0 − 16,3 250 16,0 2,75
92 Rfa 2 256 10,0 3,00 244 11,0 − 11,2 235 10,7 3,00
81 Rfa 2 292 12,3 4,00 283 13,0 267 12,5 256 12,0 2,50
60 Rfa 2 331 15,8 4,25 317 15,7 327 15,7 314 14,8 3,00
100 Rfa 2 260 14,8 3,75 263 15,3 245 14,0 228 12,0 2,50
121 Rfa 2 258 16,3 4,50 244 16,8 248 17,8 240 16,3 4,00
119 Rfa 2 238 19,0 3,75 229 19,5 230 18,7 197 14,0 2,00
105 Rfa 2 259 12,8 3,00 248 12,8 243 12,8 222 9,5 2,50
101 Rfa 2 282 16,3 3,25 258 17,0 259 16,2 236 13,5 2,50
98 Rfa 2 276 18,8 4,00 253 18,8 250 16,5 219 13,0 3,00
41 Rfa 2 319 22,7 4,00 323 23,2 316 21,5 292 17,8 4,25
32 Rfa 2 320 19,3 4,00 334 20,5 329 19,8 311 16,5 4,00
rest
rik
tiv
41 K 1 292 17,0 4,50 270 17,2 − 15,3 249 12,2 3,25
64 K 1 268 14,2 4,25 253 12,8 − 12,3 222 9,00 2,50
98 K 1 236 14,5 4,25 218 14,3 − 13,0 186 9,17 2,50
51 K 1 348 20,8 4,25 323 20,5 309 18,8 291 15,2 2,50
55 K 1 293 18,8 4,00 277 18,5 280 18,5 267 16,7 3,00
62 K 1 291 17,5 4,00 276 16,3 267 15,7 256 14,2 2,25
75 K 1 289 13,3 3,00 265 13,2 260 11,3 243 8,3 2,00
70 K 1 340 22,5 4,00 316 21,8 − 20,2 286 17,2 3,00
129 K 1 206 12,8 3,25 211 12,8 − 12,7 211 11,5 2,00
54 K 2 298 17,3 3,50 273 16,0 − 15,8 276 16,3 3,25
94 K 2 280 14,5 3,25 267 13,7 − 12,5 225 10,8 2,00
122 K 2 237 19,3 4,25 228 18,8 214 16,0 194 12,5 2,25
104 K 2 251 16,7 3,25 223 16,7 217 16,2 200 13,5 2,00
80 K 2 290 21,0 4,25 285 21,5 276 20,0 255 18,2 3,50
123 K 2 244 17,2 4,00 225 16,7 230 17,0 214 14,3 3,00
46 K 2 272 10,5 2,75 268 9,83 269 9,33 243 7,00 2,50
64 K 2 301 19,2 4,00 291 18,8 292 17,0 255 12,5 3,00
Anhang
276
Tabelle 118: Schulterscore der der restriktiv und ad libitum gefütterten Sauen zur Einstallung sowie im Verlauf der Laktation
Fütterung Sau Gruppe Einstallung Woche 1 Woche 2 Woche 3 Woche 4 Woche 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
46 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
61 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
63 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
59 Rfa 1 0 0 1 0 0 1
73 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
74 Rfa 1 0 0 0 0 1 1
107 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
78 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
24 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
72 Rfa 1 0 0 0 0 0 0
95 Rfa 2 0 0 0 1 1 1
92 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
81 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
60 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
100 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
121 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
119 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
105 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
101 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
98 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
41 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
32 Rfa 2 0 0 0 0 0 0
rest
rik
tiv
41 K 1 0 0 0 0 0 0
64 K 1 0 0 0 0 0 0
98 K 1 0 0 0 0 0 0
51 K 1 0 0 0 1 1 1
55 K 1 0 0 0 0 0 0
62 K 1 0 0 0 0 0 0
75 K 1 0 0 0 0 0 0
70 K 1 0 0 0 0 0 0
129 K 1 0 0 0 0 0 0
54 K 2 0 0 0 0 0 1
94 K 2 0 0 0 0 0 1
122 K 2 0 0 0 0 0 0
104 K 2 0 0 0 0 0 0
80 K 2 0 0 0 0 0 0
123 K 2 0 0 0 0 0 0
46 K 2 0 0 1 1 0 0
64 K 2 0 0 0 0 0 0
Anhang
277
Kotparameter 9.8
Tabelle 119: Kotscore der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im
peripartalen Zeitraum; Score nach OLIVIERO et al. (2009)
Sau Gruppe Tag -7 Tag -4 Tag -2 Tag -1 Tag 0 Tag 1 Tag 2 Tag 3 Tag 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 3,00 4,50 3,50 5,00 3,50 3,00 2,50 3,00 3,50
46 Rfa 1 3,00 4,00 4,00 4,00 0,00 3,50 3,00 3,50 3,50
61 Rfa 1 3,00 3,50 3,00 4,00 3,00 3,50 2,50 3,50 3,50
63 Rfa 1 3,00 4,00 3,25 3,00 2,50 3,50 2,00 3,00 3,00
59 Rfa 1 3,00 3,50 3,00 2,50 2,00 3,00 2,75 2,50 3,00
73 Rfa 1 2,75 3,00 3,25 3,50 3,00 2,50 2,75 3,00 2,75
74 Rfa 1 2,75 2,00 2,50 3,00 2,50 1,50 2,50 3,00 2,50
107 Rfa 1 2,75 3,00 3,00 3,50 3,00 3,00 3,00 3,00 3,00
24 Rfa 1 3,00 3,00 3,00 3,00 2,50 0,00 2,00 2,00 2,00
72 Rfa 1 3,00 3,25 3,25 3,50 2,00 3,00 3,00 2,00 2,50
78 Rfa 1 3,00 3,25 3,00 3,25 3,00 2,00 2,75 2,75 3,00
128 Rfa 1 3,00 3,25 3,25 − 3,00 − 2,75 − 3,00
92 Rfa 2 3,50 4,00 4,00 3,00 3,50 3,00 3,00 3,50 3,50
95 Rfa 2 3,00 3,50 3,50 3,50 3,00 3,00 3,00 4,00 3,00
60 Rfa 2 3,00 3,00 3,25 3,00 3,00 0,00 3,00 3,00 3,00
81 Rfa 2 3,00 3,25 3,50 3,00 3,25 3,25 3,25 3,50 3,00
100 Rfa 2 3,25 3,50 3,50 3,25 3,25 3,00 3,25 3,50 3,00
101 Rfa 2 3,00 3,50 3,00 2,50 3,00 2,50 3,00 3,50 3,00
105 Rfa 2 3,00 3,50 3,25 3,25 3,00 3,00 3,00 3,00 3,50
119 Rfa 2 3,00 3,50 3,50 2,00 2,50 3,00 3,25 3,25 2,75
121 Rfa 2 3,00 3,25 3,50 3,25 0,00 2,00 2,50 2,50 3,25
32 Rfa 2 3,00 3,25 3,50 3,50 3,50 3,25 3,00 3,25 3,25
41 Rfa 2 3,00 3,00 3,00 3,00 3,00 1,00 2,00 2,50 3,00
98 Rfa 2 3,00 3,00 3,25 3,25 3,25 2,50 2,00 2,00 3,00
rest
rik
tiv
41 K 1 3,00 2,00 1,00 1,50 1,00 1,00 1,50 4,50 1,50
48 K 1 4,00 1,50 1,50 1,50 1,00 1,50 1,50 2,50 2,00
64 K 1 3,00 2,00 1,50 2,00 0,00 2,00 2,00 3,00 4,50
98 K 1 3,00 2,00 2,50 1,50 2,50 2,50 2,50 3,00 3,00
51 K 1 2,50 1,50 1,50 0,00 0,00 1,00 1,50 1,00 1,00
55 K 1 3,00 3,00 2,00 2,00 1,00 1,50 2,00 2,00 2,75
62 K 1 3,00 3,50 2,00 2,00 1,00 1,00 2,50 3,00 1,50
75 K 1 3,00 2,00 1,50 2,00 1,50 1,50 2,00 2,00 2,00
70 K 1 3,00 2,00 1,00 1,00 1,50 2,00 2,00 2,75 2,50
129 K 1 2,00 2,00 1,00 1,00 1,00 1,00 1,00 2,00 2,50
54 K 2 3,50 2,50 2,50 1,50 2,50 2,00 1,50 3,00 3,00
94 K 2 3,50 2,50 2,50 3,00 0,00 1,00 1,00 1,50 2,50
35 K 2 2,75 2,00 1,00 1,00 1,50 1,00 1,00 1,50 2,50
76 K 2 3,00 2,00 2,00 2,00 2,00 1,00 2,00 2,00 2,00
122 K 2 3,00 2,50 1,00 1,50 3,00 1,00 1,00 2,75 2,00
80 K 2 3,00 2,50 3,00 2,00 2,00 1,50 2,00 2,50 3,00
104 K 2 3,00 2,50 3,00 3,00 2,00 1,50 3,00 3,25 3,25
118 K 2 3,00 3,00 2,50 2,00 1,00 1,50 3,00 3,00 3,00
123 K 2 3,00 2,50 3,25 2,50 0,00 1,50 2,50 2,75 2,75
22 K 2 3,00 1,50 1,50 1,50 1,00 1,00 1,00 1,00 1,50
46 K 2 2,75 2,00 2,00 3,00 1,50 1,00 3,00 1,50 2,75
64 K 2 3,00 3,00 2,00 1,50 2,00 1,00 1,50 1,50 1,50
113 K 2 3,00 2,50 2,00 2,75 1,00 1,00 1,00 1,00 3,00
Anhang
278
Tabelle 120: Verschmutzung der Sauenstände der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im peripartalen Zeitraum; Score nach WARZECHA (2006)
Sau Gruppe Tag -7 Tag -4 Tag -2 Tag -1 Tag 0 Tag 1 Tag 2 Tag 3 Tag 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 0 3 2 3 1 1 1 1 1
46 Rfa 1 0 2 2 3 1 1 1 2 2
61 Rfa 1 0 2 2 3 1 1 1 1 1
63 Rfa 1 0 3 2 3 2 1 1 2 1
59 Rfa 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1
73 Rfa 1 0 2 2 1 1 1 1 1 1
74 Rfa 1 0 2 1 1 1 1 1 1 1
107 Rfa 1 0 2 1 1 1 1 1 1 1
24 Rfa 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1
72 Rfa 1 0 2 2 1 2 1 1 2 2
78 Rfa 1 0 1 1 1 1 1 1 2 2
128 Rfa 1 0 2 1 − 2 − 1 − 2
92 Rfa 2 0 1 3 1 1 1 1 1 2
95 Rfa 2 0 1 2 2 1 1 1 1 1
60 Rfa 2 0 2 1 1 1 1 1 1 1
81 Rfa 2 0 2 1 1 1 1 1 2 1
100 Rfa 2 0 2 1 1 1 1 1 1 1
101 Rfa 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
105 Rfa 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
119 Rfa 2 0 1 2 1 1 1 1 1 1
121 Rfa 2 0 1 2 2 1 1 1 1 1
32 Rfa 2 0 2 2 2 1 1 1 2 2
41 Rfa 2 0 2 2 1 1 1 1 2 1
98 Rfa 2 0 2 1 1 1 1 1 1 2
rest
rik
tiv
41 K 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1
48 K 1 0 2 1 3 1 1 1 1 1
64 K 1 0 1 1 2 1 1 1 1 1
98 K 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1
51 K 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1
55 K 1 0 1 1 1 2 1 1 1 1
62 K 1 0 2 1 1 1 1 1 1 1
75 K 1 0 2 1 1 2 1 1 1 1
70 K 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1
129 K 1 0 1 1 1 1 1 1 1 2
54 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 2
94 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
35 K 2 0 2 1 1 1 1 1 1 1
76 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
122 K 2 0 1 1 1 1 1 1 2 1
80 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
104 K 2 0 1 1 1 1 2 1 2 1
118 K 2 0 1 1 1 1 1 2 2 2
123 K 2 0 1 1 1 1 1 2 2 1
22 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
46 K 2 0 1 1 1 1 1 1 2 2
64 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
113 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
Anhang
279
Tabelle 121: Verschmutzung der Sauen der der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im peripartalen Zeitraum; Score nach WARZECHA (2006)
Sau Gruppe Tag -7 Tag -4 Tag -2 Tag -1 Tag 0 Tag 1 Tag 2 Tag 3 Tag 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 0 3 4 4 3 2 2 2 4
46 Rfa 1 0 3 4 4 1 3 2 3 3
61 Rfa 1 0 2 2 2 3 3 3 3 2
63 Rfa 1 0 1 1 2 3 2 2 3 3
59 Rfa 1 0 1 2 1 1 1 1 1 2
73 Rfa 1 0 3 3 3 3 3 2 2 1
74 Rfa 1 0 1 1 3 2 2 1 1 1
107 Rfa 1 0 3 3 3 3 3 1 1 1
24 Rfa 1 0 1 1 1 3 2 1 1 1
72 Rfa 1 0 3 2 2 3 1 1 2 3
78 Rfa 1 0 1 1 2 1 1 1 3 2
128 Rfa 1 0 2 1 − 1 − 1 − 2
92 Rfa 2 0 3 4 1 1 2 2 3 3
95 Rfa 2 0 2 2 2 2 1 1 2 2
60 Rfa 2 0 1 1 1 1 1 1 1 2
81 Rfa 2 0 2 2 3 2 2 2 2 1
100 Rfa 2 0 3 3 3 2 1 1 3 2
101 Rfa 2 0 3 3 1 2 2 2 1 1
105 Rfa 2 0 2 2 1 1 1 2 2 2
119 Rfa 2 0 1 3 1 1 1 1 1 1
121 Rfa 2 0 1 3 2 3 1 1 1 2
32 Rfa 2 0 3 3 3 2 1 1 3 2
