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1 Malariadiagnostik in Theorie und Praxis a hands-on experience Assoc. Prof. HARALD NOEDL, MD, PhD Institut für Spezifische Prophylaxe und Tropenmedizin Kinderspitalgasse 15, A - 1090 Vienna, AUSTRIA [email protected] Im Rahmen der Methodenseminare SS13 „Spezifische Prophylaxe und Tropenmedizin“ 2 M A L A R I A Protozoenerkrankung hervorgerufen durch vier verschiedene Spezies der Gattung Plasmodium übertragen durch die Anophelesmücke: P.falciparum, P. vivax, P. malariae, and P. ovale ca 215 Millionen klinische Faelle (<50 in AUT) 0.66 Millionen Todesfaelle/Jahr (WHO, 0-2 in AUT) Etwa 40% der Weltbevoelkerung Malaria ausgesetzt P. falciparum [klinisches Bild: Malaria tropica] ist verantwortlich fuer die schwersten Verlaufsformen und fast alle Todesfaelle Die benignen Verlaufsformen der Malaria werden verursacht von P. vivax, P. ovale [Malaria tertiana] , und P. malariae [Malaria quartana] Innerhalb von etwa 5 bis 10 Jahren fuehren wiederholte Infektionen zu einer kurzlebigen Semiimmunitaet (Kinder bis 10 Jahre sind daher besonders betroffen, da sie noch keine Immunitaet entwickeln konnten)

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Malariadiagnostik in Theorie und Praxis a hands-on experience

Assoc. Prof. HARALD NOEDL, MD, PhD

Institut für Spezifische Prophylaxe und Tropenmedizin

Kinderspitalgasse 15,

A - 1090 Vienna, AUSTRIA

[email protected]

Im Rahmen der Methodenseminare SS13

„Spezifische Prophylaxe und Tropenmedizin“

2

M A L A R I A

Protozoenerkrankung hervorgerufen durch vier verschiedene Spezies der Gattung Plasmodium übertragen durch die Anophelesmücke:

P.falciparum, P. vivax, P. malariae, and P. ovale

• ca 215 Millionen klinische Faelle (<50 in AUT) • 0.66 Millionen Todesfaelle/Jahr (WHO, 0-2 in AUT) • Etwa 40% der Weltbevoelkerung Malaria ausgesetzt

• P. falciparum [klinisches Bild: ‘Malaria tropica’] ist verantwortlich fuer die schwersten Verlaufsformen und fast alle Todesfaelle • Die benignen Verlaufsformen der Malaria werden verursacht von P. vivax, P. ovale [‘Malaria tertiana’] , und P. malariae [‘Malaria quartana’]

• Innerhalb von etwa 5 bis 10 Jahren fuehren wiederholte Infektionen zu einer kurzlebigen Semiimmunitaet (Kinder bis 10 Jahre sind daher besonders betroffen, da sie noch keine Immunitaet entwickeln konnten)

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M A L A R I A E P I D E M I O L O G I E

1995 2010 (WHO 2011)

At Risk 3 billion 3,3 billion

Clinical Cases 300-500 million 216 millions

Deaths 1,5-2,7 million 655.000

Main Distribution 90% of cases in

Subsaharan Africa

90 % of cases in

Subsaharan Africa

Secondary India, Sri Lanka,

Afghanistan, Vietnam,

Colombia

India, Afghanistan, SE-

Asia

M A L A R I A E P I D E M I O L O G I E

P. falciparum P. vivax P. ovale P. malariae

M. tropica M. tertiana M. tertiana M. quartana

Präpatenz 9-10 11-13 10-14 15-16

Inkubation 7-14 12-17 (bzw. 6-

12 Monate)

15-18 18-40

Erythrozytärer

Zyklus

48 48 50 72

Fieber Quotidian, tertian,

sub-/bi-tertian

Tertian Tertian Quartan

Max.

Parasitämie/uL

2 millionen (40%) 50,000 (1%) 30,000 (0.6%) 20,000 (0.4%)

Relapse

(Hypnozoiten)

-- ++ ++ --

Dauer einer

unbehandelten

Infektion

1-2 y 1.5-5 y 1.5-5 y ? 3-50 y

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M A L A R I A E P I D E M I O L O G I E

M A L A R I A E P I D E M I O L O G I E

Neu: P. knowlesi – “die 5. Spezies”

• Morphologisch nicht von P. malariae (M. quartana) zu

unterscheiden

• Zyklus: 24h! schneller Anstieg der Parasitämie

• Verbreitung: Südostasien

(v.a. Borneo und Malaiische Halbinsel)

• Reservoir: Makaken (Macaca fascicularis - Zoonose!)

