55
Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen - Verdünner - Kryobiologie

Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Embed Size (px)

Citation preview

Page 1: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Vorlesung: Andrologie und instrumentelle SamenübertragungWintersemester 2006/7, 7. Fachsemester

- Spermagewinnung

- Herstellung von Besamungsportionen

- Verdünner

- Kryobiologie

Page 2: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Samenübertragung beim Pferd im arabischen Schrifttum für 1286 datiert

Entdeckung der menschlichen Spermien

Antoni van Leeuwenhoek (1632-1723)

Page 3: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Erste erfolgreiche Besamung bei einem Säugetier im Jahre 1780 an einer Hündin

Lazzaro Spallanzani (1729-1799)

Karl-Ernst von Baer (1792-1876)

Entdeckung der Eizelle 1827 bei einer Hündin

Entwicklung einer künstlichen Vagina für Hunde 1914 durch einen italienischen Physiologen

Page 4: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Ab 1900 umfangreiche Versuche zur künstlichen Besamung in Russland/UdSSR

Erste Versuche an Meerschweinchen, Kaninchen und Hunden

1932: künstliche Besamung bei 2182 000 Schafen und 385 000 Rindern

Page 5: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen
Page 6: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

In Deutschland Weiterentwicklung vor allem in Hannover

- eindeutiger Schwerpunkt beim Nutztier- Bekämpfung von Deckseuchen

Erste deutsche Besamungsstation 1943 in Pinneberg

Page 7: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Heutige Situation - Deutschland

Milchrind

0

20

40

% d

er K

ühe

und

Fär

sen

60

80

100

1955 1960 1965 1970 1975 1980 1985 1990 1995 2000 2005

Schweinpro Jahr werden zwischen 5 – 6 Millionen Spermaportionen verkauft

WarmblutpferdAnteil der Besamungen liegt mehr als dreimal so hoch wie der Natursprung

Page 8: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Schritte der Herstellung einer Besamungsportion

- Spermagewinnung

- Spermabeurteilung

- Spermaverarbeitung

- Verdünnung - Berechnung des Verdünnungsgrades - Verdünnungsvorgang - Konfektionierung u. Kennzeichnung - Glasampullen - Pellets - Pailletten - sonstige Plastikgefäße - Lagerung

- Spermaverbrauch - Entnahme - Handling bis zur Besamung

- Besamung

Page 9: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Arten von Besamungsportionen

Direkte Übertragung nach der Gewinnung

Nativsperma

Verlängerung der Haltbarkeit durch Zusatz von Verdünnern und Kühlungflüssigkonserviertes Sperma

Verlängerung der Haltbarkeit durch Zusatz von Verdünnern, Kryoprotektiva und Tiefgefrierung bei -196°Ctiefgefrierkonserviertes Sperma

Page 10: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Nativsamen

Vorteile: - wenig Aufwand (Verarbeitung, Besamungstechnik) - geringe Schädigung der Spermien

(gute Befruchtungskompetenz) - leichte Besamungstechnik

Nachteile: - Besamungsportion muss sofort versamt werden - örtliche und zeitliche Bindung

Typische Situation:

- Hündin lässt Rüden trotz richtigem Besamungszeitpunkt nicht decken

- Rüde wird abgesamt – Hündin wird besamt

Page 11: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

flüssigkonserviertes Sperma

Prinzip:- durch Zugabe von Verdünnern und Kühlung wird die Besamungsportion bis

etwa 3 Tage konserviert- beste Ergebnisse innerhalb von 48 Std. nach der Gewinnung

Vorteile: - kein direkter Kontakt von Zuchttieren notwendig - Vermeidung von zeit- und kostenaufwendigen Fahrten - Verminderung des Infektionsrisikos

Nachteile: - Fehler in der Samenhandhabung führen zum Leerbleiben

- höhere Anforderungen an die Besamungstechnik

Page 12: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Tiefgefriersperma

Prinzip:- durch Zugabe von Verdünnern, Kryoprotektiva, schrittweise Kühlung und Gefrierung in flüssigem Stickstoff bei -196°C wird der Samen konserviert

Vorteile: - „unendliche“ Lagerungsdauer möglich (3000 – 10000 Jahre) - keine Begrenzung von Zeit und Ort - Anlage von Genbanken möglich

Nachteile: - Schädigung der Samenzellen (Verlust von 20 – 50 %) - hohe Anforderungen an die Besamungstechnik - nicht jedes Vatertier ist geeignet

Page 13: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen
Page 14: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermagewinnung

- Methode beeinflusst die Qualität des Ejakulates(negative Erfahrungen, Volumen und Dichte, Stimulation)