41 Rfa 2 0 2 3 1 1 1 2 3 2
98 Rfa 2 0 2 2 2 3 1 1 1 3
rest
rik
tiv
41 K 1 0 1 1 1 1 1 2 2 1
48 K 1 0 1 1 1 2 1 1 1 1
64 K 1 0 1 1 1 1 1 2 3 2
98 K 1 0 1 1 1 1 1 1 3 2
51 K 1 0 1 1 2 3 3 1 1 1
55 K 1 0 1 1 1 4 3 3 1 1
62 K 1 0 3 1 1 1 2 2 1 1
75 K 1 0 1 1 1 4 1 1 1 1
70 K 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1
129 K 1 0 1 1 1 1 3 1 1 3
54 K 2 0 1 1 3 1 1 1 2 3
94 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
35 K 2 0 1 2 1 1 1 2 1 1
76 K 2 0 1 2 1 1 1 1 2 1
122 K 2 0 2 1 1 3 3 1 3 1
80 K 2 0 1 1 2 1 1 1 1 1
104 K 2 0 1 1 1 1 2 1 2 1
118 K 2 0 1 1 1 3 1 1 2 2
123 K 2 0 1 1 1 2 1 1 3 2
22 K 2 0 1 1 1 1 1 1 1 1
46 K 2 0 1 1 1 2 1 1 3 2
64 K 2 0 1 2 1 1 1 1 2 1
113 K 2 0 1 2 1 2 1 2 1 2
Anhang
280
Tabelle 122: TS-Gehalt (%) des Kotes der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im peripartalen Zeitraum
Sau Gruppe Tag -7 Tag -4 Tag -2 Tag 1 Tag 3 Tag 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 23,6 25,2 24,7 30,6 28,1 26,7
46 Rfa 1 24,2 25,8 21,4 27,2 24,4 25,2
61 Rfa 1 24,2 25,4 26,0 27,3 28,2 26,7
63 Rfa 1 24,6 28,0 26,6 25,9 24,8 27,8
59 Rfa 1 25,2 23,5 25,2 26,1 28,3 26,8
73 Rfa 1 25,3 24,1 23,8 29,1 25,9 25,8
74 Rfa 1 26,0 30,4 29,1 26,4 29,2 28,2
107 Rfa 1 21,4 26,2 25,3 26,0 26,8 26,5
78 Rfa 1 23,4 25,7 26,2 29,9 25,6 26,1
24 Rfa 1 22,6 28,3 27,0 − 29,1 31,3
128 Rfa 1 23,0 23,2 22,5 24,2 24,0 28,2
72 Rfa 1 22,6 25,7 26,4 29,2 31,3 27,4
95 Rfa 2 27,7 27,1 27,0 28,9 23,9 24,4
92 Rfa 2 23,3 24,6 24,8 28,1 25,3 22,9
81 Rfa 2 24,0 26,2 24,1 25,6 24,3 25,4
60 Rfa 2 24,8 28,8 27,9 28,2 23,4 27,7
100 Rfa 2 21,8 25,5 26,4 30,2 27,4 26,7
121 Rfa 2 23,5 27,6 25,7 31,9 27,5 24,3
119 Rfa 2 23,0 24,2 21,3 26,4 25,1 26,5
105 Rfa 2 22,0 24,3 24,5 27,4 25,0 20,9
101 Rfa 2 23,2 26,3 29,5 30,4 21,8 25,1
98 Rfa 2 25,2 29,6 27,5 34,9 38,2 26,1
41 Rfa 2 27,0 29,7 30,7 41,9 30,4 29,4
32 Rfa 2 25,8 25,8 26,8 31,1 27,2 25,0
rest
rik
tiv
41 K 1 23,6 29,4 35,3 35,3 24,9 32,8
48 K 1 23,0 31,4 31,8 41,0 29,6 29,2
64 K 1 24,8 29,0 29,6 30,7 24,8 26,9
98 K 1 23,6 27,7 27,8 27,5 29,4 29,0
51 K 1 29,5 36,2 34,3 40,1 41,1 35,9
55 K 1 23,4 26,5 27,0 33,1 32,2 26,9
62 K 1 26,4 25,0 28,5 34,9 29,4 32,4
75 K 1 23,7 28,9 32,5 35,9 31,6 28,0
70 K 1 26,3 29,8 34,8 30,9 28,8 28,5
129 K 1 30,8 27,4 35,2 41,6 29,1 27,4
54 K 2 24,7 29,3 25,5 31,3 26,9 24,8
94 K 2 20,9 30,0 33,2 41,9 30,7 27,9
35 K 2 27,3 31,3 34,9 41,0 30,2 28,7
122 K 2 22,4 29,5 33,7 34,5 26,0 29,3
76 K 2 23,2 31,3 29,7 29,1 25,3 27,5
104 K 2 23,7 27,5 21,9 26,7 23,5 23,0
80 K 2 23,3 27,8 22,5 29,2 25,6 24,0
123 K 2 23,0 29,5 26,9 28,8 27,3 25,8
118 K 2 22,6 25,1 24,8 28,9 26,7 24,3
22 K 2 27,0 32,0 32,6 32,1 34,2 32,1
46 K 2 25,5 27,5 25,3 29,2 28,7 21,6
113 K 2 22,6 28,2 29,1 34,0 31,6 26,3
64 K 2 26,6 25,6 29,9 37,7 32,2 30,1
Anhang
281
Tabelle 123: pH-Werte des Kotes der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1;K2; Rfa 1, Rfa 2) im peripartalen Zeitraum
Sau Gruppe Tag -7 Tag -4 Tag -2 Tag 1 Tag 3 Tag 5
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 6,68 6,34 5,79 6,22 6,41 6,28
46 Rfa 1 6,97 6,02 6,69 6,54 7,65 6,91
61 Rfa 1 7,21 6,16 6,00 6,30 6,64 7,00
63 Rfa 1 7,12 6,02 6,74 6,19 7,10 6,72
59 Rfa 1 6,90 6,42 6,52 6,44 7,26 6,96
73 Rfa 1 6,59 6,36 6,39 6,45 7,59 7,25
74 Rfa 1 7,12 6,91 6,25 6,96 6,80 7,43
107 Rfa 1 6,49 7,00 6,75 7,27 6,93 7,08
78 Rfa 1 6,94 6,52 6,45 6,14 6,24 6,67
24 Rfa 1 7,07 5,72 6,06 − 6,15 7,80
128 Rfa 1 6,38 6,44 6,51 5,92 6,09 6,86
72 Rfa 1 6,93 6,29 5,88 6,15 6,37 7,16
95 Rfa 2 6,86 6,40 6,36 5,96 6,32 6,98
92 Rfa 2 6,80 6,58 6,52 6,29 6,40 6,99
81 Rfa 2 6,56 6,44 6,26 6,41 6,51 6,67
60 Rfa 2 7,10 6,32 6,53 7,53 6,42 7,00
100 Rfa 2 6,32 5,90 6,00 6,32 7,40 6,62
121 Rfa 2 6,46 6,17 6,07 5,94 6,67 6,14
119 Rfa 2 6,97 6,03 6,31 6,79 6,29 6,34
105 Rfa 2 6,94 6,52 6,48 5,79 6,73 6,25
101 Rfa 2 7,05 6,67 6,30 6,39 6,41 6,64
98 Rfa 2 7,42 6,16 6,44 6,58 6,19 6,83
41 Rfa 2 6,95 6,92 6,07 6,69 6,10 6,34
32 Rfa 2 6,83 6,23 6,21 5,55 6,49 6,14
rest
rik
tiv
41 K 1 6,84 7,23 6,72 7,13 6,92 7,20
48 K 1 6,95 7,79 6,99 7,21 7,41 6,84
64 K 1 7,15 7,81 7,64 7,92 7,14 6,75
98 K 1 7,18 7,15 7,63 6,89 7,65 6,69
51 K 1 7,17 6,70 7,28 7,05 7,06 6,50
55 K 1 6,98 6,97 7,04 6,73 6,62 6,99
62 K 1 7,17 7,54 7,17 6,99 7,13 6,38
75 K 1 6,38 7,04 6,43 6,94 7,06 7,29
70 K 1 7,59 7,50 7,19 7,34 6,73 6,46
129 K 1 7,08 7,44 7,21 7,75 7,99 7,20
54 K 2 7,37 7,10 7,47 7,52 7,03 7,09
94 K 2 6,79 7,22 7,19 6,87 7,13 7,05
35 K 2 7,36 6,52 6,47 6,82 6,56 6,82
122 K 2 6,69 6,94 7,05 7,09 6,89 6,37
76 K 2 7,06 6,09 6,99 7,56 7,71 7,42
104 K 2 6,77 7,13 7,31 7,18 6,34 6,50
80 K 2 7,25 7,07 7,27 7,17 6,76 6,43
123 K 2 7,04 6,82 6,93 6,64 6,17 6,34
118 K 2 6,69 7,00 6,93 7,16 7,05 6,24
22 K 2 7,35 7,61 7,74 7,84 7,50 7,79
46 K 2 7,09 6,85 7,28 6,60 7,22 6,43
113 K 2 6,96 7,01 8,01 7,46 7,33 6,96
64 K 2 7,08 7,63 7,27 7,22 7,39 7,21
Anhang
282
Tabelle 124: Fe-Gehalt (mg/kg TS) im Kot der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppe 1 (K1, Rfa 1) sowie der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 (K2, Rfa 2) 24-48 h p.p.
Sau Gruppe Fe-Gehalt
(mg/kg TS)
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 1984
46 Rfa 1 2399
61 Rfa 1 2014
63 Rfa 1 2292
59 Rfa 1 2559
73 Rfa 1 2609
74 Rfa 1 2761
107 Rfa 1 2950
78 Rfa 1 1659
24 Rfa 1 1873
128 Rfa 1 1753
72 Rfa 1 1890
95 Rfa 2 1348
92 Rfa 2 1918
81 Rfa 2 1957
60 Rfa 2 2567
100 Rfa 2 1564
121 Rfa 2 914
119 Rfa 2 1147
105 Rfa 2 1109
101 Rfa 2 1653
98 Rfa 2 1339
41 Rfa 2 1774
32 Rfa 2 1258
rest
rik
tiv
41 K 1 3348
48 K 1 3191
64 K 1 3155
98 K 1 2839
51 K 1 3141
55 K 1 2961
62 K 1 2245
75 K 1 1938
70 K 1 1807
129 K 1 1692
54 K 2 3094
94 K 2 3549
35 K 2 2441
122 K 2 2490
76 K 2 3034
104 K 2 2741
80 K 2 1086
123 K 2 1643
118 K 2 2255
22 K 2 2812
46 K 2 2999
113 K 2 2377
64 K 2 2650
Anhang
283
Tabelle 125: Anzahl von C. perfringens (log10 KBE) im Kot der Sauen der Kontroll- und
Rohfasergruppe 1 (K1, Rfa 1) sowie der Kontroll- und Rohfasergruppe 2 (K2, Rfa 2) 24-48 h p.p. im Kot unmittelbar p.p. (max. 10 h p.p.)
Sau Gruppe C. perfringens (log10 KBE)
ad
lib
itu
m
59 Rfa 1 4,28
73 Rfa 1 2,65
74 Rfa 1 3,13
107 Rfa 1 1,70
78 Rfa 1 3,49
24 Rfa 1 3,22
128 Rfa 1 2,48
72 Rfa 1 3,19
95 Rfa 2 1,70
92 Rfa 2 0,00
81 Rfa 2 3,69
60 Rfa 2 3,06
100 Rfa 2 2,00
121 Rfa 2 2,40
119 Rfa 2 0,00
105 Rfa 2 3,43
101 Rfa 2 2,81
98 Rfa 2 1,70
41 Rfa 2 4,45
32 Rfa 2 0,00
rest
rik
tiv
51 K 1 4,24
55 K 1 3,90
62 K 1 4,02
75 K 1 3,32
70 K 1 5,04
129 K 1 6,10
54 K 2 3,78
94 K 2 3,33
35 K 2 4,56
122 K 2 2,90
76 K 2 4,18
104 K 2 6,95
80 K 2 5,28
123 K 2 5,32
118 K 2 3,48
22 K 2 6,46
46 K 2 4,35
113 K 2 5,98
64 K 2 6,04
Anhang
284
Tabelle 126: Anteil ausgewählter Bakterienordnungen (%) im Kot der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1, K2; Rfa 1; Rfa 2) zur Einstallung
Sau Gruppe Bacter-oidales
Clostri diales
Enterobacteriales
Lacto-bacillales RF 39 Spiro-
chaetales Verromicrobiales
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 16,8 26,1 0,00 37,2 3,15 4,56 0,00
46 Rfa 1 31,8 36,4 0,00 10,2 0,56 8,23 0,74
61 Rfa 1 48,1 30,1 0,00 14,1 0,52 2,91 0,00
63 Rfa 1 18,4 53,6 0,00 3,16 1,84 9,87 1,32
73 Rfa 1 21,2 55,2 0,00 6,61 2,20 7,64 1,76
107 Rfa 1 27,3 34,8 0,10 17,6 2,66 14,9 0,00
78 Rfa 1 22,4 36,7 0,00 28,4 0,49 10,3 0,15
24 Rfa 1 12,4 73,6 0,04 3,6 0,79 2,95 0,33
128 Rfa 1 27,1 33,7 0,00 30,4 2,23 2,55 0,00
72 Rfa 1 28,8 58,2 0,00 2,63 0,93 7,17 0,00
50 Rfa 2 9,48 60,4 0,00 18,1 1,04 2,64 2,86
95 Rfa 2 10,1 47,5 0,00 28,3 1,09 5,14 0,25
92 Rfa 2 10,6 70,1 0,00 6,16 1,51 2,76 0,00
60 Rfa 2 8,98 51,2 0,00 22,1 1,40 7,14 0,23
100 Rfa 2 37,8 43,6 0,00 2,07 2,43 9,35 0,71
121 Rfa 2 29,1 42,4 0,00 10,6 0,80 12,3 0,00
119 Rfa 2 18,1 46,5 0,00 13,2 0,73 9,26 0,73
105 Rfa 2 21,4 36,5 0,00 23,3 1,82 9,41 0,04
101 Rfa 2 16,7 62,6 0,00 3,77 3,42 2,35 0,00
98 Rfa 2 16,0 42,8 0,00 25,4 1,73 8,17 0,71
41 Rfa 2 15,5 49,2 0,04 23,0 1,92 3,23 0,00
32 Rfa 2 10,1 54,2 0,00 19,3 1,93 5,90 3,43
rest
rik
tiv
41 K 1 20,2 34,1 0,00 30,4 2,43 3,47 1,17
48 K 1 15,4 37,1 0,00 21,0 1,18 3,25 10,9
64 K 1 30,0 32,7 0,00 17,7 1,13 10,9 0,97
98 K 1 17,5 42,5 0,00 22,4 1,22 6,65 0,00
51 K 1 21,3 42,6 0,00 23,7 3,24 3,24 0,74
62 K 1 26,9 45,8 0,00 13,7 2,31 8,21 0,00
75 K 1 35,7 41,7 0,00 11,7 1,99 5,51 0,00
70 K 1 31,9 45,6 0,24 1,50 0,71 16,8 0,24
129 K 1 25,2 38,0 0,00 20,7 0,77 11,7 0,38
54 K 2 8,25 34,9 0,00 48,7 0,64 3,10 0,00
94 K 2 15,4 44,4 0,15 24,4 1,92 4,00 1,63
35 K 2 7,44 66,0 0,00 11,4 0,66 5,87 0,08
122 K 2 25,3 35,9 0,00 23,8 2,79 5,85 0,00
76 K 2 23,5 56,5 0,10 6,18 1,86 6,28 0,50
104 K 2 9,63 57,7 0,00 23,5 1,25 1,25 0,00
80 K 2 23,8 44,1 0,00 15,9 1,13 0,45 0,00
123 K 2 7,78 60,3 0,00 21,2 1,67 3,53 0,05
118 K 2 18,5 40,5 0,00 30,4 2,11 3,32 0,00
22 K 2 11,9 61,4 0,00 4,04 4,54 3,55 2,27
46 K 2 20,6 56,1 0,00 8,74 3,02 5,41 0,10
64 K 2 17,3 48,4 0,07 21,1 1,97 4,97 1,50
Anhang
285
Tabelle 127: Anteil ausgewählter Bakterienordnungen (%) im Kot der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1, K2; Rfa 1; Rfa 2) 24-48 h p.p.