• Vektor: A. leucosphyrus

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M A L A R I A L E B E N S Z Y K L U S

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PROBLEME IN DER MALARIA-DIAGNOSTIK

• Malaria ist eine potentiell tödliche Erkrankung,

fruehzeitige Diagnose daher lebenswichtig

• In Endemiegebieten stellt jeder Erkrankte ein

Infektionsrisiko für die Gemeinschaft dar. Rechtzeitige

Erkennung von Malaria ist daher von grosser

epidemiologischer Bedeutung

• PROBLEM: Malaria ist eine Krankheit der Armen –

Malariadiagnostik und –kontrolle verlangen jedoch ein

gewisses Maß an Infrastruktur und finanzielle Mittel für

die Diagnose und Therapie des einzelnen Falles

• In reichen Ländern dagegen fehlt es nicht am Geld,

wohl aber an der Erfahrung im Umgang mit Malaria

M A L A R I A D I A G N O S T I K

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M A L A R I A D I A G N O S T I K

ÜBERBLICK: VERFÜGBARE DIGNOSTISCHE VERFAHREN

• Klinische Diagnose

• Gefärbter Blutausstrich

• Dicker Tropfen – Ausstrich

• Fluoreszenz Mikroskopie

• QBC – Kawamoto

• Molekulare Diagnostik (PCR)

• ELISA

• Antigen – Antikörper

• Immunochromatographische Tests

• HRP-2

• pLDH

10

M A L A R I A M O R P H O L O G I E

P L A S M O D I U M F A L C I P A R U M

Zyklus: 48 Stunden, Erys nicht vergroessert, Maurer’s kleft

Ringe / Trophozoiten

Klein bis mittelgross, haeufig zwei Chromatine

(Doppelchromatin), randstaendige Formen (accole), oft

mehrere Parasiten in einem Erythrozyten (Doppel-,

Dreifachinfektion); spaetere entwicklungsstadien verschwinden

aus dem periphaeren Blutstrom (Sequestration)

Schizonts

Normalerweise NICHT im peripheren Blutstrom (ausser bei

schweren Verlaufsformen); 12 bis 32 Merozoiten, kompakt mit

einem einzelnen dunklen Pigment

Gametozyten

Erscheinen etwa 10 Tage nach den asexuellen Formen;

bananenfoermig; weibliche (Macrogametozyten) sind

schlanker, haben einen kleinen Kern, blaeuliches Zytoplasma,

Pigmentkoerner gehaeuft, maennliche (Microgametozyten)

sind etwas breiter undhaben ein roetliches Zytoplasma, einen

grossen Kern und verteiltes Pigment

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M A L A R I A M O R P H O L O G I E

P L A S M O D I U M V I V A X

Zyklus: 48 Stunden, Erys vergroessert, Schueffner Tuepfelung

Ringe / Trophozoiten

Klein bis relativ gross, wachsen schnell, mit deutlicher

amoeboider Aktivitaet und Pseudopodien (Amoeboide

Formen); grosse Vakuole

Schizonten

Auch im peripheren Blutstrom, 12 to 24 Merozoiten,

vergroesserte Zelle

Gametozyten

Erscheinen innerhalb von 3 Tagen, gross, rund oder oval,

koennen beinahe die gesamte, vergroesserte Zelle ausfuellen;

Macrogametozyten: blaues Zytoplasma, kleiner, kompakter

Kern; Microgametozyten: grosser diffuser Kern

12 12

M A L A R I A M O R P H O L O G I E

P L A S M O D I U M O V A L E

Zyklus: 48 Stunden, Erys vergroessert, Schueffner

Tuepfelung, haeufig oval, ausgefranst

Ringe / Trophozoiten

Klein bis mittelgross, kompaktes Zytoplasma,

Vakuole verschwindet fruehzeitig, prominentes Pigment,

Schizonten

Auch im peripheren Blutstrom, 4 to 12 Merozoiten,

vergroesserte Zelle

Gametozyten

Aehnlich wie P. malariae (aber in vergroesserter Zelle);