Zwei Methoden:- Elektroejakulation ohne Auslösung der Paarungsreflexkette- Nutzung der natürlichen Paarungsreflexkette

Prinzip der Elektroejakulation

- Einführen einer bioplaren Elektrode in das leere Rektum - mehrmalige elektrische Reizung mit steigender Stromstärke

(Bulle: 0 auf 40 – 60 mA, Spannung bei 10 – 30 Volt) - Möglichkeit der Ejakulation ohne Erektion – Ejakulat tropft aus der

Präputialöffnung ab

Page 15: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermagewinnung

Nutzung der natürlichen PaarungsreflexketteAblauf: - Auslösung der natürlichen Paarungsreflexkette

- Schlüsselreize (visuell, olfaktorisch, mechanisch)- mit natürlichem Sprungpartner

- weiblich- im Östrus- nicht im Östrus

- männlich

- mit einer Attrappe, die den Schlüsselreizvermittelt (Phantom)

- allein durch manuelle Stimulation

Page 16: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen
Page 17: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermagewinnung

Page 18: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermagewinnung

Nutzung der natürlichen PaarungsreflexketteMethoden:

- Nutzung einer künstlichen Vagina

- manuelle Methode

Page 19: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermagewinnung

Nutzung der natürlichen Paarungsreflexkette

Methoden: - Nutzung einer künstlichen Vagina

- Mantelrohr z. B. aus Hartgummi

- Innenschlauch z. B. aus Latex

- Samenauffangglas

- Gummiringe

- Ventil

- Gleitmittel

- Latextrichter

Page 20: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermagewinnung

Nutzung der natürlichen PaarungsreflexketteMethoden: - Nutzung einer künstlichen Vagina

Page 21: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermagewinnung

Nutzung der natürlichen PaarungsreflexketteMethoden: - Nutzung einer künstlichen Vagina

Page 22: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermagewinnung

Nutzung der natürlichen PaarungsreflexketteMethoden: - Nutzung einer künstlichen Vagina

Schlüsselreize:- Temperatur (zwischen 40 - 41°C)- Druck

- Gleitvermögen

- Wärmeschrank (Cave: Keimvermehrung)- Wasser (Cave: spermizid)- Alternativ: Luft

Page 23: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Spermabeurteilung

- siehe Spermatologische Untersuchung

SpermaverarbeitungZiel: Erhaltung der Befruchtungsfähigkeit über einen möglichst

langen Zeitraum

Verdünnung

- ausgehend von der Dichte des Ejakulates- Zusatz von Verdünnern:

- Volumenvergrößerung- Nährstoffe (Glukose, Fruktose)- Schutzstoffe: Eidotter und synthetische - Kryoprotektiva- Erhaltung des osmotischen Druckes (250-300 mOsm/l)- Pufferkapazität (pH: 6-7)- Verhinderung von Keimvermehrung

- Volumenvergrößerung- Konservierung

Page 24: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Kryoprotektiva

- Glycerin: am häufigsten eingesetzt, aber auch zytotoxisch(1 – 3 %)

- DMSO: Bedeutung beim Kaninchen

Warum Zusatz von Kryoprotektiva?

Reduzierung der Zellschäden durch

- Kühlschäden- Gefrierschäden

Schäden vor allem im Bereich der Plasmamembran und des Akrosom

Page 25: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Kühlschäden

- Strukturelle Veränderungen der Plasmamembran im Temperaturbereich 17°C bis 4°C

- sehr empfindlich sind Eberspermien- Reduktion der Schäden durch Zusatz von Schutzkolloiden

- Schädigungsfaktoren: - Wasserentzug durch extrazelluläre Eisbildung

– Zerstörung der Isotonie – Anreicherung von Stoffen in der Zelle, die nicht durch die Plasmamembran durchtreten können.

- Intrazelluläre Eisbildung

- Zwischen -5 °C und -15 °C setzt die extrazelluläre Eisbildung ein

Gefrierschäden Beim

Einfrieren und A

uftauen

Page 26: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Exosmose: Entzug von Wasser durch extrazelluläre Eisbildung

intrazelluläre Eisbildung

Aus: Busch et al. , 1993

Beides soll in seinen negativen Auswirkungen reduziert werden

Page 27: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Exosmose: Entzug von Wasser durch extrazelluläre Eisbildung

intrazelluläre Eisbildung

Beides soll in seinen negativen Auswirkungen reduziert werden

- Zusatz von Kryoprotektiva

- Zeitkurve der Einfrierung: - schnelles Einfrieren: vermehrt intrazelluläre Eisbildung- langsames Einfrieren: Exosmose, Lösungseffekt