Sau Gruppe Bacter-oidales
Clostri diales
Enterobacteriales
Lacto-bacillales RF 39 Spiro-
chaetales Verromicrobiales
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 20,3 41,5 4,17 13,40 0,74 14,18 2,45
46 Rfa 1 26,8 41,0 8,60 10,91 0,56 2,68 5,18
61 Rfa 1 32,9 44,0 2,54 6,79 0,20 9,65 1,68
63 Rfa 1 27,9 47,0 4,56 10,7 0,87 1,01 3,20
59 Rfa 1 33,8 38,7 5,30 9,65 0,74 1,39 5,58
73 Rfa 1 26,4 44,1 5,17 13,4 0,97 2,68 3,64
74 Rfa 1 26,8 42,2 3,71 13,3 1,78 6,27 2,30
107 Rfa 1 27,3 42,5 3,48 16,0 1,32 4,87 1,88
78 Rfa 1 32,1 44,6 4,00 7,29 0,35 5,78 2,91
24 Rfa 1 28,8 39,6 6,73 12,7 0,28 2,24 4,08
128 Rfa 1 27,7 55,4 2,32 5,49 0,47 4,59 1,18
72 Rfa 1 32,1 40,2 8,80 7,61 0,35 1,31 5,36
95 Rfa 2 23,6 40,5 2,59 23,7 1,43 2,33 1,61
92 Rfa 2 20,4 34,0 3,43 31,6 2,03 2,41 2,83
81 Rfa 2 26,2 37,3 1,97 27,7 1,00 1,99 1,28
60 Rfa 2 20,6 58,6 1,90 7,61 1,71 4,22 1,19
100 Rfa 2 26,1 37,4 3,36 23,9 0,22 2,50 3,24
121 Rfa 2 17,7 38,0 6,20 25,8 0,00 0,12 6,57
119 Rfa 2 39,0 30,1 6,73 13,7 0,14 2,68 3,26
105 Rfa 2 15,6 63,1 3,35 11,3 0,77 0,48 1,57
101 Rfa 2 22,6 38,6 3,13 25,4 1,70 3,51 1,94
98 Rfa 2 13,5 50,2 3,09 25,6 0,31 2,88 1,68
41 Rfa 2 24,3 52,9 5,79 6,18 0,60 2,14 2,29
32 Rfa 2 28,3 47,9 2,40 12,3 0,75 4,48 1,59
rest
rik
tiv
41 K 1 17,0 53,8 6,90 7,89 2,27 6,45 1,37
48 K 1 18,2 38,9 3,37 29,5 0,80 4,51 1,86
64 K 1 21,6 53,6 4,24 8,38 1,77 1,87 2,47
98 K 1 17,9 52,2 4,15 15,3 0,74 2,37 3,56
51 K 1 14,7 64,3 3,69 3,08 0,59 3,47 3,40
55 K 1 21,0 55,7 2,36 1,88 1,96 11,0 0,78
62 K 1 24,7 50,5 3,33 4,42 0,83 9,71 2,03
75 K 1 23,3 52,7 2,76 4,94 1,43 9,28 1,11
70 K 1 21,5 60,4 2,08 0,94 2,90 6,95 0,65
129 K 1 29,1 49,1 3,93 4,39 3,04 4,04 1,15
54 K 2 21,5 52,7 3,30 7,09 3,07 4,90 3,16
94 K 2 23,1 54,0 2,72 7,88 1,64 5,59 1,05
35 K 2 16,6 62,8 2,43 2,40 0,53 10,7 0,63
76 K 2 21,2 53,9 2,60 10,7 0,92 4,44 1,46
104 K 2 17,7 58,8 4,11 4,26 2,73 5,11 3,21
80 K 2 15,5 62,3 4,09 11,2 1,48 0,61 2,00
123 K 2 21,9 58,7 2,30 3,92 2,78 5,14 2,14
118 K 2 23,2 43,6 2,01 6,51 0,62 18,6 1,18
22 K 2 16,2 62,3 2,31 4,80 2,43 4,45 0,76
46 K 2 16,3 42,2 3,05 23,9 0,85 6,60 2,54
113 K 2 14,4 65,8 4,10 8,48 0,12 1,56 2,13
64 K 2 15,9 52,6 2,65 7,70 0,76 10,3 5,15
Anhang
286
Tabelle 128: Anteil ausgewählter Bakterienordnungen (%) im Kot der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1, K2; Rfa 1; Rfa 2) Tag 16 p.p.
Sau Gruppe Bacter-oidales
Clostri diales
Enterobacteriales
Lacto-bacillales RF 39 Spiro-
chaetales Verromicrobiales
ad
lib
itu
m
46 Rfa 1 18,0 62,3 0,00 1,14 1,58 6,92 0,00
61 Rfa 1 26,2 46,0 0,00 5,23 1,58 9,58 0,00
63 Rfa 1 16,3 37,2 0,00 33,4 3,67 3,67 0,00
59 Rfa 1 24,6 52,9 0,00 4,92 3,65 7,72 0,68
73 Rfa 1 30,8 51,1 0,00 0,00 1,87 13,1 0,00
74 Rfa 1 18,6 49,3 0,00 3,41 0,93 16,74 0,16
107 Rfa 1 23,3 26,8 0,05 30,4 2,41 6,79 5,26
78 Rfa 1 29,6 40,3 0,00 14,0 0,55 11,1 1,59
24 Rfa 1 4,27 87,0 0,00 0,35 0,46 2,31 0,00
128 Rfa 1 17,7 69,5 0,63 2,50 1,88 3,85 0,00
72 Rfa 1 20,0 53,7 0,00 12,9 0,44 5,63 2,27
50 Rfa 2 17,6 68,7 0,00 5,41 1,63 0,11 0,00
95 Rfa 2 12,9 43,4 0,00 2,75 2,22 33,5 0,00
92 Rfa 2 21,8 47,8 0,17 18,9 0,96 5,44 0,00
60 Rfa 2 6,94 77,9 0,13 4,91 1,22 2,89 0,10
100 Rfa 2 7,36 73,8 0,02 6,20 0,97 2,79 0,23
121 Rfa 2 7,54 71,7 0,00 4,18 1,03 7,68 0,00
119 Rfa 2 5,87 83,9 0,00 0,91 0,80 2,16 0,00
105 Rfa 2 21,2 64,7 0,00 2,22 1,72 3,53 0,00
101 Rfa 2 24,3 46,8 0,00 7,79 1,72 9,43 0,00
98 Rfa 2 17,8 50,5 0,00 14,7 2,04 6,48 2,77
41 Rfa 2 4,03 65,8 0,00 23,7 0,47 0,38 0,00
rest
rik
tiv
41 K 1 21,4 40,0 0,00 15,7 1,35 12,3 0,00
48 K 1 12,2 70,5 0,00 3,55 2,96 5,33 0,00
98 K 1 11,6 66,5 0,00 7,22 1,06 7,08 0,00
51 K 1 13,4 61,4 0,00 6,43 0,38 10,1 0,33
55 K 1 11,5 59,2 0,17 12,2 2,70 7,06 0,00
62 K 1 7,26 52,6 0,00 6,53 7,26 11,8 0,00
75 K 1 20,6 60,8 0,00 5,94 2,33 4,18 0,00
70 K 1 17,1 66,9 0,00 8,25 2,36 2,14 0,43
129 K 1 28,5 45,8 0,00 14,6 4,98 3,67 0,00
54 K 2 7,35 67,2 0,00 3,65 3,57 9,52 0,00
94 K 2 13,5 51,6 0,00 10,2 2,51 7,22 9,26
35 K 2 13,9 60,9 0,00 6,14 2,57 7,75 0,00
122 K 2 21,5 51,9 0,00 8,86 4,48 2,04 0,07
76 K 2 11,4 69,0 0,00 4,30 1,08 1,25 0,00
104 K 2 16,1 63,4 0,00 2,12 2,61 5,84 0,00
80 K 2 6,86 83,4 0,04 1,01 0,21 0,93 0,00
123 K 2 9,53 61,2 0,00 8,34 1,40 8,68 0,00
118 K 2 16,6 64,1 0,00 4,39 3,96 1,08 0,00
22 K 2 27,4 55,9 0,00 6,11 1,87 2,15 0,00
46 K 2 17,3 68,5 0,07 2,04 1,77 6,92 0,00
113 K 2 19,0 33,2 0,00 40,7 2,16 2,16 0,00
64 K 2 24,2 43,7 0,00 19,0 2,13 4,58 0,24
Anhang
287
Tabelle 129: Anteil ausgewählter Bakterienfamilien (%) im Kot der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1, K2; Rfa 1; Rfa 2) zur Einstallung
Sau Gruppe Christensenellaceae
Clostri-diaceae
Lachno-spiraceae
Lactoba-cillaceae
Prevo-tellaceae
Ruminococ caceae S24-7
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 0,98 7,60 3,37 37,2 3,80 8,47 1,95
46 Rfa 1 8,60 4,81 1,20 7,96 4,35 10,5 7,03
61 Rfa 1 6,46 2,63 3,03 14,1 6,22 10,3 29,6
63 Rfa 1 6,18 16,3 3,95 3,16 1,97 15,3 6,84
73 Rfa 1 3,60 8,74 7,20 3,97 5,36 23,1 4,78
107 Rfa 1 2,36 4,72 4,63 17,6 4,33 16,0 15,1
78 Rfa 1 0,39 3,53 5,41 28,4 4,45 23,4 7,13
24 Rfa 1 0,59 54,6 3,82 2,93 2,05 9,5 1,20
128 Rfa 1 1,67 2,86 6,87 30,4 7,99 16,6 6,73
72 Rfa 1 7,49 3,61 8,75 2,52 4,54 23,4 14,9
50 Rfa 2 2,08 10,2 8,63 17,7 1,16 28,3 2,79
95 Rfa 2 1,03 14,5 5,95 28,2 2,12 18,3 1,26
92 Rfa 2 3,27 34,9 6,41 6,16 4,40 13,3 3,39
60 Rfa 2 0,84 25,4 6,08 22,1 2,08 10,7 1,55
100 Rfa 2 3,30 4,11 6,47 2,07 6,50 16,4 15,1
121 Rfa 2 0,37 4,68 7,24 6,9 3,22 19,2 5,56
119 Rfa 2 1,83 14,7 4,87 11,0 2,07 16,4 2,92
105 Rfa 2 1,90 10,0 4,04 21,7 3,96 11,0 3,11
101 Rfa 2 3,35 19,7 5,20 3,77 5,56 25,2 4,42
98 Rfa 2 4,26 9,18 5,33 25,0 2,69 16,5 3,60
41 Rfa 2 3,41 14,4 5,75 22,7 3,66 15,8 5,13
32 Rfa 2 3,86 5,04 8,26 19,3 1,18 14,5 2,36
rest
rik
tiv
41 K 1 2,08 9,99 6,51 30,1 5,12 9,51 9,81
48 K 1 3,25 6,51 2,51 21,0 2,51 14,2 1,78
64 K 1 2,54 2,59 3,34 17,6 4,75 15,2 10,8
98 K 1 2,24 12,7 5,48 22,2 5,20 16,6 2,87
51 K 1 5,29 5,88 4,41 23,7 3,53 14,7 3,24
62 K 1 3,17 15,9 6,63 13,4 5,48 13,0 1,44
75 K 1 1,90 2,08 5,96 11,7 8,12 24,4 18,1
70 K 1 1,50 3,47 11,4 1,18 7,10 20,9 8,44
129 K 1 0,97 5,59 6,11 20,6 7,11 18,1 5,23
54 K 2 0,12 6,43 5,25 48,0 2,87 14,3 2,87
94 K 2 1,18 7,92 6,14 24,4 3,92 15,2 4,29
35 K 2 0,08 39,5 8,10 11,3 1,49 5,04 0,50
122 K 2 0,56 2,92 3,90 22,1 4,87 16,0 5,85
76 K 2 1,01 15,9 10,0 5,93 6,78 18,8 6,98
104 K 2 1,99 39,3 2,08 19,2 1,04 6,93 0,17
80 K 2 0,00 7,23 12,5 6,70 9,26 16,6 1,05
123 K 2 0,59 36,5 3,21 21,2 4,61 12,9 0,05
118 K 2 1,55 6,91 4,63 29,9 3,70 21,0 6,63
22 K 2 1,58 13,5 8,68 3,45 0,69 25,2 1,58
46 K 2 1,04 7,49 7,91 8,74 5,31 28,9 2,81
64 K 2 2,01 8,42 7,01 17,8 5,03 24,0 6,55
Anhang
288
Tabelle 130: Anteil ausgewählter Bakterienfamilien (%) im Kot der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1, K2; Rfa 1; Rfa 2) 24-48 h p.p.
Sau Gruppe Christensenellaceae
Clostri-diaceae
Lachno-spiraceae
Lactoba-cillaceae
Prevo-tellaceae
Ruminococ caceae S24-7
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 1,63 1,27 14,3 13,2 8,13 15,3 6,01
46 Rfa 1 2,71 5,02 15,5 10,3 5,65 9,58 8,84
61 Rfa 1 1,10 12,1 9,38 6,5 13,3 14,5 9,86
63 Rfa 1 0,72 12,9 16,3 10,4 10,4 8,43 8,09
59 Rfa 1 1,37 1,32 14,0 9,34 8,43 12,8 12,6
73 Rfa 1 3,79 4,20 12,5 13,1 7,14 14,4 7,55
74 Rfa 1 3,08 1,72 14,0 12,7 9,09 14,8 10,1
107 Rfa 1 2,99 1,11 12,8 15,1 8,55 16,0 10,6
78 Rfa 1 1,41 2,78 14,8 7,06 13,3 12,5 10,4
128 Rfa 1 12,5 1,37 9,32 5,44 6,11 21,1 11,1
72 Rfa 1 0,42 1,17 20,0 7,07 5,50 10,8 15,6
24 Rfa 1 1,04 2,09 13,7 12,5 4,49 10,6 8,85
50 Rfa 2 2,65 1,26 5,39 41,8 3,20 12,0 7,63
95 Rfa 2 4,24 1,46 13,6 23,5 5,11 12,3 9,13
92 Rfa 2 1,13 2,76 11,8 31,4 2,76 12,2 8,24
81 Rfa 2 3,34 1,70 10,1 27,5 4,10 16,1 14,7
60 Rfa 2 12,3 3,89 9,44 7,49 4,27 23,1 5,92
100 Rfa 2 3,53 0,97 15,3 23,7 5,38 10,6 9,56
121 Rfa 2 0,12 2,23 14,9 25,7 5,95 12,5 6,20
119 Rfa 2 1,45 0,94 10,1 13,7 2,97 13,5 18,1
105 Rfa 2 1,77 17,3 22,8 10,9 6,45 11,6 3,23
101 Rfa 2 4,03 2,01 8,82 25,1 3,92 14,5 7,88
98 Rfa 2 0,74 1,86 12,8 25,0 4,59 11,6 3,70
41 Rfa 2 2,49 6,38 8,73 5,24 9,88 18,8 7,43
32 Rfa 2 0,45 5,42 14,9 12,1 16,5 19,0 5,91
rest
rik
tiv
41 K 1 7,22 5,33 6,71 6,26 3,74 24,1 5,43
48 K 1 6,43 4,17 7,76 27,9 2,88 12,9 3,93
64 K 1 11,5 5,67 7,14 5,84 2,87 20,3 3,20
98 K 1 2,96 12,3 15,2 14,7 2,96 11,0 5,63
51 K 1 3,29 2,47 10,1 2,83 3,35 35,6 4,01
55 K 1 12,1 2,68 8,72 1,15 6,29 22,8 2,53
62 K 1 4,35 4,17 5,80 3,80 10,2 25,2 5,35
75 K 1 6,89 2,60 6,18 3,80 8,65 27,4 5,21
70 K 1 4,33 4,13 6,91 0,90 6,70 31,3 3,35
129 K 1 3,89 4,04 8,20 3,73 9,16 22,4 6,93
54 K 2 9,67 1,52 12,0 6,95 5,30 22,0 4,99
94 K 2 5,34 6,70 7,08 6,88 3,90 23,2 8,90
35 K 2 6,50 3,74 6,77 2,10 4,98 36,5 3,06
76 K 2 9,12 3,81 5,47 10,1 3,28 24,5 2,80
104 K 2 7,22 1,80 8,78 3,37 4,11 28,7 6,93
80 K 2 13,7 1,48 11,4 11,1 3,31 25,6 6,79
123 K 2 5,16 5,16 5,73 2,76 7,05 31,5 5,14
118 K 2 1,93 3,24 6,87 6,15 8,92 25,7 4,47
22 K 2 12,9 4,66 7,44 4,69 1,42 22,5 1,57
46 K 2 2,20 3,16 7,34 23,3 3,89 20,9 5,25
113 K 2 6,88 2,05 6,10 8,19 4,30 35,6 3,65
64 K 2 5,40 3,06 12,3 7,34 4,38 17,9 3,92
Anhang
289
Tabelle 131: Anteil ausgewählter Bakterienfamilien (%) im Kot der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1, K2; Rfa 1; Rfa 2) Tag 16 p.p.