Macrogametozyten: blaues Zytoplasma, kleiner, kompakter

Kern; Microgametozyten: hellblaues Zytoplasma, grosser,

diffuser Kern

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13 13

M A L A R I A M O R P H O L O G Y

P L A S M O D I U M M A L A R I A E

Zyklus: 48 Stunden, Erys vergroessert

Ringe / Trophozoiten

Klein bis mittelgross, kompaktes Zytoplasma,

Vakuole verschwindet fruehzeitig, polares Wachstum

(Bandformen), reichlich dunkles, prominentes Pigment

Schizonten

6 bis 12 Merozoiten als cluster or symmetrisch angeordnet

(bluetenfoermig), konzentriertes, oft zentrales Pigment

Gametocytes

Macrogametozyten: blaues Zytoplasma, kleiner, kompakter

Kern; Microgametozyten: hellblaues Zytoplasma, grosser,

diffuser Kern

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P. falciparum P. vivax P. ovale P. malariae

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M O R P H O L O G I E

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KLINISCHE DIAGNOSE

• Auch heute noch die am weitesten verbreitete

Methode der Malariadiagnose und in vielen

Gegenden die einzig verfügbare

• Diagnose anhand „typischer“ Klinik (Fieber,

Schüttelfrost, Kopfschmerz, Übelkeit,

Erbrechen...)

• Problem: Malaria hat keine „typische“ Klinik,

sie kann vielmehr praktisch jede ander

Krankheit imitieren

• Klinische Diagnose der Malaria ist daher

häufig eher ein Lotteriespiel, besonders in nicht

endemischen Gebieten, in denen es häufig an

der Erfahrung im Umgang mit Malaria fehlt

M A L A R I A D I A G N O S T I K

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MIKROSKOPISCHE DIAGNOSE

• Auch heute nach über 100 Jahren noch der Gold Standard der Malariadiagnose

• Hat in dieser Zeit wenig Veränderung gesehen

• Vorteile:

• Sensibel

• Erlaubt Speziesdiagnostik und Quantifizierung der Parasitämie

• Relativ billig (US$ 0.12 bis 0.40)

• Nachteile:

• Arbeitsintensiv und relativ zeitaufwendig (ca. 60 Minuten)

• Erfordert gut geschultes und vor allem geübtes technisches Personal

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MIKROSKOPISCHE DIAGNOSE

• DICKER TROPFEN

• Durch Haemolyse massiv angereicherte Schichtung von Erythrozyten (ca. 20-30 fach)

• Färbung mit Giemsa, Field‘s, Wright‘s Stain

• Qualität der Färbung extrem wichtig für Sensitivität

• Quantifizierung durch Zählung pro 200 Leukos

• Sensitivität: >20/uL (Expert Microscopy), >50/uL (Standard in Endemiegebieten), >500/uL in den meisten westlichen Labors

• Vorteil: Hohe Sensitivität, daher ausgezeichnet für Diagnose

• Nachteil: Deutlich schwieriger zu interpretieren als Ausstrich, schwierigere Speziesdiagnose

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MIKROSKOPISCHE DIAGNOSE

• AUSSTRICH

• Als Monolayer auf Slide aufgebracht, fixiert

• Färbung mit Giemsa, Wright‘s Stain

• Qualität der Färbung nicht so wichtig für Sensitivität

• Quantifizierung durch Zählung per 1000 – 10,000 Erys

• Vorteil: Einfach zu interpretieren, sehr gut für Speziesdiagnose

• Nachteil: NICHT GEEIGNET für Diagnose dank niedriger Sensitivität (nur ca. 1/10 des Dicken Tropfens!)

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FLUORESZENZMIKROSKOPIE

• QBC II

• Becton Dickinson, Franklin Lakes, N.J.