Page 28: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Verdünnung

- Temperaturangleichung von Samen und Verdünner- Beachtung bestimmter Haltezeiten (Äquilibrierung – bei TGS)

1. Berechnung der erforderlichen Verdünnermenge- erforderliche Gesamtspermienzahl pro Portion- Anteil der zu erwartenden vorwärtsbeweglichen Spermien zum Zeitpunkt der Besamung

2. Bestimmung des Endvolumens nach Verdünnung

Gesamtspermienzahl x VorwärtsbewegungFaktor x Spermien pro Besamungsdosis

= Anzahl Samenportionen

Anzahl Samenportionen x Volumen Portion = Endvolumen nach Verdünnung

u. a.: Verhältnis Samen:Verdünner

Page 29: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Verdünnung (Beispiel: Flüssigkonservierung Rüde)

1. Berechnung der erforderlichen Verdünnermenge

2. Zusatz des Verdünners bei Raumtemperatur

3. Wartezeit von 10 Minuten

4. Kontrolle der Motilität

5. Abfüllen und Kennzeichnen der Besamungsdosis

6. Überführen in den Kühlschrank und Lagerung bei 5°C

Page 30: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Verdünnung (Beispiel: Tiefgefrierkonservierung Bulle)

- Abkühlung in mehreren Schritten

- Zugabe von Verdünner bei Raumtemperatur

- schrittweise Absenkung auf -196°C

- computergesteuerte Temperaturabsenkung

- tierartliche Besonderheiten

Page 31: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Konfektionierung

- Handhabung (Lagerung, Schutz, Identifikation, kryobiologische Aspekte)

Konfektionierung für die Flüssigkonservierung

- Kunststoffgefäße mit starrer Wand (z.B.: Spritzen)- Kunststoffgefäße mit flexibler Wand (z.B.: Tuben)

Konfektionierung für die Tiefgefrierkonservierung- Pellets (historisch)- Ampullen (historisch)- Pailletten

Page 32: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Aus: Busch et al. , 1993

Page 33: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Aus: Busch et al. , 1993

Page 34: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Pailletten

- Entwicklung aus Frankreich, die sich seit den sechziger Jahren weltweit verbreitet hat.

- Polyvinylchlorid, verschiedene Farben

- Andere Bezeichnung: Straws

- Verschiedene Größen:- große Pailletten (Makrotübs): Länge 240 mm; 5 mm, Inhalt 4 ml

- mittlere Pailletten: Länge 133 mm; 2,9 mm, Inhalt 0,5 ml- feine Pailletten: Länge 133 mm; 2 mm, Inhalt 0,25 ml- Modell Minitüb: Länge 65 mm; 3 mm, Inhalt 0,25 ml

Vorteile der Miniaturisierung:- rationelle Lagerung- Veränderung des Verhältnisses von Oberfläche zu Inhalt

Nachteile der Miniaturisierung:- bei einigen Tieren müssen mehrere Pailletten eine Besamungsportion

ergeben

Page 35: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Grundaufbau Pailletten

Baumwollstopfen mit Polyvinylalkohol-Puder

Dient später als Stempel

LuftblaseVerschluss durch maschinelles Zusammenpressen oder Kugel

Hfewhfwefvwejkklllooooo

Page 36: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Grundaufbau Pailletten

Luftblase

Hfewhfwefvwejkklllooooo

Page 37: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Grundaufbau Pailletten

Hfewhfwefvwejkklllooooo

Page 38: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Grundaufbau Pailletten

Hfewhfwefvwejkklllooooo

Page 39: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Grundaufbau Pailletten

Hfewhfwefvwejkklllooooo

Angaben auf der Besamungsportion- Identitätsnummer- Kurzname (Rasse)- Datum der Spermaentnahme- (Name) und Code der Besamungsstation

Sinn:- Identitätsnachweis der Nachkommen- Rückverfolgung (Seuchenhygiene, Erbhygiene)

Page 40: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Lagerung des Tiefgefriersperma

- im flüssigen Stickstoff (N2)

- Temperatur -196 Grad Celsius

- Eigenschaften: - farblos- geruchlos- chemisch nicht aggressiv- schwerer als Luft- Siedepunkt: -196 °C

Siedetemperatur oder -punkt: Der Siedepunkt stellt die Bedingungen dar, welche beim Phasenübergang eines Stoffes von der flüssigen in die gasförmige Phase vorliegen, was man als Sieden oder Verdampfen bezeichnet.