Sau Gruppe Christensenellaceae
Clostri-diaceae
Lachno-spiraceae
Lactoba-cillaceae
Prevo-tellaceae
Ruminococ caceae S24-7
ad
lib
itu
m
46 Rfa 1 6,66 18,5 4,38 1,14 2,98 18,5 7,19
61 Rfa 1 4,24 14,1 4,34 5,23 3,46 13,8 14,2
63 Rfa 1 1,16 8,01 5,31 33,2 5,21 14,2 2,03
59 Rfa 1 9,00 4,58 5,18 4,75 4,16 27,2 11,7
73 Rfa 1 5,78 5,04 8,77 0,00 10,63 21,3 4,85
74 Rfa 1 2,95 14,1 7,60 2,95 5,27 15,5 4,03
107 Rfa 1 1,64 1,42 3,89 30,4 5,53 12,8 8,27
78 Rfa 1 1,46 12,3 4,69 14,0 3,73 13,7 14,3
24 Rfa 1 0,12 66,0 3,11 0,35 2,65 9,69 0,23
128 Rfa 1 3,65 15,6 6,46 2,50 2,92 18,5 9,17
72 Rfa 1 2,93 7,10 10,8 12,9 2,56 21,9 2,85
50 Rfa 2 1,13 38,4 4,03 5,41 4,90 17,8 1,27
95 Rfa 2 3,38 18,1 4,65 2,75 1,69 10,9 0,84
92 Rfa 2 1,98 1,87 6,35 18,9 4,31 28,3 11,3
60 Rfa 2 4,03 49,6 4,89 4,91 1,14 9,75 1,85
100 Rfa 2 1,54 29,0 4,87 5,98 1,87 29,3 0,36
121 Rfa 2 0,27 47,9 6,58 4,18 1,51 8,77 1,17
119 Rfa 2 2,20 62,2 3,33 0,91 2,27 10,2 0,64
105 Rfa 2 4,39 31,4 4,39 2,22 2,49 14,7 6,52
101 Rfa 2 1,31 4,84 10,5 6,97 6,07 19,5 10,7
98 Rfa 2 3,71 13,7 4,75 14,7 3,34 18,8 3,50
41 Rfa 2 1,02 44,1 2,54 23,7 2,93 12,5 0,38
rest
rik
tiv
41 K 1 3,34 14,8 4,19 15,7 3,04 9,33 7,73
48 K 1 6,81 32,3 2,17 3,55 2,76 20,8 1,68
98 K 1 1,36 36,2 3,45 7,22 4,19 18,9 0,83
51 K 1 1,78 30,6 5,68 6,43 3,76 15,3 2,40
55 K 1 1,48 16,8 5,58 12,2 2,79 23,5 2,44
62 K 1 3,27 17,4 4,54 6,53 1,09 19,6 1,27
75 K 1 1,69 20,0 3,29 5,94 0,72 24,3 12,7
70 K 1 5,25 12,6 10,6 8,25 3,97 27,4 6,75
129 K 1 6,66 12,6 8,09 14,6 2,24 11,1 17,9
54 K 2 0,45 27,7 5,34 3,65 2,55 21,1 2,34
94 K 2 4,71 21,0 5,34 10,2 3,61 8,48 1,41
35 K 2 1,43 28,8 3,52 6,14 5,33 16,5 0,95
122 K 2 2,59 14,8 3,75 8,86 1,28 17,0 9,18
76 K 2 1,73 41,0 2,10 4,23 3,85 14,5 2,30
104 K 2 4,78 25,2 2,74 2,12 1,39 20,6 1,82
80 K 2 0,29 51,5 6,02 0,42 4,59 7,36 0,72
123 K 2 2,15 28,5 2,85 8,34 2,67 17,8 1,11
118 K 2 1,57 21,2 7,37 4,39 4,39 24,5 1,41
22 K 2 0,55 20,8 6,16 6,05 6,27 22,2 2,37
46 K 2 8,42 20,8 6,04 1,90 2,04 21,4 8,42
113 K 2 2,10 2,88 1,92 40,7 1,44 20,2 9,00
64 K 2 2,55 19,2 2,60 18,9 1,56 12,2 12,1
Anhang
290
Speicheluntersuchung 9.9
Tabelle 132: Cortisolkonzentration (ng/ml) im Speichel der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1
und 2 (K1, K2; Rfa 1; Rfa 2) zur Einstallung sowie zur Geburt
Sau Gruppe Tag- 7 Tag -2 Tag 1 Tag 3
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 1,52 0,93 4,25 4,57
46 Rfa 1 2,81 2,22 1,86 2,18
61 Rfa 1 2,16 0,53 4,17 2,91
63 Rfa 1 2,57 2,63 11,1 2,69
59 Rfa 1 1,80 1,24 3,81 2,17
73 Rfa 1 2,18 1,7 6,04 3,32
74 Rfa 1 1,38 1,55 14,2 1,79
107 Rfa 1 2,78 1,52 31,2 1,85
24 Rfa 1 0,82 1,03 2,24 2,58
72 Rfa 1 1,80 0,38 1,78 1,41
78 Rfa 1 4,18 1,91 7,57 7,86
128 Rfa 1 0,72 1,87 − 5,71
92 Rfa 2 1,92 1,67 9,96 2,63
95 Rfa 2 0,99 1,32 3,47 2,85
60 Rfa 2 2,82 0,68 4,24 45,9
81 Rfa 2 1,62 1,56 4,73 2,82
100 Rfa 2 2,02 0,39 3,79 3,63
101 Rfa 2 3,27 3,56 15,8 2,51
105 Rfa 2 2,05 0,92 0,82 3,54
119 Rfa 2 2,16 2,95 2,72 2,67
121 Rfa 2 2,52 1,28 2,89 8,25
32 Rfa 2 1,05 0,83 2,64 1,65
41 Rfa 2 2,16 1,09 12,7 4,91
98 Rfa 2 1,61 1,96 5,82 2,13
rest
rik
tiv
41 K 1 1,94 0,53 7,68 13,1
48 K 1 1,35 1,18 2,09 12,1
64 K 1 2,03 0,99 2,47 28,2
98 K 1 2,06 2,75 2,24 3,11
54 K 2 3,69 2,12 4,9 10,3
94 K 2 0,95 4,3 24,3 62,2
51 K 1 1,44 1,02 7,11 2,54
55 K 1 1,78 0,83 1,72 11,8
62 K 1 2,70 0,93 5,80 7,55
75 K 1 1,19 0,86 11,3 3,49
35 K 2 1,89 1,58 5,16 5,16
76 K 2 1,39 1,79 5,69 10,4
122 K 2 3,16 5,31 3,06 3,53
80 K 2 2,00 4,93 6,33 4,47
104 K 2 1,94 0,41 5,21 2,49
118 K 2 2,41 1,2 2,2 4,09
123 K 2 1,93 1,65 3,17 9,83
70 K 1 2,43 − 20,9 5,64
129 K 1 1,11 1,12 2,95 15,4
22 K 2 5,58 1,36 2,03 24,5
46 K 2 4,19 1,65 6,06 4,95
64 K 2 1,83 1,92 7,25 2,43
113 K 2 1,92 1,25 5,95 5,58
Anhang
291
Blutparameter der Sauen 9.10
Tabelle 133: Konzentrationen von CRP (nur die messbaren Werte angegeben; mg/l) und D-Laktat (mmol/l) der Sauen der Kontroll- und Rohfasergruppen 1 und 2 (K1, K2; Rfa 1; Rfa 2 zur Einstallung sowie zur Geburt
Sau Gruppe Tag- 7 24 h p.p. 72 h p.p.
CRP D-Laktat CRP D-Laktat CRP D-Laktat
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 18,1 0,02 234 0,01 131 0,01
46 Rfa 1 93,4 0,02 − 0,05 94 0,05
61 Rfa 1 35,5 0,03 − 0,06 − 0,03
63 Rfa 1 − 0,10 − 0,04 − 0,16
59 Rfa 1 31,8 0,01 1043 0,11 217 0,00
73 Rfa 1 137 0,01 − 0,03 192 0,02
74 Rfa 1 37,2 0,06 1000 0,03 896 0,05
107 Rfa 1 − 0,25 − 0,10 − 0,08
24 Rfa 1 15,3 0,04 205 0,10 134 0,01
72 Rfa 1 18,5 0,09 643 0,01 305 0,03
78 Rfa 1 16,8 0,10 154 0,00 1084 0,03
128 Rfa 1 444 0,01 − 0,11 − 0,02
92 Rfa 2 300 0,01 − 0,03 − 0,03
95 Rfa 2 52,9 0,05 − 0,06 258 0,03
60 Rfa 2 69,8 0,20 − 0,10 795 0,11
81 Rfa 2 50,6 0,16 − 0,01 742 0,05
100 Rfa 2 65,3 0,00 − 0,10 − 0,00
101 Rfa 2 206 0,04 1154 0,04 1003 0,04
105 Rfa 2 − 0,06 − 0,02 588 0,00
119 Rfa 2 265 0,01 − 0,05 − 0,03
121 Rfa 2 − 0,02 − 0,08 976 0,01
32 Rfa 2 26,2 0,00 77 0,00 56 0,00
41 Rfa 2 29,2 0,00 214 0,00 519 0,02
98 Rfa 2 165 0,00 − 0,00 661 0,08
rest
rik
tiv
41 K 1 40,8 0,02 − 0,03 513 0,17
48 K 1 109 0,15 − 0,04 310 0,10
64 K 1 76,4 0,11 − 221 0,10
98 K 1 185 0,08 − 0,10 − 0,10
51 K 1 − 0,01 510 0,02 211 0,02
55 K 1 18,9 0,01 − 0,00 1027 0,00
62 K 1 143 0,05 − 0,08 459 0,09
75 K 1 537 0,09 − 0,05 238 0,00
70 K 1 157 0,03 − 0,05 424 0,02
129 K 1 55,5 0,27 − 0,11 − 0,04
54 K 2 53,4 0,00 − 0,06 − 0,03
94 K 2 575 0,00 − 0,09 − 0,00
35 K 2 64,6 0,13 427 0,02 594 0,04
76 K 2 21,9 0,04 − 0,00 439 0,09
122 K 2 − 0,03 − 0,11 498 0,00
Anhang
292
Fortsetzung Tabelle 133
Sau Gruppe
Tag- 7 24 h p.p. 72 h p.p.
CRP D-Laktat CRP D-Laktat CRP D-Laktat
80 K 2 216 0,00 − 0,11 − 0,03
104 K 2 − 0,04 947 0,10 − 0,24
118 K 2 − 0,00 746 0,02 − 0,04
123 K 2 31,5 0,00 − 0,03 − 0,02
22 K 2 19,9 0,00 350 0,02 − 0,00
46 K 2 17,5 0,00 485 0,05 708 0,02
64 K 2 40,6 0,00 442 0,02 746 0,04
113 K 2 48,8 0,00 251 0,04 126 0,01
Blutparameter der Ferkel 9.11
Tabelle 134: Blutparameter der Ferkel 48 h p.n.: Immunokrit (IKT); Protein (g/l), Albumin (g/l) und γ-
Globulin (g/l) und Körpermasse (KM; kg))
Sau Gruppe Ferkel KM Überlebt IKT Protein Albumin γ-
Globulin
32 Rfa 1 9123 1,64 ja 0,13 37,5 8,40 9,40
32 Rfa 1 9126 1,54 ja 0,17 45,9 8,50 22,1
32 Rfa 1 9134 1,16 ja 0,20 52,2 8,90 30,6
32 Rfa 1 9135 1,14 ja 0,23 56,9 9,30 28,7
46 Rfa 1 9140 0,79 ja 0,23 69,8 11,8 34,1
46 Rfa 1 9144 1,11 ja 0,18 76,6 16,3 22,7
46 Rfa 1 9148 1,13 ja 0,19 50,6 10,0 19,7
46 Rfa 1 9151 0,74 nein 0,13 37,8 7,40 8,90
61 Rfa 1 9109 1,63 ja 0,25 70,2 11,9 40,3
61 Rfa 1 9117 1,57 ja 0,27 79,2 12,6 54,5
61 Rfa 1 9119 1,10 ja 0,23 61,6 9,5 35,9
61 Rfa 1 9122 0,96 nein 0,22 58,9 8,8 30,5
63 Rfa 1 9093 1,83 nein 0,05 26,6 7,00 6,90
63 Rfa 1 9098 1,90 ja 0,18 45,1 6,80 22,7
63 Rfa 1 9103 1,04 ja 0,18 49,3 7,80 26,4
63 Rfa 1 9104 0,82 nein 0,13 34,1 5,80 11,7
59 Rfa 1 9274 1,79 ja 0,22 70,1 11,5 41,2
59 Rfa 1 9276 1,24 ja 0,28 100 16,9 62,7
59 Rfa 1 9279 1,74 ja 0,22 69,6 12,1 34,8
59 Rfa 1 9280 1,03 ja 0,23 77,8 13,4 42,2
73 Rfa 1 9601 1,89 ja 0,19 57,7 12,6 20,8
73 Rfa 1 9603 1,83 ja 0,17 50,4 10,0 17,3
73 Rfa 1 9608 1,08 ja 0,15 37,2 7,00 13,2
73 Rfa 1 9610 1,01 ja 0,11 29,1 5,20 5,40
74 Rfa 1 9288 1,72 ja 0,22 51,9 8,80 23,0
74 Rfa 1 9294 1,67 ja 0,22 60,0 10,9 30,0
74 Rfa 1 9296 1,15 ja 0,14 36,9 6,3 12,8
74 Rfa 1 9297 1,12 nein 0,18 54,1 9,70 23,2
107 Rfa 1 9628 1,78 ja 0,18 54,3 10,0 22,2
107 Rfa 1 9629 1,08 ja 0,09 31,7 7,20 7,40
107 Rfa 1 9631 1,65 ja 0,20 58,9 11,6 24,8
107 Rfa 1 9633 1,11 ja 0,14 36,9 7,00 10,8
Anhang
293
Fortsetzung Tabelle 134
Sau Gruppe Ferkel KM Überlebt IKT Protein Albumin γ-
Globulin
24 Rfa 1 10086 1,96 ja 0,23 57,8 8,60 31,8
24 Rfa 1 10088 1,51 ja 0,24 66,0 10,9 38,0
24 Rfa 1 10093 1,17 ja 0,23 62,9 9,20 35,5
24 Rfa 1 10097 1,09 ja 0,20 52,2 8,40 25,2
24 Rfa 1 10087 1,06 ja 0,16 44,2 9,30 13,1
72 Rfa 1 10100 2,06 ja 0,24 72,3 13,6 33,1
72 Rfa 1 10101 1,51 ja 0,24 60,7 10,8 30,8
72 Rfa 1 10102 1,16 ja 0,21 77,4 14,8 38,1
72 Rfa 1 10103 1,72 ja 0,18 58,6 10,2 27,1
78 Rfa 1 10076 1,88 ja 0,22 62,7 10,5 29,9
78 Rfa 1 10079 1,35 ja 0,21 56,1 8,70 27,4
78 Rfa 1 10082 1,87 ja 0,20 51,3 8,10 21,9
78 Rfa 1 10084 1,27 ja 0,23 59,1 9,10 35,0
128 Rfa 1 10107 1,02 ja 0,22 57,9 9,50 27,0
128 Rfa 1 10108 1,48 ja 0,18 52,6 9,70 24,0
128 Rfa 1 10109 1,07 ja 0,17 42,5 8,00 13,3
128 Rfa 1 10111 1,44 ja 0,17 44,8 9,1 15,9
92 Rfa 2 9437 0,97 nein 0,18 48,3 7,1 24,7
92 Rfa 2 9440 1,53 ja 0,25 75,5 11,00 38,7
92 Rfa 2 9445 1,00 nein 0,20 58,3 8,00 27,1
92 Rfa 2 9452 1,65 ja 0,19 54,5 8,10 22,8
95 Rfa 2 9470 1,80 ja 0,21 52,1 7,40 28,2
95 Rfa 2 9474 1,17 ja 0,20 53,3 8,70 23,1
95 Rfa 2 9476 1,17 ja 0,21 59,5 8,10 26,2
95 Rfa 2 9477 1,67 ja 0,17 44,7 7,60 18,4
60 Rfa 2 9747 0,96 ja 0,24 57,2 9,40 23,0
60 Rfa 2 9750 1,00 ja 0,23 55,7 9,10 25,5
60 Rfa 2 9751 1,57 ja 0,22 58,3 10,1 25,0
60 Rfa 2 9753 1,51 ja 0,24 63,0 10,8 26,0
81 Rfa 2 9700 1,03 ja 0,25 58,7 8,30 30,7
81 Rfa 2 9702 1,72 ja 0,24 67,0 9,60 35,8
81 Rfa 2 9703 1,64 ja 0,27 73,9 11,9 39,8
81 Rfa 2 9708 1,01 ja 0,21 57,4 7,50 30,2
100 Rfa 2 9717 1,70 ja 0,25 68,7 13,2 34,3
100 Rfa 2 9719 1,63 ja 0,26 61,1 9,60 29,1
100 Rfa 2 9720 1,00 ja 0,18 70,0 10,7 37,9
100 Rfa 2 9727 1,09 ja 0,29 74,0 10,6 39,8
101 Rfa 2 9847 1,84 ja 0,25 64,0 10,4 28,4
101 Rfa 2 9854 1,80 ja 0,22 58,3 11,2 27,6