• Anreicherung von Parasiten in Acridin-Orange beschichteten Kapillaren, Nachweis in Fluoreszenzmikroskop

• Nach Zentrifugieren Konzentration der gefärbten Parasiten in der oberen Ery Schicht

• KAWAMOTO TECHNIK

• AO Färbung, Umgeht das Problem des Fluorenzmikroskops mit Quarz Halogenlichtquelle

• Vorteil: Etwas einfacher zu interpretieren als Giemsa

• Nachteil: Relativ aufwendig, nicht sensibler als Giemsa Smear, ungeeignet für Endemiegebiete, schwierige Differentialdiagnose

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RDTs (Rapid Diagnostic Tests)

• Immunochromatographische Tests

• Prinzip ähnlich ELISA, monoklonaler Antikörper fängt markiertes Antigen auf Mikrozellulose-membran

• Verschiedene Formate:

• Teststreifen

• Kartenformat

• Kassettenformat

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RDTs (Rapid Diagnostic Tests)

• Zielantigene:

• Histidinreiches Protein II (HRP2) z.B. Now ICT (Binax), Paracheck (Orchid)

• Äußerst stabiles Protein (daher nicht für den Nachweis des Behandlungserfolgs geeignet)

• In P. falciparum, unabhängig von Knob-Phänotyp

• In Parasiten, infiz. Erys, Serum u. Plasma

• Lactatdehydrogenase (pLDH) Optimal (Diamed)

• Enzym aus Glycolytic Pathway

• Findet sich bei allen P. spezies

• Kurze Halbwertszeit

• Aldolase (als „Panamalaria Ag“ auf Now ICT)

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RDTs (Rapid Diagnostic Tests)

Vorteile:

• Rasche Diagnose (ca. 15 Minuten)

• Einfache Durchführung, erfordert daher nur kurze Einschulung (aber dennoch nicht für die Selbstdiagnose z.B. bei Reisenden geeignet!)

• Hohe Sensitivität (vgl. mit dickem Tropfen, im Vergleich zu unerfahrenem Personal sogar deutlich höher!)

• Erfordern praktisch keine Infrastruktur (Elektrizität, Laborgeräte etc.) und sind sehr wiederstandsfähig

Nachteile:

• Keine Speziesdiagnose (Primär Pf)

• Falsch positiv nach erfolgreicher Therapie (HRP2)

• Limitierte Aussage über Parasitendichte

• Relativ teuer (ca. US$ 0.60 bis 5.00)

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POLYMERASE CHAIN REACTION (PCR)

Ziel: Small-Subunit 18S rRNA u.a. (z.B. CS)

Vorteile:

• Äusserst sensitiv (ca. 5 Parasiten/uL)

• Bester Nachweis von gemischten Infektionen

• RTPCR erlaubt exakte Quantifizierung der Parasitendichte und ist relativ schnell

• Ausgezeichnetes Tool für wissenschaftliche Zwecke (z.B. als Goldstandard für RDT-Sensitivitätsstudien)

Nachteile:

• Sehr teuer

• Nicht für Routinediagnose

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ELISA

Antigen – Antikörper Nachweis

Antigennachweis:

• Hoher Durchsatz (ca 40 Samples pro Platte, 5 Platten können gleichzeitig gefahren werden 200 Resultate innerhalb von ca. 3-4 Stunden)

• Ausgezeichnet geeignet für epidemiologische Studien, nicht für Routinediagnostik

• Hohe Sensitivität (ca. 20 Parasiten/uL), für Pf sensibler als Mikroskopie, möglicher Goldstandard für Pf?

• Kommerziell nur für Pf erhältlich, daher keine Speziesdiagnose

Antikörpernachweis:

• Für epidemiologische Seroprävalenzstudien, Blutbanken, Eradikationskampanien

• Nicht für Routinediagnose

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FÜR JEDEN ZWECK DER RICHTIGE TEST

Routinediagnose in Endemiegebieten:

• Mikroskopie (Giemsa) ODER RDTs (wo Mikroskopie nicht verfügbar)

Routinediagnose bei Reisenden:

• Mikroskopie (Giemsa oder Fluoreszenz) PLUS RDTs (keine Selbstdiagnose)

Seroprävalenzstudien und Blutbanken:

• Ak-ELISA und Mikroskopie

Wissenschaftliche Zwecke:

• Mikroskopie (Giemsa) PLUS PCR oder Ag-ELISA

Auch nach über 100 Jahren hat die Mikroskopie nicht an Bedeutung für die Malariadiagnose verloren. Neue ergänzende Techniken können jedoch die Sensitivität deutlich erhöhen.