Page 41: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Luft:Gasgemisch der Erdatmosphärehauptsächliche Bestandteile:

- Stickstoff 78 %- Sauerstoff 21 %- Argon 0,9 %- Kohlenstoffdioxid 0,03 % - Rest

Page 42: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Gefahr durch flüssigen Stickstoff

- N2 muss verdampfen können- Explosionsgefahr bei festen Verschluss- Erstickungsgefahr in verschlossenen Räumen

- Erfrierungen- besondere Gefahr: Augenverletzungen

Merke: - Container vor Umkippen schützenauch im Auto

- Augen schützen (Schutzbrille tragen)

- Container nicht in schlecht belüfteten Räumen lagern (Keller, Abseiten, u .a.)

- Container müssen regelmäßig aufgefüllt werden

Page 43: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen
Page 44: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen
Page 45: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Sollte nicht im Fahrgastraum transportiert werden.

Page 46: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Sofortmassnahmen bei Unfällen mit flüssigen Stickstoff

- Kleidung und Schuhe ausziehen, wenn N2 zwischen Kleidung und Haut

- Augen: mit Wasser spülen

- Bei Blasenbildung nicht reibenbetroffene Stellen mit Verbandsmaterial abdecken

- Räume lüften

Page 47: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Lagerungsgefäße für Tiefgefriersperma- Container

Isolierung durch - doppelwandiger Behälter

- Vakuum + Isoliermaterial

Deckel gewährleistet- Schutz- Verdampfung

Technische Daten von Containern- Füllmenge- Verdampfungsrate

Stickstoffverbrauch muss kontrolliert werden- Messstäbe- Waagen

Page 48: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Lagerungsgefäße für Tiefgefriersperma

- 196 °C

- 150 - 190 °C

- 120 °C

nahe Umgebungstemperatur

Spermaschädigung ab einer Temperatur von - 120 °C

Wiederholte Exposition führt zur Akkumulation der Schäden

Page 49: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Aus: Busch et al. , 1993

Container

Kanister

Goblet

Page 50: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Reinigung und Desinfektion von Spermacontainern

- vorgeschrieben, wird auch kontrolliert (Dokumentation)

- Ansammlung von Sediment (Dreck, Spermaportionen)

- Infektionserreger werden konserviert

Vorgehen

- Spülung mit destilliertem Wasser

- Begasung wäre ideal (Formaldehyddampf)

Page 51: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Entnahme einer Besamungsportion

Prinzip

- Nur die Portion entnehmen, die gebraucht wird- Die anderen Portionen nicht schädigen- die entnommene Portion unverzüglich dem Auftauprozess zufügen

Vorgehen

- Container öffnen – Standplatz des Deckels- Kanister soweit anheben, dass Paillette mit Pinzette erfasst werden

kann – obere Kante der Pailletten darf Niveau der Containeröffnung nicht überragen

- Paillette kurz schwenken- Kanister absenken- Paillette ins Auftaugerät überführen- Container schließen

Page 52: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Entnahme einer Besamungsportion

Vorraussetzungen

- Inventarverzeichnis- gute Lichtverhältnisse

Fehler

- Langes Suchen der richtigen Portion- Zu weites Hochziehen der Kanister- „Fecheln“ mit der Hand

Page 53: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Auftauen einer Besamungsportion

Prinzip

- schnelles Auftauen verhindert Rekristallisation- kontinuierliche Wärmeübertragung verhindert ungleichmäßiges Auftauen- optimal: 75°C über 5 bis 10 Sekunden- Samenportion darf nicht zu „warm“ werden < 40°C- Die Temperatur darf nur nach oben gehen

Schlechte Auftaubedingungen- in der Hand- im Mund- an der Luft (Umgebungstemperatur)

Page 54: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Auftauen einer Besamungsportion

Vorgehen

- Kontrolle des Auftaugerätes (Betriebstemperatur)- Temperatur des Wasserbades 38 ± 2 °C- Dauer: feine Pailletten: 25 Sekunden

mittlere Pailletten und Minitüb: 30 Sekunden - Überführen der Portion in das Auftaugerät - Entnahme der Portion - Identitätskontrolle - Abtrocknen der Portion - Beförderung der Luftblase auf die Verschlussseite - Öffnen der Portion - Einbringen in das Besamungsgerät

Page 55: Vorlesung: Andrologie und instrumentelle Samenübertragung Wintersemester 2006/7, 7. Fachsemester - Spermagewinnung - Herstellung von Besamungsportionen

Lagerung des flüssigkonservierten Spermas

- Eber: ca. 17°C

- Rüde: ca. 5°C

- Hengst: 4 - 6°C

- Kühlkette muss eingehalten werden – auch kurzfristige Erwärmung verhindern

- Lagerung im Kühlschrank