101 Rfa 2 9862 1,10 ja 0,26 56,9 8,20 26,4
101 Rfa 2 9864 1,05 ja 0,19 37,5 5,80 11,9
105 Rfa 2 9908 1,79 ja 0,28 95,8 15,2 45,8
105 Rfa 2 9912 1,12 ja 0,21 62,2 10,1 28,2
105 Rfa 2 9913 1,19 ja 0,27 82,1 12,6 44,3
105 Rfa 2 9916 1,74 ja 0,24 71,2 12,1 31,1
119 Rfa 2 9892 1,61 ja 0,22 65,3 10,7 30,8
119 Rfa 2 9893 1,57 ja 0,23 63,3 11,4 29,9
119 Rfa 2 9894 0,91 ja 0,24 97,6 17,8 44,6
Anhang
294
Fortsetzung Tabelle 134
Sau Gruppe Ferkel KM Überlebt IKT Protein Albumin γ-
Globulin
119 Rfa 2 9900 1,10 ja 0,24 56,3 9,5 25,7
121 Rfa 2 9969 2,00 ja 0,20 65,1 15,4 25,0
121 Rfa 2 9970 1,78 ja 0,22 77,7 17,9 27,7
121 Rfa 2 9973 1,06 nein 0,15 61,5 13,8 20,8
121 Rfa 2 9981 0,98 ja 0,15 63,4 12,2 22,6
32 Rfa 2 10175 1,55 ja 0,18 49,0 8,00 21,2
32 Rfa 2 10179 1,55 ja 0,18 55,4 10,1 24,8
32 Rfa 2 10181 0,98 ja 0,20 56,7 9,60 25,9
32 Rfa 2 10182 1,16 ja 0,20 55,9 8,00 25,7
41 Rfa 2 10185 1,10 ja 0,19 45,4 7,30 19,2
41 Rfa 2 10189 1,10 ja 0,16 39,5 6,10 15,7
41 Rfa 2 10196 1,48 ja 0,20 53,1 8,30 25,3
41 Rfa 2 10200 1,37 ja 0,19 55,1 8,80 24,5
98 Rfa 2 10201 1,04 ja 0,18 59,7 12,0 20,4
98 Rfa 2 10203 1,70 ja 0,18 53,3 12,0 19,3
98 Rfa 2 10204 1,61 ja 0,19 65,1 14,7 24,3
98 Rfa 2 10215 1,10 nein 0,22 68,7 13,4 24,3
41 K 1 9173 1,59 ja 0,10 34,4 8,00 9,00
41 K 1 9174 1,85 ja 0,17 44,9 6,80 21,3
41 K 1 9176 1,00 ja 0,17 42,8 6,90 18,7
41 K 1 9182 0,99 ja 0,16 40,4 7,20 17,7
48 K 1 9076 1,78 ja 0,25 66,5 11,2 38,0
48 K 1 9083 1,47 ja 0,26 72,3 11,0 42,1
48 K 1 9086 1,78 ja 0,24 63,0 9,70 35,0
48 K 1 9087 1,34 ja 0,22 54,6 7,90 34,2
64 K 1 9159 1,14 ja 0,25 86,1 18,8 54,8
64 K 1 9166 1,92 ja 0,24 69,3 16,6 40,8
64 K 1 9167 1,20 ja 0,24 76,1 15,3 35,8
64 K 1 9169 1,95 ja 0,23 80,2 19,1 45,3
98 K 1 9064 1,20 ja 0,20 67,6 15,1 31,2
98 K 1 9070 1,42 ja 0,20 72,1 13,5 35,8
98 K 1 9071 1,58 ja 0,18 60,9 14,5 24,7
98 K 1 9075 1,90 ja 0,20 68,9 14,5 28,7
51 K 1 9557 1,23 ja 0,11 31,6 5,90 7,60
51 K 1 9558 1,87 ja 0,21 61,2 11,1 29,4
51 K 1 9564 1,80 ja 0,19 64,2 13,1 33,6
51 K 1 9567 1,26 ja 0,19 60,0 10,7 26,3
62 K 1 9616 1,88 ja 0,11 33,2 6,90 5,60
62 K 1 9617 1,58 ja 0,24 70,2 12,3 34,3
62 K 1 9619 1,51 ja 0,25 64,9 10,1 34,2
62 K 1 9620 1,88 ja 0,20 54,6 9,80 19,2
70 K 1 10052 1,65 ja 0,25 77,5 12,7 40,6
70 K 1 10058 1,72 ja 0,20 65,6 11,4 30,6
70 K 1 10060 1,10 ja 0,17 51,2 9,5 12,9
70 K 1 10065 1,07 nein 0,17 47,7 6,6 23,4
54 K 2 9416 1,63 ja 0,18 43,8 7,20 19,1
54 K 2 9417 0,95 nein 0,20 44,8 7,10 18,4
54 K 2 9425 1,55 ja 0,20 54,0 10,1 27,4
Anhang
295
Fortsetzung Tabelle 134
Sau Gruppe Ferkel KM Überlebt IKT Protein Albumin γ-
Globulin
54 K 2 9429 1,04 nein 0,16 36,7 6,40 15,2
94 K 2 9482 1,51 ja 0,20 53,6 10,1 25,7
94 K 2 9483 1,80 ja 0,19 48,6 9,80 20,5
94 K 2 9487 1,07 ja 0,10 45,1 7,60 20,1
94 K 2 9489 1,75 ja 0,23 68,7 13,6 30,6
35 K 2 9767 1,86 ja 0,23 58,1 10,9 22,8
35 K 2 9768 1,78 ja 0,18 71,1 11,2 37,2
35 K 2 9774 1,17 ja 0,26 80,1 11,6 41,1
35 K 2 9782 1,18 ja 0,18 48,1 9,10 16,7
76 K 2 9733 1,02 ja 0,21 54,4 8,30 27,6
76 K 2 9741 1,70 ja 0,18 50,8 10,1 19,5
76 K 2 9745 1,05 ja 0,22 60,3 9,00 32,0
76 K 2 9746 1,62 ja 0,22 68,0 10,2 36,4
122 K 2 9786 1,88 ja 0,24 65,5 13,6 28,4
122 K 2 9788 1,87 ja 0,27 79,3 18,1 30,6
122 K 2 9790 1,38 ja 0,24 84,1 16,2 36,3
122 K 2 9792 1,46 ja 0,25 81,4 16,4 31,9
80 K 2 9867 1,14 ja 0,21 54,5 9,00 25,6
80 K 2 9870 1,73 ja 0,23 64,6 11,9 28,7
80 K 2 9876 1,78 ja 0,20 56,7 11,2 21,8
80 K 2 9877 1,11 ja 0,21 51,9 9,60 21,7
104 K 2 9958 1,23 ja 0,22 62,7 10,7 30,7
104 K 2 9963 1,20 ja 0,25 62,9 10,2 29,9
104 K 2 9965 1,77 ja 0,25 55,3 9,20 25,9
104 K 2 9967 1,76 ja 0,23 54,0 9,00 24,6
118 K 2 9918 1,16 ja 0,24 72,7 11,7 35,8
118 K 2 9919 1,46 ja 0,22 68,9 11,7 33,5
118 K 2 9925 1,23 ja 0,26 82,5 12,5 45,2
118 K 2 9927 1,47 ja 0,27 81,9 12,2 46,0
123 K 2 9932 1,56 ja 0,24 82,7 12,2 42,9
123 K 2 9939 1,53 ja 0,24 58,2 7,80 27,0
123 K 2 9945 1,07 ja 0,22 66,5 8,50 33,0
123 K 2 9950 1,02 ja 0,20 56,0 9,20 22,7
22 K 2 10122 2,44 ja 0,22 56,6 11,7 23,4
22 K 2 10124 2,62 ja 0,25 70,6 13,3 29,7
22 K 2 10125 1,40 ja 0,20 69,7 12,9 26,3
22 K 2 10128 1,45 ja 0,24 105 19,2 47,2
46 K 2 10129 1,48 ja 0,20 72,2 13,5 28,5
46 K 2 10132 1,41 ja 0,19 60,5 10,3 26,0
46 K 2 10134 1,64 ja 0,22 65,8 13,6 28,9
46 K 2 10135 1,59 ja 0,20 55,9 11,3 23,0
64 K 2 10158 2,10 ja 0,21 75,4 14,9 31,4
64 K 2 10160 2,26 ja 0,24 90,9 19,7 39,2
64 K 2 10163 1,27 ja 0,23 86,4 16,7 35,6
64 K 2 10166 1,26 ja 0,24 82,3 16,5 36,0
113 K 2 10138 1,74 ja 0,23 64,2 13,7 25,6
113 K 2 10141 1,56 ja 0,22 63,5 11,2 29,8
113 K 2 10147 1,15 ja 0,18 55,0 10,4 23,4
Anhang
296
Fortsetzung Tabelle 134
Sau Gruppe Ferkel KM Überlebt IKT Protein Albumin γ-
Globulin
113 K 2 10150 1,14 ja 0,23 63,6 10,4 29,8
Tabelle 135: Immunokrit (IKT) sowie die Körpermasse (KM; kg) der Ferkel zum Absetzen
Sau Gruppe Ferkel KM IKT
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 9123 12,5 0,10
32 Rfa 1 9126 12,6 0,09
32 Rfa 1 9134 4,95 0,12
32 Rfa 1 9135 11,9 0,10
46 Rfa 1 9140 9,00 0,10
46 Rfa 1 9144 12,3 0,09
46 Rfa 1 9148 11,4 0,19
46 Rfa 1 9151 8,82 0,07
61 Rfa 1 9109 11,5 0,13
61 Rfa 1 9117 11,1 0,11
61 Rfa 1 9119 8,03 0,12
61 Rfa 1 9122 6,73 0,15
63 Rfa 1 9093 15,6 0,11
63 Rfa 1 9098 11,6 0,11
63 Rfa 1 9103 10,8 0,11
63 Rfa 1 9104 9,78 0,08
59 Rfa 1 9274 14,7 0,13
59 Rfa 1 9276 9,30 0,13
59 Rfa 1 9279 13,7 0,14
59 Rfa 1 9280 9,43 0,11
73 Rfa 1 9601 8,9 0,11
73 Rfa 1 9603 12,5 0,09
73 Rfa 1 9608 5,83 0,09
73 Rfa 1 9610 6,39 0,10
74 Rfa 1 9288 9,27 0,12
74 Rfa 1 9294 9,33 0,13
74 Rfa 1 9296 9,22 0,10
74 Rfa 1 9297 10,1 0,11
107 Rfa 1 9628 10,5 0,14
107 Rfa 1 9629 7,51 0,11
107 Rfa 1 9631 8,60 0,12
107 Rfa 1 9633 7,59 0,10
24 Rfa 1 10086 15,3 0,12
24 Rfa 1 10088 11,0 0,11
24 Rfa 1 10093 10,0 0,11
24 Rfa 1 10097 7,44 0,10
24 Rfa 1 10087 10,1 0,10
72 Rfa 1 10100 14,9 0,10
72 Rfa 1 10101 11,6 0,10
72 Rfa 1 10102 11,6 0,12
72 Rfa 1 10103 11,8 0,12
78 Rfa 1 10076 16,2 0,09
78 Rfa 1 10079 14,5 0,10
Anhang
297
Fortsetzung Tabelle 135
Sau Gruppe Ferkel KM IKT ad
lib
itu
m
78 Rfa 1 10082 16,9 0,09
78 Rfa 1 10084 8,8 0,16
78 Rfa 1 10067 12,8 0,11
78 Rfa 1 10075 10,0 0,12
78 Rfa 1 10074 13,7 0,10
92 Rfa 2 9437 9,48 0,11
92 Rfa 2 9440 13,3 0,11
92 Rfa 2 9445 7,62 0,12
92 Rfa 2 9452 8,98 0,10
95 Rfa 2 9470 10,2 0,13
95 Rfa 2 9474 7,04 0,11
95 Rfa 2 9476 7,03 0,10
95 Rfa 2 9477 10,5 0,10
60 Rfa 2 9747 7,85 0,09
60 Rfa 2 9750 8,20 0,10
60 Rfa 2 9751 10,5 0,10
60 Rfa 2 9753 14,3 0,10
81 Rfa 2 9700 7,79 0,10
81 Rfa 2 9702 14,0 0,15
81 Rfa 2 9703 10,4 0,12
81 Rfa 2 9708 9,34 0,10
100 Rfa 2 9717 14,1 0,18
100 Rfa 2 9719 15,0 0,11
100 Rfa 2 9720 10,1 0,04
100 Rfa 2 9727 10,6 0,14
101 Rfa 2 9847 10,2 0,12
101 Rfa 2 9854 12,1 0,15
101 Rfa 2 9862 9,23 0,11
101 Rfa 2 9864 7,67 0,11
105 Rfa 2 9908 8,58 0,11
105 Rfa 2 9912 10,8 0,12
105 Rfa 2 9913 9,68 0,11
105 Rfa 2 9916 9,78 0,21
119 Rfa 2 9892 12,6 0,12
119 Rfa 2 9893 12,4 0,13
119 Rfa 2 9894 8,58 0,11
119 Rfa 2 9900 9,43 0,11
121 Rfa 2 9969 11,8 0,12
121 Rfa 2 9970 11,5 0,11
121 Rfa 2 9973 12,5 0,08
121 Rfa 2 9981 6,02 0,10
32 Rfa 2 10175 9,03 0,09
32 Rfa 2 10179 12,9 0,09
32 Rfa 2 10181 9,13 0,09
32 Rfa 2 10182 10,4 0,10
41 Rfa 2 10185 11,9 0,09
41 Rfa 2 10189 11,2 0,10
41 Rfa 2 10196 12,6 0,08
41 Rfa 2 10200 10,5 0,12
Anhang
298
Fortsetzung Tabelle 135
Sau Gruppe Ferkel KM IKT ad
lib
itu
m 98 Rfa 2 10201 12,8 0,07
98 Rfa 2 10203 12,9 0,11
98 Rfa 2 10204 12,6 0,11
98 Rfa 2 10215 10,7 0,10
rest
rik
tiv
41 K 1 9173 13,5 0,09
41 K 1 9174 13,3 0,12
41 K 1 9176 9,59 0,11
41 K 1 9182 8,92 0,08
64 K 1 9159 10,0 0,10
64 K 1 9166 14,4 0,12
64 K 1 9167 9,67 0,11
64 K 1 9169 13,0 0,10
98 K 1 9064 9,1 0,10
98 K 1 9070 12,6 0,11
98 K 1 9071 12,3 0,10
98 K 1 9075 13,2 0,10
51 K 1 9557 9,5 0,12
51 K 1 9558 12,9 0,10
51 K 1 9564 10,3 0,13
51 K 1 9567 11,4 0,06
55 K 1 9580 9,00 0,12
55 K 1 9571 12,4 0,12
55 K 1 9574 9,18 0,13
55 K 1 9582 12,8 0,13
62 K 1 9616 6,83 0,11
62 K 1 9617 11,6 0,10
62 K 1 9619 9,29 0,15
62 K 1 9620 10,7 0,14
75 K 1 9586 14,2 0,12
75 K 1 9594 9,81 0,10
75 K 1 9595 9,83 0,10
75 K 1 9598 11,0 0,12
70 K 1 10052 12,4 0,13
70 K 1 10058 14,3 0,14
70 K 1 10060 5,43 0,07
70 K 1 10065 11,8 0,16
70 K 1 10055 10,9 0,07
54 K 2 9416 10,9 0,11
54 K 2 9417 10,2 0,12
54 K 2 9425 15,8 0,10
54 K 2 9429 8,22 0,10
94 K 2 9482 10,4 0,11
94 K 2 9483 11,7 0,10
94 K 2 9487 6,5 0,14
94 K 2 9489 13,0 0,08
122 K 2 9786 11,7 0,12
122 K 2 9788 12,1 0,11
122 K 2 9790 9,88 0,13
122 K 2 9792 11,3 0,10
Anhang
299
Fortsetzung Tabelle 135
Sau Gruppe Ferkel KM IKT rest
rik
tiv
80 K 2 9867 11,1 0,10
80 K 2 9870 10,7 0,11
80 K 2 9876 14,0 0,14
80 K 2 9877 7,19 0,10
104 K 2 9958 5,84 0,15
104 K 2 9963 8,44 0,12
104 K 2 9965 7,96 0,14
104 K 2 9967 9,14 0,13
123 K 2 9932 12,7 0,13
123 K 2 9939 10,9 0,13
123 K 2 9945 8,3 0,13
123 K 2 9950 11,6 0,10
46 K 2 10129 12,3 0,11
46 K 2 10132 13,0 0,09
46 K 2 10134 13,8 0,12
46 K 2 10135 7,05 0,13
64 K 2 10158 13,3 0,12
64 K 2 10160 11,1 0,12
64 K 2 10163 10,3 0,10
64 K 2 10166 11,1 0,13
Anhang
300
Leistungsdaten im Folgewurf 9.12
Tabelle 136: Absetz-Beleg-Intervall (ABI; Tage) sowie Anzahl geborener, lebend, tot und mumifiziert geborener Ferkel der Sauen im Folgewurf
Sau Gruppe ABI geb. Ferkel leb. geb.
Ferkel
tot geb.
Ferkel
mum. geb.
Ferkel
ad
lib
itu
m
32 Rfa 1 4 17 16 1 0
46 Rfa 1 4 11 10 0 1
61 Rfa 1 9 26 21 2 3
63 Rfa 1 Schlachtung
59 Rfa 1 Schlachtung
73 Rfa 1 4 19 13 6 0
74 Rfa 1 4 22 17 4 1
107 Rfa 1 4 23 16 5 2
78 Rfa 1 4 22 20 2 0
24 Rfa 1 4 22 18 4 0
72 Rfa 1 4 22 20 1 1
95 Rfa 2 5 Schlachtung
92 Rfa 2 5 26 23 2 1
81 Rfa 2 4 19 17 2 0
60 Rfa 2 4 24 20 2 2
100 Rfa 2 4 23 20 2 1
121 Rfa 2 4 22 21 1 0
119 Rfa 2 4 20 18 2 0
105 Rfa 2 5 22 20 1 1
101 Rfa 2 20 24 22 2 0
98 Rfa 2 4 18 18 0 0
41 Rfa 2 4 20 17 3 0
32 Rfa 2 5 20 17 2 1
rest
rik
tiv
41 K 1 5 19 17 2 0
64 K 1 4 14 14 0 0
98 K 1 4 18 16 1 1
51 K 1 Schlachtung
55 K 1 Schlachtung
62 K 1 4 24 11 8 5
75 K 1 4 10 10 0 0
70 K 1 5 25 20 1 4
129 K 1 6 16 15 1 0
54 K 2 5 21 19 2 0
94 K 2
122 K 2 26 21 19 2 0
104 K 2 4 12 10 1 1
80 K 2 4 18 17 1 0
123 K 2 28 19 19 0 0
46 K 2 5 Schlachtung
64 K 2 5 20 16 4 0
Anhang
301
Tabellenverzeichnis 9.13
TABELLE 1: EMPFEHLUNGEN ZUR TÄGLICHEN VERSORGUNG MIT ENERGIE UND AUSGEWÄHLTEN
NÄHRSTOFFEN VON SAUEN IN TRÄCHTIGKEIT UND LAKTATION (GFE 2006); KAMPHUES ET
AL. (2014)1........................................................................................................................... 6
TABELLE 2: MITTLERE FUTTERAUFNAHMEN (KG) VON LAKTIERENDEN SAUEN BEI UNTERSCHIEDLICHEN
TEMPERATUREN IN UNTERSUCHUNGEN VON PRUNIER ET AL. (1997), QUINIOU UND
NOBLET (1999) UND MALMKVIST ET AL. (2012) ............................................................ 11
TABELLE 3: FASERFRAKTIONEN EINIGER FUTTERMITTEL; MODIFIZIERT NACH JOHNSTON ET AL. (2003) 20
TABELLE 4: ZUSAMMENSETZUNG DES LAKTATIONSFUTTERS LAUT DEKLARATION (ANTEILE IN %) .......... 42
TABELLE 5: ZUSAMMENSETZUNG DER BEIDEN ROHFASERPELLETS (ANTEILE IN %) ................................. 44
TABELLE 6. BOTANISCHE ZUSAMMENSETZUNG DER VERWENDETEN FERKELFUTTER LAUT DEKLARATION 45
TABELLE 7: BONITURSCHEMA ZUR KLASSIFIZIERUNG DES SAUENKOTES NACH OLIVIERO ET AL. (2009) 48
TABELLE 8: SCORE ZUR EINSCHÄTZUNG DER SUBJEKTIV BEURTEILTEN STANDFLÄCHENVERSCHMUTZUNG
DES LIEGEBEREICHS NACH WARZECHA (2006) ................................................................. 49
TABELLE 9: SCORE ZUR QUANTIFIZIERUNG DER SUBJEKTIV BEURTEILTEN TIERVERSCHMUTZUNG NACH
WARZECHA (2006) ......................................................................................................... 49
TABELLE 10: BEWERTUNGSSCHLÜSSEL FÜR DIE ERFASSUNG VON SCHULTERLÄSIONEN (MODIFIZIERT NACH
SCHÄFFER ET AL. (2014)) ................................................................................................ 53
TABELLE 11: VERWENDETES ARBEITSPROTOKOLL GEMÄß DER ANLEITUNG DES TESTKITS (LACTOSE/D-
GLUCOSE UV-TEST, R-BIOPHARM AG, DARMSTADT) ......................................................... 58
TABELLE 12: VERWENDETES PCR-PROTOKOLL GEMÄß DER ANLEITUNG DES TESTKITS BACTOTYPE®
PCR AMPLIFICATION KIT CLOSTRIDIUM PERFRINGENS.......................................................... 73
TABELLE 13: ANALYSIERTE NÄHRSTOFF-, MINERALSTOFF-, AMINOSÄUREN- UND ENERGIEGEHALTE IN DEM
TRAGENDFUTTER SOWIE DEN EINGESETZTEN LAKTATIONSFUTTER SOWIE ROHFASERPELLET 1
(RFA 1) UND ROHFASERPELLET 2 (RFA 2) ............................................................................ 78
TABELLE 14: ANALYSIERTE NÄHRSTOFF-, MINERALSTOFF-, AMINOSÄUREN- UND ENERGIEGEHALTE DER
EINGESETZTEN FUTTERMITTEL DER FERKEL ........................................................................ 80
TABELLE 15: VERGLEICH DER UNTERSCHIEDLICHEN VERMAHLUNGSGRADE IN DEN EINGESETZTEN
MISCHFUTTERMITTELN DER SAUEN (ANGABEN IN %) .......................................................... 81
TABELLE 16: ANZAHL UND MITTLERE WURFNUMMER DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1
82
TABELLE 17: ANZAHL UND MITTLERE WURFNUMMER DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2
83
TABELLE 18: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TS-AUFNAHME/TAG (KG/SAU)
DER ROHFASER 1- UND KONTROLLGRUPPE IM PERIPARTALEN ZEITRAUM.............................. 84
Anhang
302
TABELLE 19: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN AUFNAHME AN
ROHFASER, NDF UND ADF IN KG TS/SAU DER ROHFASER 1- UND KONTROLLGRUPPE IM
PERIPARTALEN ZEITRAUM .................................................................................................. 85
TABELLE 20: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TS-AUFNAHME/ TAG (KG/SAU)
DER ROHFASER 2- UND KONTROLLGRUPPE IM PERIPARTALEN ZEITRAUM.............................. 86
TABELLE 21: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN AUFNAHME AN
ROHFASER, NDF UND ADF IN KG TS/SAU DER ROHFASER 2- UND KONTROLLGRUPPE IM
PERIPARTALEN ZEITRAUM .................................................................................................. 87
TABELLE 22: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN ZUSÄTZLICHEN
FUTTERAUFNAHME IN KG TS/SAU IM PERIPARTALEN ZEITRAUM .......................................... 88
TABELLE 23: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN
WASSERAUFNAHME/SAU (L) DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM PERIPARTALEN
ZEITRAUM.......................................................................................................................... 90
TABELLE 24: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN WASSERAUFNAHME/
SAU (L) DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM PERIPARTALEN ZEITRAUM ................. 90
TABELLE 25: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER MITTLEREN TÄGLICHEN
KÖRPERTEMPERATUR IN °C DER ROHFASER 1- UND KONTROLLGRUPPE IM PERIPARTALEN
ZEITRAUM.......................................................................................................................... 92
TABELLE 26: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER MITTLEREN TÄGLICHEN
KÖRPERTEMPERATUR IN °C DER ROHFASER 2- UND KONTROLLGRUPPE IM PERIPARTALEN
ZEITRAUM.......................................................................................................................... 93
TABELLE 27: HÄUFIGKEIT DER GEBURTSHILFLICHEN MANIPULATIONEN UND AUFTRETEN PERIPARTALER
MMA-ERKRANKUNGEN DER ROHFASERGRUPPE 1 UND KONTROLLTIERE.............................. 94
TABELLE 28: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER ERHOBENEN GEBURTSPARAMETER
DER ROHFASERGRUPPE 1 UND KONTROLLGRUPPE ................................................................ 94
TABELLE 29: FERKELVERLUSTE BIS ZUM ABSETZEN DER ROHFASERGRUPPE 1 UND KONTROLLGRUPPE, NACH
LEBENSTAGEN SORTIERT .................................................................................................... 95
TABELLE 30: URSACHEN FÜR FERKELVERLUSTE BIS ZUM ABSETZEN DER ROHFASERGRUPPE 1 UND
KONTROLLGRUPPE ............................................................................................................. 96
TABELLE 31: HÄUFIGKEIT DER GEBURTSHILFLICHEN MANIPULATIONEN UND AUFTRETEN PERIPARTALER
MMA-ERKRANKUNGEN DER ROHFASERGRUPPE 2 UND KONTROLLTIERE.............................. 96
TABELLE 32: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER ERHOBENEN GEBURTSPARAMETER
DER ROHFASERGRUPPE 2 UND KONTROLLGRUPPE ................................................................ 97
TABELLE 33: FERKELVERLUSTE BIS ZUM ABSETZEN DER ROHFASERGRUPPE 2 UND KONTROLLGRUPPE, NACH
LEBENSTAGEN SORTIERT .................................................................................................... 98
TABELLE 34: URSACHEN FÜR FERKELVERLUSTE BIS ZUM ABSETZEN DER ROHFASERGRUPPE 2 UND
KONTROLLGRUPPE ............................................................................................................. 98
Anhang
303
TABELLE 35: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES KOTSCORES DER
ROHFASERGRUPPE 1 UND KONTROLLGRUPPE .................................................................... 100
TABELLE 36: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES KOTSCORES DER
ROHFASERGRUPPE 2 UND KONTROLLGRUPPE .................................................................... 100
TABELLE 37: ANZAHL VERSCHMUTZTER STÄNDE DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM
PERIPARTALEN ZEITRAUM ................................................................................................ 101
TABELLE 38: ANZAHL VERSCHMUTZTER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM
PERIPARTALEN ZEITRAUM ................................................................................................ 102
TABELLE 39: ANZAHL VERSCHMUTZTER STÄNDE DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM
PERIPARTALEN ZEITRAUM ................................................................................................ 102
TABELLE 40: ANZAHL VERSCHMUTZTER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM
PERIPARTALEN ZEITRAUM ................................................................................................ 103
TABELLE 41: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES TS-GEHALTES (%) IM KOT DER
ROHFASERGRUPPE 1 UND KONTROLLGRUPPE .................................................................... 104
TABELLE 42: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES PH-WERTES IM KOT DER
ROHFASERGRUPPE 1 UND KONTROLLGRUPPE .................................................................... 104
TABELLE 43: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES FE-GEHALTES (G/KG TS) IM KOT
DER ROHFASERGRUPPE 1 UND KONTROLLGRUPPE .............................................................. 105
TABELLE 44: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES TS-GEHALTES (%) IM KOT DER
ROHFASERGRUPPE 2 UND KONTROLLGRUPPE .................................................................... 105
TABELLE 45: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES PH-WERTES IM KOT DER
ROHFASERGRUPPE 2 UND KONTROLLGRUPPE .................................................................... 106
TABELLE 46: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES FE-GEHALTES (G/KG TS) IM KOT
DER ROHFASERGRUPPE 2 UND KONTROLLGRUPPE ............................................................. 106
TABELLE 47: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN CORTISOLGEHALTES
(NG/ML) IM SPEICHEL DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM PERIPARTALEN
ZEITRAUM........................................................................................................................ 108
TABELLE 48: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN CORTISOLGEHALTES
(NG/ML) IM SPEICHEL DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM PERIPARTALEN
ZEITRAUM........................................................................................................................ 109
TABELLE 49: ANZAHL UND PROZENTUALER ANTEIL DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1,
WELCHE ZU DEN GEMESSENEN ZEITPUNKTEN EINEN CRP-WERT OBERHALB DES MESSBAREN
BEREICHES VON 1200 MG/L AUFWIESEN ............................................................................ 110
TABELLE 50: ANZAHL UND PROZENTUALER ANTEIL DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1,
WELCHE ZU DEN GEMESSENEN ZEITPUNKTEN EINEN CRP-WERT VON >400 MG/L AUFWIESEN
111
TABELLE 51: MITTELWERTE (X ), STANDARDABWEICHUNGEN (S) SOWIE MINIMAL UND MAXIMAL GEMESSENE
CRP-KONZENTRATIONEN IN MG/L DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 .. 111
Anhang
304
TABELLE 52: ANZAHL UND PROZENTUALER ANTEIL DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2,
WELCHE ZU DEN GEMESSENEN ZEITPUNKTEN EINEN CRP-WERT OBERHALB DES MESSBAREN
BEREICHES VON 1200 MG/L AUFWIESEN ........................................................................... 112
TABELLE 53: ANZAHL UND PROZENTUALER ANTEIL DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2,
WELCHE ZU DEN GEMESSENEN ZEITPUNKTEN EINEN CRP-WERT VON >400 MG/L AUFWIESEN
113
TABELLE 54: MITTELWERTE (X ), STANDARDABWEICHUNGEN (S) SOWIE MINIMAL UND MAXIMAL GEMESSENE
CRP-KONZENTRATIONEN IN MG/L DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 .. 113
TABELLE 55: MITTELWERTE (X ), STANDARDABWEICHUNGEN (S) SOWIE MINIMAL UND MAXIMAL GEMESSENE
D-LAKTATKONZENTRATIONEN IN MMOL/L IM BLUT DER SAUEN DER KONTROLL- UND
ROHFASERGRUPPE 1 ......................................................................................................... 114
TABELLE 56: MITTELWERTE (X ), STANDARDABWEICHUNGEN (S) SOWIE MINIMAL UND MAXIMAL GEMESSENE
D-LAKTATKONZENTRATIONEN IN MMOL/L IM BLUT DER SAUEN DER KONTROLL- UND
ROHFASERGRUPPE 2 ......................................................................................................... 115
TABELLE 57: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN IMMUNOKRITS DER
FERKEL DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 48H P.P. SOWIE ZUM ABSETZEN
116
TABELLE 58: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN IMMUNOKRITS DER
FERKEL DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 48H P.P. SOWIE ZUM ABSETZEN
117
TABELLE 59: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES PROTEINGEHALTS UND DER
PROTEINFRAKTIONEN IM FERKELSERUM DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1
48 H POST PARTUM ........................................................................................................... 118
TABELLE 60: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES PROTEINGEHALTS UND DER
PROTEINFRAKTIONEN IM FERKELSERUM DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2
48 H POST PARTUM ........................................................................................................... 118
TABELLE 61: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES GEBURTS- UND ABSETZGEWICHT
IN KG DER JEWEILS LEICHTEN UND SCHWEREN FERKEL EINES WURFES ............................... 119
TABELLE 62: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES IMMUNOKRITS IM SERUM DER
JEWEILS LEICHTEN UND SCHWEREN FERKEL EINES WURFES ............................................... 119
TABELLE 63: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES PROTEINGEHALTS UND DER
PROTEINFRAKTIONEN IM SERUM DER JEWEILS LEICHTEN UND SCHWEREN FERKEL EINES
WURFES ........................................................................................................................... 120
TABELLE 64: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES GEWICHTS SOWIE VERSCHIEDENER
BLUTPARAMETER IM SERUM VERENDETER UND ÜBERLEBENDER FERKEL ............................ 121
TABELLE 65: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENORDNUNGEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM KOT ZUR EINSTALLUNG
126
Anhang
305
TABELLE 66: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENFAMILIEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM KOT ZUR EINSTALLUNG
127
TABELLE 67: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENORDNUNGEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM KOT 24-48 H P.P. .... 128
TABELLE 68: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENFAMILIEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM KOT 24-48 H P.P. ........ 129
TABELLE 69: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENORDNUNGEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM KOT ZU BEGINN DER
DRITTEN LAKTATIONSWOCHE ........................................................................................... 130
TABELLE 70: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENFAMILIEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 IM KOT ZU BEGINN DER
DRITTEN LAKTATIONSWOCHE ........................................................................................... 131
TABELLE 71: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENORDNUNGEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM KOT ZUR EINSTALLUNG
133
TABELLE 72: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENFAMILIEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM KOT ZUR EINSTALLUNG
134
TABELLE 73: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENORDNUNGEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM KOT 24-48 H P.P. .... 135
TABELLE 74: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENFAMILIEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM KOT 24-48 H P.P.......... 136
TABELLE 75: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENORDNUNGEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM KOT ZU BEGINN DER
DRITTEN LAKTATIONSWOCHE ........................................................................................... 137
TABELLE 76: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ANTEILS AUSGEWÄHLTER
BAKTERIENFAMILIEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 IM KOT ZU BEGINN DER
DRITTEN LAKTATIONSWOCHE ........................................................................................... 138
TABELLE 77: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN MITTLEREN
FUTTERAUFNAHME IN KG TS DARGESTELLT IN LAKTATIONSWOCHEN GETRENNT NACH
FÜTTERUNGSGRUPPEN ...................................................................................................... 141
TABELLE 78: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN MITTLEREN
WASSERAUFNAHME IN L/SAU DARGESTELLT IN LAKTATIONSWOCHEN GETRENNT NACH
FÜTTERUNGSGRUPPEN ...................................................................................................... 142
TABELLE 79: ANALYSIERTER NÄHRSTOFF-, LYSIN- UND ENERGIEGEHALT DER SAUENMILCH .................. 142
TABELLE 80: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER ANZAHL DER FERKEL NACH WAG,
ZUM ABSETZEN SOWIE VERLUSTE NACH WAG BEIDER FÜTTERUNGSGRUPPEN ................... 143
Anhang
306
TABELLE 81: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER MITTLEREN TÄGLICHEN
MILCHLEISTUNG (KG) DER FÜTTERUNGSGRUPPEN IN DER LAKTATION UND IN
LAKTATIONSWOCHEN ....................................................................................................... 143
TABELLE 82: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN TÄGLICHEN
WURFZUWACHSES (KG) DER FÜTTERUNGSGRUPPEN IN DER LAKTATION UND IN
LAKTATIONSWOCHEN ....................................................................................................... 144
TABELLE 83: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN TÄGLICHEN
WURFZUWACHSES (KG) AUFGRUND VON MILCHAUFNAHME ............................................... 144
TABELLE 84: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN TÄGLICHEN
WURFZUWACHSES (KG) AUFGRUND VON BEIFUTTERAUFNAHME ........................................ 145
TABELLE 85: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN TÄGLICHEN
ZUWACHSES PRO FERKEL (G) DER FÜTTERUNGSGRUPPEN IN DER LAKTATION UND IN
LAKTATIONSWOCHEN ....................................................................................................... 145
TABELLE 86: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN BEIFUTTERAUFNAHME
IN G TS / WURF BEIDER FÜTTERUNGSGRUPPEN INSGESAMT SOWIE IN DEN EINZELNEN
LAKTATIONSWOCHEN ....................................................................................................... 146
TABELLE 87: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER KÖRPERGEWICHTE (KG) DER
ÜBERLEBENDEN FERKEL DER SAUEN BEIDER FÜTTERUNGSGRUPPEN ZU DEN WÖCHENTLICHEN
WIEGEZEITPUNKTEN ........................................................................................................ 147
TABELLE 88: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER VARIATIONSKOEFFIZIENTEN (VK)
DER FERKELGEWICHTE BEIDER FÜTTERUNGSGRUPPEN ZU DEN WÖCHENTLICHEN
WIEGEZEITPUNKTEN ........................................................................................................ 147
TABELLE 89: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER KÖRPERGEWICHTE (KG) DER
SAUEN BEIDER FÜTTERUNGSGRUPPEN IM LAUFE DER LAKTATION ...................................... 148
TABELLE 90: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER MITTLEREN RSD (MM) DER SAUEN
BEIDER FÜTTERUNGSGRUPPEN IM LAUFE DER LAKTATION ................................................. 149
TABELLE 91: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN BCS DER SAUEN
BEIDER FÜTTERUNGSGRUPPEN IM LAUFE DER LAKTATION ................................................. 149
TABELLE 92: ANZAHL AN SAUEN MIT SCHULTERLÄSIONEN (SCORE ≥2) DARGESTELLT IN
LAKTATIONSWOCHEN GETRENNT NACH FÜTTERUNGSGRUPPEN .......................................... 150
TABELLE 93: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES ABSETZ-ÖSTRUSINTERVALLS
(TAGEN) UND DER ANZAHL INSGESAMT GEBORENER SOWIE LEBEND, TOT UND MUMIFIZIERT
GEBORENER FERKEL DER SAUEN BEIDER FÜTTERUNGSGRUPPEN IN DER AUF DEM VERSUCH
FOLGENDEN ABFERKELUNG .............................................................................................. 151
TABELLE 94: VERGLEICH DER ENERGIE- UND NÄHRSTOFFGEHALTE DES EINGESETZTEN
LAKTATIONSFUTTERS MIT DEN RICHTWERTEN IM AF FÜR SAUEN (ANGABEN IN KG US) NACH
KAMPHUES ET AL. (2014) .............................................................................................. 155
Anhang
307
TABELLE 95: VERGLEICH DER ENERGIE- UND NÄHRSTOFFGEHALTE DER EINGESETZTEN PRESTARTER MIT
DEN RICHTWERTEN IN ERGÄNZUNGSFUTTER FÜR SAUGFERKEL (ANGABEN IN KG US) NACH
KAMPHUES ET AL. (2014) .............................................................................................. 157
TABELLE 96: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER WURFMASSEN SOWIE DER
SAUENGEWICHTE (KG) DER BEIDEN FÜTTERUNGSGRUPPEN ZUR EINSTALLUNG, 3 TAGE VOR
UND 1 TAG NACH DER GEBURT ......................................................................................... 159
TABELLE 97: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER IM KOT DER VERSCHIEDENEN
FÜTTERUNGSGRUPPEN HAUPTSÄCHLICH VERTRETENDEN BAKTERIENORDNUNGEN (%) ZU DEN
DREI ZEITPUNKTEN (ZP 1-3) DER PROBEENTNAHME .......................................................... 187
TABELLE 98: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER IM KOT DER VERSCHIEDENEN
FÜTTERUNGSGRUPPEN HAUPTSÄCHLICH VERTRETENDEN BAKTERIENFAMILIEN (%) ZU DEN
DREI ZEITPUNKTEN (ZP 1-3) DER PROBEENTNAHME .......................................................... 188
TABELLE 99: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER TÄGLICHEN MITTLEREN
FUTTERAUFNAHME IN KG TS DARGESTELLT IN LAKTATIONSWOCHEN DER EHEMALIGEN
KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 ............................................................................... 197
TABELLE 100: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER MITTLEREN TÄGLICHEN
MILCHLEISTUNG (KG) IN DER LAKTATION UND IN LAKTATIONSWOCHEN DER EHEMALIGEN
KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 ............................................................................... 201
TABELLE 101: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER MITTLEREN RSD (MM) IM LAUFE
DER LAKTATION DER URSPRÜNGLICHEN KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 .................. 202
TABELLE 102: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DES MITTLEREN TÄGLICHEN
WURFZUWACHSES (KG) IN DER LAKTATION INSGESAMT SOWIE AUFGRUND VON MILCH- UND
BEIFUTTERAUFNAHME DER EHEM. KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 ........................... 204
TABELLE 103: MITTELWERTE (X ) UND STANDARDABWEICHUNGEN (S) DER KÖRPERGEWICHTE (KG) DER
ÜBERLEBENDEN FERKEL ZU DEN WÖCHENTLICHEN WIEGEZEITPUNKTEN DER EHEM.
KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 ............................................................................... 207
TABELLE 104: TÄGLICHE FUTTERAUFNAHME DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2
(K1;K2; RFA 1, RFA 2) IN KG TS IM PERIPARTALEN ZEITRAUM .......................................... 261
TABELLE 105: MITTLERE TÄGLICHE FUTTERAUFNAHME DER RESTRIKTIV UND AD LIBITUM GEFÜTTERTEN
SAUEN DER VERSCHIEDENEN FÜTTERUNGSGRUPPEN IN KG TS IN DEN EINZELNEN
LAKTATIONSWOCHEN ....................................................................................................... 263
TABELLE 106: MITTLERE TÄGLICH VERBRAUCHTE WASSERMENGE IN L/SAU DER SAUEN DER KONTROLL- UND
ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1;K2; RFA 1, RFA 2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM ............. 264
TABELLE 107: MITTLERE VERBRAUCHTE WASSERMENGE IN L/SAU DER RESTRIKTIV UND AD LIBITUM
GEFÜTTERTEN SAUEN IN DEN EINZELNEN LAKTATIONSWOCHEN ......................................... 264
TABELLE 108: TÄGLICHE KÖRPERTEMPERATUR (°C) DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1
UND 2 (K1;K2; RFA 1, RFA 2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM ............................................... 265
Anhang
308
TABELLE 109: TÄGLICHE KÖRPERTEMPERATUR (°C) DER RESTRIKTIV UND AD LIBITUM GEFÜTTERTEN SAUEN
ZU VERSCHIEDENEN TAGEN DER LAKTATION ..................................................................... 266
TABELLE 110: GEBURTSVERLAUF DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1;K2;
RFA 1, RFA 2): NÖTIGE EINGRIFFE, MMA-ERKRANKUNGEN; GEBURTSLÄNGE UND -
INTERVALLE (MIN.) .......................................................................................................... 267
TABELLE 111: WURFDATEN DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1;K2; RFA 1,
RFA 2): ANZAHL GEBORENER, LEBEND UND TOT GEBORENER FERKEL; FERKEL NACH
WURFAUSGLEICH (WAG) SOWIE ANZAHL ABGESETZTER FERKEL ...................................... 269
TABELLE 112: FERKELVERLUSTE DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1;K2; RFA
1, RFA 2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM ............................................................................. 270
TABELLE 113: FERKELVERLUSTE DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1;K2; RFA
1, RFA 2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM NACH URSACHEN SORTIERT ................................... 271
TABELLE 114: WÖCHENTLICHER WURFZUWACHS (KG) DER RESTRIKTIV UND AD LIBITUM GEFÜTTERTEN
SAUEN IN DER LAKTATION ................................................................................................ 272
TABELLE 115: KÖRPERMASSEN (KG) DER FERKEL DER SAUEN DER RESTRIKTIV UND AD LIBITUM
GEFÜTTERTEN SAUEN IN DEN VERSCHIEDENEN LAKTATIONSWOCHEN ................................ 273
TABELLE 116: TS-AUFNAHME (G)/ WURF (= SUMME TS AUS FERKELJOGHURT UND PRESTARTER) DER
RESTRIKTIV UND AD LIBITUM GEFÜTTERTEN SAUEN IN DEN VERSCHIEDENEN
LAKTATIONSWOCHEN ....................................................................................................... 274
TABELLE 117: KÖRPERMASSE (KM;KG); RÜCKENSPECKDICKE (RSD;MM) UND BODY CONDITION SCORE
(BCS) DER RESTRIKTIV UND AD LIBITUM GEFÜTTERTEN SAUEN ZUR EINSTALLUNG, 24 H P.P.,
TAG 14 P.P. SOWIE ZUM ABSETZEN .................................................................................... 275
TABELLE 118: SCHULTERSCORE DER DER RESTRIKTIV UND AD LIBITUM GEFÜTTERTEN SAUEN ZUR
EINSTALLUNG SOWIE IM VERLAUF DER LAKTATION........................................................... 276
TABELLE 119: KOTSCORE DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1;K2; RFA 1, RFA
2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM; SCORE NACH OLIVIERO ET AL. (2009) ........................... 277
TABELLE 120: VERSCHMUTZUNG DER SAUENSTÄNDE DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2
(K1;K2; RFA 1, RFA 2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM; SCORE NACH WARZECHA (2006) . 278
TABELLE 121: VERSCHMUTZUNG DER SAUEN DER DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2
(K1;K2; RFA 1, RFA 2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM; SCORE NACH WARZECHA (2006) .. 279
TABELLE 122: TS-GEHALT (%) DES KOTES DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2
(K1;K2; RFA 1, RFA 2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM ......................................................... 280
TABELLE 123: PH-WERTE DES KOTES DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1;K2;
RFA 1, RFA 2) IM PERIPARTALEN ZEITRAUM ...................................................................... 281
TABELLE 124: FE-GEHALT (MG/KG TS) IM KOT DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 1 (K1,
RFA 1) SOWIE DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 (K2, RFA 2) 24-48 H P.P. ............. 282
Anhang
309
TABELLE 125: ANZAHL VON C. PERFRINGENS (LOG10 KBE) IM KOT DER SAUEN DER KONTROLL- UND
ROHFASERGRUPPE 1 (K1, RFA 1) SOWIE DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPE 2 (K2, RFA 2)
24-48 H P.P. IM KOT UNMITTELBAR P.P. (MAX. 10 H P.P.) .................................................... 283
TABELLE 126: ANTEIL AUSGEWÄHLTER BAKTERIENORDNUNGEN (%) IM KOT DER SAUEN DER KONTROLL-
UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1, K2; RFA 1; RFA 2) ZUR EINSTALLUNG..................... 284
TABELLE 127: ANTEIL AUSGEWÄHLTER BAKTERIENORDNUNGEN (%) IM KOT DER SAUEN DER KONTROLL-
UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1, K2; RFA 1; RFA 2) 24-48 H P.P. ............................... 285
TABELLE 128: ANTEIL AUSGEWÄHLTER BAKTERIENORDNUNGEN (%) IM KOT DER SAUEN DER KONTROLL-
UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1, K2; RFA 1; RFA 2) TAG 16 P.P. ................................ 286
TABELLE 129: ANTEIL AUSGEWÄHLTER BAKTERIENFAMILIEN (%) IM KOT DER SAUEN DER KONTROLL- UND
ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1, K2; RFA 1; RFA 2) ZUR EINSTALLUNG ............................ 287
TABELLE 130: ANTEIL AUSGEWÄHLTER BAKTERIENFAMILIEN (%) IM KOT DER SAUEN DER KONTROLL- UND
ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1, K2; RFA 1; RFA 2) 24-48 H P.P. ...................................... 288
TABELLE 131: ANTEIL AUSGEWÄHLTER BAKTERIENFAMILIEN (%) IM KOT DER SAUEN DER KONTROLL- UND
ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1, K2; RFA 1; RFA 2) TAG 16 P.P. ....................................... 289
TABELLE 132: CORTISOLKONZENTRATION (NG/ML) IM SPEICHEL DER SAUEN DER KONTROLL- UND
ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1, K2; RFA 1; RFA 2) ZUR EINSTALLUNG SOWIE ZUR GEBURT
290
TABELLE 133: KONZENTRATIONEN VON CRP (NUR DIE MESSBAREN WERTE ANGEGEBEN; MG/L) UND D-
LAKTAT (MMOL/L) DER SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN 1 UND 2 (K1, K2;
RFA 1; RFA 2 ZUR EINSTALLUNG SOWIE ZUR GEBURT ........................................................ 291
TABELLE 134: BLUTPARAMETER DER FERKEL 48 H P.N.: IMMUNOKRIT (IKT); PROTEIN (G/L), ALBUMIN (G/L)
UND Γ-GLOBULIN (G/L) UND KÖRPERMASSE (KM; KG)) ..................................................... 292
TABELLE 135: IMMUNOKRIT (IKT) SOWIE DIE KÖRPERMASSE (KM; KG) DER FERKEL ZUM ABSETZEN ....... 296
TABELLE 136: ABSETZ-BELEG-INTERVALL (ABI; TAGE) SOWIE ANZAHL GEBORENER, LEBEND, TOT UND
MUMIFIZIERT GEBORENER FERKEL DER SAUEN IM FOLGEWURF .......................................... 300
Anhang
310
Abbildungsverzeichnis 9.14
ABBILDUNG 1: PATHOPHYSIOLOGISCHE HINTERGRÜNDE DER ENTSTEHUNG VON MMA, MODIFIZIERT NACH
MARTINEAU ET AL. (1992) .............................................................................................. 17
ABBILDUNG 2: SCHEMATISCHE DARSTELLUNG DER VERSCHIEDENEN KOHLENHYDRATFRAKTIONEN IN
FUTTERMITTELN; MODIFIZIERT NACH DE LEEUW ET AL. (2008) ......................................... 19
ABBILDUNG 3: SCHEMATISCHE DARSTELLUNG DES ÖKOSYSTEMS DES DARMS; MODIFIZIERT NACH
MONTAGNE ET AL. (2003) (MODIFIZIERT NACH CONWAY (1994)) .................................. 28
ABBILDUNG 4: ÜBERBLICK ÜBER DEN ZEITLICHEN ABLAUF DER VERSUCHE: IN INSG. 7 DURCHGÄNGEN
WURDEN DIE SAUEN DER KONTROLL- UND ROHFASERGRUPPEN AUF 2 BAUGLEICHE
ABFERKELSTÄLLE AUFGETEILT ........................................................................................... 38
ABBILDUNG 5: SCHEMATISCHE DARSTELLUNG EINER ABFERKELBUCHT; DARGESTELLT SIND DIE ELEMENTE
FERKELSCHUTZKORB, FERKELNEST, TROG UND FERKELTRÄNKE SOWIE DIE GESTALTUNG DES
BODENS ............................................................................................................................. 41
ABBILDUNG 6: SCHEMATISCHE ÜBERSICHT ÜBER DIE FÜTTERUNG DER SAUEN WÄHREND DER
VERSUCHSPHASE. DER HELLBLAUE OBERSTE PFEIL KENNZEICHNET DAS FUTTER IM AD-
LIBITUM-FÜTTERUNGSAUTOMATEN..................................................................................... 43
ABBILDUNG 7: SCHEMATISCHE DARSTELLUNG DER BEI DER MESSUNG DER RÜCKENSPECKDICKE ERFASSTEN
GEWEBESCHICHTEN. (MODIFIZIERT NACH STEFFENS (2005)) ............................................. 51
ABBILDUNG 8: BONITURSCHEMA ZUR BEURTEILUNG DES BCS = BODY CONDITION SCORE; MODIFIZIERT NACH
KAMPHUES ET AL. (2014). ............................................................................................... 52
ABBILDUNG 9: SCHEMATISCHE DARSTELLUNG DES CAMP-PHÄNOMENS .................................................... 71
ABBILDUNG 10: DARSTELLUNG EINES POSITIVEN (LINKS) UND EINES NEGATIVEN (RECHTS) ERGEBNISSES DES
CAMP-TESTES .................................................................................................................. 72
ABBILDUNG 11: ..MITTLERE UMGEBUNGSTEMPERATUR IM TIERBEREICH DER ABFERKELSTÄLLE WÄHREND DES
82
ABBILDUNG 12: BOXBOX-AND-WHISKER-PLOT DER MITTLEREN ANZAHL KOLONIE BILDENDER EINHEITEN
VON ................................................................................................................................. 122
ABBILDUNG 13: BOXBOX-AND-WHISKER-PLOT DER MITTLEREN ANZAHL KOLONIE BILDENDER EINHEITEN
VON ................................................................................................................................. 123
ABBILDUNG 14: MITTLERER PROZENTUALER ANTEIL DER IM KOT ENTHALTENDEN BAKTERIENPOPULATION
AUF EBENE DER BAKTERIENORDNUNG (1-8) SOWIE DER WESENTLICHEN FAMILIEN DER
ORDNUNG CLOSTRIDIALES (A-E) IN DER KONTROLLGRUPPE (N=9) UND IN DER
ROHFASERGRUPPE 1 (N=10) IM KOT ZUR EINSTALLUNG............................................... 125
ABBILDUNG 15: MITTLERER PROZENTUALER ANTEIL DER IM KOT ENTHALTENDEN BAKTERIENPOPULATION
AUF EBENE DER BAKTERIENORDNUNG (1-8) SOWIE DER WESENTLICHEN FAMILIEN DER
ORDNUNG CLOSTRIDIALES (A-E) IN DER KONTROLLGRUPPE (N=9) UND IN DER
ROHFASERGRUPPE 1 (N=10) IM KOT 24-48 H P.P ...................................................... 125
Anhang
311
ABBILDUNG 16: MITTLERER PROZENTUALER ANTEIL DER IM KOT ENTHALTENDEN BAKTERIENPOPULATION
AUF EBENE DER BAKTERIENORDNUNG (1-8) SOWIE DER WESENTLICHEN FAMILIEN DER
ORDNUNG CLOSTRIDIALES (A-E) IN DER KONTROLLGRUPPE (N=9) UND IN DER
ROHFASERGRUPPE 1 (N=10) IM KOT ANFANG DER DRITTEN LAKTATIONSWOCHE ...... 126
ABBILDUNG 17: MITTLERER PROZENTUALER ANTEIL DER IM KOT ENTHALTENDEN BAKTERIENPOPULATION
AUF EBENE DER BAKTERIENORDNUNG (1-8) SOWIE DER WESENTLICHEN FAMILIEN DER
ORDNUNG CLOSTRIDIALES (A-E) IN DER KONTROLLGRUPPE (N=12) UND DER
ROHFASERGRUPPE 2 (N=11) IM KOT ZUR EINSTALLUNG ............................................ 132
ABBILDUNG 18: MITTLERER PROZENTUALER ANTEIL DER IM KOT ENTHALTENDEN BAKTERIENPOPULATION
AUF EBENE DER BAKTERIENORDNUNG (1-8) SOWIE DER WESENTLICHEN FAMILIEN DER
ORDNUNG CLOSTRIDIALES (A-E) IN DER KONTROLLGRUPPE (N=12) UND DER
ROHFASERGRUPPE 2 (N=12) IM KOT 24-48 H POST PARTUM ....................................... 132
ABBILDUNG 19: MITTLERER PROZENTUALER ANTEIL DER IM KOT ENTHALTENDEN BAKTERIENPOPULATION
AUF EBENE DER BAKTERIENORDNUNG (1-8) SOWIE DER WESENTLICHEN FAMILIEN DER
ORDNUNG CLOSTRIDIALES (A-E) IN DER KONTROLLGRUPPE (N=13) UND DER
ROHFASERGRUPPE 2 (N=10) IM KOT ZU BEGINN DER DRITTEN LAKTATIONSWOCHE . 133
ABBILDUNG 20: MITTLERE TÄGLICHE FUTTERAUFNAHME (KG TS) IN ABHÄNGIGKEIT VON DER FÜTTERUNG
ÜBER DEN GESAMTEN VERSUCHSZEITRAUM; : BIS INKL. TAG 7 SIGNIFIKANT
UNTERSCHIEDLICHE TS-AUFN. ......................................................................................... 140
Anhang
313
Danksagung
An erster Stelle möchte ich meinem Doktorvater Herrn Jun. Prof. Dr. Christian Visscher für
die hervorragende Betreuung danken. Durch die Überlassung des interessanten,
praxisrelevanten Themas und die sehr lehrreiche Doktorandenzeit habe ich einen weiten
Einblick in das Gebiet der Tierernährung, insbesondere der Schweineernährung erhalten.
Nicht nur auf seine fachliche, sondern auch auf seine tatkräftige Unterstützung konnte ich
mich jederzeit verlassen. Vielen lieben Dank!
Herrn Prof. Dr. Josef Kamphues gilt mein großer Dank sowohl für seine konkreten
Ratschläge bei auftretenden Fragestellungen als auch für seine wissenschaftliche
Unterstützung dieses Dissertationsvorhabens.
Ein besonderes Dankeschön geht an Herrn Dr. Christian Sürie, der mir die Durchführung
der Versuche auf dem Lehr- und Forschungsgut Ruthe erst ermöglichte und dessen
unermüdliche Fürsprache wesentlich zum Gelingen dieser Arbeit beigetragen hat. Ebenso
danke ich Herrn Hartmut Mohwinkel sowie dem ganzen Team des Schweinestalls.
Insbesondere Judith und Marcella möchte ich außerordentlich danken, ohne deren
Hilfsbereitschaft und kreativen Ideen bei der Umsetzung der Versuche diese Arbeit nicht
möglich gewesen wäre. Ich bin froh nicht nur zwei Kolleginnen, sondern auch Freundinnen
gewonnen zu haben!
Der Firma Gelamin – Gesellschaft für Tierernährung mbH – danke ich für die
Bereitstellung der Sojabohnenschalen. Mein Dank gilt besonders Herrn Dr. Heinrich Kleine
Klausing, der für alle Fragen rund um eine praxisnahe Sauenfütterung stets ein offenes Ohr
hatte.
Für die fachliche Expertise und aktive Unterstützung bei den mikrobiologischen
Untersuchungen möchte ich herzlich Frau Dr. Birgit Keller danken.
Ein großer Dank gilt Frau Dr. Esther Humann-Ziehank für die hervorragende fachliche
Betreuung bei der Durchführung der serologischen Untersuchungen. Darüber hinaus danke
Anhang
314
ich allen Mitarbeitern des Labors der Klinik für kleine Klauentiere, Forensische Medizin
und Ambulatorische Klinik der TiHo, insbesondere Frau Petra Röhrig, die mich geduldig in
die Labortätigkeiten eingearbeitet hat.
Dem Laborteam des Institutes für Tierernährung möchte ich herzlich für die Unterstützung
bei der Analyse der Futter- und Kotproben danken. Auch an das Team der Tierpfleger
richtet sich mein besonderer Dank.
Bei meinen Mitdoktoranden bedanke ich mich besonders für die Hilfsbereitschaft zu jeder
Tages- und Nachtzeit sowie die schöne und lustige Zeit in der Tierernährung.
Meinen Mitbewohnern Carmen und Michi, aber auch Franz, Silke, Inga, Vera, Carolin,
Ruth und Maresa danke ich für ihre stetige Motivation und die vielen ermunternde Worte.
Maresa gilt zudem mein tiefster Dank für die kritische Durchsicht dieser Arbeit.
Meinem Freund Linus möchte ich ganz besonders für die wertvollen Diskussionen, die
tatkräftige Unterstützung sowohl im Stall als auch bei allen auftretenden
Computerproblemen, aber vor allem für seine stetige Zuversicht und die schöne Zeit auch
abseits der Dissertation danken.
Zuletzt gilt mein herzlichster Dank meiner Familie, die immer an mich geglaubt und mir
durch ihre Unterstützung in allen Lebenslagen dieses Studium und die Dissertation erst
ermöglicht hat.
.
ISBN 978-3-86345-356-5
Verlag: Deutsche Veterinärmedizinische Gesellschaft Service GmbH35392 Gießen · Friedrichstraße 17 · Tel. 0641 / 24466 · Fax: 0641 / 25375
E-Mail: [email protected] · Internet: www.dvg.de
Mar
ia M
arga
reth
e L
eurs
Han
nov
er 2
016